抗原热修复退色法在HE切片改做免疫组化染色中的探索_王兴波

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几种抗原修复方法研究

几种抗原修复方法研究

几种抗原修复方法研究
王晋芬;田相义;丛娟;殷卫东;张景文;龚方纯
【期刊名称】《诊断病理学杂志》
【年(卷),期】1997(4)1
【摘要】由于常规福尔马林固定和石蜡包理过程造成的抗原封闭与结构改变,限制了一些抗体在免疫组织化学中的应用。

为了恢复组织的抗原性,提高免疫组织化学的检测阳性率,我们应用高压锅,微波炉和胰蛋白酶分别对石蜡切片进行处理。

结果显示,一些抗体过去只能用于冰冻切片,经前处理后可用于石蜡切片,一些抗体的敏感性增强,经高压锅处理的免疫染色重复性较微波炉处理得好,个别抗体适用于酶消化。

总之,在免疫组织化学染色过程中应根据抗原抗体的特性选用适当的前处理方法。

【总页数】2页(P34-35)
【关键词】抗原修复;抗体;免疫组化
【作者】王晋芬;田相义;丛娟;殷卫东;张景文;龚方纯
【作者单位】山西省肿瘤医院;山西省卫生厅
【正文语种】中文
【中图分类】R392-33
【相关文献】
1.免疫组织化学染色中抗原修复方法的比较研究 [J], 杜宇;赵莹;李寒松
2.鼻咽癌组织潜伏膜蛋白1不同抗原修复方法的比较研究 [J], 权莉;张锦波;李华仁
3.几种修复P53蛋白抗原免疫组化方法的比较 [J], 高亚兵
4.不同热修复抗原方法与胰腺导管腺癌分子标记物CD105免疫组化方法的研究[J], 廖德贵;周春辉;缪秋玲
5.真空负压、微波辐射和电炉三种不同处理方法对抗原修复的比较研究 [J], 蔡俊杰;邱红明
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响简介肾活检是诊断某些肾脏疾病的重要手段。

在进行肾活检时,通常需要进行免疫荧光染色来确定肾脏病理组织的类型和程度。

在进行免疫荧光染色时,免疫抗原修复是一个关键的步骤,它可以增强抗原在组织中的表达,提高染色效果。

本文将探讨不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响。

抗原修复方法在进行免疫荧光染色时,抗原修复的主要目的是恢复或增强组织中的抗原表达,使其更易于被抗体检测。

目前常用的抗原修复方法包括化学方法、热处理法和酶消解法。

下面分别介绍它们的原理和操作步骤。

化学方法化学方法是一种使用化学物质对组织进行抗原修复的方法。

化学物质一般都是酸、碱或其他特定化合物,它们可以通过改变组织中蛋白质的构象,使其易于与抗体结合。

常用的化学物质包括醋酸、乙酸、甲酸、谷氨酰胺等。

操作步骤1.将药液加入试管中。

2.离心石蜡切片,并将其放入药液中。

3.在适当的温度和时间下进行反应。

4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

5.进行抗体染色。

热处理法热处理法是将组织样本放入高温环境中,以改变蛋白质的构象。

它可以使组织中抗原更易于被抗体识别和结合。

该法使用方便,但需要控制好时间和温度,过渡的热处理会导致组织破坏或失去抗原,而时间过短则容易影响染色效果。

操作步骤1.将石蜡切片放到蛋白酶降解试剂中,进行蛋白酶降解。

2.将石蜡切片放入热处理缓冲液中。

3.用高压蒸气炉进行热处理,温度一般在 90-100°C,时间在 10-20 分钟。

4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

5.进行抗体染色。

酶消解法酶消解法是将组织中的蛋白质通过裂解和水解等方式分解为更容易被抗体检测的分子。

酶消解法适用于形态不易被破坏的组织样本,如肝、肾等。

操作步骤1.将石蜡切片放入酶消解缓冲液中进行反应,时间一般在 20-30 分钟。

2.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

3.进行抗体染色。

影响因素抗原修复方法的选择需要考虑多个因素,如待测抗原类型、形态、表达水平、抗体类型等。

免疫组化中抗原修复的方法

免疫组化中抗原修复的方法

免疫组化中抗原修复的方法免疫组化中抗原修复什么是抗原修复抗原修复是一种在免疫组化实验中常用的技术,用于恢复被固定和处理的细胞或组织中的抗原活性。

在某些情况下,固定和处理的过程会导致抗原的失活或变性,因此抗原修复是十分重要的步骤,以确保准确的免疫组化结果。

抗原修复的常用方法1. 热处理法热处理法是一种常用的抗原修复方法,通过高温引起细胞或组织中的抗原变性。

热处理一般在微波炉或水浴中进行,温度和时间要根据具体的样品和实验要求进行调整。

2. 酶切法酶切法是通过使用特定的酶来消化固定和处理过程中引起抗原失活的组织部分。

常用的酶包括蛋白酶K、胰蛋白酶等,酶的选择应该根据具体的抗原性质和实验目的进行。

3. pH诱导法pH诱导法通过调整溶液的pH值来恢复抗原的活性。

一般来说,较高的pH值有利于抗原的恢复,但具体的pH值还需根据具体实验进行调整。

4. 盐溶液法盐溶液法是通过使用高盐浓度的溶液来解离和去除组织中的蛋白质交联,从而恢复抗原的活性。

盐溶液的具体浓度和种类应该根据样品的特性和实验目的进行选择。

5. 高压法高压法是一种通过应用高压力来打破细胞和组织中的蛋白质交联,从而恢复抗原活性的方法。

高压法一般需要在特定的设备中进行,压力和时间需要根据样品和实验要求进行调整。

如何选择合适的抗原修复方法在选择合适的抗原修复方法时,需要考虑以下几个因素:•样品类型:不同类型的样品可能对抗原修复方法的要求不同,例如活体细胞和组织与固定的组织具有不同的特性。

•抗原性质:不同的抗原具有不同的特性,对抗原修复方法的要求也不同,如某些蛋白质抗原可能对热处理敏感,而其他抗原可能对酶切法更为适用。

•实验目的:实验目的也是选择抗原修复方法时需要考虑的因素之一,如是否需要保留细胞或组织的形态结构等。

在实际操作中,为了确保准确的实验结果,一般会进行不同的抗原修复方法的对比实验,以选择最适合的方法。

总结抗原修复是免疫组化实验中不可或缺的一步,通过恢复抗原的活性,可以得到准确可靠的实验结果。

免疫组化抗原修复方法

免疫组化抗原修复方法

免疫组化抗原修复方法免疫组化(Immunohistochemistry, IHC)是一种用于检测组织或细胞中抗原的方法,通过使用特异性抗体和染色剂来定位和定量目标抗原。

然而,在实际的免疫组化实验中,可能会出现抗原修复不完整的情况,导致结果不准确甚至失真。

因此,免疫组化抗原修复方法的研究和应用显得尤为重要。

目前,常见的免疫组化抗原修复方法包括热诱导抗原修复(heat-induced epitope retrieval, HIER)和酶诱导抗原修复(enzyme-induced epitope retrieval, EIER)。

热诱导抗原修复是通过高温和缓冲液来还原和暴露被固定、包埋或变性的抗原,使其恢复到可以与抗体结合的状态。

而酶诱导抗原修复则是利用蛋白酶来降解和去除与抗原结合的蛋白质,从而使抗原重新暴露出来。

这两种方法各有优势,可以根据实验需求选择合适的修复方法。

除了常规的抗原修复方法外,近年来还出现了一些新的免疫组化抗原修复方法,如微波诱导抗原修复(microwave-induced epitope retrieval, MIER)、超声波诱导抗原修复(ultrasonic-induced epitope retrieval, UIER)等。

这些新方法在修复效果和操作便捷性上都有所突破,为免疫组化实验提供了更多的选择。

在选择免疫组化抗原修复方法时,需要考虑样本的类型、固定方式、抗原的性质等因素。

例如,对于经过长时间固定的组织样本,可能需要选择更强效的修复方法来恢复抗原的活性;而对于一些蛋白质结合紧密的抗原,则需要选择更温和的修复方法,以免造成抗原的损伤或丢失。

此外,在进行免疫组化抗原修复时,还需要注意修复液的配制和处理,以及修复条件的控制。

合理的修复液配制可以提高修复效果,而适当的修复条件控制可以避免对组织结构和抗体活性的影响。

综上所述,免疫组化抗原修复方法在免疫组化实验中起着至关重要的作用。

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用抗原修复技术及其在免疫组化中的应用福尔马林固定时,组织中的许多氨基酸残基在分子内或分子间形成了醛键,使得不少抗原决定簇被封闭。

同时,由于甲醛的聚合作用,使蛋白质分子间相互交联形成大分子网络,也导致了抗原决定簇被掩盖,这就使得相当部分的抗原不能与抗体很好是进行反应。

因此,抗原修复也是影响免疫组化染色结果的基本因素。

抗原修复(Antigen retrieval ,AR)技术,建立在Fraenkel-conrat等人[1]一系列生物化学研究,经1991年shi等人[2]发展。

抗原修复是指石蜡.冰冻.火棉胶.塑料切片免疫组织化学(IHC)前用胰蛋白酶.尿素.表面活性剂.微波缓冲液和金属盐等,使被掩盖的抗原决定簇或变性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢复过程。

抗原修复能最大程度地恢复在制片等过程中损失的抗原性,使原来认为不能在石蜡切片上进行IHC的许多抗体获得了良好的染色结果,成为一种有效的补救措施。

本文的目的是概述AR-HIC的发展.应用和标准化。

一. AR技术加热AR技术微波加热方法. 在传统标准方法,经脱蜡.脱水和用3%H2O2阻断内源性过氧(化)物酶,石蜡切片经蒸馏水冲洗,放置在塑料Coplin缸中。

加入AR液,如蒸馏水.缓冲液.金属盐液.尿素等,盖上并置家用微波炉加热5或10分钟(注意防止切片干躁)。

有时在加热5分钟后,间隔1分钟,再加热5分钟(在第一个5分钟后检测液体高度)。

加热后,从微波炉取出塑料Coplin缸,冷却15分钟。

片子经蒸馏水冲洗二次后在PBS液中浸5分钟,才进行IHC染色。

为了保持一致的加热条件,必须设定靠近微波炉中心相同的位置及同一编号的Coplin 缸,按照不同的抗体设定不同的加热时间,尽可能的建立标准的加热条件。

微波(MW)加热过程如下:在专用盒内放入200ml柠檬酸缓冲液(PH6.0±0.1),并盖上带有小孔的盖子,微波加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架中,放入已沸腾缓冲液中,有作者提供做免疫组化时采用微波炉中等功率800W[3],微波炉选用解冻档的国产家用微波炉(根据目前的研究,建议用医用微波炉),中档继续处理10-20分钟;取出微波塑料缸冷却至室温,从缓冲液中取出玻片,片子经蒸馏水冲洗二次,之后用PBS (PH7.2-7.4)冲洗两次,每次3分钟。

不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用

不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用

不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用郭丽;祁荣;吴鹏【摘要】目的:选择最适宜的抗原修复法.方法:在免疫组织化学染色中,选用鼠抗人5种单克隆抗体,用不同的抗原修复法,对不同染毒剂量、正常对照暴露大脑皮质及海马,石蜡组织切片,依阳性颗粒表达的情况,确定适宜的抗原修复.结果:抗原修复的方法直接影响到组织中抗原的暴露,高压加热法能把被掩盖或交联变性的抗原暴露或修复,使免疫组化的结果更准确可靠,特别是核阳性组织,适用于高压加热法;电炉煮沸法,阳性结果不佳;酶消化抗原修复法,与高压锅加热抗原修复法的阳性结果无区别.结论:核阳性表达的抗体应选用高压锅抗原修复法,推测核阳性表达的抗体也适用于酶消化抗原修复法.【期刊名称】《沈阳医学院学报》【年(卷),期】2012(014)003【总页数】2页(P152-153)【关键词】免疫组化染色;抗原修复;核阳性表达【作者】郭丽;祁荣;吴鹏【作者单位】沈阳医学院科学实验中心,辽宁沈阳110034;沈阳医学院科学实验中心,辽宁沈阳110034;沈阳医学院科学实验中心,辽宁沈阳110034【正文语种】中文【中图分类】R392-33目前,免疫组化染色技术已成为病理学诊断的重要手段。

几年来抗原修复广泛应用于免疫组化检测,抗原修复使抗原决定簇充分暴露是免疫组化染色成功的关键。

在热修复法中,压力锅加热法又较微波炉加热法更有效,酶消化法修复的抗原免疫组化的染色效果不如热修复法[1] 。

有少数抗原酶消化后染色的结果优于热修复法[2]。

电炉煮沸抗原修复法也被许多人所采用。

为了选择适宜的抗原修复法,我们先后采用压力锅抗原修复、电炉煮沸抗原修复、复合酶抗原修复法,对五种抗体的免疫组化染色结果进行筛选,选择最适宜的抗原修复法,以获得最佳的免疫组化的阳性结果。

1 材料与方法1.1 实验动物与染毒 Wistar大鼠120只(沈阳药科大学实验动物中心提供)体质量230~250 g,按雌∶雄为2∶1于每晚6时合笼,次晨7~9时阴道涂片检查精子,查到精子定为妊娠0 d。

免疫组化染色中不同抗原修复方法的应用探讨

免疫组化染色中不同抗原修复方法的应用探讨

免疫组化染色中不同抗原修复方法的应用探讨魏素姣【期刊名称】《国际医药卫生导报》【年(卷),期】2018(024)013【摘要】Objective To discuss the application effect of different antigen retrieval methods with autoclave and microwave oven in immunohistochemical staining.Methods 12 cases of esophageal cancer tissue specimens in our hospital from August 2016 to June 2017 were collected for the study,four different antigens (CD4,CD8,Ki67,IL17) located in the cell membrane,nucleus,cytoplasm were selected to do staining,two antigen retrieval methods with autoclave and microwave oven were performed.The immunohistochemical staining results of the two antigen retrieval methods were analyzed.Results The antibody positive rate of CD4 of the antigen retrieval method with autoclave was as high as 100%,which was higher than that of the antigen retrieval method with microwave oven (45.5%) (P<0.05);there were no statistically significant differences in the antibody positive rates of CD8,Ki67,and IL17 (P>0.05).Conclusion In the case of non-shedding tissue,the antigen retrieval method with autoclave has the advantages such as simple operation,light background coloring,clear positioning,stable result;in the case of no significant difference in the positive rate of retrieval cases,the microwave antigen retrieval method is proposed.%目的主要探讨高压锅与微波炉抗原修复方式在免疫组化染色中的应用效果.方法以本院2016年8月至2017年6月收集的12例食管癌组织标本作研究对象,选用定位于细胞膜、细胞核、细胞浆的CD4、CD8、Ki67、IL17四种不同抗原做染色标记,并应用高压锅与微波炉两种抗原修复方式,对两种抗原修复法应用免疫组化染色结果进行分析.结果在高压锅抗原修复方式下,CD4抗体阻性率高达100%,而在微波炉抗原修复方式下,CD4抗体阳性率仅达45.5%,两组相较而言,高压锅抗原修复法CD4抗体阳性率较高(P<0.05);CD8、Ki67、IL17抗体阳性率对比差异无统计学意义(P>0.05).结论在组织不脱片情况下,选用高压锅抗原修复方式,操作简单,背景着色浅,定位清晰,结果稳定;在修复方式阳性率比较无明显差异情况下,建议选用微波抗原修复方式.【总页数】4页(P2000-2003)【作者】魏素姣【作者单位】471003 郑州大学附属洛阳中心医院病理科【正文语种】中文【相关文献】1.不同抗原修复方法在免疫组化染色的应用比较 [J], 余杏娟;王博;许静2.不同抗原修复方法对层粘连蛋白免疫组化染色结果的影响 [J], 刘鲜艳;郝斌威;马爱玲;何进喜;陈娟3.不同的抗原修复方法在Ⅳ型胶原免疫组化染色中的应用 [J], 陈余朋;张声;王行富;李国平;王鹏程;王密4.不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用 [J], 郭丽;祁荣;吴鹏5.不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用 [J], 鞠学萍因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

免疫组化染色前抗原修复方法的合理选择

免疫组化染色前抗原修复方法的合理选择

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王晓秋
【期刊名称】《临床与实验病理学杂志》
【年(卷),期】2006(22)3
【摘要】由于组织在福尔马林或其他固定液中固定,经常会引起蛋白质空间结构的改变而导致抗原决定簇被封闭,阻碍了抗原和抗体的结合,随着免疫组化技术在临床病理诊断中不断深入和广泛应用,抗原修复技术在免疫组化操作过程中成为了一个极其重要的环节。

我们针对不同的抗原,采取不同的修复方法,取得较理想的染色效果。

常用的抗原修复技术方式有微波加热修方法、
【总页数】2页(P367-368)
【作者】王晓秋
【作者单位】安徽省立医院病理科,合肥,230001
【正文语种】中文
【中图分类】R446.8
【相关文献】
1.免疫组化染色中不同抗原修复方法的应用探讨 [J], 魏素姣
2.3种抗原修复方法对免疫组化染色效果的影响 [J], 郑秋桦;李钰湘;柯野;张海明
3.不同抗原修复方法对层粘连蛋白免疫组化染色结果的影响 [J], 刘鲜艳;郝斌威;马爱玲;何进喜;陈娟
4.不同的抗原修复方法在免疫组化染色中的应用 [J], 鞠学萍
5.SEMA3A、SEMA3B蛋白免疫组化染色中抗原修复方法的优化 [J], 闫红娟;马晓平;李曼;张楠;郁晓丹;徐江
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3种抗原修复方法对免疫组化染色效果的影响

3种抗原修复方法对免疫组化染色效果的影响

3种抗原修复方法对免疫组化染色效果的影响郑秋桦;李钰湘;柯野;张海明【摘要】为了确定5种抗体在免疫组织化学染色效果中的最佳修复方法,本文分别采用水煮法、微波法和高压法对抗原进行修复后,按常规免疫组化方法进行染色、镜检.结果表明5个抗体在高压修复下都是强表达,P53、P63在微波修复20 min 下也是强表达.因此,从修复效果、时间及稳定性等角度综合考虑,高压0.1Mpa(121℃)修复2 min是对P53、P63、Ki67、CK5/6、CK7的较佳修复方式.【期刊名称】《韶关学院学报》【年(卷),期】2017(038)012【总页数】4页(P51-54)【关键词】免疫组织化学;抗原修复;染色【作者】郑秋桦;李钰湘;柯野;张海明【作者单位】韶关学院英东生命科学学院,广东韶关512005;韶关学院英东生命科学学院,广东韶关512005;韶关学院英东生命科学学院,广东韶关512005;广州安必平医药科技股份有限公司,广东广州510663【正文语种】中文【中图分类】R446.61免疫组织化学(Immunohistochemistry,IHC)是利用抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及定量的研究.在免疫组织化学的试验过程中,常采用固定石蜡包埋组织,然而组织在使用甲醛固定过程中,形成的醛键会封闭抗原的决定簇,影响抗体和抗原的结合,从而影响染色观察结果;因此,对抗原的修复在免疫组织化学中就尤为重要[1].不同的抗原修复方法对免疫组化染色结果产生不同的影响[2-3].如加热抗原修复技术既能保留福尔马林固定石蜡包埋技术良好的组织学形态,又明显提高抗原的检出率,提供良好的IHC染色结果[4-5];影响加热抗原修复的因素主要包括修复的温度、加热的时间、热源、抗原修复液的pH值等方面[1].本文采用控制变量法,探究在改良Tris-EDTA(PH9.0)修复试剂中,采用水煮、微波和高压3种不同的热修复方法对P53、P63、Ki67、CK5/6、CK7这5个抗体的免疫组化染色效果的影响.1 材料与方法1.1 试验组织与试剂1.1.1 试验组织由广州安必平(LBP)医药科技股份有限公司提供的阳性组织材料.1.1.2 试验试剂抗体试剂均由LBP公司提供的即用型产品(见表1);环保透明脱蜡剂;无水乙醇;过氧化物酶封闭液(3%过氧化氢);二抗试剂:LBP-VBrightI二抗HRP鼠兔通用型(一步法);DAB显色液(加强型):1 mL DAB色原/20 mL DAB缓冲液;改良Tris-EDTA(PH9.0)浓缩液(50×);Mayer’s苏木素染液;PBS 缓冲粉:2 000 mL/包;Tween-20.1.1.3 试剂的配制DAB显色液(加强型):一滴DAB原液加入至1 mL DAB缓冲液中,该溶液易氧化,现配现用.Tris-EDTA(pH9.0)修复液:改良Tris-EDTA(pH9.0)浓缩液(50×)40 mL加入1 960 mL的蒸馏水搅拌均匀.表1 试验所用抗体信息抗体名称CK5/6 CK7 Ki67 P53 P63克隆号D5、16B4OV-TL12/30 MIB-1 DO7 4A4阳性组织肺鳞癌肺腺癌扁桃体/乳腺癌结肠癌前列腺PBS缓冲液:一包PBS缓冲粉加入蒸馏水2 000 mL搅拌至粉末全部溶解加入4 mL Tween20继续搅拌至完全融合即可.1.2 试验设备Thermoscientific切片机、武汉俊杰电子有限公司生物组织摊烤片机、微波炉、Leica DM500显微镜、Leica ICC50 HD Camera、苏泊尔YS20ED 20 cm高压锅.1.3 方法1.3.1 组织蜡块的切片与前期处理将五种组织蜡块-20℃冷冻,2~3 min后取出,打开空气加湿器减少静电作用,在切片机上连续切片(2μm),放入20%的酒精中展片,再使用防脱载玻片进行捞片,保证每张片捞的方向及位置一样且尽可能在载玻片的中央处,以便阅片及效果对比.每个组织块捞9片,在44℃热水中进行摊片使组织与载玻片平整粘附,无褶皱,60℃的烤片机上进行烤片至组织与载玻片较牢固结合,不会由于重力作用而出现移位,将载玻片转至耐高温塑料切片架后,放入烘片机进行55℃烘片2 h.1.3.2 片子的脱蜡与水化将已完成初步处理的片子放进通风橱中的环保脱蜡剂(代替二甲苯)中进行脱蜡处理3次,每次10 min,确保脱蜡干净后进行梯度水化,梯度水化为无水乙醇→95%乙醇→90%乙醇,每个梯度水化5 min.1.3.3抗原修复1.3.3.1 水煮修复法取2 000 mL修复液于不锈钢锅中,置于电磁炉上加热至沸腾后,放入组织片进行修复,修复时间分别为10 min和20 min.1.3.3.2 微波修复法将组织切片放入2 000 mL修复液中置于微波炉中,微波炉高火(功率750 W)加热至沸腾后,调至中火(功率375 W)开始修复,修复时间分别为10 min和20 min,修复后用自来水迅速降至室温.1.3.3.3 高压修复法将组织切片完全浸置于修复液中,放入高压锅内0.1 MPa(121℃)分别进行修复2 min、2.5 min、3 min和5 min,修复完后,迅速降压降温至常温常压后进行清洗.1.3.4 阻断(内源性过氧化物酶的灭活)立即将修复完后的组织切片进行多次水洗后,置于过氧化物酶封闭液中阻断10min,再进行水洗,然后置于PBS溶液中.1.3.5 抗体孵育从PBS溶液中取出组织切片,迅速甩干大量水珠,放于免疫组化湿盒中,快速滴加即用型一抗,23℃孵育30 min后,用PBS溶液冲洗后,置于PBS溶液清洗缸中取出组织切片去掉大部分水份滴加二抗,室温孵育20 min,再用PBS冲洗后浸泡.1.3.6 DAB显色与苏木素复染从PBS溶液中取出组织切片,甩干大量水分后,迅速滴加DAB显色液,显色3 min后,吸干大部分显色液后,置于DAB清洗液中多次水洗,然后用Mayer’s 苏木素溶液进行复染30 s.1.3.7 PBS返蓝将组织切片放进PBS溶液中进行返蓝1 min,返蓝后的苏木素是标记出细胞核的位置,方便观察时做目标区域的参照物,返蓝后多次水洗.1.3.8 脱水、透明、封片和镜检将片子放进95%乙醇脱水1min后,分别用无水乙醇脱水2次,每次1 min;将切片架放于环保透明脱蜡剂中脱蜡2次,每次3 min,用中性树胶滴入封片后,标记归类;利用Leica ICC50 HD Camera进行拍照保存,并对染色结果进行评分.1.4 评分标准判断评分标准参考文献[6]的方法进行评分.评分方法1:在判断中只考虑阳性细胞所占的百分比,按不同的百分比分级;将阳性细胞百分比分成5级,无阳性细胞为0分,阳性细胞≦25%为1分,26%~50%为2分,51%~75%为3分,>75%为4分.评分方法2:在判断中只考虑阳性细胞的染色程度,按不同的染色强度分级;着色强度无色0分,淡黄色1分,棕黄色2分,黄褐色3分[6].试验中,Ki67 采用方法 1 的评分方法;CK5/6、CK7、P53和P63采用方法2的评分方法.图1 CK5/6的3种修复方法比较结果图图2 CK7的3种修复方法比较结果图2 结果与分析对5种抗体的3种修复方式,结果分别见图1-5,评分结果见表2.由图1-5和表2可知:5种抗体高压修复的效果均为强表达;微波20 min修复P53和P63均为强表达.CK5/6、CK7和ki67在高压修复较其它两种修复方式有更为理想的染色效果;从节省时间,降低掉片概率及出现背景概率等方面综合考虑,故将Tris-EDTA(pH9.0)高压修复2 min作为最佳修复方式.而P53及P63的微波修复20 min染色强度与高压修复的结果一致,均为强阳性.5种抗体的水煮修复法的染色效果均不理想,主要由于修复液的大量蒸发不但浪费试剂还有可能影响修复液浓度从而导致修复效果不稳定,故不宜使用该方法.微波修复20 min对于部分组织的修复效果可以达到要求,但是微波修复也存在不足,如:长时间的浸泡和机械力容易导致掉片;修复液的大量蒸发浪费试剂,严重时导致干片,抗原失活.综上所述,较佳的修复方式为高压修复2 min.图3 ki67的3种修复方法比较结果图图4 P53的3种修复方法比较结果图3 讨论免疫组织化学的染色质量受整个试验过程多方面因素的影响,如温度、抗原修复方法、抗体浓度、孵育时间及显色时间等多种因素.抗原修复方法是关键的因素之一.由于采用不同的抗原修复方法,导致免疫组化实验结果差异极大甚至出现假阴性.因此寻找理想的抗原修复方式可提高抗原检出率,提高免疫组化结果的准确性[7].图5 P63的3种修复方法比较结果图表1 3种抗原修复法对免疫组化染色结果的比较注:“0”为阴性;“1”为弱阳性;“2”为阳性;“3”为强阳性抗体名称高压2 min高压2.5 min高压3 min高压5 min水煮10 min水煮20 min微波10 min微波20 minCK5/6CK7Ki67P53P63 3 3 3 3 1 2 1+3 3 3 3 1 2 1 3 3 3 3 1 2 1 2+3 3 3 3 12 1 2+33 3 3 1 2 12++3+3本研究仅对5种抗体采用了3种修复方式的研究,有待一步探究其它的修复方式,以期获得更为直观和方便可行的修复方法.参考文献:[1]姚梅宏,郑智勇.免疫组化抗原修复技术新进展[J].临床与实验病理学杂志,2013,29(5):544-547.[2]陈余朋,张声,王行富,等.不同的抗原修复方法在Ⅳ型胶原免疫组化染色中的应用[J].临床与实验病理学杂志,2014,30(1):98-100.[3]宿颖,刘曼,张辛燕.不同抗原修复方法对KLF4在小鼠舌黏膜上皮中表达的比较[J].北京口腔医学,2014,14(6):344-346.[4]Jagirdar J.Immunohistochemistry:then and now[J].Arch Pathol Lab Med,2008,132(3):323-5.[5]Shi S R,Taylor C R.Extended application of antigen retrieval technique in immunohistochemistry and in situ hybridization[A].Shi S R,Taylor C R,eds.Antigen retrieval immunohistochemistry based research and diagnostics[C].Hoboken:John Wiley,2010:25-45.[6]许良中,杨文淘.免疫组织化学反应结果的判断标准[J].中国癌症杂志,1996,6(4):229-231.[7]何新明,顾霞,郭文婷,等.免疫组织化学染色存在的问题及解决方案[J].实用医技杂志,2017,24(8):871-872.。

免疫组化标记切片褪色再行HE染色的方法介绍

免疫组化标记切片褪色再行HE染色的方法介绍

免疫组化标记切片褪色再行HE染色的方法介绍
康佳蕊;杨毅;王宏伟
【期刊名称】《感染、炎症、修复》
【年(卷),期】2011(012)001
【摘要】@@ 在临床病理工作中,一些经过免疫组化标记的病理切片需要褪色后重新进行苏木素(HE)染色,以满足诊断、教学和学术交流的需要.我们经过长期摸索,建立了一种将免疫组化标记切片褪色后重新进行HE染色的病理技术方法,效果良好,现介绍如下.rn1 材料与方法rn1.1 材料收集近2年在我院病理科行病理学检查的子宫平滑肌瘤和结肠癌病例各10例,每例挑选1个组织蜡块,连续切片3张,厚度4 μm,分别行HE染色(HE组)、免疫组化标记(IHC组)和免疫组化标记褪色复染(IHC 褪色复染组).其中HE组以普通载玻片捞片,IHC组和IHC褪色复染组以涂胶片捞片.【总页数】3页(P49-50,封3)
【作者】康佳蕊;杨毅;王宏伟
【作者单位】解放军总医院第一附属医院病理科,北京,100048;解放军总医院第一附属医院病理科,北京,100048;解放军总医院第一附属医院病理科,北京,100048【正文语种】中文
【相关文献】
1.HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较 [J], 李丽;杨桂芳
2.经HE染色的细胞涂片上再行免疫组化染色法简介 [J], 成玉霞;孙青
3.HE染色的石蜡切片人工褪色后的免疫组化染色 [J], 杨举伦;蔡琳
4.HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究 [J], 刘海芳
5.石蜡切片行免疫荧光染色后再行PAS或HE染色确定NPR-A蛋白在肾脏的定位[J], 林璋;洪华山;林军华;林晓红;方美琴
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抗原修复技术及其在免疫组化中的应用

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用福尔马林固定时,组织中的许多氨基酸残基在分子内或分子间形成了醛键,使得不少抗原决定簇被封闭。

同时,由于甲醛的聚合作用,使蛋白质分子间相互交联形成大分子网络,也导致了抗原决定簇被掩盖,这就使得相当部分的抗原不能与抗体很好是进行反应。

因此,抗原修复也是影响免疫组化染色结果的基本因素。

抗原修复(Antigen retrieval ,AR)技术,建立在Fraenkel-conrat等人[1]一系列生物化学研究,经1991年shi等人[2]发展。

抗原修复是指石蜡、冰冻、火棉胶、塑料切片免疫组织化学(IHC)前用胰蛋白酶、尿素、表面活性剂、微波缓冲液和金属盐等,使被掩盖的抗原决定簇或变性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢复过程。

抗原修复能最大程度地恢复在制片等过程中损失的抗原性,使原来认为不能在石蜡切片上进行IHC的许多抗体获得了良好的染色结果,成为一种有效的补救措施。

本文的目的是概述AR-HIC的发展、应用和标准化。

一、AR技术加热AR技术微波加热方法. 在传统标准方法,经脱蜡、脱水和用3%H2O2阻断内源性过氧(化)物酶,石蜡切片经蒸馏水冲洗,放置在塑料Coplin缸中。

加入AR液,如蒸馏水、缓冲液、金属盐液、尿素等,盖上并置家用微波炉加热5或10分钟(注意防止切片干躁)。

有时在加热5分钟后,间隔1分钟,再加热5分钟(在第一个5分钟后检测液体高度)。

加热后,从微波炉取出塑料Coplin缸,冷却15分钟。

片子经蒸馏水冲洗二次后在PBS液中浸5分钟,才进行IHC染色。

为了保持一致的加热条件,必须设定靠近微波炉中心相同的位置及同一编号的Coplin缸,按照不同的抗体设定不同的加热时间,尽可能的建立标准的加热条件。

微波(MW)加热过程如下:在专用盒内放入200ml柠檬酸缓冲液(PH6.0±0.1),并盖上带有小孔的盖子,微波加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架中,放入已沸腾缓冲液中,有作者提供做免疫组化时采用微波炉中等功率800W[3],微波炉选用解冻档的国产家用微波炉(根据目前的研究,建议用医用微波炉),中档继续处理10-20分钟;取出微波塑料缸冷却至室温,从缓冲液中取出玻片,片子经蒸馏水冲洗二次,之后用PBS(PH7.2-7.4)冲洗两次,每次3分钟。

4种抗原修复方法对免疫组化结果的影响

4种抗原修复方法对免疫组化结果的影响

4种抗原修复方法对免疫组化结果的影响
茹国美
【期刊名称】《现代中西医结合杂志》
【年(卷),期】2006(015)024
【摘要】随着科技的发展,免疫组化染色已成为现代病理诊断中不可缺少的检测技术,特别是在判断肿瘤组织的来源、分类以及良、恶性肿瘤的鉴别诊断等方面起着重要的作用。

免疫组化染色操作过程中的每一个细小的环节都有可能影响抗原抗体复合物真实的表达结果,故每个医院都有自己使用抗原修复的方法,但大致原则是一致的。

现将本院4种不同修复方法对免疫组化结果的影响分析总结如下。

【总页数】1页(P3370-3370)
【作者】茹国美
【作者单位】浙江省绍兴市人民医院,浙江,绍兴,312000
【正文语种】中文
【中图分类】R446.6
【相关文献】
1.3种抗原修复方法对免疫组化染色效果的影响 [J], 郑秋桦;李钰湘;柯野;张海明
2.不同抗原修复方法对大鼠嗅黏膜低亲和力p75NTR免疫组化的影响 [J], 马秀利;杨枭雄;周立新
3.不同抗原修复方法对层粘连蛋白免疫组化染色结果的影响 [J], 刘鲜艳;郝斌威;马爱玲;何进喜;陈娟
4.不同抗原修复方法对免疫组化试验结果的影响 [J], 马建梅;陈承;张彦
5.不同的抗原修复方法对免疫组化染色结果的影响 [J], 廖德贵;黄世章
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抗原热修复退色法在HE切片改做免疫组化染色中的探索_王兴波

抗原热修复退色法在HE切片改做免疫组化染色中的探索_王兴波

从而使颜色明显变淡,肉眼观察其呈无色,仅镜下隐约见浅 灰色,通过免 疫 组 化 实 验 结 果 示 对 细 胞 核 的 着 色 无 明 显 影 响。实验组 1、2 与对照组细胞膜、细胞质、细胞核着色部位 一致,着色强度 及 表 达 率 基 本 一 致,差 异 无 显 著 性。免 疫 组 化染色抗原需 EDTA 修复的可以用 EDTA 热修复退色,对于 一些不需抗原修复的,通过对照试验可用高温高压柠檬酸退 色,但需要防止内源性生物素导致的非特异性背景着色,修 复退色后,需采用非生物素免疫试剂盒或对内源性生物素进 行滴加抗体前的封闭处理。实验结果表明,抗原热修复退色 对以上所选抗体的免疫组化染色无明显影响,是否对除此之 外的抗体免疫组化染色有影响有待进一步研究。实验中注 意事项: 试验中要防止涂片细胞及组织片脱落,并正确使用 高压锅。
2 结果
实 验组1、2及对照组免疫组化染色每例对应的抗体表
临床与实验病理学杂志 J Clin Exp Pathol 2012 Oct; 28( 10)
·1177·
①A
①B
①CΒιβλιοθήκη ②A②B③
图 1 A: 乳腺浸润性导管癌切片预先未经 HE 染色直接进行免疫组化染色示 C-erbB-2 胞膜强阳性; B: 乳腺浸润性导管癌新 HE 染色切片退色 后行免疫组化染色示 C-erbB-2 染色胞膜强阳性; C: 乳腺浸润性导管癌原 HE 染色切片退色后行免疫组化染色 C-erbB-2 染色胞膜强阳性,MaxVision 一步法 图 2 A: 骨髓切片预先未经 HE 染色,经 EDTA 修复示 TdT 胞核阳性; B: 骨髓原 HE 染色切片,经 EDTA 修复退色后 TdT 胞核 阳性,MaxVision 一步法 图 3 乳腺浸润性导管癌原 HE 染色切片高温柠檬酸退色后 vimentin 染色纤维性间质胞质阳性,癌细胞阴性,MaxVision 一步法

“综合修复法”在BrdU免疫组化染色中的应用

“综合修复法”在BrdU免疫组化染色中的应用

“综合修复法”在BrdU免疫组化染色中的应用陈余朋;王行富;何观文【摘要】目的探讨Brdu免疫组织化学染色的最佳修复方法.方法采用不同的抗原修复方法:酶修复,pH6.0柠檬酸盐缓冲液高压修复或微波修复,pH 9.0 Tris-EDTA 高压修复或微波修复,以及0.1%Triton X-100/0.1%柠檬酸钠渗透及胰酶增加细胞膜的通透性、冷0.1mol/L盐酸去除染色体组蛋白、2mol/L盐酸使DNA双链变性、四硼酸钠重建碱性环境的“综合修复法”,对小鼠BrdU标记的嗅上皮组织进行免疫组织化学染色.结果经“综合修复”后,免疫组化染色敏感性较其他修复方法明显增强,并且准确定位优于其他方法(P<0.01).结论在BrdU的免疫组化染色中,“综合修复法”是较理想的抗原修复方法.【期刊名称】《湖北民族学院学报(医学版)》【年(卷),期】2011(028)003【总页数】3页(P18-20)【关键词】5-溴-2-脱氧尿嘧啶核苷;抗原修复;免疫组化【作者】陈余朋;王行富;何观文【作者单位】福建医科大学附属第一医院病理科福建福州350005;福建医科大学附属第一医院病理科福建福州350005;福建医科大学附属第一医院耳鼻咽喉科福建福州350005【正文语种】中文【中图分类】R446.85-溴-2-脱氧尿嘧啶核苷(5-Bromo-2-deoxyuridine,BrdU)标记法因无放射性、污染小、敏感性强等优点,在肿瘤生物学、遗传学、分子生物学领域得到广泛应用。

常用于研究细胞再生以及各种不同的因素对正常或肿瘤组织动力学的影响。

然而不同的修复方法对该抗体的免疫组化检测结果影响较大,为此我们采用不同的修复PowerVisionTM二步法进行比较,包括酶修复、pH 6.0柠檬酸盐缓冲液高压修复和微波修复、pH 9.0 Tris-EDTA高压修复和微波修复以及综合修复法,实验表明综合酶修复法的免疫组化染色最为敏感、定位准确和染色强。

HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究

HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究

HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究
刘海芳
【期刊名称】《中国现代医生》
【年(卷),期】2011(49)17
【摘要】目的探讨HE染色切片褪色后免疫组织化学染色方法。

方法 HE染片放入二甲苯中浸泡,清除盖玻片和树胶;梯度酒精水化,蒸馏水洗涤;置入0.25%高锰酸钾5min,蒸馏水洗,40.5%草酸溶液漂白,蒸馏水洗,自然晾干;滴PLLS1 滴于组织片上,摇匀,将切片在60℃烘箱中烘60min烘干;PBS洗
5min×3次;组织需要进行水浴抗原热修复;与对照片按标准S-P方法进行免疫组化染色。

结果所有对照片与试验片均为阳性,无一例脱片。

结论此方法可用于HE片褪色做免疫组化染色,具有实用价值。

【总页数】2页(P81-82)
【作者】刘海芳
【作者单位】浙江省义乌市中心医院病理科,浙江义乌322000
【正文语种】中文
【中图分类】R730.2
【相关文献】
1.高锰酸钾-草酸法在HE染色褪色后行免疫组化中的应用 [J], 孟丽
2.免疫组化标记切片褪色再行HE染色的方法介绍 [J], 康佳蕊;杨毅;王宏伟
3.细胞HE染色褪色处理后免疫组化染色体会 [J], 方杰;盛晓光;吴嘉端
4.HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较 [J], 李丽;杨桂芳
5.HE染色的石蜡切片人工褪色后的免疫组化染色 [J], 杨举伦;蔡琳
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HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较

HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较

HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较李丽;杨桂芳【期刊名称】《数理医药学杂志》【年(卷),期】2015(000)011【摘要】目的:探讨 HE染色切片褪色后是否可以用免疫组化的方法检测蛋白的表达。

方法:将封好的 HE 切片放入二甲苯浸泡,去除盖玻片和中性树胶;梯度酒精水化之后用蒸馏水(或自来水)水洗;放入用75%酒精配置的1%的盐酸酒精分化液中浸泡1 min,晾干后,再放入1%的盐酸酒精分化液中1 min,反复数次直至颜色完全褪去,然后水洗;将防脱片剂多聚-L-赖氨酸工作液滴在已褪色的切片上,烤片60min,PBS浸泡;根据抗体需求采取合适的修复液(EDTA或柠檬酸盐)和修复方法(高压修复或水浴修复);根据常规免疫组化(Envision二步法)的方法和阳性对照片一起进行免疫组化染色。

结果:所有对照片和滴加多聚-L-赖氨酸工作液的实验片均为阳性,无1例脱片。

结论:此方法可以用于常规 HE染色切片褪色后继续用于做免疫组化检测相关标志物,具有一定的临床实用价值。

【总页数】2页(P1618-1619)【作者】李丽;杨桂芳【作者单位】武汉大学中南医院病理科武汉 430072;湖北省妇幼保健院病理科【正文语种】中文【中图分类】R313【相关文献】1.免疫组化标记切片褪色再行HE染色的方法介绍 [J], 康佳蕊;杨毅;王宏伟2.细胞HE染色褪色处理后免疫组化染色体会 [J], 方杰;盛晓光;吴嘉端3.HE染色切片褪色分析及解决方法 [J], 金明顺;陆佰荣;廉洁4.HE染色的石蜡切片人工褪色后的免疫组化染色 [J], 杨举伦;蔡琳5.HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究 [J], 刘海芳因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

微波修复抗原技术在免疫细胞化学染以中的应用现状

微波修复抗原技术在免疫细胞化学染以中的应用现状

微波修复抗原技术在免疫细胞化学染以中的应用现状
熊正文
【期刊名称】《临床与实验病理学杂志》
【年(卷),期】1998(014)002
【摘要】微波修复抗原技术在免疫细胞化学染色中的应用现状1熊正文综述2王伯氵云3史景泉审校作者单位:1解放军251医院病理科,张家口0750002第四军医大学病理学教研室,西安7100323第三军医大学病理学教研室,重庆630038作者简介:熊正文,男,35岁...
【总页数】3页(P177-179)
【作者】熊正文
【作者单位】解放军第251医院病理科
【正文语种】中文
【中图分类】R392.31
【相关文献】
1.微波抗原修复对子宫颈癌前病变中hTERT表达的影响 [J], 昝沁;许美权;宋建明
2.微波抗原修复法在乳腺癌组织雌、孕激素受体检测中的应用 [J], 张雪;陈晓雅;韩恩善
3.光波/微波组合修复CD44v6抗原及其在78例非小细胞肺癌中的表达 [J], 朱光君;张宏;熊正文;石巧荣;李永申
4.EBER原位杂交和免疫组化双染中酶消化和抗原修复的优化 [J], 何娇;罗陆侨;廖集琴
5.微波修复抗原和微波酶消化法同时应用在P16和CyclinD1免疫组织化学方法中的体会 [J], 魏国红;孙智才;刘嵘;张彤
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HE切片的免疫组化染色方法探讨

HE切片的免疫组化染色方法探讨

HE切片的免疫组化染色方法探讨
张秀荣;袁新华
【期刊名称】《上海医科大学学报》
【年(卷),期】1993(020)006
【摘要】近几年,免疫组化染色在病理诊断和科研工作中应用颇为广泛。

免疫组化染色方法的特异性较高,而且近年多克隆抗体和单克隆抗体的应用种类越来越多,用于回顾性的诊断或研究也逐步开展。

在实际工作中,常因原始蜡块丢失,或组织块的病变很小在后续切片中病变区消失,或仅保留一张切片(如脱落细胞涂片)等原因而不能重新制片。

原有的HE染色切片能否再作免疫组化染色,成为一个需要探讨的问题。

有人已做过这方面尝试,但仅用一种单克隆抗体。

为此我们在HE染色切片(或涂片)上进行17种多克隆抗体和8种单克隆抗体的免疫组化染色,获得一些初步体会。

【总页数】2页(P478-479)
【作者】张秀荣;袁新华
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R329-33
【相关文献】
1.β-Trcp冷冻切片抗体应用于石蜡切片免疫组化染色的研究 [J], 李坤;侯宪芹;孙海娇;于晶功;胡波;周长江
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3.HE染色切片褪色后再进行免疫组化染色方法的比较 [J], 李丽;杨桂芳
4.HE染色切片褪色后免疫组化染色方法研究 [J], 刘海芳
5.半薄切片中免疫金银染色与石蜡切片中免疫组化染色的比较 [J], 迟月明;张莉;宋雁南;李红;金晓明;黄淇
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免疫组化技术中抗原修复的应用

免疫组化技术中抗原修复的应用

免疫组化技术中抗原修复的应用
智俐;贾军乐
【期刊名称】《包头医学院学报》
【年(卷),期】2006(22)2
【摘要】目的:本实验通过比较几种不同抗原修复技术在免疫组化中的应用效果,寻求提高不同抗体表达的最佳修复方法.方法:选取32种抗体标记理论上阳性的组织,每种抗体均分别采用不修复及胰蛋白酶、微波炉、胰蛋白酶加微波炉修复.结果:不进行抗原修复有20种抗体阴性,单独胰蛋白酶及微波炉修复分别有6种抗体阴性,胰蛋白酶加微波炉修复全部抗体转阳,并有14种抗体提高了一个(+).结论:抗原修复是必要的,单独应用一种方法修复时,每种抗体表现出不同的敏感程度,联合应用修复技术可提高抗原检出率及染色强度.
【总页数】2页(P204-205)
【作者】智俐;贾军乐
【作者单位】内蒙古医学院第三附属医院病理科,内蒙古,包头,014010;内蒙古医学院第三附属医院病理科,内蒙古,包头,014010
【正文语种】中文
【中图分类】R392.31
【相关文献】
1.不同抗原修复在免疫组化技术中应用的探讨 [J], 宋丽君;李英勇
2.免疫组化技术在甲状腺液基细胞学诊断为Ⅲ类-意义不明确细胞非典型病变中的
应用价值 [J], 张永生;王萍萍;高萍;张立平;李强
3.基于荧光原位杂交(FISH)与免疫组化技术(IHC)在非小细胞肺癌中的应用探究 [J], 鞠学萍
4.肿瘤病理诊断中免疫组化技术和常规技术的应用对比研究 [J], 杨丽
5.探究细胞块和免疫组化技术联合应用于解决胸腔积液诊断中的效果观察 [J], 鞠学萍
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[3] 赵天如,江昌新,刘增辉,等. HE 染片退色后改作特殊染色 和免疫组化染色[J]. 诊断病理学杂志,2002,9( 3) : 186.
[4] 王兴波,刘梦丽,孙凤媛,等. HE 染色涂片退色后原位免疫 染色在肿瘤病理诊断中的应用[J]. 中国误诊学杂志,2010, 10( 21) : 5072.
1 材料与方法
1. 1 材料 1. 1. 1 病例选择 选取河北省秦皇岛市第二医院病理科近 年存档的组织蜡块切成 40 张白片,原有 HE 切片 20 张。包 括: B 细胞淋巴瘤 1 块( 原 HE 染片 3 张,切 6 片,染 CD20、 CD3、CD45RO) ,T 细胞淋巴瘤 1 块 ( 原 HE 染片 3 张,切 6 片,染 CD20、CD3、CD45RO) ,急性淋巴细胞白血病骨髓穿刺 1 块( 原 HE 染片 1 张,切 2 片,染 TdT) ,乳腺浸润性导管癌 ( ER、PR、C-erbB-2 皆阳性) 组织蜡块 1 块[原 HE 染片 6 张, 切 12 片,染 C-erbB-2、ER、PR、EMA、SMA、CK( Low-MW) ], 乳腺小叶增生 1 块[原 HE 染片 2 张,切 4 片,染 SMA、CK ( Low-MW) ],胃肠间质瘤 1 块( 原 HE 染片 2 张,切 4 片,染 CD117、CD34) ,子宫内膜间质肉瘤 1 块( 原 HE 染片 3 张,切 6 片,染 CD10、SMA、vimentin) 。有免疫组化染色对照片的鳞 癌和腺癌阳性涂片各 2 例[分别选取 HE 染片各 2 片,染 CK ( High-MW) ,CK( Low-MW) ]。以上白片平均分成两组,实 验组 1 和对照组,将原 HE 染色的切片和涂片共 28 片归入 实验组 2。要求每例蜡块切成 4 μm 厚薄片,裱于防脱载玻 片上,在磨砂边处做好标记,60 ℃ 烤箱烤 2 h,二甲苯脱蜡至 水,冲洗干净直至无水珠附于玻片上,细胞涂片均使用防脱 片,潮干固定于 95% 乙醇液中 15 min,60 ℃ 烤箱烤 30 min, 水洗后进行 HE 染色。 1. 1. 2 器材与试剂 免疫组化抗原修复不锈钢高压锅 1 个 ( HPC-1001) ,现配柠檬酸抗原修复液( pH 6. 0 ± 0. 1) ,EDTA
收稿日期: 2012 - 04 - 09 作者单位: 河北省秦皇岛市第二医院病理科,秦皇岛 066600 作者简介: 王兴波,男,副主任医师。E-mail: 2418957063@ qq. com
( pH 9. 0) 按 1 ∶ 50 配置( 1 份原液和 50 份蒸馏水混合) ,配 备耐高温染色架( RAK-2001) ,电磁炉。抗体选择: CK( HighMW) 、CK( Low-MW) 、EMA、SMA、vimentin、C-erbB-2、ER、PR、 CD3、CD45RO、CD20、TdT、CD10、CD117、CD34,采用免疫 组 化 MaxVision 一步法染色,DAB 显色,所有器材与试剂均购 于福州迈新公司,抗体为同一批号即用型。 1. 2 方法 1. 2. 1 原 HE 染片的去胶处理 将实验组 2 的 HE 染片浸 泡于二甲苯中 3、4 天后,去除盖玻片和标签纸并做好标记, 再在二甲苯中继续浸泡 1 天,经无水乙醇 2 次,95% 乙醇 1 次流水冲洗[1]。 1. 2. 2 HE 染色 实验组 1 进行过重 HE 染色,即适当延长 常规 HE 染色在苏木精和水溶伊红染液中的停留时间。染 色完毕晾干。 1. 2. 3 退色 ( 1) 将经以上处理后的实验组 1、2 不需要 EDTA 修复的切片放入耐高温染色架上,将配置完毕的柠檬 酸液倒入高压锅适量,要求浸过染色架中的 HE 染片。放入 HE 染片之前按照免疫组化柠檬酸抗原修复操作规程,先将 柠檬酸加热至沸腾,移开高压锅后将有 HE 染片的染色架倒 入高压锅内,将高压锅盖盖好,再移至电磁炉上加热,至喷气 后 1 min( 规定时间 1 ~ 1. 5 min) ,关闭电磁炉,自然冷却后取 出染片,用 PBS 液冲洗。( 2) 将实验组 1、2 需 EDTA 修复的 染片放入耐高温染色架上,将配置完毕的 EDTA 倒入高压锅 内至足量并加入玻璃珠数枚,保障煮沸 20 min 后 EDTA 仍浸 过染色架中的 HE 染片。放入 HE 染片之前按照免疫组化 EDTA 抗原修复操作规程,先将高压锅内 EDTA 液加热至沸 腾,后将有 HE 染片的染色架倒放入沸腾后的高压锅内,选 择低档再将其加热沸腾 20 min,冷却后取出,用 PBS 冲洗。 1. 2. 4 观察修复后退色情况 在退色后的玻片下面衬一张 白纸进行肉眼观察,再在低倍显微镜暗视野条件下观察。结 果: 各染片上的组织和细胞涂层均未见脱落,高温高压柠檬 酸修复 1 min 可使苏木精和伊红完全退色,EDTA 煮沸 20 min,伊红完全退色,苏木精颜色明显变浅,肉眼观察无颜色, 仅镜下细胞核略呈浅灰色。 1. 2. 5 免疫组化染色 对照组切片按免疫组化要求进行抗 原修复,修复退色后的染片需其他处理的如胰酶消化,还需 进行相应处理。最后将修复退色后的染片和修复后的对照 组切片按免疫组化操作步骤进行免疫组化染色。
HE 染色与免疫组化染色在病理诊断中处于重要的地 位,是目前病理科较常用的常规方法。在实际病理诊断工作 中,经常遇到 HE 染色的会诊组织切片和细胞涂片,而无相 应的组织蜡块或多余的细胞涂片白片,为进一步明确诊断只 能在原 HE 染片上做免疫组化染色,此时需将 HE 染片退去 HE 染色,改做免疫组化染色。目前,采用抗原热修复法退色 尚未见文献报道,我们通过探索、实验及临床应用发现其效 果良好,现报道如下。
2 结果
实 验组1、2及对照组免疫组化染色每例对应的抗体表
临床与实验病理学杂志 J Clin Exp Pathol 2012 Oct; 28( 10)
·1177·
①A
①B
①C
②A
②B

图 1 A: 乳腺浸润性导管癌切片预先未经 HE 染色直接进行免疫组化染色示 C-erbB-2 胞膜强阳性; B: 乳腺浸润性导管癌新 HE 染色切片退色 后行免疫组化染色示 C-erbB-2 染色胞膜强阳性; C: 乳腺浸润性导管癌原 HE 染色切片退色后行免疫组化染色 C-erbB-2 染色胞膜强阳性,MaxVision 一步法 图 2 A: 骨髓切片预先未经 HE 染色,经 EDTA 修复示 TdT 胞核阳性; B: 骨髓原 HE 染色切片,经 EDTA 修复退色后 TdT 胞核 阳性,MaxVision 一步法 图 3 乳腺浸润性导管癌原 HE 染色切片高温柠檬酸退色后 vimentin 染色纤维性间质胞质阳性,癌细胞阴性,MaxVision 一步法
参考文献:
[1] 瞿智玲,倪 娟,敖启林,等. 陈旧褪色病理教学 HE 切片颜色 恢复技术探讨[J]. 临床与实验病理学杂志,2011,27( 4) : 433.
[2] 戴 芳,杨举伦,王 丽,等. 淋巴组织细针吸取细胞 HE 染 片褪色后作 免 疫 组 化 的 体 会[J]. 西 南 国 防 医 药,2010,20 ( 2) : 178.

达强度及表达率基本一致,差异无显著性( 图 1 ~ 3) 。证明 抗原热修复退色法在 HE 染片退色改做免疫组化染色中应 用的可行性。
3 讨论
HE 染色主要依靠离子键的结合起作用,所以染色和退 色也受到离子键结合力的影响,同时溶液浓度、pH 值、温度 及时间亦有一定的影响。高温可使离子运动速率加快,染色 时容易使细胞着色,退色时容易使染料离子弥散到染料浓度 低的溶液中,在退色过程中溶液 pH 值的影响较大,pH 值越 小越易使苏木精退色,pH 值越大越易使伊红退色,所以强酸 强碱是强退色剂,但也最容易破坏抗原成分。做免疫组化染 色时应保护抗原,采用缓冲液较合理,常温下使用缓冲液退 色,耗费时间较长,HE 染片在溶液中浸泡时间过长易导致脱 片,应尽 量 减 少 在 溶 液 中 的 浸 泡 时 间。有 文 献 报 道 采 用 0. 25% 高锰酸钾 - 0. 5% 草酸退色需要时间约 10 min[2],赵 天如等[3]在完成 HE 染片脱胶后对于近期 HE 染片用 0. 5% 盐酸乙醇脱色( 肉眼观察组织切片呈淡粉红色为止) ,再用 0. 5% 草酸溶液脱色( 肉眼观察组织切片呈白色为止) ,较久 的 HE 染片依次再用 0. 25% 高锰酸钾溶液和 0. 5% 草酸溶液 脱色。作者曾采用 1% 盐酸乙醇-PBS 退色,需要时间约 10 min[4]。作者认为较佳退色方法为抗原热修复法,虽然柠檬 酸溶液显弱酸性,实验证明在退去苏木精的同时也退掉了伊 红,既起退色作用又完成抗原修复的作用,免去再单独退色 的步骤。EDTA 呈弱碱性,即退去伊红,又基本上退去苏木 精,后者主要是高温加速离子弥散作用使苏木精脱离细胞核
·1176·
临床与实验病理学杂志 J Clin Exp Pathol 2012 Oct; 28( 10)
抗原热修复退色法在 HE 切片改 做 免 疫 组 化 染 色中的探索
王兴波,任仕俊,陈怀敏,张杰锋
关键词: 抗原修复; 退色; 免疫组织化学; 苏木精-伊红染色 中图分类号: R 392-33 文献标志码: B 文章编号: 1001 - 7399( 2012) 10 - 1176 - 02
从而使颜色明显变淡,肉眼观察其呈无色,仅镜下隐约见浅 灰色,通过免 疫 组 化 实 验 结 果 示 对 细 胞 核 的 着 色 无 明 显 影 响。实验组 1、2 与对照组细胞膜、细胞质、细胞核着色部位 一致,着色强度 及 表 达 率 基 本 一 致,差 异 无 显 著 性。免 疫 组 化染色抗原需 EDTA 修复的可以用 EDTA 热修复退色,对于 一些不需抗原修复的,通过对照试验可用高温高压柠檬酸退 色,但需要防止内源性生物素导致的非特异性背景着色,修 复退色后,需采用非生物素免疫试剂盒或对内源性生物素进 行滴加抗体前的封闭处理。实验结果表明,抗原热修复退色 对以上所选抗体的免疫组化染色无明显影响,是否对除此之 外的抗体免疫组化染色有影响有待进一步研究。实验中注 意事项: 试验中要防止涂片细胞及组织片脱落,并正确使用 高压锅。
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