血培养痰培养
痰培养留取方法及注意事项
痰培养留取方法及注意事项一、痰培养的意义和作用痰培养是一种常用的临床检验方法，用于检测痰中的病原微生物，对于确定痰液中的细菌、真菌或病毒感染的类型和药物敏感性提供重要参考。
通过痰培养，医生可以选择合适的抗生素治疗方案，提高治疗效果，减少不必要的药物使用。
二、痰液的采集方法1.采集时间：最佳采集时间是早晨起床后，因为此时痰液较为集中，有利于检测。
2.采集前准备：患者应先漱口，以减少口腔中的细菌污染。
然后，深呼吸几次，以帮助痰液从呼吸道深部咳出。
3.采集方法：用无菌容器接住咳出的痰液，避免与容器外表面接触。
尽量采集新鲜的痰液，以免细菌在外界环境中繁殖。
4.采集量：一般要求采集3-5ml的痰液，以确保有足够的样本进行培养和检测。
5.存储和运输：采集后，应尽快送到实验室进行处理。
如果无法立即送达实验室，可以将样本存放在4℃的冰箱中，但不要超过24小时。
三、痰液培养的注意事项1.无菌操作：采集和处理痰液时，需要进行无菌操作，避免外界细菌的污染，以确保培养结果的准确性。
2.及时处理：痰液采集后应尽快送到实验室进行处理，以免细菌在外界环境中繁殖，影响培养结果。
3.标本数量：一般建议采集至少两个不同时间点的痰液标本，以增加病原微生物的检出率。
4.避免空气污染：在痰液采集和处理过程中，要注意避免与空气接触，以防止细菌的空气传播。
5.注意个体差异：痰液的性质因个体差异而异，有些人可能无法咳出痰液，此时可以尝试进行气管吸引或支气管镜检查等方法获取样本。
6.避免污染：采集痰液时，要避免将唾液、口腔分泌物等其他物质混入样本中，以免影响培养结果。
7.严格执行实验室操作规程：痰液培养需要在实验室中进行，操作人员应严格遵守实验室操作规程，包括佩戴防护手套、口罩等，以防止交叉感染。
四、痰液培养的常见细菌痰液培养可以检测到多种病原微生物，常见的细菌有： - 革兰阳性菌：肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌等。
- 革兰阴性菌：大肠杆菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌等。
如何看痰培养血培养
PPD的临床意义
• B、阴性反应的意义： （1）未受结核菌的感染 未受结核菌的感染，一般测定有无结核菌的 未受结核菌的感染 感染多用5IU PPD测定。 （2）已受结核菌的感染： • ①变态反应前期 变态反应前期，一般受结核菌感染后需经4-8周才 变态反应前期 经 周才 能建立免疫反应，在这之前的时期称变态反应前期， 能建立免疫反应 这时结素试验反应可为阴性，在建立免疫反应后， 重复结素试验可呈阳性反应； • ②免疫系统受干扰，如急性传染病、发热、机体应 免疫系统受干扰， 免疫系统受干扰 如急性传染病、发热、 免疫抑制剂的应用等； 激、免疫抑制剂的应用等 • ③免疫功能低下 重症结核病（粟粒性，结核性脑 免疫功能低下：重症结核病 免疫功能低下 重症结核病（粟粒性， 膜炎） 膜炎）、无反应性结核病、慢性消耗性疾病（如糖 尿病、慢性肾炎）、肿瘤、结节病、艾滋病、结缔 结缔 组织病、高龄等； 组织病 • ④质量问题或注射技术不妥以及判断错误。
本病例：
支持： 支持： 病史 症状 治疗情况 辅检 结核病史 下午或晚间发热 咳嗽 美罗培南、抗CMV治疗无效 结核抗体阳性 结缔组织病可能 接种过卡介苗者非活动性IgG可阳性 PPD阴性 痰抗酸染色阴性，痰培养不动杆菌 胸部CT示左下肺感染 体温39~40℃ 白粘痰 不支持： 不支持：
血培养
内容
是感染还是定植？---3.最后一招诊断性治疗
• 针对性抗菌药物之后临床症状减轻 临床症状减轻（缓 临床症状减轻 解），同时感染部位目标性细菌数减少 目标性细菌数减少则 目标性细菌数减少 为病原菌 病原菌； 病原菌 • 仅有数量减少 临床症状没有改变 数量减少而临床症状没有改变 数量减少 临床症状没有改变则最大 可能为定植菌 定植菌。 定植菌
是感染还是定植？---2.结合临床综合判断
痰培养采集的注意事项
痰培养采集的注意事项
嘿，朋友们！今天咱就来讲讲痰培养采集的那些事儿，这可很重要哦！
你知道吗，采集痰培养就像是一场精细的“捕捉行动”。
比如说，采集前要先做好准备呀，就像战士上战场前要检查装备一样。
得先把口腔清洁干净，要是嘴里还留着食物残渣啥的，那可不行！想象一下，这就好比你去钓鱼，鱼钩上还挂着乱七八糟的东西，鱼儿还能上钩吗？
采集的时候也要注意哦！咳痰可得用点力，把深部的痰咳出来，别只是随便咳咳应付一下。
这就跟挖宝藏似的，不使劲儿怎么能挖到宝呢？有的人可能会觉得恶心、不舒服，但这就是必须经历的过程呀，咱得坚持住。
你想想，要是因为嫌麻烦或者不舒服就不认真采集，那结果不准确，耽误了治疗，多不划算呀！
还有啊，采集的痰量也得够，不能就那么一丁点。
就像做菜放盐一样，太少了没味道呀！而且采集完要尽快送去检验，可别拖拖拉拉的。
这就好比给病人送药，晚了可能就耽误病情啦！
另外，我可得提醒大家，采集的过程中一定要听医护人员的指导，可别自作主张。
医护人员就像是导航，能带着我们顺利完成这个“旅程”。
总之呢，痰培养采集这件事不容小觑，每一个环节都要认真对待。
大家一定要记住这些注意事项，这样才能保证采集的准确性呀！让我们一起重视起来，为健康加油！。
培养结果解读
临床医生如何解读培养结果严重感染及其并发症是ICU中危重病患者的主要死亡原因，针对重症感染，早期充分的经验性抗生素治疗是降低病死率的关键。
相关指南推荐，在应用抗生素之前，应当留取培养以便鉴别致病微生物。
通常，在经验性抗生素治疗2-3 天后，即可得到培养结果包括细菌鉴定和药敏。
此时，临床医生应当根据培养结果，结合临床疗效，考虑对经验性抗生素进行升阶梯或降阶梯治疗，在确保抗生素疗效的同时，尽量减少细菌耐药的风险。
因此，正确解读培养结果是正确实施抗生素治疗策略的重要组成部分。
以下仅就痰培养和趴周血培养结果的解读进行探讨。
1.痰培养结果的正确解读患者发生医院获得性肺炎时，临床医生通常留取患者自行咯出的痰标本进行培养。
为排除上呼吸道正常定植菌的污染，要求显微镜检每个低倍镜视野下鳞状上皮细胞<10，白细胞>25。
但是，即便符合上述标准，痰培养结果对于诊断医院获得性肺炎致病菌的准确性仍然非常低。
因此，相关指南以及专家认为，传统意义的痰培养对于确定和(或)排除致病菌均无任何帮助，不应作为调整抗生素的参考。
对于机械通气患者而言，其下呼吸道标本可以通过吸痰管经人工气道直接留取，从而最大程度避免了上呼吸道定植细菌的污染。
此时留取的标本应当称为气管(内)吸取物(endotracheaiaspirate，ETA)。
严格意义上，气管内吸取物与痰标本有着本质区别。
多项临床试验表明，根据气管内吸取物培养结果诊断医院获得性肺炎的敏感性为82%，特异性0-33%. 换言之，82%的医院获得性肺炎患者气管内吸取物培养结果阳性，其余18%的患者培养结果为阴性；在并未罹患医院获得性肺炎的患者中，0-33%气管内吸取物培养结果为阴性，而67%-100%培养结果为阳性。
由此可见，无论患者是否罹患医院获得性肺炎，其气管内吸取物培养结果阳性的比例并无显著差异。
究其原因，患者留置人工气道一旦超过4-5 天，其下呼吸道通常会发生细菌定植，而常规非定量培养方法并不能可靠鉴别定植细菌或致病菌。
临床各种标本采集血尿痰培养
2 如何判读血培养阳性报告 （假阳性
•
• 不太可能----棒状杆菌属 格兰阳性杆菌（炭疽杆菌除外） 痤 疮丙酸杆菌
• • 不确定----凝固酶阴性葡萄球菌 草绿色链球菌 危险因素 人
工装置 临床症状 标本阳性比例 生长时间 菌量 2次 分离菌 • • 很可能-----金黄色葡萄球菌 肺炎链球菌 肠杆菌科菌 铜绿 假单胞菌 白色念珠菌
2、采集血培养的规范化操作
• 2）血培养采集部位 血培养应从外周静脉采集，不建议从动脉采集，不建议从静脉
留置导管采集，因其常伴高污染率。
• 3）血培养采集时间 每份血培养采集间隔应不超过10分钟，持续性菌血症除外。
• 4）血培养瓶的转运
采集后的血培养瓶应立即颠倒混匀，以避免血液在瓶内凝集
（儿童采血量少 更应该注意颠倒混匀），尽快送往化验室。血培
脑脊液
• 采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在 用抗生素前采集。
• 采集方法：无菌腰穿采集3-5ML，分装到3个无菌小管 内各1-2ML，用 于细菌和病毒检测的量不少于1ML， 用于真菌和抗酸杆菌检测的量不少于2ML。
穿刺液培养标本
• 穿刺液标本包括：胸水、腹水、心包液、关节液、鞘 膜液等。
养瓶接种后，不得冷藏、冷冻或自行孵育
。
临床医生关心的血培养问题
• 1 如何提高血培养的阳性率 • 1）采血时机：研究表明细菌通常在寒战和发热前1小时入血，
因此，尽可能在寒战和发热初起时采血，在发烧氏血液中可能没 有细菌尽可能在抗菌药物使用前，如患者已经应用抗菌药物进行 治疗，应在下一次用药之前采血培养，或使用含树脂吸附功能的 培养瓶。 • 2）采血量：成年人采血量为每瓶≥5ML，推荐8--10ML。婴 幼儿患者采血量每瓶≧0.5ML，推荐1--3ML，总采血量不超过患 者总血量的1%。新生儿败血症，最低的采血量不确定 ，通常在 0.75--1ML的量是推荐的。 • 阳性率：足量采血5.2% ，不足量采血2.1%。
如何正确的留取微生物痰和血培养标本
何梅 ( ) 德阳市第二人民医院 德阳 ６ １ ８ ０ ０ ０
生误导. 在呼气时用力咳嗽, 并, 护士可协助患者拍击其背部, 使附在气管、 支气管、 肺泡壁的痰液松动、 脱 落, 更易于 排出.吐痰时, 应尽量防止唾液及鼻咽部分泌物混入, 留取脓样、 干酷样或黏液样痰 液, 痰量不少于３毫升, 放入无菌杯里, 并及时送检. 可将生理盐水加温至４ ２． ４对于痰量少或无痰的患者, ５℃ 左 右 后 超 声 雾 化 吸 入 , 使痰液稀薄、 痰量增多而易于排出, 常可达目的. 留痰前可体位引流, 根据病变部位采取不同体 ２． ５支气管扩张症或肺脓肿患者, 位.原则是使病肺处于高位, 使其引流支气管开口向下, 持续约１ 体位引 ５~３ ０分钟, ２] , 流时间歇作呼吸后用力咳嗽, 同时用手轻拍患部, 可 提 高 引 流 效 果[ 采到满意的痰 . 液标本 应 放 入 冰 箱 ４℃ 储 存 , 以减 ２． ６作结核杆菌或真菌培养的痰液如 不 能 立 即 送 检, ３] . 少 杂 菌 等 生 长[ 可先清除口腔分泌物, 再用吸痰管外接５ ２． ７昏迷患者, ０ m l注 射 器 抽 吸 后 再 注 入容器, 或用吸引器吸取, 在吸引器细管中段接特殊无菌瓶, 无菌瓶两侧各有一开口 ４] . 小管, 其中一管接吸痰管, 另一端接吸引器, 开 动 吸 引 器 后 痰 即 被 吸 进 瓶 内[ 为确保各标本检验结果的准确性和客观性, 临床医护人员应更多的了解和学习 标本采集的注意事项, 加强基本功和理论知识的培训, 增强责任心.采集标本时要有 耐心, 加强医患之间的沟通, 为其讲解并要求患者予以配合和服从.做好送检标本前 的质量控制, 才能检测出符合病人病情的优质检验结果. 参考文献 [ : 沈继林． 留取临床检验标本注意问题浅析． 医药前沿, １] ２ ０ １ １, ０ １( ２ ０) １ ７ ３－１ ７ ４． [ 杨履渭． 微 生 物 学 及 检 验 技 术[ 第１版． 广东科技出版社, ２] M] ． １ ９ ８ ６: ４ ６ ０． [ ] [ ] , : 钮 善 福 内 科 学 第 版 人 民 卫 生 出 版 社 ３ ． M ． ４ ． １ ９ ９ ６４ １． [ 余爱珍． 基 础 护 理 学[ 第１版． 江苏科学技术出版社, ４] M] ． １ ９ ８ ５: ４ ５ ３－１ ５ ４．
血培养、痰培养
血培养规范：送检方式
血培养的送检：成人“一套”血培养，包括需氧和厌氧各一 瓶，也称为“一份”；儿童一般只做需氧培养，必要时进行 厌氧培养。
采血规则：一次穿刺只取一套血培养，下一套血培养，应使 用另一穿刺点。 多套送检：每位患者每次至少送检两套，三套最好；初次血 培养，决不能只送检“一套”。
采血套数及血量 检出率 1套(20ml) 65% 2套(40ml) 80% 3套(60ml) 96%
培养瓶消毒程序
1． 用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s。 2． 用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精， 然后注养，由于厌氧菌感染极
少发生在儿童病人，因此建议只采用需
氧瓶。厌氧培养只考虑针对特殊的高危群体。
皮肤消毒参照成人的方法，除新生儿以
外。
抽取血标本
放入痰杯内，刷出物放入1mL无菌盐水的无菌容器内。 4 注意：对不能产生标本的患者，医生可以抽吸获得标本。 最好的标本鳞状细胞<=10个/LPH，<=25个/LPH为合格的 标本
下呼吸道标本
三 采集量 ： >=1mL
四 容器： 无菌密闭 五 标本转运 (冷藏保存，24h内送检）
Thanks
敬 请 指 导!
采集步骤
准备血培养瓶
Text2
皮肤消毒
Text3
保持手的卫生
Text1
Text4 Text5
抽取血标本
血标本采集的量
保持手的卫生
洗手
手消毒
LOGO
准备血培养瓶
检查培养瓶
无渗漏 破裂
有效期
Cycle name
污染 培养液 清澈 用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60S，待干
血培养、痰培养 PPT
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准备血培养瓶
保持手的卫生
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检查培养瓶
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污染
用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60S，待干
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血培养检测消毒程序
皮肤消毒程序
▪
为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂对皮肤进行严格仔细的消
毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
▪
用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
▪
然后用棉签（1~2%碘酊或10%碘伏）消毒皮肤，从穿刺点向外
以1.5~2cm直径画圈进行消毒。
▪
最后用70%酒精脱碘。对碘过敏的患者，只能用70%酒精消毒，
二 采集方法 1 自然咳痰法：以清晨为最好，此时病人痰量较多， 反应真实情况。采集前，应清水漱口，除去大部分 口腔内杂菌，用力从气管深部咳出痰液。
血培养、痰培养
227
PCT联合血培养的意义？
所以，血培养+PCT联合应用，互相补充，更好指导临床。
血培养、痰培养
23
分级报告（阳性结果三级报告）
分级报告（阳性结果三级报告）
❖ ①报告涂片结果，并做初步药敏。（培养24h后）
——革兰氏阳性/阴性，杆菌/球菌。
❖ ②报告初步药敏结果，及第二次涂片结果，并进行 规范的鉴定和药敏试验。（培养48h后）
血培养和痰培养的采集
THANKS
演 示 完 毕 感 谢 聆 听
- 外科ICU 刁晓璐 -
采血分量
成人 8-10ml
婴幼儿 1-2ml 2-5ml
婴幼儿病人，一般只抽一瓶需氧瓶进行培养； 成人不能只采一瓶，采血量不足和只做一套血培 养所得结果是不易正确解释的
（四）、血培养的注意事项
1、严格按照皮肤消毒，并达到足够的消毒时间。
2、严格无菌操作，消毒后不能再按压穿刺点，除了戴了无菌 手套。 3、从静脉采血，不宜从动脉。 4、多次采血应在不同部位，以排除皮肤菌丛污染的可能。 5、除非无法做静脉穿刺采血，否则不能从静脉留置导管取血。 6、要保证足够的标本量，以提高血培养阳性率。 7、标本采集后，先注入厌氧瓶；当采血量不足,则应先注入需 氧瓶。 8、采血后应该立即送检，最好在2h内，如不能立即送检，需 室温保存，切勿冷藏。
痰培养采集方法
采集时机、方式、质量
痰培养注意事项
④
把握标本采集时机抗菌药物使用前最 佳，严格无菌操作，避免正常菌群的 污染，及时送检标本，标本量足够。
痰培养采集方法
（一）
采集时机
①抗菌药物应用前。 ②最好在清晨 。 ③细菌性肺炎每日送检一次连续2～3天。 ④怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
①自然咳痰法 ②雾化导痰法 ③经人工气道吸引法 ④经支气管镜抽吸法
采集方法
（二）
（三）
采集质量
采集痰量不能少于1ml，痰标本呈水样或液样，有明 显食物残渣等应重新留取。
经人工气道吸引法：
用物准备
洗手 核对患者信息 检查负压装置 消毒
经支气管镜抽吸法 ：
纤维支气管镜检查可直接从肺部感染病灶获取支气 管分泌物，可采集高浓度的感染病原菌。
痰培养、血培养检验报告的解读
一、临床医生阅读微生物报告前需要了解的问题首先是标本类型，是来源于无菌部位还是有菌部位，如果是无菌部位，那培养的阳性结果与感染更相关，如果是有菌部位，如呼吸道，要了解是否存在正常菌群或定植菌。
其次是标本采集部位、采集方式。
如痰标本，是咳痰、吸取物、肺泡盥洗液，还是防污染毛刷、气切管分泌物。
如尿液标本，是中段尿、导管尿，还是耻骨上穿刺尿。
如血标本，是外周血、导管血，采血量是多少，抽了几套血。
采血前是否使用抗生素，过去的微生物学检查结果是什么。
二、痰标本质量评估痰标本易受到口咽部定值菌污染，不一定真正代表下呼吸道感染菌。
送检时必须痰涂片和培养同时开。
采集前应使用清水或生理盐水漱口，有假牙的应先取下假牙，嘱病人采集深部咳痰，直接收集入无菌螺旋口痰杯。
1-2小时内送检，否则苛养菌（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等）易死亡。
显微镜检查取脓性部分涂片，做革兰染色，每低倍镜视野中鳞状上皮细胞<10,白细胞>25,为合格下呼吸道标本。
对照痰涂片结果，仅对优势菌进行鉴定和药敏试验。
非常强调痰涂片的重要性，不仅可以判断痰标本是否是下呼吸道标本，甚至根据微生物的形态和特殊染色，可以初步判断感染菌的类型，一个工作日内可以发报告，有助于临床尽早调整用药。
例如，涂片提示可疑放线菌，放线菌是厌氧菌，需要厌氧环境培养，可以提示临床医生加开厌氧菌培养申请单。
需要临床医生的理解支持，才能鼓励检验科老师大胆创新，更好的为临床服务。
高质量下呼吸道标本包括：1、支气管肺泡灌洗液。
定量培养>104CFU/ml,具有诊断意义。
离心涂片>1%细胞为鳞状上皮细胞提示污染，培养菌量可能假性提高。
2、保护性毛刷。
毛刷约仅能获得0.01-0.001ml标本，在空气中很快会干燥导致细菌死亡，从而影响检出率，应放置于1ml液体运送培养基（如无菌生理盐水和无菌肉汤），振荡后，定量培养>103CFU/ml,具有诊断意义。
3、肺组织活检。
临床痰合格标本标准及细菌浓度指示致病菌指标
临床痰合格标本标准是及细菌浓度指示致病菌指标肺炎治疗离不开病原体的诊断，下呼吸道分泌物或痰无疑极易受到污染。
有慢性气道疾病者、老年人和危重病病人等，其呼吸道定植菌明显增加，影响痰中致病菌的分离和判断。
在采集呼吸道标本进行细菌培养时尽可能在抗菌药物应用前采集，避免污染，及时送检，结果起到指导治疗作用。
目前常用方法有：1.痰：采集方便，是最常用的下呼吸道病原学标本。
采集后在室温下 2 小时内送检。
先直接涂片, 光镜下观察细胞数量，如每低倍视野鳞状上皮细胞<10个, 白细胞＞25 个，或鳞状上皮细胞：白细胞 <1：2.5，可作为污染相对较少合格标本接种培养。
痰定量培养分离的致病菌或条件致病菌浓度≥107cfu/mL，可以认为是肺部感染的致病菌；≤104cfu/mL为污染菌；介于两者之间建议重复痰培养；连续分离到相同细菌，105~106cfu/mL 连续两次以上, 可认为是致病菌。
2.经支气管镜或人工气道吸引：受口咽部细菌污染的机会较咳痰为少，吸引物细菌培养其浓度≥105cfu/mL，可认为是致病菌，低于此浓度则多为污染菌。
3.防污染样本毛刷：细菌≥103cfu/mL，可认为是致病菌。
4.支气管肺泡灌洗：细菌≥104cfu/mL 防污染BAL标本细菌≥103cfu/mL，可认为是致病菌。
5. 经皮细针吸检和开胸肺活检：敏感性和特异性均很好，但由于是创伤性检查，容易引起气胸、出血等并发症，临床一般用于对抗菌药物经验性治疗无效或其他检查不能确定者。
6. 血培养和胸腔积液培养：肺炎病人血培养和痰培养分离到相同细菌，可确定为肺炎的病原菌。
如仅为血培养阳性, 但不能用其他原因如腹腔感染、静脉导管相关性感染解释菌血症的原因，血培养的细菌也可认为是肺炎的病原菌。
胸腔积液培养到的细菌基本可认为是肺炎的致病菌。
7. 尿抗原试验：包括军团菌和肺炎链球菌尿抗原。
8. 血清学检查：测定特异性 IgM 抗体滴度，如急性期和恢复期之间抗体滴度有 4 倍增高可诊断，支原体、衣原体、嗜肺军团菌和病毒感染等多为回顾性诊断。
临床痰培养注意事项
临床痰培养注意事项下呼吸道感染是指喉部以下包括气管、支气管及各级小气道在内的呼吸系统感染，较为直接的病原学检查是留取患者痰液进行培养及药敏试验，以此找到致病菌，并根据药敏结果指导抗生素使用。
痰液培养取材方便，因此成为临床最常用的病原学检查方法之一。
标本采集与送检一般患者晨起饭前取痰为佳，具体方法为首先彻底清理口腔，可用清水漱口，有假牙者需摘下，然后用力深咳，尽量将呼吸道深部的痰咳出并直接吐入专用的痰液采集器内，保证容器在使用前是无菌、密闭、干燥的，收取痰液后应拧紧，立即送检，室温下不超过2小时为佳，若无条件送检，应于4℃冰箱内保存并于24小时内处理。
非住院患者应注意，留取痰液前应禁食1小时，避免口腔食物残渣污染痰液。
注意应尽可能多的留取痰液，至少1ml。
为使稀释痰液，可建议患者于检查前夜适量多饮水，有条件者可雾化治疗均可使痰液易于排出。
对于气管插管患者，应于无菌吸痰管吸取气道深部痰液。
对于急性感染，通常只送1次，但怀疑真菌、分枝杆菌、卡氏肺孢子菌感染或有病情变化者，应连续3次送检晨痰。
判断标本是否合格肉眼观，标本呈唾液样或水样，标本检出阳性率较低。
痰涂片，低倍镜下观察，白细胞：鳞状上皮细胞<2.5:1,而北京协和医院《医疗诊疗常规》中提出无论多核中性粒细胞数量多少，若鳞状上皮细胞数>10个/低倍镜则为不合格，即认为标本污染口咽部正常菌群，建议重新采集。
分离培养常用的培养基为血平板、巧克力琼脂和麦康凯琼脂。
血平板主要用于肺炎链球菌、溶血性链球菌等G+球菌及G-杆菌生长，尤其便于评估菌落形态；巧克力琼脂适用于分离嗜血杆菌等对培养条件苛刻的细菌；麦康基琼脂适用于G-杆菌并进一步区分乳糖阳性与乳糖阴性病原体。
结果判读痰培养结果通常以半定量方式报告，合格痰标本中优势菌中度以上生长（+++），亦或合格痰标本中少量生长，但与痰涂片结果一致，亦或连续三天内多次痰培养均为同种细菌。
除此之外，当痰涂片镜检发现典型病原菌，但痰培养阴性，我们也认为其有参考意义。
血培养、痰培养
以1.5~2cm直径画圈进行消毒。
▪
最后用70%酒精脱碘。对碘过敏的患者，只能用70%酒精消毒，
消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
▪
不允许在消毒后按压静脉，除非带有无菌手套。
培养瓶消毒程序
1． 用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s。
2． 用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精， 然后注入血液。
3 下呼吸道肺泡灌洗、支气管刷灌洗，气管抽吸物或洗出物 放入痰杯内，刷出物放入1mL无菌盐水的无菌容器内。 4 注意：对不能产生标本的患者，医生可以抽吸获得标本。 最好的标本鳞状细胞<=10个/LPH，<=25个/LPH为合格的 标本
下呼吸道标本
三 采集量 ： >=1mL
四 容器： 无菌密闭
五 标本转运 (冷藏保存，24h内送检）
血培养规范：标本采集
最佳采血时机：发热早期、抗生素治疗前、停用抗生素后24小 时。
采血部位：通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时，可选择肘 动脉或股动脉；不应使用静脉输液途径或静脉、动脉导管取血。
同时多部位采血：有助于判断假阳性，但意见不统一。
采血量：成人，5-10mL/瓶；儿童，1-3mL/瓶。 采血时间间隔：依病症而不同，30-60分钟不等。 送检前暂存：不能立即送检时，室温暂存，勿置冷藏。
PCT
早期指标（2h开始升高）、 细菌感染特异性高、 阴性预测值高（90%）
缺点
出报告时间长、 阳性率低、 易受污染
不能鉴别出细菌种类
所以，血培养+PCT联合应用，互相补充，更好指导临床。
血培养 PCT （ng/mL）
处置方案
阳性
阴性 阳性 阴性
>2
痰培养的目的
痰液标本是临床微生物学检验最常见的的标本，但不是下呼吸道感染的最佳标本。
而痰为下呼吸道的分泌物，其病原菌的情况最能真实的反应下呼吸道的感染情况，因此痰涂片镜检即格兰染色和痰培养一直受到临床上的关注，且常规用以指导临床治疗。
痰培养的目的：检查痰液中的致病菌。
可根据需要进行需氧菌培养、厌氧菌培养、结核杆菌培养、或真菌培养，用于呼吸道感染的病因诊断。
痰培养的理论依据是致病菌应高于污染菌，据此，对痰液进行定量培养和半定量培养。
常与药物敏感试验一起进行。
在抗菌素使用前采集价值高。
最好注明相关体征、指标、前期用药情况。
采集方法自然咳痰法尽可能在用抗菌药物之前采集标本。
以晨痰为佳，采集标本前应用清水、冷开水漱口或用牙刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙（为减少口腔正常菌群污染标本），用力咳出呼吸道深部的痰（非后鼻部分泌物、非唾液），痰液直接吐入无菌痰杯中，标本量应≥1ml。
对于痰量少或无痰或咳痰困难者可用雾化吸入加温至45°C的10%NaCl水溶液(痰液粘稠难咳,阻塞气道的,需要用α-糜蛋白酶盐水溶液)，使痰液易于排出后咳痰。
浓缩法找结核杆菌时，则应留取24h痰液：正确的留痰方法是，在留痰之前先用清水漱口数次，以清除口腔内的食物残渣及部分杂菌。
留取的痰应是用力咳嗽后自气管内咳出的痰，然后盛于痰盒内送检。
不要将唾液或鼻涕吐入痰盒，以免影响查痰结果。
初次就诊需查痰者，医生要求送三个痰标本：〈1 〉即时痰：就诊当时咳出的痰，〈2〉夜间痰：前一天晚间咳出的痰，〈3〉清晨痰：起床后深咳吐出的痰，其中以清晨第一次咳出的痰效果最好。
痰培养注意事项：痰液的采集必须注意两个环节，即所留的痰标本必须是从肺部咳出（不要混入唾液、鼻咽分泌物、食物、漱口水等）及痰液必须十分新鲜（送检标本在1小时内处理，以防细胞自溶）。
采集方法通常包括：让患者自然咳痰，清晨留取，用清水反复漱口三次，以清除口腔中的细菌。
无痰者可用加温45℃左右的10%的盐水雾化吸入。
痰标本及血培养
痰液是气管、支气管、肺泡所产生的分泌物。
正常情况下此种分泌物甚少，病理情况下如肺部炎症、肺结核、肿瘤时，痰量增加，并有性状、成份改变。
唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内，但并非痰的组成部分。
痰液检查的意义：①辅助诊断某些呼吸系统疾病，如哮喘、支气管扩张等；②诊确某些呼吸系统疾病，如肺结核、肺癌、肺吸虫等；③观察疗效和预后，如痰量和性状变化等。
因此，痰液检查很重要，而检查结果的准确性又与痰标本的收集是否正确有着密切的关系。
笔者在总结多年实际工作经验的基础上，参考了一些资料，现将采取痰标本的方法与注意事项整理如下：1 根据检查目的收集容器，常用的容器有无色透明的塑料痰杯和广口玻璃瓶，而不应用纸盒或者有色的玻璃瓶或脏玻璃瓶。
容器应洁净、干燥，不应有异物、污水等。
如收集24小时痰液时，宜使用装有防腐剂的广口玻璃瓶，如留痰涂片作细菌学检查或留取痰培养时，应用消毒过的容器。
容器外壁贴好标签，标明患者科别、床号、姓名等。
2 呼吸系统疾病中传染病较多，如肺结核、流感，主要通过空气、飞沫、尘埃传播。
因此，护士应衣帽整洁，认真戴好口罩，做好自身防护，以免发生院内感染。
3 采集标本时要仔细核对申请项目、病员姓名、床号等，并向病人耐心解释检查的目的、重要性及留痰方法，以取得患者的信任和配合，否则是难以采取到合格的标本。
4 采集时间一般以清晨较好，且第一口痰的价值较大，因为经过一夜的蓄积，一般清晨痰量较多，痰内细菌、脱落细胞也较多，因而能提高检查的阳性率。
5 留痰时应嘱患者用清水漱口或刷牙后再用清水漱口，以减少口腔常存菌或杂物污染的机会。
否则，有时未培养出真正的致病菌，反培养出杂菌，从而对诊疗产生误导。
6 留痰时嘱患者深吸气，在呼气时用力咳嗽，并嘱其尽量咳出气管深处的痰，护士可协助患者拍击其背部，使附在气管、支气管、肺泡壁的痰液松动、脱落，更易于排出。
吐痰时，应尽量防止唾液及鼻咽部分泌物混入，并及时送检。
7 对于痰量少或无痰的患者，可将生理盐水加温至45℃左右后超声雾化吸入，使痰液稀薄、痰量增多而易于排出，常可达目的。
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血培养、痰培养
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采集步骤
准备血培养瓶
保持手的卫生
Text2
Text1
Text5
皮肤消毒
Text3
Text4
抽取血标本
血标本采集的量
血培养、痰培养
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保持手的卫生
洗手
手消毒
血培养、痰培养
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LOGO
准备血培养瓶
检查培养瓶
无渗漏
破裂
有效期Cycle name来自培养液 清澈污染
用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60S，待干
血培养、痰培养
9
采血时 血机
寒战和发 热初期
培
养
使用抗菌
的
药物前
采
集 ？
停药6-8小
时后或下
血培养、痰培养 次用药前
10
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采集的标本量
?成人每瓶5ml～10ml,儿童3～5ml，婴幼儿 1～2ml；
?研究表明，采血量在 3-10ml 范围内，采血量与培 养阳性率成正比，血量每增加 1ml ,阳性率约提高 3% 。增加血量是从血流感染（ BSI）的患者血液 中培养出微生物最显著的方法。
? ③电话报告正式鉴定和药敏结果，再按正常程序报 告纸质报告。 （5-7天）
血培养、痰培养
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痰培养采集注意事项
血培养、痰培养
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下呼吸道标本
一 采集指南
1. 呼吸系统疾病外加咳嗽、咯血、呼吸困难、发 热。
2. 怀疑属于通风设备相关性肺炎，应培养与气管、 肺泡灌洗液及支气管刷。
血培养、痰培养
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下呼吸道标本
二 采集方法 1 自然咳痰法：以清晨为最好，此时病人痰量较多， 反应真实情况。采集前，应清水漱口，除去大部分 口腔内杂菌，用力从气管深部咳出痰液。 2 诱导性痰：涮完牙龈和舌头后，让患者用水漱口， 借助喷雾器，使患者吸入约25mL3%--10%无菌盐水 诱导痰。
?标本采集的方法及注意事项
?
一病区 王红霞
血培养、痰培养
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? 主要内容
? 血培养 ? 痰培养
血培养、痰培养
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血培养（需氧 +厌氧）
——血培养是微生物实验室最有价值的的检测项目
血培养、痰培养
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血培养的目的
?证实有感染性的病原体 ?鉴定病原体 ?指导抗菌药物使用
血培养、痰培养
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血培养适应症
主要适应症 - 菌血症 - 感染性心内膜炎 - 临床不明原因感染（发烧待查） - 假体植入后感染（人工关节、人工瓣膜等） - 静脉导管相关性菌血症 - 脓毒症关节炎 - 肺炎、流行性脑膜炎、肾盂肾炎及腹部术后等严重局部
血培养、痰培养
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.
血培养检测消毒程序
皮肤消毒程序
? 为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂对皮肤进行严格仔细的消 毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
? 用70% 酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。 ? 然后用棉签（1~2%碘酊或10%碘伏）消毒皮肤，从穿刺点向外
以1.5~2cm 直径画圈进行消毒。 ? 最后用70% 酒精脱碘。对碘过敏的患者，只能用70%酒精消毒，
? 皮肤消毒参照成人的方法，除新生儿以
外。
血培养、痰培养
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抽取血标本
抽取血标本
采血针：
持穿刺针按常规方法刺入 静脉，另一头刺入相应血 培养瓶内，利用瓶内真空 抽取血标本
注射器抽取：
用注射器无菌穿刺取血 后，勿换针头直接注入 组培养瓶。
轻轻混匀以防凝固!
血培养、痰培养
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标本运送
已采集的标本应视为 潜在性生物危险品
血培养、痰培养
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血培养规范：标本采集
? 最佳采血时机：发热早期、抗生素治疗前、停用抗生素后24小 时。
? 采血部位：通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时，可选择肘 动脉或股动脉；不应使用静脉输液途径或静脉、动脉导管取血。
? 同时多部位采血：有助于判断假阳性，但意见不统一。 ? 采血量：成人，5-10mL/瓶；儿童，1-3mL/瓶。 ? 采血时间间隔：依病症而不同，30-60分钟不等。 ? 送检前暂存：不能立即送检时，室温暂存，勿置冷藏。
另：在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应该增加尿
液和脑脊液培养。肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症患儿（特别是2岁或2岁以下的
幼儿）一般在门诊就诊，常伴有明显发热（>38.5℃）和白细胞增多
（>20×109/L）。老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或
中风，可能是感染性心内膜炎的重要指征。
置于防漏、防渗、 相对密封的容器中 收集、存储与转运
立即送检，一般不得 超过2小时
血培养、痰培养
如不能及时送检，应 放在室温，切勿放入 冰箱内冷藏或冷冻
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讨论
存在问题
假阳性：
污染率3-5% 严格无菌技术操 作
假阴性： 可以避免
血培养、痰培养
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结果——假阴性
采血量不够
血液凝固
输液处采血 大剂量使用激素后
消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 ? 不允许在消毒后按压静脉，除非带有无菌手套。
血培养、痰培养
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培养瓶消毒程序
1． 用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s。
2． 用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精， 然后注入血液。
血培养、痰培养
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儿童血培养
? 不同于成人血培养，由于厌氧菌感染极 少发生在儿童病人，因此建议只采用需 氧瓶。厌氧培养只考虑针对特殊的高危群体。
感染
血培养、痰培养
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临床适用科室
凡是有住院部的科室都适用。 儿科、内科、外科、妇产科等。
血培养、痰培养
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需氧瓶
厌氧瓶
血培养、痰培养
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采血指征
对入院的危重病人未进行系统性抗生素治疗时，应及时进行血液培养，病人出现以 下临床表现时可作为采集血培养的重要指征。 1.发热（>38℃）或低温（<36℃） 2.寒战 3.白细胞增多（>10×10^9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多） 4.粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10^9/L） 5.血小板减少 6.皮肤、粘膜出血 7.昏迷 8.多器官衰竭 9.血压降低 10.呼吸加快 或同时具备上述几种临床表现时应采集血培养。
大剂量使用抗生素后
血培养、痰培养
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血培养规范：送检方式
? 血培养的送检：成人“一套”血培养，包括需氧和厌氧各一 瓶，也称为“一份”；儿童一般只做需氧培养，必要时进行 厌氧培养。
? 采血规则：一次穿刺只取一套血培养，下一套血培养，应使 用另一穿刺点。
? 多套送检：每位患者每次至少送检两套，三套最好；初次血 培养，决不能只送检“一套”。
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PCT联合血培养的意义？
所以，血培养+PCT联合应用，互相补充，更好指导临床。
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分级报告（阳性结果三级报告）
分级报告（阳性结果三级报告）
? ①报告涂片结果，并做初步药敏。 （培养24h后）
——革兰氏阳性/阴性，杆菌/球菌。
? ②报告初步药敏结果，及第二次涂片结果，并进行 规范的鉴定和药敏试验。 （培养48h后）