急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

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大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良

大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良

大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良吴庆景;高凤敏;杨艳娜;侯广玉;杨国宏;孙晓冬【期刊名称】《解剖学杂志》【年(卷),期】2017(040)003【摘要】目的:为大鼠急性心肌梗死模型制作提供更快、更稳定的方法.方法:所有大鼠按气管插管方法-开胸扩开第3肋间隙方法随机分为:灌胃针-开睑器组(传统组)、灌胃针-缝合线开睑器组、自制插管-开睑器组、自制插管-缝合线开睑器组(改良组),麻醉后分别用相应方法行气管插管和开胸,暴露术野,结扎冠状动脉前降支,记录每组大鼠气管插管时间、气管插管次数、手术时间、术后呼吸道哮鸣音发生率、肺损伤程度和死亡率.术后第2天和第4天随机取各组大鼠5只,行心电图、左心室插管和心肌染色检测模型心功能及心肌梗死面积.结果:使用自制插管的两组插管时间和次数与使用灌胃针的两组差别无统计学意义,但术后呼吸道哮鸣音发生率及死亡率明显低于使用灌胃针两组;使用缝合线开睑器的两组手术时间、术中肺损伤程度及术后死亡率明显低于使用开睑器的两组;各组间心功能及心肌梗死面积差异无统计学意义,改良组组内心功能及梗死面积差异性较小.结论:改良后大鼠急性心肌梗死模型制作方法简单、成活率较高、模型质量较高,值得推广.【总页数】4页(P299-302)【作者】吴庆景;高凤敏;杨艳娜;侯广玉;杨国宏;孙晓冬【作者单位】牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000【正文语种】中文【相关文献】1.改良大鼠急性心肌梗死模型的制备方法 [J], 许官学;石蓓;盛瑾;郭小英;杨文笔;雷艳娟2.SD大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改进 [J], 陈会强;崔炜;方敬;贾云芳;侯仙明;呼海娟3.大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良 [J], 吴庆景;高凤敏4.两种大鼠急性坏死性胰腺炎模型制作方法的改良和比较 [J], 刘纳新;管敏强;陈通克;赵惠玲;陈锡文5.血管性痴呆大鼠模型制作方法的改良 [J], 顾静;李海龙;杨长生;车敏;吴红彦因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备
陈红霞;高英茂;邴鲁军
【期刊名称】《中国组织化学与细胞化学杂志》
【年(卷),期】2005(014)001
【摘要】目的建立一种稳定可重复的急性心肌梗死动物模型.方法 Wistar大鼠经戊巴比妥钠麻醉后,气管切开插管,连通呼吸机,开胸后结扎左冠状动脉前降支.4周后取出心脏做病理组织学和心肌特异性肌钙蛋白T免疫组织化学染色检测.结果成功制备心肌梗死动物模型,并进行了病理组织学和免疫组织化学染色证实.结论本文建立的实验方法操作简单,成功率高,结果可靠.
【总页数】4页(P70-73)
【作者】陈红霞;高英茂;邴鲁军
【作者单位】山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012【正文语种】中文
【中图分类】R541
【相关文献】
1."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心肌形态学、心肌酶学及血液流变学变化的比较 [J], 王佳;曲绍眷;于晓风;周金影;睢大筼
2."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心脏血流动力学及心电图变化的比较 [J], 于晓风;王佳;曲绍春;周金影;西月;睢大筼
3."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠血液生化学比较 [J],
曲绍春;于晓风;王佳;周金影;谢昊霖;睢大筼
4.大鼠急性心肌梗死模型制备及对心功能影响的实验研究 [J], 侯春丽;张冬梅;侯学红;杨少军
5.大鼠急性心肌梗死模型制备方法研究进展 [J], 曹珏;李贻奎;陈孟倩;姚魁武
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心肌梗死动物模型具体方法及步骤

心肌梗死动物模型具体方法及步骤

心肌梗死动物模型具体方法及步骤原型物种人来源结扎冠状动脉左前降支(LAD)导致心梗模式动物品系SPF级SD大鼠,健康,3-4W,雌雄各半,体重为180g-200g。

实验分组实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组。

实验周期72h建模方法心肌梗死是指心肌的缺血性坏死,是一种急性及严重的心脏状态。

心脏作为血液循环动力中心这一功能的实现,需要冠状动脉不断提供的血流供应,当冠状动脉发生病变而狭窄或堵塞,使得冠状动脉的血流急剧减少或中断,便会使相应的心肌出现严重而持久地急性缺血,心肌无法得到足够氧气,最终导致心肌不可逆的缺血性坏死,心脏的收缩和舒张功能降低,机体供血不足,严重者最终导致机体死亡。

1. 大鼠用3%戊巴比妥钠(30mg/kg),腹腔注射麻醉,用小动物剃毛器剃除大鼠胸部及腋下毛发(充分暴露手术区),用碘酒和75%乙醇术区消毒。

2.气管插管:麻醉后,夹趾检测无反应即可进行MI手术。

打开外置光源、显微镜开关,打开呼吸机,设置好各参数(呼吸比2:1,潮气量6-8 mL,频率70 次/min),将气管插管沿声门插入气管,取下大鼠接上呼吸机,观察大鼠呼吸状况,胸廓起伏与呼吸机频率一致表示插管成功,即可进行MI手术。

3. 大鼠采用右侧卧位,用眼科剪在左前肢腋下,用显微剪于三、四肋间打开胸腔充分暴露心脏,显微直镊轻轻夹起少量心包并于左心耳下撕开少许心包,充分暴露左冠状动脉前降支(LAD)或所在区域。

4. 结扎冠状动脉:于显微镜下找到LAD走向或可能所在位置,持针器持取5-0带针缝合线,于左心耳根部下方肺动脉圆锥旁以5-0 无创缝合线穿过左冠状动脉前降支( LAD),以完全阻断LAD血流。

5.关胸:结扎完成后,5-0缝线完全缝合胸腔开口(保证无缝隙、无错位)关闭胸腔,由内向外逐层缝合各层肌肉和皮肤。

6.术后管理:术后密切关注大鼠状态,有无呼吸异常等。

待大鼠自然苏醒后将大鼠从呼吸机上取下并取下气管插管,正常饲养。

心肌梗死的动物模型制作

心肌梗死的动物模型制作

心肌梗死的动物模型制作心肌梗死是一种严重的心血管疾病,其主要病理特征是冠状动脉的阻塞导致心肌缺血与坏死。

为了研究心肌梗死的发病机制和寻找可能的治疗方法,研究人员常常利用动物模型来模拟心肌梗死的发生。

下面,我将介绍一种常用的大鼠心肌梗死动物模型制作方法。

制作大鼠心肌梗死动物模型可以按照以下步骤进行:1.动物选择。

常用的实验动物有大鼠和猪。

由于大鼠的心血管解剖和生理特征与人类较为接近,同时成本较低,因此大鼠是一种常见的选择。

2.麻醉动物。

使用适量的麻醉剂,如异氟醚或七氟醚等,来使动物处于麻醉状态。

确保动物处于无痛苦的状态。

3.固定动物。

将动物固定在手术台上,以避免动物在手术过程中的移动。

4.体表消毒。

在手术区域进行局部消毒,以防止感染。

5. 做出胸骨切口。

在胸骨两侧做出1-2cm的胸骨切口,用手术器械将胸骨分开,暴露出心脏。

6.找到冠状动脉。

用吸引管或者类似的器械将心包囊抽吸,暴露出心脏表面。

紧邻左心室肌肉的左前降支是心肌梗死的常见发生区域。

7.梗死诱导。

用细导管或者相似的器械将一根可以封堵冠状动脉的丝线或者微球导入至冠状动脉中,使其堵塞。

这一步骤可以模拟冠状动脉的阻塞引发心肌梗死。

8.恢复心脏正常血流。

待梗死产生一段时间后(一般为30分钟-60分钟),再次将导管或器械取出,恢复冠状动脉的血流。

9.缝合胸骨。

将胸骨进行缝合,确保伤口能够愈合。

10.外科处理。

术后外科处理,如用抗生素进行预防性治疗,避免可能的感染。

研究人员可以通过观察心肌梗死后的心电图变化、心肌组织的病理切片等方式来评估心肌梗死的程度与发展。

总的说来,大鼠心肌梗死动物模型是一种常见的研究心肌梗死发病机制的实验模型。

通过制造大鼠心肌梗死动物模型,研究人员可以更好地模拟心肌梗死的发生,寻找新的治疗策略和探索其发病机制。

当然,在制作动物模型时,需要严格遵循相关伦理规范和动物保护法律法规,确保动物的利益和权益不受损害。

此外,动物模型只是研究的一部分,结合体外实验和临床数据,才能更全面地了解心肌梗死的病理机制及治疗方法。

大鼠急性心肌梗死模型的制备

大鼠急性心肌梗死模型的制备

实验流程: 1、麻醉动物 2、建立人工气道,机械通气 3、开胸,暴露心脏,结扎左冠状动脉 4、心电图验证损伤电流,确认心肌梗死 5、关胸,抗感染处理 6、附加实验,可练习制备心动过缓模型
实验步骤:
大鼠称重后用戊巴比妥钠溶液(30 mg/kg)或水合氯醛(300 mg/kg) 腹腔注射,麻醉后仰卧固定于手术 台板上。手术野皮肤去毛,碘酒、 酒精消毒,铺消毒巾。同时连心电 图机,用肢体导联进行心电图监测。
实验步骤:
迅速将心脏复位,逐层缝合;
最后一针先穿针打虚结,通过此间隙用注射器 抽出胸腔内气体,恢复胸腔负压后关胸。 待动物苏醒后拔除气管插管,以7/0 无损伤逢 合针将切口处相邻两个气管软骨环拉拢后闭合 气管。(如为经口腔插管则不需缝合。) 术后每天肌肉注射青霉素80万U,预防感染3 d。
关键要点: ① 剪开心包,挤压右侧胸腔使心脏暴露于 胸腔外,或用小药匙将心脏小心移出胸腔。 ② 以左冠状静脉主干为标志,于左心耳根 Байду номын сангаас下方2mm处进针,在肺动脉圆锥旁出针。 观察心电图,待其稳定后双重结扎前降支。 此后的心电图变化才能说明冠脉结扎情况。
附加实验——大鼠缓慢心率模型制备
结扎冠脉成功后,可不关胸,继续进行缓慢 心率模型制备练习 实验方法:
用棉签蘸40%甲醛,于上腔静脉根部与右 房交界处,接触1min,损伤窦房结,观察 心电图,如出现心率减慢,提示模型成功, 其余关胸步骤同前。
(因心梗可出现缓慢心率,此结果判定不排 除是心肌梗死引起的,仅供练习。)
实验步骤: 颈部正中切开气管并插管,用动物 人工呼吸机进行人工呼吸;潮气量 30 ml/kg,机械通气频率60-70次 /min。 人工呼吸下,在胸骨左缘扪及心脏 搏动处纵行切开皮肤约3 cm,逐层 分离皮下组织、肌肉,于第4肋间开 胸,剪开心包,暴露心脏、血管。

大鼠心肌梗死动物模型的制备

大鼠心肌梗死动物模型的制备

Reut S ria aeo h a d l a 0 .L EFo eAM[go p d ce s dsg ic nl ( <0 O , o ae sl s uvv lrt ftert mo e s % w 6 V ft h ru e rae inf a t P i y . 1) C mp rd w t h h m go p.L S n -d / to eA ru erae inf a t ( <0 0 i tes a ru h V P a d 1 p d ft MIgo pd ce sdsg i cnl P - h i y . 5,P<0 O ),b t h V P .1 u eL ED t
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率 6% ; 0 手术 组 L E V F较假 手术 组 显 著 降 低 ( 0 0 ) 与 假 手术 组 比 , 术 组 的 L S P< . 1 ; 手 V P明显 下 降 ( 00 ) ±d/ P< . 5 , p d 显 著 降 低 ( 0 0 ) 而 L E P明 显 升 高 ( 00 ) 病 理 组 织 学 检 查 可 见 瘢 痕 形 成 , 维 组 织 增 生 。 结 论 本 t P< . 1 , V D P< . 1 ; 纤

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估1 对象与方法?1. 1研究对象清洁级雄性Spreague-Dawley (SC)大鼠20 只,体质量250〜300 g (275± 15. 3) g,由广州中医药大学实验动物中心提供。

随机分为假手术组和心肌梗死组。

1 .2 研究方法?1 . 2. 1 MI 模型的建立[2-3] 氯胺酮( 75 mg/kg )腹腔注射麻醉,经口人工呼吸(导管置于大鼠的舌体与上颌之间),连接小动物呼吸机予以正压通气,潮气量3〜5 ml/100 g ,呼吸频率60次/min,吸呼比1? : ?1。

左侧胸部备皮,消毒手术区域,经胸骨左缘第4 肋间开胸,钝性分离肌肉,以眼科开睑器撑开肋间肌切口,暴露心脏,剪开心包,于肺动脉圆锥与左心耳之间距主动脉根部2~3 mm处,用7-0眼科无创缝合针,穿过前降支深部连同一小束心肌一并结扎。

根据心电图和心肌组织颜色确定冠脉结扎成功。

逐层缝合胸壁,自主呼吸恢复后拔出通气导管。

大鼠清醒后送动物房饲养,规律照明,自由进食和饮水。

术后连续3 d 予以青霉素40 万U 腹腔注射以预防感染。

假手术对照组除不结扎冠状动脉外,其余步骤相同。

1. 2. 2 超声心动图检查[4]3% 戊巴比妥钠( 45 mg/kg )腹腔注射麻醉,用Philips Sonos 5500型多功能超声诊断仪( S12探头,频率5~12 MHz),在胸骨旁以二维超声和M型超声测量左室收缩末径(LVSd、左室舒张末径(LVDd、舒张期左室后壁厚度(PWd、舒张期左室前壁厚度(AWd Ml组为梗死区室壁厚度)、左室射血分数(LVEF和短轴缩短率(FS),分别计算梗死区变薄指数(BBZS即舒张期左室前壁厚度/后壁厚度)和非梗死区增厚指数(ZHZS即舒张期左室后壁厚度/前壁厚度)。

所有参数均在3 个连续的心动周期中进行测量并取平均值。

1.2.3 血流动力学检查[5]3%戊巴比妥钠(45mg/kg)腹腔注射麻醉,气管切开插管,保持呼吸道通畅。

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

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中国实验动物学报 2011 年 12 月第 19 卷第 6 期
Acta Lab Anim Sci Sin , December , 2011 , Vol. 19. No. 6
spectively. There was no myocardial infarction and the survival rate was 100% in the sham operation group. ECG : QRS-T wave displayed an intersection “M ” shape in the sham group and before left coronary artery ligation. The R wave and T wave fused into one large tent-like single wave after the left coronary artery ligation ,and without visible ST segment. Histopathological changes of myocardial infarction were seen at 4 weeks after operation. Conclusions tip ,and all ECG showed no visible ST segment in the rats. 【Key words 】 Rat ; Model ,myocardial infarction ; Electrocardiogram It is a novel method to establish myocardial infarct model that the suture is placed about 2 mm distal to the horizontal line of left atrial appendage

大鼠急性心肌缺血模型

大鼠急性心肌缺血模型

TECHNIC!!!
1、麻醉(腹腔注射 、麻醉 腹腔注射 腹腔注射)
• 下腹部腹中线稍向左或右1mm的位置 • 以45度角刺入腹肌,可觉抵抗力消失 • 麻药前1/3快注,后2/3缓慢注射并且观察 麻药前1/3快注, 2/3缓慢注射并且观察 1/3快注 • 动物头部放低,尾部提高 • 麻醉后心率为350-420/min
EVALUATION?
• 心脏: 结扎部位以下心肌紫绀 • ECG: II导心电图显示S-T段升高
PROCEDURE!
• • • • • • • • • 动物选择: 大鼠, 动物选择 SD大鼠,250~300g 大鼠 ~ 麻醉:乌拉坦,腹腔注射, 麻醉:乌拉坦,腹腔注射,7ml/kg 固定(把舌头往侧边拉出) 固定(把舌头往侧边拉出) 记录心电图(麻醉后心率控制在350 420/min) 350记录心电图(麻醉后心率控制在350-420/min) 气管插管 上呼吸机 通气量: 视不同型号呼吸机有所调整) 通气量:40ml (视不同型号呼吸机有所调整) 频率: 频率:70 呼吸比 1:1
TECHNIC!!!
2、心电图 、
(cont.)
• 进针部位:右手:白;左腿:红;右腿:黑 • 进针手法:用左手提起肢体皮肤,右手皮下 进针手法: 进针(切勿插入肌肉,避免肌电干扰) (切勿插入肌肉,避免肌电干扰) • 记录Ⅱ导联 Ⅱ导联心电图 • 调整参数,最佳显示
TECHNIC!!!
(cont.)
• 3、气管插管: • 喉结到胸骨切口,正中线部位开始钝 喉结到胸骨切口, 性分离肌肉; 性分离肌肉; • 打结技术! 打结技术! • 4、上呼吸机: • 确认管道通畅、检查潮气量、监控心 确认管道通畅、检查潮气量、 电图
TECHNIC!!!

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估【摘要】目的建立一种稳定可重复的大鼠急性心肌梗死模型。

方法SD大鼠经氯胺酮麻醉后,经口人工呼吸,开胸结扎左冠状动脉前降支。

4周后行超声心动图、血流动力学和组织病理学检查。

结果①心电图和组织病理学检查证实,成功建立了大鼠急性心肌梗死模型,梗死面积40%~45%(平均42%);②与假手术组比较,心肌梗死大鼠左室收缩末径、左室舒张末径和非梗死区增厚指数明显增加(P<0.01),左室后壁、左室前壁、梗死区变薄指数、左室射血分数和左室短轴缩短率显著降低(P<0.05,P<0.01);③心肌梗死大鼠动脉收缩压、舒张压、左室收缩压、左室内压最大上升和下降速率均低于假手术组(P<0.01),心率和左心室舒张末压高于假手术组(P <0.01);④两组大鼠左、右心室实际和相对重量以及胶原容积积分之间的差异有统计学意义(P<0.01)。

结论本文建立心肌梗死动物模型的方法操作简单、重复性好、结果可信。

【Abstract】Objective To develop a steady and reproducible myocardial infarction(MI) model in rats.Methods SD rats were anaesthetized with ketamine.After linking with respiration machine,left anterior decending coronary artery was ligated.Echocardiogram,haemodynamics and histopathology were done four weeks after ligation.Results ①The model of MI was established successfully and proved by electrocardiogram and histopathology.Infarct sizes were 40%~45%(average 42%).②Compared with sham operation group,MI rats had higher left ventricular systolic diameter,left ventricular diastolic diameter and non-infarcted region thickening index (P<0.01),and lower posterior wall diameter,anterior wall diameter,infarcted region thinningz index,left ventricular ejection fraction and fractional shortening (P<0.05,P<0.01).③Systolic blood pressure,diastolic blood pressure,left ventricular systolic pressure and the maximum rising and dropping rates of left ventricular pressure decreased,while heart rate and left ventricular end-diastolic pressure increased after MI.④There were significant differences in left ventricular actual weight,right ventricular actual weight,left ventricular relative weight,right ventricular relative weight and collagen volume fraction between sham operation group and MI rats (P<0.01).Conclusion This experiment provided an easy way to establich the MI model,which was reproducible and credible.【Key words】Coronary artery;Myocardial infarction;Modelanimal;Rats心肌梗死(myocardial infarction,MI)是21世纪医学亟待解决的难题之一[1]。

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备ppt课件

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备ppt课件
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3 结果讨论 两只实验鼠死亡原因讨论: ①号实验鼠在结扎冠状动脉时心脏停止跳动死亡 ②号实验鼠在关闭胸腔时呼吸停止死亡 考虑以下可能原因: ⑴. 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差,多篇文 献提出实验鼠体重以250 ±25 g 为宜,本次实验 鼠体重分别为① 290g及②360g;
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⑵. 实验鼠体重较实验前预期的要重,麻醉剂 有使用过量的可能,实验鼠术中出现呼吸 抑制;
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1.7 术后抗感染及护理 大鼠本身具有比较强的抗感染能力,但是 预防感染有利于促进术后恢复,并且良好 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 因此,术前所用手术器械均要用75%酒精 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素80万U。待 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料,无 须禁食。术后可适量补充能量。冬天应注 意保嗳。
⑺. 呼吸机频率和潮气量没有掌握好; ⑻. 时值冬季,气温较低,手术操作时间较长,
开胸后实验鼠体温丧失较大,存在低体温、 手术和麻醉多重打击。
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大鼠心肌梗死实验模型的制备
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背景
有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 狗等不同动物的心肌梗死模型,但大多数学者认 为结扎法复制的心肌梗死模型与心肌梗死实际发 病过程更符合。
由于临床大多心肌缺血或心肌梗死都是一渐 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 而冠状动脉结扎法能人为地仿造临床心肌梗死过 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、分布范围相对 一致,病理生理、生化改变与临床心肌梗死更相 似。
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1. 2 试验材料和药品 : 10%水合氯醛溶液、青霉素注射液、碘伏、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 5ml注射器2个、7号或4号针头、眼科剪、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 缝针、缝合线(6 - 0线)、小无菌棉签

静脉-动脉体外膜肺氧合改善大鼠急性心肌梗死心功能的实验研究

静脉-动脉体外膜肺氧合改善大鼠急性心肌梗死心功能的实验研究

静脉-动脉体外膜肺氧合改善大鼠急性心肌梗死心功能的实验研究静脉-动脉体外膜肺氧合改善大鼠急性心肌梗死心功能的实验研究引言心肌梗死是冠心病的一种严重并发症,导致心肌缺血,缺氧和心肌细胞坏死。

这种疾病常常引起心功能损伤和心力衰竭。

虽然现有的治疗手段对于恢复心功能起到了一定作用,但仍需要更有效的方法来改善心功能。

近年来,静脉-动脉体外膜肺氧合(VA-ECMO)作为一种重要的治疗手段被广泛应用于急性心肌梗死患者中。

本研究旨在探究VA-ECMO对于急性心肌梗死大鼠心功能的改善作用。

材料与方法1. 实验动物使用健康成年雄性SD大鼠,体重200-300克。

随机将大鼠分为三组:心肌梗死组(MI组,n=10),VA-ECMO治疗组(VA-ECMO组,n=10)和对照组(Con组,n=10)。

2. 急性心肌梗死模型通过结扎冠状动脉分支的方法建立大鼠急性心肌梗死模型。

使用心电图监测判断模型成功后,再进行下一步的实验措施。

3. VA-ECMO治疗VA-ECMO组在建立心肌梗死模型后即行VA-ECMO治疗。

VA-ECMO的管路通过静脉插管和动脉插管与大鼠连接,通过循环将大鼠的血液引出并进行氧合处理后重新输送入体内。

4. 检测指标采用超声心动图测量心功能参数,包括左室射血分数(LVEF),心脏收缩常数(IVCT)和收缩时间(IVET)。

同时还检测心肌创伤指标高灵敏C反应蛋白(hs-CRP)和肌钙蛋白(cTnI)。

结果1. 心功能参数与MI组相比,VA-ECMO组的LVEF显著提高(P<0.05),而IVCT和IVET值显著降低(P<0.05),表明VA-ECMO治疗能够改善大鼠急性心肌梗死导致的心功能损伤。

2. 心肌创伤指标与MI组相比,VA-ECMO组的hs-CRP水平显著降低(P<0.05),而cTnI水平无明显变化(P>0.05),表明VA-ECMO治疗对于炎症反应的抑制作用较明显。

讨论本研究结果表明,VA-ECMO治疗能够改善大鼠急性心肌梗死的心功能。

大鼠心肌梗死模型图解

大鼠心肌梗死模型图解

大鼠心肌梗死模型制作图解庄瑜制作南京市第一医院南京医科大学附属南京第一医院南京市心血管病医院心胸外科/制作前准备1.器械:动物呼吸机,开胸制作心梗模型,维持呼吸至关重要。

虽然据说某些牛人可以不用呼吸机,但是我想这是经验积累的结果,开始时必然要用;况且需要看此说明的人应该没有牛到这个程度。

当然,如果你经费异常充足,不在乎死亡成千上万的大鼠也可以。

显微器械,最主要的是针持,大鼠胸腔、心脏均很小,常规器械无法进入胸腔缝扎。

其他手术器械以眼科器械为主。

2.动物:应选择成年健康大鼠,耐受性较好。

最重要的是要充分利用每一只动物,包括死亡的大鼠。

许多人都知道制作大鼠模型需要多练习,但是练习不是买一大批大鼠,不停地缝扎,然后不停地扔掉死的大鼠;当然,制作心梗模型死亡一些大鼠是很正常的事情。

练习的前提是对大鼠解剖及操作过程的熟悉,如果可能的话,最好先找一份大鼠的解剖图谱,熟悉手术区域的解剖结构;同时研究实验流程,熟悉每一个实验步骤。

大鼠死亡后,不要急着扔掉,利用它练习每一个你不熟悉的操作步骤,直到熟练为止。

3.实验者:实验者必须具有一种平和的、耐得住寂寞的心态,制作模型需要时间,尤其是早期,需要耐心、仔细的摸索;必须对每一个步骤进行认真地研究。

最熟练的制作者做一只大鼠模型也需要30到40分钟的时间,加上准备及扫尾的时间,制作十只模型就需要一天的时间,如果你废寝忘食多用用功也可能做到15只左右,这样一天下来腰酸背痛是必然的,你能坚持多久?不熟练的话,一只就要两、三个小时;同时还要看着大鼠在你的手中死亡,这是很揪心的事情。

因此,实验者必须具备良好的心态,急于求成、难耐寂寞者不适合做此实验。

本人系气管切开插管,缝扎LAD制作模型。

亦有人经口插管,液氮冷冻制作模型;不在本人讨论范围之内,哪位有经验的话可以传上来,一起讨论。

最后祝各位早日成功!!导师简介陈 鑫 主任医师、教授,1963年2月出生于江苏靖江,1985年毕业于南京铁道医学院,同年进入南京市第一医院工作,1993年2月获南京医科大学硕士研究生学位,1993.3 - 1994.2至 Ocala Heart Institute, Ocala, FL, USA.学习,回国后从事心胸血管外科的临床、科研及教学工作,1999年成为南京医科大学硕士研究生导师,培养多名专业人才。

无辅助呼吸大鼠心肌梗死模型的制备

无辅助呼吸大鼠心肌梗死模型的制备

无辅助呼吸大鼠心肌梗死模型的制备韩克;刘昱;李涛;马爱群;董安平;吴格如;席羽涛【摘要】目的:建立简单、有效的大鼠心肌梗死模型,不用气管插管和呼吸机,直接开胸,在直视下结扎冠状动脉,制备大鼠心肌梗死模型。

方法:不用气管插管和呼吸机,经胸骨左缘切口开胸,保持胸膜腔完整,缝扎左室支。

术后6周,做病理检查,明确梗死存在并测量梗死面积。

结果:大鼠围手术期死亡率23.1%,与假手术组相比,6周后冠脉结扎组左室增大,左室收缩舒张功能受损,病理检查示心肌梗死存在,梗死面积平均为26.6%,两组大鼠心肌梗死面积有显著性差异(P <0.05)。

结论:本法成功建立了大鼠心肌梗死模型,具有简便、实用、成功率高之特点;大鼠可作为有关心肌梗死临床研究模型所用合适动物。

%Objective :To develop a new model of myocardial infarction The rat was not intubated and not ventilated using a animalventilator .Methods :The rat was not intubated and not ventilated using a animal ventila‐tor .A thoracotomy was performed along left sternum with pleura cavity integrity .The major ventricular branch of the left coronary artery was ligated 1‐2mm under the left atria .Sham‐operated rats servedas controls .Results :Perioperative mortality of rats with myocardial infarction was 23 .1% .Six weeks after ,echocardiography suggests that the coronary ligation groups had significantly more dilated left ventricles with lower EF 、FS than the control group(P< 0 .05) .The infarcted area in the coronary ligation animals was nearly always transmural ,the total infarct area ranged from 19 to 38% and there were significant correlations between infarct size and left ventricular impair‐ment as assessed byejection fraction ,left ventricular dimension (P < 0 .05) .Conclusion :We constituted a simple , rapid ,and effective method of producing myocardial infarction in rat ;rat can be used as a appropriate myocardial in‐farction model in clinical reaserch .【期刊名称】《陕西医学杂志》【年(卷),期】2015(000)005【总页数】3页(P515-517)【关键词】心肌梗塞/病理学;心肌梗塞/治疗;模型,动物;大鼠;无辅助呼吸【作者】韩克;刘昱;李涛;马爱群;董安平;吴格如;席羽涛【作者单位】西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安 710061;西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安 710061;西安市中心医院心内科;西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安710061;西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安 710061;西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安 710061;西安交通大学医学院第一附属医院心内科・教育部环境与疾病相关基因重点实验室西安 710061【正文语种】中文【中图分类】R542.22直接缝扎冠状动脉前降支或旋支是制备心肌梗死动物模型的常用方法。

异丙肾上腺素诱导大鼠急性心肌梗死模型的制作

异丙肾上腺素诱导大鼠急性心肌梗死模型的制作
本文引用格式:王娟娟 , 陈凤英 . 异丙肾上腺素诱导大鼠急性心肌梗死模型的制作 [J]. 世界最新医学信息文摘 ,2019,19(12):12-13.
Model of Acute Myocardial Infarction Induced by Isoproterenol in Rats
WANG Juan-juan1, CHEN Feng-ying2*
摘要:目的 探讨异丙肾上腺素诱导大鼠心肌梗死模型的制作方法。方法 48 只雄性 wistar 大鼠,心肌梗死模型组大鼠皮下注射异丙肾上 腺素(ISO)150mg·kg-1.d-1,间隔 24 小时,连续 2 天。对照组同法皮下注射等量的生理盐水,连续 2 天。在第 2 次皮下注射异丙肾上腺素 24 小时后监测心电图,大鼠麻醉后分别记录大鼠注药前、注药后同步六导(肢体导联)心电图,测量心率,观察 Q 波及 ST 段偏移的程度,成模 后处死大鼠,取出心脏,并进行 HE 染色后于显微镜下观察其病理变化。结果 此法制作心梗模型的成功率为 100%,动物存活率为 80% 以上。 梗死心肌处发白、变薄,心脏明显扩大,部分大鼠肺淤血明显。HE 染色心梗组心肌细胞包膜不完整,心肌纤维增粗、变长、排列紊乱、间隙增宽, 细胞核数量减少,细胞核大而深染,可见炎症细胞浸润。结论 本实验制作心梗模型的方法确切有效、简单易行。而且本实验建立的心肌梗死 模型可进一步用于急性心力衰竭机制和治疗方面的研究 , 对相关领域研究起到参考作用。 关键词:心肌梗死;异丙肾上腺素;动物模型;大鼠 中图分类号:R542.2 文献标识码:A DOI: 10.19613/ki.1671-3141.2019.12.006
(1.Inner Mongolia Medical University, Huhhot Inner Mongolia; 2.the Affiliated Hospital of Inner Mongolia Medical University, Huhhot Inner Mongolia)

益母草黄酮对大鼠急性心肌梗死后的实验探究的开题报告

益母草黄酮对大鼠急性心肌梗死后的实验探究的开题报告

益母草黄酮对大鼠急性心肌梗死后的实验探究的开题报告题目:益母草黄酮对大鼠急性心肌梗死后的实验探究背景:急性心肌梗死是严重危害人类健康的疾病,其发生率逐年增加。

传统的治疗方法包括药物治疗、介入治疗和外科手术治疗等,但副作用较大,且复发率较高。

而中药的疗效、安全和价格优势十分明显,因此中药成为治疗急性心肌梗死的研究热点之一。

益母草作为一种常见的中药,其黄酮具有多种生物活性,如抗氧化、抗炎、抗凝等,因此可能对急性心肌梗死具有一定的保护效果。

研究目的:通过实验探究益母草黄酮对大鼠急性心肌梗死后的保护作用及其机制。

研究内容:1.建立大鼠急性心肌梗死模型;2.按不同剂量给予益母草黄酮干预;3.观察益母草黄酮对大鼠心肌形态、血肌酸激酶、超氧化物歧化酶等指标的影响;4.探究其保护机制。

研究意义:1.对益母草黄酮的药用价值提供实验依据;2.为临床治疗急性心肌梗死提供新思路;3.推进中药材的质量控制和开发。

研究方法:1.动物实验:采用大鼠急性心肌梗死模型,分组给予不同剂量的益母草黄酮或生理盐水,然后通过心肌形态、血肌酸激酶、超氧化物歧化酶等指标评估其保护作用。

2.分析方法:应用光镜和电子显微镜等方法对大鼠心肌形态进行观察;应用酶标仪等方法对血肌酸激酶和超氧化物歧化酶等指标进行检测。

预期结果:益母草黄酮能够对大鼠急性心肌梗死后产生明显的保护作用,且保护效果与剂量呈正相关。

参考文献:1. 郭道奎. 益母草黄酮在治疗心血管疾病中的研究进展[J]. 中国实用药物杂志, 2017, 14(5): 129-131.2. 高世泽, 刘瑞芝. 益母草黄酮的生物学效应和药理作用研究进展[J]. 中国实验方剂学杂志, 2016, 22(15): 165-168.。

大鼠心肌梗塞

大鼠心肌梗塞

大鼠心肌梗死模型制作图解(图)(一)制作前准备1、器械:动物呼吸机。

开胸制作心梗模型,维持呼吸至关重要。

虽然据说某些牛人可以不用呼吸机,但是我想这是经验积累的结果,开始时必然要用;况且需要看此说明的人应该没有牛到这个程度。

当然,如果你经费异常充足,不在乎死亡成千上万的大鼠也可以。

显微器械,最主要的是针持,大鼠胸腔、心脏均很小,常规器械无法进入胸腔缝扎。

其他手术器械以眼科器械为主。

2、动物:应选择成年健康大鼠,耐受性较好。

最重要的是要充分利用每一只动物,包括死亡的大鼠。

许多人都知道制作大鼠模型需要多练习,但是练习不是买一大批大鼠,不停地缝扎,然后不停地扔掉死的大鼠;当然,制作心梗模型死亡一些大鼠是很正常的事情。

练习的前提是对大鼠解剖及操作过程的熟悉,如果可能的话,最好先找一份大鼠的解剖图谱,熟悉手术区域的解剖结构;同时研究实验流程,熟悉每一个实验步骤。

大鼠死亡后,不要急着扔掉,利用它练习每一个你不熟悉的操作步骤,直到熟练为止。

3、实验者:实验者必须具有一种平和的、耐得住寂寞的心态,制作模型需要时间,尤其是早期,需要耐心、仔细的摸索;必须对每一个步骤进行认真地研究。

最熟练的制作者做一只大鼠模型也需要30到40分钟的时间,加上准备及扫尾的时间,制作十只模型就需要一天的时间,如果你废寝忘食多用用功也可能做到15只左右,这样一天下来腰酸背痛是必然的,你能坚持多久?不熟练的话,一只就要两、三个小时;同时还要看着大鼠在你的手中死亡,这是很揪心的事情。

因此,实验者必须具备良好的心态,急于求成、难耐寂寞者不适合做此实验。

本文系气管切开插管,缝扎LAD制作模型。

亦有经口插管,液氮冷冻制作模型。

(二)制作步骤1、电子秤称量大鼠体重2、提起大鼠尾巴,置入小笼中。

3、倒出适量乙醚于纱布上,置入鼠笼内,盖紧笼盖。

4、待大鼠麻醉后取出,补充氯胺酮75~100mg/kg(ip)持续麻醉;阿托品20~30μg/kg腹腔注射,减少气道分泌物。

新型心肌梗死大鼠模型制备方法的建立和模型鉴定

新型心肌梗死大鼠模型制备方法的建立和模型鉴定

新型心肌梗死大鼠模型制备方法的建立和模型鉴定裴之俊;李伏燕;陈义加;王俊杰;李薇;吴瑞敏;杨怡【摘要】目的:建立可用于制备心肌梗死大鼠模型的新方法。

方法异氟醚气体麻醉Sprague‐Dawley 大鼠后,钝性分离肋间肌,结扎左冠状动脉前降支,制备心肌梗死大鼠模型。

以仅穿刺不结扎左冠状动脉前降支的方法制备假手术大鼠模型。

术后采用小动物心电图仪、血流动力学分析仪、2,3,5‐氯化三苯基四氮唑(TTC)染色及苏木素‐伊红(HE)染色鉴定心肌梗死大鼠模型。

结果心肌梗死大鼠模型及假手术大鼠模型存活率均为80.0%。

心肌梗死模型组大鼠术后第2、7天心电图检查可见 ST 段明显抬高。

血流动力学检测结果显示,心肌梗死模型组大鼠颈总动脉收缩压和舒张压,左心室收缩压,以及左心室压力上升和下降最大速率均较假手术模型组均明显降低,心率和左心室舒张末压则明显增加(P<0.05)。

TTC 染色显示梗死心肌与正常心肌色差明显,坏死心肌呈白色。

HE染色显示梗死心肌细胞肿胀、排列紊乱,出现空泡,甚至断裂,部分断裂心肌细胞间隙见炎症细胞浸润。

结论建立的方法效果理想且操作简单,适用于心肌梗死大鼠模型的制备。

%Objective To establish a new ,fast and efficient preparation methodof myocardial infarction model . Methods Sprag ue‐Dawley rats were anesthetized by using isoflurane gas ,then myocardial infarction models were prepared by ligation of ramus descendens anterior arteriae coronaria sinistrae ,after bluntly separation of intercostal muscle .Sham operation rat models were prepared by punctuation ,not ligation ,of ramus descendens anterior arteriae coronaria sinistrae .Small animalelectrocardiograph ,hemodynamic analyzer ,2 ,3 ,5‐triphenyltetrazolium chloride (TTC) staining and hematoxylin‐eosin (HE) staining were used toidentify myocardial infarction models .Results Survival rates of myocardial infarction models and sham operation models were both80 .0% .Electrocardiograph anal‐ysis indicated that ST segment was raised apparently in myocardial infarction models on 2 and 7 days after operation . Hemodynamic detection indicated that diastolic blood pressure ,systolic blood pressure ,left ventricular systolic pres‐sure and max ascending and descending rate of left ventricular pressure in myocardial infarction models were lower than sham operation models ,but heart rate and heart ventricle end diastolic pressure were higher (P <0 .05) .TTC staining showed that the color of infracted myocardium was white ,which was obviously different with normal myo‐cardium ,HE staining showed that infracted cardiac muscle cells wereswelling ,disorderly arranged ,with cavity or e‐ven break ,and inflammatory cell infiltration could be found within intercellular spaces of fractured cardiac muscle cells .Conclusion Preparation method ,constructed in this research ,could be efficient and easily performed to estab‐lish myocardial infarction models .【期刊名称】《检验医学与临床》【年(卷),期】2015(000)007【总页数】3页(P937-939)【关键词】心肌梗死;动物模型;大鼠;冠状动脉【作者】裴之俊;李伏燕;陈义加;王俊杰;李薇;吴瑞敏;杨怡【作者单位】湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000;湖北医药学院附属太和医院 PET 中心,湖北十堰 442000【正文语种】中文随着人们生活习惯的改变及胆固醇摄入量的增加,缺血性心血管疾病发病率逐年增加。

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建模原理
生物体各组织器官要维持其正常的生命活动, 生物体各组织器官要维持其正常的生命活动,需要心 脏不停地搏动以保证血运。 脏不停地搏动以保证血运。而心脏作为一个泵血的肌性动 力器官,本身也需要足够的营养和能源, 力器官,本身也需要足够的营养和能源,供给心脏营养的 血管系统,就是冠状动脉和静脉,也称冠脉循环。 血管系统,就是冠状动脉和静脉,也称冠脉循环。冠状动 脉是供给心脏血液的动脉,起于主动脉根部,行于心脏表 脉是供给心脏血液的动脉,起于主动脉根部 行于心脏表 冠状动脉收集代谢后的静脉血, 面。冠状静脉伴随 冠状动脉收集代谢后的静脉血,归流 于冠状静脉窦,回到右心房。正常情况下, 于冠状静脉窦,回到右心房。正常情况下,冠状动脉 之 尚有丰富的吻合支或侧支。冠状动脉虽小, 间,尚有丰富的吻合支或侧支。冠状动脉虽小,但血流量 很大。占心排血量的5%,这就保证了心脏有足够的营养, 很大。占心排血量的 ,这就保证了心脏有足够的营养, 维持它有力地昼夜不停地跳动。如果冠状动脉突然阻塞, 维持它有力地昼夜不停地跳动。如果冠状动脉突然阻塞, 不能很快建立侧支循环,常常导致心肌梗塞。 不能很快建立侧支循环,常常导致心肌梗塞。但若冠状动 成的,则侧支可逐渐扩张, 脉阻塞是缓慢形 成的,则侧支可逐渐扩张,并可建立新 的侧支循环,起代偿的作用。 的侧支循环,起代偿的作用。左冠状动脉为最大冠状动脉 分支.主要供应左心室前壁和侧壁 主要供应左心室前壁和侧壁, 分支 主要供应左心室前壁和侧壁,其主要分支是左前降 支和左回旋支.选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上 选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上1/ 处 支和左回旋支 选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上 /3处 结扎的方法,冠状动脉突然阻塞 冠状动脉突然阻塞, 结扎的方法 冠状动脉突然阻塞,侧支循环不及起代偿的 作用.以建立稳定的、适于细胞移植治疗心肌梗死. 作用 以建立稳定的、适于细胞移植治疗心肌梗死 以建立稳定的
甲状软骨下缘
1.5开胸及冠状动脉结扎 开胸及冠状动脉结扎 心前区域剃毛, 在心脏搏动最明显处,第三肋间隙 心前区域剃毛 在心脏搏动最明显处 第三肋间隙 水平开胸,皮肤切口约 皮肤切口约1. ~ 水平开胸 皮肤切口约 5~2. 0 cm,逐层钝性分 逐层钝性分 离肌肉至胸膜。剪开胸膜,用眼科开睑器撑开肋间 离肌肉至胸膜。剪开胸膜 用眼科开睑器撑开肋间 肌切口,以无菌棉球向下压迫左肺以保护肺脏剪开 肌切口 以无菌棉球向下压迫左肺以保护肺脏剪开 心包,用无菌棉签推开左心耳 用无菌棉签推开左心耳。 心包 用无菌棉签推开左心耳。在左心耳下距主动 脉根部2~ 线穿过一小束心肌,并 脉根部 ~3 mm处,用6 - 0线穿过一小束心肌 并 处用 线穿过一小束心肌 结扎。 结扎后左室壁变苍白 结扎后左室壁变苍白,并出现室壁运动减 结扎。(1)结扎后左室壁变苍白 并出现室壁运动减 术中结扎成功标识:心电监护见 导联大鼠 弱。(2)术中结扎成功标识 心电监护见 导联大鼠 术中结扎成功标识 心电监护见II导联 于结扎冠状动脉后QRS波峰降低,J点上移,ST 波峰降低, 点上移 点上移, 于结扎冠状动脉后 波峰降低 段明显抬高.证明心肌缺血存在心肌梗死 证明心肌缺血存在心肌梗死( 段明显抬高 证明心肌缺血存在心肌梗死(证明结 扎成功,心电图于结扎前与结扎后的心电图改变, 扎成功,心电图于结扎前与结扎后的心电图改变 排除手术操作造成人为性大鼠心肌缺血) 排除手术操作造成人为性大鼠心肌缺血) 。然后 加大通气量,充分使肺复涨 并清理胸腔。 充分使肺复涨,并清理胸腔 加大通气量 充分使肺复涨 并清理胸腔。
1 实验步骤和观察项目
1. 1 实验动物 健康雄性 健康雄性Wistar大鼠 只, 大鼠30只 大鼠 体质量250 ±25 g制作心肌梗死动物模型 体质量 制作心肌梗死动物模型 的大鼠体重以200~ 250 g为宜(动物太小, 为宜( 的大鼠体重以 ~ 为宜 动物太小, 不利于操作,耐受创伤能力低; 不利于操作,耐受创伤能力低;而体重及 鼠龄太大,则不利术后观察生存期, 鼠龄太大,则不利术后观察生存期,而且 麻醉剂量不好掌握,凝血功能较差, 麻醉剂量不好掌握,凝血功能较差,不易 止血。 止血。实验动物由广西医科大学实验中心 提供。) 提供。)
3 结果讨论
两只实验鼠死亡原因讨论: 两只实验鼠死亡原因讨论: ①号实验鼠在结扎冠状动脉时心脏停止跳动死亡 ②号实验鼠在关闭胸腔时呼吸停止死亡 考虑以下可能原因: 考虑以下可能原因: 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差, ⑴. 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差,多篇文 献提出实验鼠体重以250 ±25 g 为宜,本次实验 献提出实验鼠体重以 为宜, 鼠体重分别为① 鼠体重分别为① 290g及②360g; 及
结扎冠状动脉时部位未掌握好, ⑹. 结扎冠状动脉时部位未掌握好,结扎部位 过高(结扎到左主干), ),大鼠出现严重心 过高(结扎到左主干),大鼠出现严重心 律失常乃至心跳骤停, 律失常乃至心跳骤停,尽管已施以胸外按 压等抢救措施, 压等抢救措施,但是最终没有成功使实验 鼠复苏; 鼠复苏; 呼吸机频率和潮气量没有掌握好; ⑺. 呼吸机频率和潮气量没有掌握好; 时值冬季,气温较低,手术操作时间较长, ⑻. 时值冬季,气温较低,手术操作时间较长, 开胸后实验鼠体温丧失较大,存在低体温、 开胸后实验鼠体温丧失较大,存在低体温、 手术和麻醉多重打击。 手术和麻醉多重打击。
实验鼠体重较实验前预期的要重, ⑵. 实验鼠体重较实验前预期的要重,麻醉剂 有使用过量的可能, 有使用过量的可能,实验鼠术中出现呼吸 抑制; 抑制; 开睑器撑开术口压迫肺脏时间过长, ⑶. 开睑器撑开术口压迫肺脏时间过长,可能 存在气胸肺不张造成实验鼠缺氧; 存在气胸肺不张造成实验鼠缺氧; 压迫心脏时造成大血管移位扭转, ⑷. 压迫心脏时造成大血管移位扭转,重要脏 器供血不足; 器供血不足; 术中失血过多, ⑸.术中失血过多,造成血压下降,失血性休 术中失血过多 造成血压下降, 克;
1. 4气管插管 气管插管 大鼠仰卧固定于手术台上。 大鼠仰卧固定于手术台上。沿颈部中线切 开皮肤,分离组织暴露气管, 开皮肤,分离组织暴露气管,用7号注射针 号注射针 头做为插管以45度斜进针从甲状软骨下缘 头做为插管以 度斜进针从甲状软骨下缘 轻轻水平插入约0.7~1.5cm 斜面朝上。固 斜面朝上。 轻轻水平插入约 定好,气管插管,呼吸比为1:2,呼吸频率 定好 气管插管,呼吸比为 : , 气管插管 90次/rain,潮气量 ml/kg。关闭呼吸 次 ,潮气量14 / 。 四肢接心电图机记录术前心电图。 机,四肢接心电图机记录术前心电图。完 毕打开呼吸机, 此时作心电图与开胸后结 毕打开呼吸机, (此时作心电图与开胸后结 扎前心电图对照,验证是否为先天变异或实 扎前心电图对照 验证是否为先天变异或实 验前异常-心电图机未借到, 验前异常-心电图机未借到,所以心电图 未能做) 未能做
大鼠心肌梗死实验模型的制备
背景
有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 狗等不同动物的心肌梗死模型, 狗等不同动物的心肌梗死模型,但大多数学者认 为结扎法复制的心肌梗死模型与心肌梗死实际发 病过程更符合。 病过程更符合。 由于临床大多心肌缺血或心肌梗死都是一渐 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 而冠状动脉结扎法能人为地仿造临床心肌梗死过 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、分布范围相对 一致,病理生理、 一致,病理生理、生化改变与临床心肌梗死更相 似。 综上所述,结合实际操作条件 结合实际操作条件,选用结扎大鼠 综上所述 结合实际操作条件 选用结扎大鼠 冠状动脉结扎的方法,以建立稳定的 以建立稳定的、 冠状动脉结扎的方法 以建立稳定的、适于细胞移 植治疗心肌梗死的大鼠动物模型。 植治疗心肌梗死的大鼠动物模型。
1. 2 试验材料和药品 : 10%水合氯醛溶液、青霉素注射液、碘伏、 水合氯醛溶液、 水合氯醛溶液 青霉素注射液、碘伏、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 5ml注射器 个、7号或 号针头、眼科剪、 注射器2个 号或4号针头 注射器 号或 号针头、眼科剪、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 缝针、缝合线(6 线 、 缝针、缝合线 - 0线)、小无菌棉签 1.3 麻醉 SD大鼠称重 两只Wistar大鼠体重各为① 大鼠称重(两只 大鼠体重各为① 大鼠称重 两只 大鼠体重各为 290g及②360g), ① 号鼠腹腔注射乌拉坦 及 1.45ml②号鼠腹腔注射 10%水合氯醛 水合氯醛1ml。 ② 水合氯醛 。
1.7 术后抗感染及护理 大鼠本身具有比较强的抗感染能力,但是 大鼠本身具有比较强的抗感染能力, 预防感染有利于促进术后恢复, 预防感染有利于促进术后恢复,并且良好 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 因此,术前所用手术器械均要用75% 因此,术前所用手术器械均要用 %酒精 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素80万 。 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素 万U。待 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料, 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料,无 须禁食。术后可适量补充能量。 须禁食。术后可适量补充能量。冬天应注 意保嗳。 意保嗳。
2 检测指标
2.1 术前和术中做的心电图 2.2 组织病理学检查 开胸结扎冠状动脉后1d、 及 分批处死 开胸结扎冠状动脉后 、2d及3 d分批处死 实验鼠。取其心脏, 实验鼠。取其心脏,沿心脏纵轴剖开左右 心室, 心室,用10%福尔马林溶液固定 h,然 %福尔马林溶液固定24 , 后垂直于心脏纵轴从心尖部至心底部分别 横切4个切面 石蜡包埋,连续5 个切面, 横切 个切面,石蜡包埋,连续 um厚度切 厚度切 染色, 片,HE染色,观察左室壁心肌组织的病理 染色 变化,确定心肌梗死的存在。 变化,确定心肌梗死的存在。
左心耳
在左心耳下距主动脉根部2~3 mm处可见一粉红色细小血管
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