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(二)注射给药
1、皮下注射给药: 原理:将药液注入皮下结缔组织,经 毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。 器材:1m1注射器1支、生理盐水、烧
杯、酒精、碘酒、棉球。
12
方法步骤:
(1)注射部位:选小鼠项背部的皮下。 (2)常规消毒注射部位的皮肤,用注射针头取
一锐角角度刺入皮下, (3)将针头轻轻向左右 摆动,易摆动则表示已 刺入皮下,再轻轻抽吸, 如无回血,可缓慢地将 药物注入皮下。 注射量:0.01ml—0.03ml/g体重。
26
二、大鼠的给药方法: (一)灌胃给药 原理:将药液直接注入大鼠的胃内。 器材:大鼠灌胃针1支、注射器1支、大鼠
饲养盒+面罩l套、生理盐水、烧杯。
27
方法步骤:
1、将灌胃针连接在注射器上,吸入一定量 的药液。 2、左手捉持保定大鼠,右手将灌胃针头尖 端放进大鼠口咽部,顺咽后壁轻轻往下推, 灌胃针会顺着食管滑入大鼠的胃内。 灌胃针插入约5cm.
4、用左手无名指 压住小鼠背部的 皮肤,小指压住 小鼠的尾巴根部。 5、松开捏住小鼠尾 巴的右手拇指和食指。
8
三、小鼠的给药方法: (一) 灌胃给药
原理: 将药液直接注入小鼠的胃内。
器材: 小鼠灌胃针1支、注射器1支、
小鼠饲养盒+面罩1套、生理盐水、 烧杯。
9
方法步骤:
1、将灌胃针连接在注射器上,吸入一定量
15
3、静脉注射给药
原理:将药液注入小鼠的尾静脉。
器材:1m1注射器1支、生理盐水、烧 杯、金属笼或小鼠固定器 、酒精、碘 酒、棉球。
16
方法步骤:
(1)将小鼠放在金属笼或小鼠固定器中,
通过金属笼或小鼠固定器的孔拉出小鼠
尾巴。 (2) 用左手捏住小鼠尾巴中部,用75%
酒精棉球反复擦拭尾部。
17
(3) 注射时,以左手拇指和中指捏住鼠尾 两侧,用食指从下面托起尾巴,以无 名指夹住尾巴的末梢。
(4) 右手持4号针头的注射器,使针头与 静脉平行(小于30度角)。
18
(5) 从小鼠尾巴下1/4处进针,仔细观察, 如果无阻力,无白色皮丘出现,说明 已刺入血管,即可注入药物。
(6) 拔出针头后,用干棉球压住注射部位 约l、2min,防止出血。 注射量: 0.005m1—0.01 m1/g体重。
尾根部6号。 (4)右前肢7号、
右侧腹部8号、 右后肢9号。 (5)不作染色标记为10号。
3
2、双色涂染法: 在每组动物不超过100只的情况下
适用。 实验动物:大鼠、小鼠。
常用染色剂: (1)3-5%苦味酸溶液,可染成黄色。 ——作为“个”位数。 (2) 0.5%中性红或品红溶液,可染 成红色。——作为“十”位数。
6
二、小鼠的抓取保定: 器材:小鼠饲养盒+面罩1套。
方法步骤: 1、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提 起,放在饲养合的面罩上。 2、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤,将小鼠提起。
7
3、翻转左手掌,以左手掌心和中指夹 小鼠背部的皮肤,使小鼠整个呈一条 直线。
动物实验基本技术
1
第一节 小 鼠
一、实验动物标记编号的方法 (一)染色法: 1、单色涂染法: 在每组动物不超过l0只的情况下适用。 实验动物:大鼠、小鼠。 常用染色剂:3-5%苦味酸溶液,
可染成黄色。
2
方法步骤: (1)涂染顺序:从左到右、从上到下。 (2)左前肢为l号、左侧腹部2号、
左后肢3号。 (3)头部4号、背部5号、
的药液。
2、左手捉持小鼠,使小鼠头部向上。 3、右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针 放进小鼠口咽部,顺咽后壁轻轻往下推,灌 胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插 入约3cm. 4、用右手食指将针栓慢慢往下压,将注射 器中的药液灌入小鼠的胃中。
10
剂量:约0.5ml/10g体重。 注意:在灌胃过程中,避免误插入气管。
13
2、肌肉注射给药
原理:将药液注入动物的肌肉组织,经 毛细血管吸收进入血液循环。
器材:1ml注射器1支、生理盐水、烧 杯、酒精、碘酒、棉球。
14
方法步骤:
(1)操作时1人先将小鼠捉持保定好。 (2)另1人用左手抓住小鼠的1条后肢,右手拿 注射器,常规消毒注射部位的皮肤。 (3)将注射器针头在动物后 肢大腿外侧肌肉丰富处呈 60度角迅速刺入后注入药液。 注射量:0.01m1/g体重。
22
三、小鼠的采血—— 摘除眼球采血法:
原理:将小鼠的眼球摘除后取血液 的方法。
器材:眼科弯镊、试管。
23
方法步骤:
(1)左手抓住小鼠颈部皮肤,轻压在实 验台上,取侧卧位;
(2)左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈 后压,使眼球突出。
24
(3)用眼科弯镊夹去眼球,将鼠倒立, 用试管接住流出的血液。 (4)采血完毕立即用纱布压迫止血。 采血量:每次0.6-1.0ml/次。
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4、腹腔注射给药 原理:将药液注入小鼠的腹腔。 器材:注射器1支、生理盐水、烧杯、
酒精、碘酒、棉球。
20
方法步骤:
(1)用左手将小鼠捉持保定,使鼠腹部 朝上,鼠头略低于尾部。
(2)右手持注射器将针头在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺。
21
(3) 针头刺入皮下后进针3mm左右,接着使 注射针头与皮肤呈45度角刺入腹肌,穿过腹 肌进入腹膜腔,当针尖穿过腹肌进入腹膜腔 后抵抗感消失。 (4)固定针头,保持针尖不动, 回抽针栓,如无回血、肠液 和尿液后即可注射药液。 注射量: 0.01m1—0.02 m1/g体重。
4
方法步骤:
(1) 用两种颜色同时进行染色标记。 (2) 用苦味酸(黄色)染色标记作为个
位数,个位数的染色标记方法同单 色涂染法。 (3) 用品红(红色)染色标记作为十位 数,
5
(4)左前肢为10号、 左侧腹部20号、 左后肢30号, 头部40号、 背部50号、 尾根部60号, 右前肢70号、 右侧腹部 80号、 右后肢90号 第100号不作染色标记。
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第二节 大鼠ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
一、大鼠的抓取保定: 器材:大鼠饲养盒 + 面罩 1套。 方法步骤: 1、首先戴好防护手套。 2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将 大鼠提起,放在大鼠饲养盒的面罩上。 3、左手顺势按、卡在大鼠躯干 背部,稍加压力向头颈部滑行。 4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳 后部的头颈皮肤,其余三指和手掌 握住大鼠背部皮肤,完成抓取保定。
(二)注射给药
1、皮下注射给药: 原理:将药液注入皮下结缔组织,经 毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。 器材:1m1注射器1支、生理盐水、烧
杯、酒精、碘酒、棉球。
12
方法步骤:
(1)注射部位:选小鼠项背部的皮下。 (2)常规消毒注射部位的皮肤,用注射针头取
一锐角角度刺入皮下, (3)将针头轻轻向左右 摆动,易摆动则表示已 刺入皮下,再轻轻抽吸, 如无回血,可缓慢地将 药物注入皮下。 注射量:0.01ml—0.03ml/g体重。
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二、大鼠的给药方法: (一)灌胃给药 原理:将药液直接注入大鼠的胃内。 器材:大鼠灌胃针1支、注射器1支、大鼠
饲养盒+面罩l套、生理盐水、烧杯。
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方法步骤:
1、将灌胃针连接在注射器上,吸入一定量 的药液。 2、左手捉持保定大鼠,右手将灌胃针头尖 端放进大鼠口咽部,顺咽后壁轻轻往下推, 灌胃针会顺着食管滑入大鼠的胃内。 灌胃针插入约5cm.
4、用左手无名指 压住小鼠背部的 皮肤,小指压住 小鼠的尾巴根部。 5、松开捏住小鼠尾 巴的右手拇指和食指。
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三、小鼠的给药方法: (一) 灌胃给药
原理: 将药液直接注入小鼠的胃内。
器材: 小鼠灌胃针1支、注射器1支、
小鼠饲养盒+面罩1套、生理盐水、 烧杯。
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方法步骤:
1、将灌胃针连接在注射器上,吸入一定量
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3、静脉注射给药
原理:将药液注入小鼠的尾静脉。
器材:1m1注射器1支、生理盐水、烧 杯、金属笼或小鼠固定器 、酒精、碘 酒、棉球。
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方法步骤:
(1)将小鼠放在金属笼或小鼠固定器中,
通过金属笼或小鼠固定器的孔拉出小鼠
尾巴。 (2) 用左手捏住小鼠尾巴中部,用75%
酒精棉球反复擦拭尾部。
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(3) 注射时,以左手拇指和中指捏住鼠尾 两侧,用食指从下面托起尾巴,以无 名指夹住尾巴的末梢。
(4) 右手持4号针头的注射器,使针头与 静脉平行(小于30度角)。
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(5) 从小鼠尾巴下1/4处进针,仔细观察, 如果无阻力,无白色皮丘出现,说明 已刺入血管,即可注入药物。
(6) 拔出针头后,用干棉球压住注射部位 约l、2min,防止出血。 注射量: 0.005m1—0.01 m1/g体重。
尾根部6号。 (4)右前肢7号、
右侧腹部8号、 右后肢9号。 (5)不作染色标记为10号。
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2、双色涂染法: 在每组动物不超过100只的情况下
适用。 实验动物:大鼠、小鼠。
常用染色剂: (1)3-5%苦味酸溶液,可染成黄色。 ——作为“个”位数。 (2) 0.5%中性红或品红溶液,可染 成红色。——作为“十”位数。
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二、小鼠的抓取保定: 器材:小鼠饲养盒+面罩1套。
方法步骤: 1、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提 起,放在饲养合的面罩上。 2、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤,将小鼠提起。
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3、翻转左手掌,以左手掌心和中指夹 小鼠背部的皮肤,使小鼠整个呈一条 直线。
动物实验基本技术
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第一节 小 鼠
一、实验动物标记编号的方法 (一)染色法: 1、单色涂染法: 在每组动物不超过l0只的情况下适用。 实验动物:大鼠、小鼠。 常用染色剂:3-5%苦味酸溶液,
可染成黄色。
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方法步骤: (1)涂染顺序:从左到右、从上到下。 (2)左前肢为l号、左侧腹部2号、
左后肢3号。 (3)头部4号、背部5号、
的药液。
2、左手捉持小鼠,使小鼠头部向上。 3、右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针 放进小鼠口咽部,顺咽后壁轻轻往下推,灌 胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插 入约3cm. 4、用右手食指将针栓慢慢往下压,将注射 器中的药液灌入小鼠的胃中。
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剂量:约0.5ml/10g体重。 注意:在灌胃过程中,避免误插入气管。
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2、肌肉注射给药
原理:将药液注入动物的肌肉组织,经 毛细血管吸收进入血液循环。
器材:1ml注射器1支、生理盐水、烧 杯、酒精、碘酒、棉球。
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方法步骤:
(1)操作时1人先将小鼠捉持保定好。 (2)另1人用左手抓住小鼠的1条后肢,右手拿 注射器,常规消毒注射部位的皮肤。 (3)将注射器针头在动物后 肢大腿外侧肌肉丰富处呈 60度角迅速刺入后注入药液。 注射量:0.01m1/g体重。
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三、小鼠的采血—— 摘除眼球采血法:
原理:将小鼠的眼球摘除后取血液 的方法。
器材:眼科弯镊、试管。
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方法步骤:
(1)左手抓住小鼠颈部皮肤,轻压在实 验台上,取侧卧位;
(2)左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈 后压,使眼球突出。
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(3)用眼科弯镊夹去眼球,将鼠倒立, 用试管接住流出的血液。 (4)采血完毕立即用纱布压迫止血。 采血量:每次0.6-1.0ml/次。
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4、腹腔注射给药 原理:将药液注入小鼠的腹腔。 器材:注射器1支、生理盐水、烧杯、
酒精、碘酒、棉球。
20
方法步骤:
(1)用左手将小鼠捉持保定,使鼠腹部 朝上,鼠头略低于尾部。
(2)右手持注射器将针头在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺。
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(3) 针头刺入皮下后进针3mm左右,接着使 注射针头与皮肤呈45度角刺入腹肌,穿过腹 肌进入腹膜腔,当针尖穿过腹肌进入腹膜腔 后抵抗感消失。 (4)固定针头,保持针尖不动, 回抽针栓,如无回血、肠液 和尿液后即可注射药液。 注射量: 0.01m1—0.02 m1/g体重。
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方法步骤:
(1) 用两种颜色同时进行染色标记。 (2) 用苦味酸(黄色)染色标记作为个
位数,个位数的染色标记方法同单 色涂染法。 (3) 用品红(红色)染色标记作为十位 数,
5
(4)左前肢为10号、 左侧腹部20号、 左后肢30号, 头部40号、 背部50号、 尾根部60号, 右前肢70号、 右侧腹部 80号、 右后肢90号 第100号不作染色标记。
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第二节 大鼠ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
一、大鼠的抓取保定: 器材:大鼠饲养盒 + 面罩 1套。 方法步骤: 1、首先戴好防护手套。 2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将 大鼠提起,放在大鼠饲养盒的面罩上。 3、左手顺势按、卡在大鼠躯干 背部,稍加压力向头颈部滑行。 4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳 后部的头颈皮肤,其余三指和手掌 握住大鼠背部皮肤,完成抓取保定。