植物过氧化物酶(POD)提取液

过氧化物酶活性的测定实验报告

一、实验目的了解过氧化物酶（POD）在植物生理学中的重要作用，掌握测定POD活性的方法，并分析不同因素对POD活性的影响。

二、实验原理过氧化物酶是一种广泛存在于植物组织中的酶，能够催化过氧化氢（H2O2）分解为水（H2O）和氧气（O2）。

在实验中，通过测定在一定时间内POD分解H2O2产生氧气的量，来评价POD的活性。

反应方程式如下：2H2O2 → 2H2O + O2本实验采用愈创木酚法测定POD活性。

愈创木酚在POD催化下被氧化，生成对苯醌，进而与氯化铁形成紫色络合物，通过测定紫色络合物的吸光度变化来反映POD的活性。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 植物叶片（如马铃薯、菠菜等）- 过氧化氢（H2O2）- 愈创木酚- 氯化铁- 磷酸氢二钠（Na2HPO4）- 磷酸氢钠（NaH2PO4）- pH计- 离心机- 分光光度计- 研钵- 试管- 移液器- 电子天平2. 实验试剂：- 0.1 M磷酸盐缓冲液（pH 7.0）- 0.1 M H2O2溶液- 0.5 M愈创木酚溶液- 0.1 M氯化铁溶液四、实验步骤1. 酶液提取：将植物叶片洗净、剪碎，加入预冷的磷酸盐缓冲液，在研钵中研磨成匀浆。

将匀浆液转移至离心管中，4℃、12,000 rpm离心10分钟，取上清液即为酶液。

2. 测定酶活性：取5支试管，编号为1-5，分别加入以下试剂：- 空白组：0.1 M磷酸盐缓冲液1.0 mL、0.1 M H2O2溶液1.0 mL、0.5 M愈创木酚溶液1.0 mL- 实验组：0.1 M磷酸盐缓冲液1.0 mL、0.1 M H2O2溶液1.0 mL、0.5 M愈创木酚溶液1.0 mL、酶液0.1 mL将各试管混匀，置于37℃恒温水浴中保温5分钟。

取出试管，立即放入冰浴中终止反应。

使用分光光度计在波长560 nm处测定各试管吸光度。

3. 计算酶活性：以空白组吸光度为基准，计算各实验组吸光度变化值（ΔA）。

根据下列公式计算酶活性：酶活性（U/g·min）= ΔA × 0.05 × 10^3 / 酶液浓度五、结果与分析1. 不同植物叶片POD活性比较：实验结果显示，不同植物叶片的POD活性存在差异。

保护酶活性测定方法过氧化物酶POD活性测定1酶液的制备

保护酶活性测定方法一、过氧化物酶（POD）活性测定1、酶液的制备：称取样品3 g，加入预冷的0.05 mol/L pH7.8的磷酸缓冲液少量，用粗纱布过滤，定容至10ml，低温离心（12×104r/min,0~4℃）15min,取上清夜置于低温冰箱备用。

2、试剂：0.05 mol/L pH 5.5磷酸缓冲液0.05 mol/L 愈创木酚溶液（2-甲基酚）20%三氯乙酸溶液2%H2O23、仪器：分光光度计、离心机、研钵、容量瓶、量筒、试管、吸量管4、过氧化物酶活性测定：（1）加入反应混合液2.9 ml磷酸缓冲液1 ml愈创木酚溶液（2-甲基酚）1 ml H2O20.1ml酶液（2）37℃水浴锅中保温15min,迅速转入冰浴，并加入2ml三氯乙酸溶液终止反应（3）过滤，适当稀释。

在470nm处测OD470。

5、结果计算：以每分钟内OD变化0.01为1个酶活力单位。

即酶活力=OD×D / 0.01t酶的比活力= OD×D /（0.01tw）其中：OD为反应时间内吸光度的变化W为材料鲜重t为反应时间D为稀释倍数。

即提取的总酶液为反应系统内酶的倍数二、多酚氧化酶（PPO）活性测定1、酶液的制备：称取样品3 g，加入预冷的0.05 mol/L pH7.8的磷酸缓冲液少量，用粗纱布过滤，定容至10ml，低温离心（12×104r/min,0~4℃）15min,取上清夜置于低温冰箱备用。

2、试剂：0.05 mol/L pH 5.5磷酸缓冲液0.05mol/L儿茶酚溶液（邻苯二酚）20%三氯乙酸溶液2%H2O23、仪器：分光光度计、离心机、研钵、容量瓶、量筒、试管、吸量管4、多酚氧化酶活性测定：（1）加入反应混合液3.9 ml磷酸缓冲液1 ml 儿茶酚溶液0.1 ml酶液（2）37℃水浴锅中保温15min,迅速转入冰浴，并立即加入2ml三氯乙酸溶液终止反应。

（3）过滤，适当稀释。

过氧化物酶、过氧化氢酶活性测定方法及试剂配制

过氧化物酶（POD ）活性测定【实验原理】过氧化物酶广泛分布于植物的各个组织器官中，在有H 202存在条件下，过氧化物酶能使愈创木酚氧化，生成茶褐色的4-邻甲氧基苯酚，可用分光光度计测生成物的含量来测定活性。

【实验试剂】愈创木酚、30%过氧化氢、20mmol/LKH2PO4、100mmol/L 磷酸缓冲液（pH6.0）、反应混合液[100mmol/L 磷酸缓冲液（Ph6.0）50mL ，加入愈创木酚28uL,加热搅拌，直至愈创木酚溶解，待溶液溶解冷却后，加入30%过氧化氢19uL ，混合均匀保存在冰箱中]【方法步骤】（1）、粗酶液的提取称取小麦叶片0.25g ，加20mmol/LKH2PO4 2.5mL ，于研钵中研成匀浆，以4000r/min 离心10分钟，收集上清液保存在冷处，所得残渣再用20mmol/LKH2PO4 2.5mL 提取一次，全并两次上清液，所得的即为粗酶提取液(酶活性过高，稀释10倍)。

（2）、酶活性的测定取试管3只，于一只中加入反应混合液3mL ，KH2PO41mL ，作为校零对照，另外三只中加入反应混合液3mL ，稀释后的酶液1mL （如表1），立即开启秒表，于分光光度计470nm 波长下测量OD 值，每隔1min 读数一次（4min ）。

以每分钟表示酶活性大小，将每分钟OD 值增加0.01定义为一个活力单位。

表1 紫外吸收法测定POD 酶活性配置表4.结果计算以每分钟吸光度变化值表示酶活性大小，即以 ΔA 470 /[min · g （鲜重） ]表示之。

也可以用每 min内 A 470 变化 0.01 为 1 个过氧化物酶活性单位（ u ）表示。

POD 总活性[u/g(FW)]=式中：POD 总活性以酶单位每克鲜重表示。

其中 △470=ACK-AE比活力单位以酶单位每毫克蛋白表示。

ACK ——照光对照管的吸光度。

AE ——样品管的吸光度。

Vt ——样品液总体积，mL 。

过氧化物酶(POD)试剂盒说明书

过氧化物酶(POD)试剂盒说明书一、测定原理：利用过氧化物酶(POD)催化过氧化氢反应的原理，通过测定420nm 处吸光度的变化得出其酶活性。

二、实际的组成和配置试剂一：液体60ml×4瓶，4℃保存6个月试剂二：粉剂×3瓶，4℃保存6个月试剂二应用液的配置：临用每瓶粉剂加入10ml 的双蒸水溶解，4℃避光保存试剂三：液体5ml×1瓶，4℃保存6个月试剂三应用液的配制：临用前用双蒸水15倍稀释，使得1cm 光径，双蒸水调零时A240保持在0.4左右，现用现配。

若A 值太高，则加双蒸水稀释，若A 值太低，则加入适量试剂三。

（一般在25倍左右稀释）试剂四：液体50ml×2瓶，4℃保存6个月。

三、操作步骤：1、前处理：植物组织匀浆的制备：准确称取组织重量，按照重量(g):体积(ml)=1:9的比列加入9倍体积的匀浆介质(推荐使用生理盐水或磷酸盐缓冲液:0.1 mol/L pH 7-7.4)，冰水浴条件下制备成10%的组织匀浆液，3500r/min 离心10min ，取上清液进行测定。

混匀后，3500r/min 离心10min ，取上清于波长420nm 处，1cm 光径，双蒸水调零，测定各管吸光度值。

四、计算及举例1、定义：在37℃条件下，每毫克组织蛋白每分钟催化1ug 底物的酶量定义为一个酶活力单位。

2、植物组织中过氧化物酶(POD)活力计算公式：10)/()min 30()()()1(12-)/(⨯÷÷⨯⨯=ml mgprot ml ml cm OD OD mgprot U POD 匀浆蛋白浓度反应时间样本量反应液总体积比色光经值对照值测定活力 3.计算举例取新鲜桑叶，制备成10%匀浆，取100ul 匀浆上清，按照操作表进行操作，测得数据如下：对照OD 0.237；测定OD 0.665；同时测得10%桑叶匀浆蛋白浓度是1.80mgprot/ml 根据公式计算如下:mgprotU ml mgprot ml ml cm OD OD mgprot U POD / 26.42010001.80300.14.01120.237-0.6651000)/()min 30()()()1(12-)/(=⨯÷÷⨯⨯=⨯÷÷⨯⨯=匀浆蛋白浓度反应时间样本量反应液总体积比色光经值对照值测定活力。

过氧化物酶（POD）活性检测试剂盒说明书

Beijing Solarbio Science & Technology Co., LtdTel: 400-968-6088过氧化物酶（POD）活性检测试剂盒说明书微量法注意：本产品试剂有所变动，请注意并严格按照该说明书操作。

货号：BC0095规格：100T/96S产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致，有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件提取液液体110 mL×1瓶2-8℃保存试剂一液体20 mL×1瓶2-8℃保存试剂二液体0.04 mL×1瓶2-8℃保存试剂三液体3 mL×1瓶2-8℃保存溶液的配制：1、试剂二：液体置于试剂瓶内EP管中，使用前需先离心。

2、试剂二工作液：取0.01mL试剂二加入3.2 mL试剂一混合备用（约106T），现配现用，也可根据样本量按比例配制。

产品说明：POD（EC 1.11.1.7）广泛存在于动物、植物、微生物中，可催化过氧化氢氧化酚类和胺类化合物，具有消除过氧化氢和酚类、胺类毒性的双重作用。

POD在有过氧化氢存在的情况下，能使愈创木酚发生氧化，生成茶褐色物质，该物质在470nm有最大光吸收。

注意：实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。

如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤：一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）1、细菌、细胞或组织样本的制备细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

酶的测定

一、过氧化物酶（POD）活性测定（愈创木酚比色法测定）酶液的制取称取0.5g鲜重叶片，加入1ml磷酸缓冲液（PH=7.8,0.05mol/L），冰浴研磨，研磨后再加入4ml磷酸缓冲液。

将研磨液倒入离心管中，平衡。

12000r/min、0-4℃下离心20min，上清液即为酶提取液。

离心后冷藏保存。

POD: 取上清液20微升加入比色杯中（对照加20微升磷酸），加3ml反应液，马上读470nm 下的OD值并计时，每隔1min读一次（读0，1，2min的OD值）。

反应液：PH＝6.0的磷酸缓冲液50ml，加入愈创木酚28微升，于磁力搅拌器上加热溶解，加入30％H2O219微升混合保存于冰箱中。

POD活性=ΔA470*V/（a*W）V-酶液总体积（ml）；a-测定时酶液体积（ml）；W-样品重（g）可溶性蛋白含量的测定取上清夜20微升（对照加20微升水），加3ml考马斯亮蓝，放置2min后，马上于595mn 下比色。

样品蛋白质含量（mg/g鲜重）=（C*V/a）/(W*1000)C-查标准曲线所得每管蛋白质含量（mg）；V-提取液总体积（ml）；a-测定所取提取液体积（ml）；W-取样量（g）。

可溶性蛋白含量（ug）：y=0.0061x－0.0359（R2=0.9563）二、多酚氧化酶（PPO）活性测定（比色法测定）PPO活性的测定参照李焕秀（1994）的方法进行改进。

一、原理：多酚氧化酶是一种含铜的氧化酶，能使一元酚和二元酚氧化生成醌。

多酚氧化酶活性可以用氧电极测量反应耗氧的速度，或用比色法测量产物的形成，常用的底物如邻苯二酚（儿茶酚）和多巴。

二、材料：树皮韧皮部（分别在压条育苗前期、愈伤组织形成期、根原基形成期和不定根生长期进行取样）三、仪器与用具：高速低温台式离心机；分光光度计；1mL 、5mL的移液管；5mL离心管；研钵；试管数支；10mL容量瓶；秒表；水浴锅；四、试剂：1、0.1mol·L-1，pH 6.0的磷酸柠檬酸缓冲液；2、1%（10g/L）的邻苯二酚（1g用蒸馏水定容至100 mL）；3、0.1%(1/L)的脯氨酸（0.1g（0.05）用蒸馏水定容至100 mL（50））；4、石英砂；五、方法步骤1、酶液提取取鲜样0. 5－1.0g, 加1 mL 磷酸柠檬酸缓冲液（0.1mol·L-1，pH 6.0），加少量石英砂，在冰浴中研磨成匀浆,加缓冲液9mL稀释（按100mg鲜重材料加1mL提取液的比例），使终体积为10mL（研完冰盘放回冰箱）。

过氧化物酶活性的测定POD

过氧化物酶活性的测定POD一、原理：过氧化物酶催化过氧化氢氧化酚类的反应，产物为醌类化合物，此化合物进一步缩合或与其他分子缩合，产生颜色较深的化合物。

本实验以邻甲氧基苯酚（即愈创木酚）为过氧化物酶的底物，在此酶存在下，H 2O 2可将邻甲氧基苯酚氧化成红棕色的4-邻甲氧基苯酚红棕色的物质可用分光光度计在470nm 处测定其消光值，即可求出该酶的活性。

，二、实验准备仪器：分光光度计、离心机、秒表、天平、研钵、磁力搅拌器试剂：愈创木酚、30%H 2O 2、0.2mol/L 磷酸缓冲液（7.8）、0.1mol/L 磷酸缓冲溶液（PH6.0，见附录）反应混合液[100mmol/L 磷酸缓冲溶液（PH6.0）50ml ，加入愈创木酚28μl ，于磁力搅拌器上加热搅拌，直至愈创木酚溶解、待溶液冷却后，加入（待溶液冷却后再加入，否则引起分解）30%H 2O 2 19μl ，混合均匀，保存于冰箱中。

]三、步骤：1、粗酶液的提取：称取植物材料0.4-0.5g ，加磷酸缓冲液（7.8）5ml （分几次加入），于研钵中研磨成匀浆，以8000r/min 离心10min ，收集上清液于冷处（冰箱4度保存）。

2、酶活性的测定：一个试管入反应混合液3ml ，磷酸缓冲液（7.8） 1ml ，作为校零对照，另外加入反应混合液3ml ，上述酶液1ml （龙麦26酶液稀释10倍，克旱16酶液稀释15倍），立即开启秒表计时，于470nm 测OD 值，每隔15秒读1次值，读45秒，以为每15秒钟OD 变化值测酶活性的大小，以△OD/min.mg 蛋白质表示。

四、计算公式W t t ⋅⋅⋅∆=01.0V VA 活性POD 470 ΔA 470：反应时间内吸光值的变化W ：样品重量V ：提取液总体积，即5mlVt ：测定时所用体积,即1mlt ：反应时间注意：一般来说，都需要稀释，如果酶液稀释了，应在计算时乘上相应的倍数。

——张志良，瞿伟菁，P 123-124,2004高教版《植物生理学实验指导》——李玲主编，P 97-98，科学出版社，2009,《植物生理学模块实验指导》磷酸缓冲液配置A 0.2mol/l NaH2PO4 27.8g NaH2PO4•H2O 1000mlB 0.2mol/l Na2HPO4 71.7g Na2HPO4•12H2O 1000mlA(ml) B(ml)PH7.8 8.5 91.5200mlPH6.0 87.7 12.3。

植物过氧化物酶(POD)检测试剂盒(愈创木酚比色法)说明书

检测试剂盒(愈创木酚比色法)说明书
4ml预冷的PODLysisBuffer研磨或匀浆，4 POD粗提液，-20℃冻存，用于过氧化物酶的
A测定0=加入PODAssaybuffer工作液后立即测定的测定孔吸光度值t=反应时间(min)=3
注意事项：
1、待测样品中不能含有酶抑制剂，同时需避免反复冻融。

2、POD酶液提取时注意低温操作，防止酶活性。

3、以煮沸的酶液为对照时，酶要充分失活。

4、POD氧化剂和POD终止液具有一定腐蚀性，请小心操作。

5、POD氧化剂易挥发，请密闭保存，否则检测效率下降。

6、如果没有分光光度计，也可以使用普通的酶标仪测定，每次检测指标不宜过多，否则操作时间不一，有可能导致样本间的差异。

7、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

实验：POD

• 7、吸光度A的测量按4调正仪器的“00.0” 和“100%”。将选择开关置于“A”，调节吸光度调零旋钮，使得数字显示为“.000”,然后将被测样品移入光路，显示值即为被测样品的吸收比的值。 • 8、浓度C的测量：选择开关由“A”旋置 “C”，将已标定浓度的样品放入光路，调节浓度旋钮，使得数字显示为标定值，将被测样品放入光路，即可读出被测样品的浓度值。
• 比耳定律： • T=I/I0 ；LogI0 /I=KCL；A=KCL
• 其中：T透射比； I0 入射光强度；I透射比强度；A吸收比；K吸收系数；C溶液的浓度；L 溶液的光径长度。
• 安装使用： • 1、使用仪器前，使用者应该首先了解本仪器的结构和工作原理；以及各个操作旋钮的功能。在未接通电源前，应该对仪器进行检查，电源线接线应牢固。通地要良好，各个调节旋钮的起始位置应正确，然后再接通电源开关。 • 仪器经过运输和搬运等原因，会影响波长精度，吸收比精度，请根据仪器调校步骤进行调整，然后投入使用。
三、材料、仪器设备及试剂
• （一）材料 • 菠菜、马铃薯块茎。 • （二）仪器设备 • 722型分光光度计，离心机，天平，研钵，容量瓶，量筒，移液管等。
• （三）试剂（1）酶提取液----0.05M PH7.0的磷酸缓冲液：
• 贮备液A：0.2 mol/L NaH2PO4溶液； • 贮备液B：0.2 mol/L Na2HPO4溶液； • 分别取贮备液A 61mL与贮备液B 39mL充分混匀并稀释至400mL。
实验：植物组织中抗性酶ＰＯＤ活性的测定
－－－－－比色法
一、实验目的
• 过氧化物酶（Peroxidase)广泛存在于植物体中，是活性较高的一种酶。它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系。在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化。 • POD酶与植物的抗病性密切相关。 POD存在于细胞壁，参与脯氨酸转化和木质素的形成，由它所催化形成的木质素和植保素可以限制毒素的侵入和扩散。

植物过氧化物酶提取及电泳

菜心的花和叶的过氧化物酶的提取、活性测定及同工酶的凝胶电泳分析广州大学生命科学学院洪韬文生物工程1121114200044摘要：本实验分两部分，1：过氧化物酶的提取，:用考马斯亮蓝试剂进行酶液蛋白质浓度的测定，根据标准曲线的方程式，计算出样品的蛋白质含量；2：:通过过氧化物酶活性的测定（愈创木酚氧化比色法），测出的OD值计算出酶活性数值，接着对同工酶的凝胶电泳分析，使它在胶柱上呈现同工酶谱，得出最终实验结果，通过数据记录和拍照记录最终结果。

关键字：过氧化物酶蛋白质OD值同工酶凝胶电泳前言：本实验是在完成基础生物化学实验以后，学生综合运用已经学过的生物化学实验理论和已经掌握的生物化学实验技术进行的一项综合性设计性实验，也是对学生实验动手能力的一次较全面的检验。

POD是一种由单一肽链与卟啉构成的血红素蛋白，脱辅基蛋白分子需与血红素结合才构成全酶。

参与植物POD血红素的合成部位可能象动物一样是在线粒体上。

POD 是一种氧化还原酶，它是由微生物或植物所产生的一类氧化还原酶，POD广泛存在于植物体内，是一种活性较高的一种酶，它与植物的呼吸，光合作用以及生长起着很大的作用。

材料和方法：材料：菜叶，菜花方法：1.植物POD的提取分别称取菜心的花和叶各1~2克，然后剪碎，分别放入研钵，向研钵中加入少许石英砂和3ml KH2PO4，快速研磨，后分别加入离心管中进行离心，离心条件为8500rpm，时间为15分钟。

离心完毕后取上清液，并定容至10ml（刻度试管），***此液即为POD提取液，取5ml冷冻保存，作为电泳的POD样品。

2.蛋白浓度的测定—考马斯亮蓝法标准曲线的制定制作标准曲线回归方程：Y(含量)=aX(OD595值) + b，得出相关系数R2。

3.样品蛋白浓度的测定根据标准曲线的方程式，计算出样品的蛋白质含量。

4.过氧化物酶活性的测定（愈创木酚氧化比色法）备好酶液，将分光光度计调到470nm，取光径1厘米的比色杯2只，向对照杯加反应混合液2.0 ml，KH2PO4 0.5ml，校零点。

过氧化物酶(POD)试剂盒说明书

过氧化物酶(POD)试剂盒说明书一、测定原理：利用过氧化物酶(POD)催化过氧化氢反应的原理，通过测定420nm 处吸光度的变化得出其酶活性。

二、实际的组成和配置试剂一：液体60ml×4瓶，4℃保存6个月试剂二：粉剂×3瓶，4℃保存6个月试剂二应用液的配置：临用每瓶粉剂加入10ml 的双蒸水溶解，4℃避光保存试剂三：液体5ml×1瓶，4℃保存6个月试剂三应用液的配制：临用前用双蒸水15倍稀释，使得1cm 光径，双蒸水调零时A240保持在0.4左右，现用现配。

若A 值太高，则加双蒸水稀释，若A 值太低，则加入适量试剂三。

（一般在25倍左右稀释）试剂四：液体50ml×2瓶，4℃保存6个月。

三、操作步骤：1、前处理：植物组织匀浆的制备：准确称取组织重量，按照重量(g):体积(ml)=1:9的比列加入9倍体积的匀浆介质(推荐使用生理盐水或磷酸盐缓冲液:0.1 mol/L pH 7-7.4)，冰水浴条件下制备成10%的组织匀浆液，3500r/min 离心10min ，取上清液进行测定。

混匀后，3500r/min 离心10min ，取上清于波长420nm 处，1cm 光径，双蒸水调零，测定各管吸光度值。

四、计算及举例1、定义：在37℃条件下，每毫克组织蛋白每分钟催化1ug 底物的酶量定义为一个酶活力单位。

2、植物组织中过氧化物酶(POD)活力计算公式：10)/()min 30()()()1(12-)/(⨯÷÷⨯⨯=ml mgprot ml ml cm OD OD mgprot U POD 匀浆蛋白浓度反应时间样本量反应液总体积比色光经值对照值测定活力 3.计算举例取新鲜桑叶，制备成10%匀浆，取100ul 匀浆上清，按照操作表进行操作，测得数据如下：对照OD 0.237；测定OD 0.665；同时测得10%桑叶匀浆蛋白浓度是1.80mgprot/ml 根据公式计算如下:mgprotU ml mgprot ml ml cm OD OD mgprot U POD / 26.42010001.80300.14.01120.237-0.6651000)/()min 30()()()1(12-)/(=⨯÷÷⨯⨯=⨯÷÷⨯⨯=匀浆蛋白浓度反应时间样本量反应液总体积比色光经值对照值测定活力。

测酶pod sod cat

过氧化物酶（POD ）活性测定反应液：取100mM pH7.0 磷酸缓冲液 50ml ，边加热边加入愈创木酚28μl ，搅拌溶解，待溶液冷却后加入30%的H 2O 219μl ，混合均匀保存于冰箱中备用。

操作步骤1. 酶液制备取0.5g 植物叶片剪碎，置入研钵中，加入预冷的100mM pH7.0 磷酸缓冲液5ml 进行冰浴研磨提取，匀浆液转入离心管，分别用两次2ml 磷酸缓冲液冲洗研钵，低温离心4000rpm 10min ，上清液转入50ml 容量瓶；离心管中残渣用100mM pH7.0 磷酸缓冲液5ml 冲洗，再次离心，合并上清液至容量瓶，定容到50ml ，即为供测定的酶粗提液。

2. 酶活性测定取光程为1cm 的玻璃比色杯2只，一只加入反应液3ml ，100mM 磷酸缓冲液 1ml 作为调零管。

另一只加入反应液3ml ，于分光光度计上用移液枪加入提取的酶液1ml ，搅匀，立即开始计时，在470nm 波长处进行比色，开始记录数据，然后每隔一分钟（10S ）记录一次吸光度值，共测5min 。

3.计算以每分钟A470的变化值0.01为一个相对酶活单位，计算植物组织内过氧化物酶酶活力的大小（单位：U/g 鲜重）。

mVA g U POD ⨯⨯∆=01.0470)/(活性V ——提取液定容体积 m ——材料鲜重邻苯三酚自氧化法测定SOD活性[试剂和器材]1、试剂（1）pH8.2、50mmol/L Tris-HCl称取Tris 0.61g，EDTA-2Na 0.037g，用双蒸水溶解至80mL左右，用HCl调节pH =8.20（用pH计校正），最后定容至100mL。

（2）10mmol/L HCl（3）50 mmol/L邻苯三酚称取邻苯三酚0.063g，用10mmol/L HCl溶液溶解，定容至10mL，避光保存。

（4）SOD样液2、器材（1）恒温水浴槽（2）紫外分光光度计（3）试管、刻度吸管、微量注射器[方法和步骤]1、邻苯三酚自氧化速率的测定取两支试管按下表加入25℃预热过的缓冲液,然后加入预热过的邻苯三酚（空白管用10mmol/L HCl代替邻苯三酚），迅速摇匀，立即倾入1cm比色杯中，在325nm波长处测定光吸收值，每隔30s读数一次，测定4min内每分钟光吸收值的变化。

过氧化物酶活性的测定POD

过氧化物酶活性的测定POD一、原理：过氧化物酶催化过氧化氢氧化酚类的反应，产物为醌类化合物，此化合物进一步缩合或与其他分子缩合，产生颜色较深的化合物。

本实验以邻甲氧基苯酚（即愈创木酚）为过氧化物酶的底物，在此酶存在下，H 2O 2可将邻甲氧基苯酚氧化成红棕色的4-邻甲氧基苯酚红棕色的物质可用分光光度计在470nm 处测定其消光值，即可求出该酶的活性。

，二、实验准备仪器：分光光度计、离心机、秒表、天平、研钵、磁力搅拌器试剂：愈创木酚、30%H 2O 2、0.2mol/L 磷酸缓冲液（7.8）、0.1mol/L 磷酸缓冲溶液（PH6.0，见附录）反应混合液[100mmol/L 磷酸缓冲溶液（PH6.0）50ml ，加入愈创木酚28μl ，于磁力搅拌器上加热搅拌，直至愈创木酚溶解、待溶液冷却后，加入（待溶液冷却后再加入，否则引起分解）30%H 2O 2 19μl ，混合均匀，保存于冰箱中。

]三、步骤：1、粗酶液的提取：称取植物材料0.4-0.5g ，加磷酸缓冲液（7.8）5ml （分几次加入），于研钵中研磨成匀浆，以8000r/min 离心10min ，收集上清液于冷处（冰箱4度保存）。

2、酶活性的测定：一个试管入反应混合液3ml ，磷酸缓冲液（7.8） 1ml ，作为校零对照，另外加入反应混合液3ml ，上述酶液1ml （龙麦26酶液稀释10倍，克旱16酶液稀释15倍），立即开启秒表计时，于470nm 测OD 值，每隔15秒读1次值，读45秒，以为每15秒钟OD 变化值测酶活性的大小，以△OD/min.mg 蛋白质表示。

四、计算公式W t t ⋅⋅⋅∆=01.0V VA 活性POD 470 ΔA 470：反应时间内吸光值的变化W ：样品重量V ：提取液总体积，即5mlVt ：测定时所用体积,即1mlt ：反应时间注意：一般来说，都需要稀释，如果酶液稀释了，应在计算时乘上相应的倍数。

——张志良，瞿伟菁，P 123-124,2004高教版《植物生理学实验指导》——李玲主编，P 97-98，科学出版社，2009,《植物生理学模块实验指导》磷酸缓冲液配置A 0.2mol/l NaH2PO4 27.8g NaH2PO4•H2O 1000mlB 0.2mol/l Na2HPO4 71.7g Na2HPO4•12H2O 1000mlA(ml) B(ml)PH7.8 8.5 91.5200mlPH6.0 87.7 12.3。

植物组织中过氧化物酶活性的测定

实验四植物组织中过氧化物酶活性的测定一、实验目的：1、学习测定植物组织中过氧化物酶活性的方法。

二、实验原理：过氧化物酶（POD）广泛存在于植物体中，该酶催化H2O2氧化，以清除H2O2对细胞生物功能分子的破坏作用。

在有H2O2存在的条件下，过氧化物酶使愈创木酚氧化，生成茶褐色物质，可用分光光度计测定470nm处茶褐色物质的生成量以检测POD活性。

三、实验仪器及材料：1、仪器：研钵、剪刀、天平、量筒、试管、分光光度计、移液管、比色皿、离心机、秒表2、材料与试剂：苹果、经逆境处理的绿豆幼苗、反应混合液、20mmol/LKH2PO4四、实验步骤：1、POD的提取分别称取绿豆幼苗、苹果果肉各2g,分别加入预冷的10ml 20mmol/LKH2PO4，于研钵中研磨成匀浆，以4000r/min离心10min，收集上清液，待用。

2、POD活性的测定取分光光度计比色杯2只，在其中一只加入3ml反应混合液和1ml KH2PO4作为对照；另一只加入3ml反应混合液，1ml苹果上清液，立即开启秒表计时，测定470nm处OD值，每隔30s读数一次。

取1ml绿豆幼苗上清液重复上述操作。

五、实验结果：1、在酶液中加入3ml反应混合液后，苹果酶液立即呈茶褐色，而绿豆幼苗酶液的茶褐色深至黑褐色。

2、苹果酶液以及绿豆幼苗酶液在470nm处OD值如下：苹果酶液OD值与时间的关系曲线图以每分钟光密度（OD470nm）变化0.01为一个过氧化物酶活力单位，即：苹果POD活性=[ΔOD470/(0.01×wt)] ×D=[（0.28－0.249）/（0.01×3×2）] ×D=0.52D（此值忽略稀释倍数）其中w为样品鲜重，t为反应时间，D为稀释倍数绿豆幼苗酶液OD值与时间的关系曲线图绿豆幼苗POD活性=[ΔOD470/(0.01×wt)] ×D=[（0.940－1.56）/（0.01×3·2）] ×D =6.3 D（此值忽略与苹果酶液相同的稀释倍数）由于绿豆幼苗酶液浓度较大，测OD值前稀释了两倍，所以绿豆幼苗酶液POD 活性为12.67D六、结果分析：1、由苹果酶液OD值与时间的关系曲线图中，OD值与时间的关系基本呈线性关系，故任取变化较均匀的一段数据均可计算出POD活性。

[指南]过氧化物酶pod的测定

过氧化物酶活性的测定愈创木酚法目的意义过氧化物酶是植物体内重要的呼吸酶类，其活性高低与酚类物质代谢、物抗性密切相关。

通过实验掌握提取POD和测定其活性的方法及其原理。

过氧化物酶催化H202氧化酚类，生成醌类化合物，此化合物进一步缩合或与其他分子缩合，产生颜色较深的产物。

本实验以愈创木酚为底物，过氧化物酶催化H202将愈创木酚氧化生成茶褐色产物，此产物在470nm波长处有最大吸收峰，故可通过测定470nm波长下的吸光度变化得知过氧化物酶的活性。

三、材料、设备和试剂1．材料马铃薯或小麦芽、未成熟的苹果、新鲜茶叶等。

2．设备 721型分光光度计、离心机、秒表(或手表)、天平、研钵、磁力搅拌器。

3．试剂愈创木酚、30％过氧化氢、20mmol/L KH2PO4、100mmol/L磷酸缓冲液(pH6．0)。

反应混合液配制取100mmol/L磷酸缓冲液(pH6.0)50ml于烧杯中，加入愈创木酚28µl，于磁力搅拌器上加热搅拌，直至愈创木酚完全溶解，待溶液冷却后，加入30％过氧化氢19µl 以，混合均匀，保存于冰箱中。

三、操作方法1．酶液制备称取植物材料1g，加入20mmol/L KH2PO4溶液5m1，于研钵中研磨成匀浆，在33000r/min 下离心10min，上清液转入25m1容量瓶中，残渣再用5ml KH2PO4溶液提取一次，合并两次上清液，定容，混匀，贮于冷凉处备用。

2．比色测定取光径1cm比色杯2只，于1只中加入已混匀的反应混合液3m1，KH2PO4溶液1ml，作为参比液；另一只中加入反应混合液3ml，酶液1m1(如酶活性过高可稀释之)，立即记时并置于分光光度计中。

在470nm下测定光密度，每隔1min读数一次，连续测30min，每次测定前重新用对照校准。

若气温较低，应适当提高室温，以37℃为最适宜。

四、实验结果1．以时间为横坐标，光密度为纵坐标作图。

反应前期过氧化氢酶活性随反应时间直线上升，升到最大值后，其相关曲线出现转折点，转折出现的早晚取决于温度。

【精品】过氧化物酶活力测定

【精品】过氧化物酶活力测定过氧化物酶（peroxidase，POD）是一类广泛存在于生物体中的酶，其催化作用能够将过氧化氢或有机过氧化物还原为水或相应的醇。

POD在植物中参与许多生理、代谢和防御过程，因此对其活力的测定具有重要的生物学意义。

本文将介绍一种常用的POD活力测定方法。

实验所需材料：1. 磷酸盐缓冲液（0.05M，pH6.0）2. 过氧化氢溶液（H2O2，30%）3. 酪氨酸溶液（0.5%）4. 硫酸铵铵硫酸铜试液（0.5%）5. 5%多聚磷酸钠溶液实验步骤：1. 提取植物样品中的POD将植物样品（如莲藕、青椒等）洗净，切碎，并在磷酸盐缓冲液中研磨成细胞浆状。

离心后，收集上清液（提取液）。

2. 准备POD反应液将磷酸盐缓冲液（2 mL）和酪氨酸溶液（0.1 mL）混合，加入适量的POD提取液（可根据样品浓度稍作调整），混匀后放入样品架中。

3. 加入H2O2将H2O2溶液（0.1 mL）加入样品架中，轻轻搅拌后立即开始计时。

4. 加入硫酸铵铜试液在POD催化H2O2分解的同时，铜离子（Cu2+）可以与酚类物质反应生成绿色物质，将硫酸铵铜试液（0.1 mL）滴入样品架中，颜色会在几秒钟内显现出来。

5. 终止反应反应约持续30s，当颜色较深时加入5%多聚磷酸钠溶液（0.1 mL）终止反应。

6. 读取吸光度将反应液转移到比色皿中，用紫外分光光度计在450nm处读取吸光度。

实验注意事项：1. 操作中应避免直接接触H2O2，若接触可用大量水冲洗。

2. 硫酸铵铜试液需保持较低的温度（如2℃），以避免铜离子自身氧化而产生干扰颜色。

3. 5%多聚磷酸钠溶液用于终止反应，其作用是降低反应液中酚类物质的浓度，从而避免H2O2反应剂的过度消耗。

实验结果分析：本实验测得的吸光度值可以反映样品中POD的活力。

POD活力计算公式如下：POD活力（U/mg）=A/(T×V×C)×1000其中，A为读数值，T为反应时间（单位：min），V为样品体积（单位：mL），C为植物样品量（单位：mg）。

植物过氧化物酶实验报告

一、实验目的1. 了解过氧化物酶在植物生理过程中的作用。

2. 掌握愈创木酚法测定过氧化物酶活性的原理和方法。

3. 通过实验，提高学生运用实验方法分析植物生理问题的能力。

二、实验原理过氧化物酶（POD）是一种广泛存在于植物体内的酶，催化H2O2分解产生O2和H2O。

愈创木酚法是一种测定POD活性的常用方法，其原理是POD催化H2O2将愈创木酚氧化成茶褐色产物，该产物在470 nm处有最大光吸收值。

通过测定该波长下的吸光度变化，可以计算出POD的活性。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：马铃薯块茎2. 仪器：分光光度计、离心机、研钵、容量瓶、量筒、试管、吸管3. 试剂：100 mmol/L的磷酸缓冲液（pH 6.0）、愈创木酚溶液、30% H2O2、20 mmol/L KH2PO4四、实验步骤1. 制备酶提取液：取马铃薯块茎约0.5 g，加入5 mL磷酸缓冲液（pH 6.0），研磨均匀，过滤，收集滤液，4℃下保存备用。

2. 测定酶活性：a. 设置酶活性测定体系：取2 mL酶提取液，加入1 mL 30% H2O2和1 mL愈创木酚溶液，混匀，立即放入分光光度计中，于470 nm处测定吸光度。

b. 设置对照体系：取2 mL酶提取液，加入1 mL磷酸缓冲液（pH 6.0）和1 mL愈创木酚溶液，混匀，立即放入分光光度计中，于470 nm处测定吸光度。

3. 计算酶活性：a. 酶活性 = [(A1 - A2) / (t2 - t1)] × 0.01 × (1.977 - 0.874) / 10 × 0.01 × 250.027575b. 其中，A1为酶活性测定体系的吸光度，A2为对照体系的吸光度，t1为酶活性测定体系测定时间，t2为对照体系测定时间。

五、实验结果与分析1. 实验结果：通过实验，得到马铃薯块茎中POD的活性为0.027575 U/g。

2. 结果分析：a. 从实验结果可以看出，马铃薯块茎中含有一定量的POD，且活性较高。

过氧化物酶同工酶的提取、分离

-
.
15
■ 在浓缩胶中的三个主要作用角色：
甘氨酸: pH=8.9 负电荷 pI=6.7 不带电荷
Cl-1:
蛋白质(酶):
小分子
.
大分子
16
■ 浓缩效应：
A
8.0
样本
浓
缩
6.7
胶
分
离胶
8.9
B
离子缺乏空间
.
+
C
17
+
5、过氧化物酶活性测定
❖ 以邻甲氧基苯酚（即愈创木酚）为过氧化物酶的底物，
在此酶存在下，H2O2可将邻甲氧基苯酚氧化成红棕色的4-邻甲氧基苯酚，其反应为：
(2)聚丙烯酰胺凝胶结构上的特点：
① 聚丙烯酰胺的基本结构为丙烯酰胺单体构成的长链，链与链之间通过甲叉桥联结在一起；
② 链的纵横交错形成三维网状结构，使凝胶具有分子筛的性质；
③ 网状结构还能限制蛋白质等样品的扩散运动，使凝胶具有抗对流的作用；
④ 长链富含酰胺基团，使其成为稳定的亲水凝胶； ⑤ 该结构不带电荷，在电场中电渗现象极为微小。
分离胶缓冲液
分离胶丙胶贮液
Ap
无离子水
体积比
1
2
4
1
取用量
3
（ml）
6
12
3
胶灌至距梳子齿下端1cm →灌毕→封上一层水加速聚合→当胶与水出现清晰界限时表明聚合好。
.
27
.
28
2.3 浓缩胶的制备：
按下表制备浓缩胶
试剂名称浓缩胶缓浓缩胶丙胶 Ap
冲液
贮液
体积比
1
2
2
取用量
1