复旦大学实验动物学实验报告
实验动物学实验报告
实验动物学实验报告一、实验动物：小鼠二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。
三、具体操作1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。
左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。
固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。
左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。
2、固定：通常使用固定器进行固定。
将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。
3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。
②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。
实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。
4、给药：常用的给药方式有：①口服给药：即灌胃。
将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。
如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。
灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。
②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。
静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。
将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。
之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。
实验动物学实验报告(共篇)(一)
实验动物学实验报告(共篇)（一）引言概述：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的学科，通过对动物进行实验来获取科学数据和知识。
本实验报告旨在总结一系列实验结果，探讨实验动物学领域的重要问题，并对其应用前景进行展望。
正文：1. 实验动物的选择：- 考虑实验目的和动物特征选择合适的实验动物；- 常用实验动物包括小鼠、大鼠、兔子等，每种动物具有独特的优势和限制；- 实验动物品种的选择需根据实验要求和研究领域确定。
2. 实验动物的饲养与环境：- 提供适宜的饲养环境，包括饲料、水源和温度控制等；- 动物饲养条件对实验结果有重要影响，需保证实验动物的健康和福利；- 定期进行环境监测和清洁，确保实验动物处于良好的生活环境。
3. 实验动物行为测试：- 利用行为学测试评估实验动物的认知和学习能力；- 常用的行为测试方法包括自由探索、空间记忆和条件反射等；- 结合行为学数据，分析实验动物的行为模式和特征，进一步探讨动物行为学的机制。
4. 实验动物遗传学研究：- 利用遗传学方法，研究实验动物的基因表达和突变；- 应用转基因技术构建基因改造的实验动物模型；- 分析实验动物遗传变异与行为学表现的相关性，深入了解动物行为与遗传之间的关系。
5. 实验动物生理研究：- 通过生理学指标评估实验动物的生物学状态和健康状况；- 分析实验动物的生理参数变化，揭示动物的生理机制；- 在药物研究和疾病模型中应用实验动物，探索潜在的治疗策略。
总结：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的重要学科，通过对实验动物进行一系列实验，我们可以深入了解动物的行为模式、生理机制和遗传特征。
通过合理选择实验动物、提供适宜的饲养环境、进行行为学测试以及遗传和生理研究，我们能够推动实验动物学的发展，为人类和动物健康领域的进展提供有力支持。
实验动物学实验报告鸡(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解鸡的生物学特性、生理功能及生长发育规律。
2. 掌握鸡的饲养管理技术，为实验动物学教学和科研提供基础。
二、实验材料1. 实验动物：鸡（品种、年龄、性别等）2. 实验器材：温度计、湿度计、饲料、饮水器、称重器、笼具等3. 实验试剂：消毒液、营养液等三、实验方法1. 观察鸡的外部形态结构，了解其生长发育规律。
（1）观察鸡的头部、颈部、胸部、腹部、尾部等部位，记录其形态、颜色、羽毛等特征。
（2）测量鸡的体长、体重、翼长等指标，了解其生长发育规律。
2. 观察鸡的生理功能。
（1）观察鸡的呼吸、心跳、排泄等生理现象。
（2）观察鸡的采食、饮水等行为。
3. 掌握鸡的饲养管理技术。
（1）了解鸡的饲料种类、营养成分、饲养方式等。
（2）观察鸡的饲养环境，包括温度、湿度、光照等。
（3）掌握鸡的消毒、防疫、疾病防治等技术。
四、实验结果与分析1. 鸡的形态结构（1）头部：鸡的头部呈椭圆形，有喙、眼、耳等器官。
（2）颈部：鸡的颈部细长，肌肉发达，有利于采食和呼吸。
（3）胸部：鸡的胸部宽大，有发达的胸肌，有利于飞行。
（4）腹部：鸡的腹部较宽，有利于消化和生殖。
（5）尾部：鸡的尾部较短，羽毛密实，有利于保温。
2. 鸡的生理功能（1）呼吸：鸡的呼吸以肺为主，气囊辅助呼吸。
（2）心跳：鸡的心脏四腔，心跳较快，有利于血液循环。
（3）排泄：鸡的排泄器官有肾脏、输尿管、泄殖腔等。
（4）采食：鸡的喙尖利，善于啄食。
（5）饮水：鸡的饮水需求较高，需保持充足的水源。
3. 鸡的饲养管理技术（1）饲料：鸡的饲料应富含蛋白质、碳水化合物、脂肪、维生素和矿物质等。
（2）饲养环境：鸡的饲养环境应保持适宜的温度、湿度、光照等，以利于其生长发育。
（3）消毒：定期对鸡舍、饲料、饮水等消毒，预防疾病传播。
（4）防疫：定期进行疫苗接种，预防疫病发生。
（5）疾病防治：发现病鸡应及时隔离治疗，防止疫情扩散。
五、实验总结本次实验通过对鸡的形态结构、生理功能及饲养管理技术的观察，使我们对鸡的生物学特性有了更深入的了解。
实验动物学实验报告
实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤1、抓取和固定1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1抓取和固定小鼠2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
3.1.3用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠重复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
3.2.2.3用大鼠重复同样操作3.2.3尾静脉注射3.2.3.1先将动物固定在暴露尾部的固定器内，3.2.3.2用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入。
实验动物学报告2
实验名称：大鼠的一般操作实验日期：姓名：学号：专业：一、实验目的和要求掌握大鼠的一般操作方法:抓取和保定、性别鉴别、给药、采血、处死、解剖等。
二、实验准备1、动物：SD大鼠，雌雄各一只。
2、器械：毛笔，解剖剪，解剖镊、眼科剪，眼科镊，解剖板，灌胃针，头皮针，注射器，干棉球、酒精棉球，50ul采血针3、药物：苦无酸，0.9%生理盐水及10%水合氯醛三、实验操作1、抓取和保定将大鼠放置于桌面，右手抓取其尾部，左手放在大鼠背部，左手食指和中指使其颈部保定，左手半握状，大拇指压住大鼠右前肢，四指压住大鼠左前肢，将大鼠翻转。
2、性别鉴定抓住大鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离，距离远的为雄性，距离近的为雌性；观察生殖器附近，雄性成年大鼠睾丸降至阴囊内，有明显突起；成年雌性大鼠有6对乳头。
3、给药（1）灌胃：大鼠保定好后，右手持灌胃器，从大鼠左嘴角灌入，灌胃针轻压其上腭部，使其口腔与食道成一直线，灌胃针进入深度为2/3左右，右手食指轻推注射器是0.9%生理盐水缓慢进入大鼠胃内（2）腹腔给药：左手抓取和固定大鼠，右手持注射器，从左下腹部腹股沟上约0.5cm，腹中线旁外1cm进针，进针时针头与腹部平面形成45度，进针深度约1cm。
（3）静脉注射：①将大鼠放入固定的笼内，尾巴滞留在外，消毒尾部，并挤压尾根部用左右拇指和食指控制大鼠尾巴角度。
右手持注射器，使其与尾两侧的静脉平行（小于15°），从尾下1/5处（约距尾尖3-5cm）进针，将注射器外套置于拇指与中指交叉处，保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线。
②向充盈的尾静脉刺入约5mm，保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线，稍回抽见有回血，说明针头已经准确插入静脉内。
食指及中指夹住注射器外套，拇指推注射器，将0.9%生理盐水按一定速度推入。
刺入后先缓注少量生理盐水，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入，若注射时有较大阻力，说明针头未刺入血管，应重新向尾根部移动注射。
动物实验报告
动物实验报告实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法；4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法；6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。
另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。
2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。
动物实验实习报告
一、实习背景随着现代生物科学的不断发展，动物实验在医学、生物学、农学等领域的研究中发挥着越来越重要的作用。
为了提高自己的实验技能，加深对动物实验的理解，我参加了动物实验实习。
本次实习主要在实验室进行，实验动物为小鼠。
二、实习目的1. 掌握动物实验的基本操作技能，如动物抓取、固定、注射等。
2. 熟悉实验动物的生理、生化指标，学会正确采集和处理实验数据。
3. 了解动物实验的伦理问题，树立正确的实验态度。
三、实习内容1. 实验动物的选择与处理本次实习使用的小鼠为普通小白鼠，体重约20克。
实验前，首先对小鼠进行编号、称重，并观察其外观、行为等生理指标。
实验过程中，注意保持动物笼子的清洁，定时更换垫料，确保动物生活环境的舒适。
2. 实验操作技能培训（1）动物抓取：采用握尾法，轻轻握住小鼠尾部，使其身体悬空，避免造成动物损伤。
（2）动物固定：将小鼠放入固定盒中，用固定盒将小鼠四肢固定，使其不能随意活动。
（3）注射：根据实验要求，选择合适的注射部位和注射方法。
如腹腔注射、皮下注射等。
3. 实验操作与数据处理（1）实验操作：按照实验方案，对小鼠进行注射、观察、取样等操作。
（2）数据处理：记录实验数据，如体重、生理指标等，并进行分析。
4. 实验结果分析根据实验数据，分析实验结果，得出结论。
四、实习总结通过本次动物实验实习，我收获颇丰：1. 掌握了动物实验的基本操作技能，如动物抓取、固定、注射等。
2. 熟悉了实验动物的生理、生化指标，学会了正确采集和处理实验数据。
3. 认识到动物实验的伦理问题，树立了正确的实验态度。
4. 增强了团队协作能力，学会了与同学、老师沟通交流。
总之，本次动物实验实习使我受益匪浅，为今后从事相关研究奠定了基础。
在今后的学习和工作中，我将继续努力，不断提高自己的实验技能和科研素养。
实验动物学实验报告
实验动物学实验报告实验动物学实验报告引言：实验动物学是一门研究动物在科学实验中的应用和行为的学科。
通过对实验动物的研究，可以更好地理解动物的生理、行为、遗传等方面的特性，为科学研究提供重要的实验数据。
本篇实验报告将介绍一项关于实验动物的研究。
实验目的：本次实验的目的是探究实验动物在特定条件下的行为变化。
通过观察和记录实验动物在不同环境和刺激下的行为反应，我们可以了解动物对外界环境的适应能力和行为选择。
实验设计：在本次实验中，我们选择了小白鼠作为实验动物。
小白鼠是一种常见的实验动物，其生理特性和行为习性已经被广泛研究。
我们将小白鼠分为两组，分别置于两个不同的环境中进行观察。
实验过程：第一组小白鼠被置于一个充满明亮光线的环境中，我们观察到它们的行为表现。
小白鼠在明亮环境中表现出警觉性较高的行为，它们会频繁地嗅探周围的环境、四处张望，以及迅速移动。
这表明小白鼠对明亮环境的刺激产生了一定的警觉和适应反应。
第二组小白鼠则置于一个较为昏暗的环境中。
与第一组相比，我们观察到第二组小白鼠的行为表现有所不同。
它们在暗环境中表现出较为谨慎的行为，移动速度较慢，更多地停留在一个地方。
这表明小白鼠对暗环境的刺激产生了一种保护性的行为反应。
实验结果：通过对两组小白鼠的观察和行为记录，我们得出了以下结论：1. 小白鼠对明亮环境的刺激表现出警觉性较高的行为反应，包括频繁嗅探、四处张望和迅速移动。
2. 小白鼠对暗环境的刺激表现出较为谨慎的行为反应，包括移动速度较慢和更多地停留在一个地方。
讨论与分析：实验结果表明，实验动物在不同环境和刺激下表现出不同的行为反应。
这与动物的生存需求和行为适应有关。
在明亮环境中，小白鼠更需要保持警觉，以应对潜在的危险。
而在暗环境中，小白鼠更需要保持谨慎，以避免可能的伤害。
结论：通过本次实验，我们深入了解了实验动物在不同环境下的行为变化。
这对于进一步研究动物行为和生态适应具有重要意义。
实验动物学作为一门学科，为我们提供了更多了解动物行为和适应性的途径，为科学研究提供了重要的实验数据。
实验动物实习报告
一、实习背景为了提高自身实践能力，了解实验动物在科学研究中的应用，我于2021年7月至8月在XX大学实验动物中心进行了为期一个月的实习。
实习期间，我在实验动物中心老师的指导下，学习了实验动物饲养管理、实验操作、实验记录等相关知识，积累了宝贵的实践经验。
二、实习内容1. 实验动物饲养管理在实习期间，我首先学习了实验动物饲养管理的基本知识，包括实验动物的种类、习性、营养需求、饲养环境等。
随后，在老师的带领下，我参与了实验动物的日常饲养工作，包括喂食、清洁、消毒、观察动物健康状况等。
2. 实验操作实验操作是实验动物实习的重要环节。
在实习过程中，我学习了动物实验的基本操作技能，如动物抓取、固定、麻醉、给药、取样等。
同时，我还参与了动物实验的观察和记录，掌握了实验数据收集和分析的方法。
3. 实验记录实验记录是实验动物研究的重要组成部分。
在实习期间，我学习了实验记录的基本规范，如实验日期、动物编号、实验操作步骤、实验结果等。
通过记录实验数据，我了解了实验动物研究的基本流程。
4. 实验动物福利实验动物福利是实验动物研究的重要方面。
在实习期间，我学习了实验动物福利的相关知识，包括动物实验伦理、实验动物福利法规等。
通过参与实验动物的饲养和管理，我深刻体会到了实验动物福利的重要性。
三、实习收获1. 理论知识与实践相结合通过实习，我将所学理论知识与实际操作相结合，提高了自己的实验操作技能，为今后的科学研究打下了坚实的基础。
2. 提高实验动物福利意识实习过程中，我深刻体会到了实验动物福利的重要性，增强了实验动物福利意识，为今后从事相关研究奠定了基础。
3. 培养团队协作能力实习期间，我与团队成员共同完成实验任务，学会了与他人沟通、协作，提高了自己的团队协作能力。
4. 增强责任感实习让我认识到实验动物研究的重要性和严谨性，增强了自身的责任感，为今后从事科学研究奠定了基础。
四、实习总结本次实验动物实习让我受益匪浅，不仅提高了自己的实践能力，还增强了实验动物福利意识和责任感。
动物学实验报告(范文)(一)2024
动物学实验报告(范文)（一）引言概述：动物学实验报告是对特定动物或一组动物进行观察、记录和分析的科学性文档，通过实验分析动物的行为、特征和生态习性，从而更好地了解动物的生态环境和行为模式。
本报告将对一组实验中的动物进行观察和记录，并从以下五个方面进行详细阐述：动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式。
一、动物的外部特征：1. 观察动物的体型、体长、体重等基本特征；2. 记录动物的体色、毛发和羽毛等外部特征；3. 探究动物的头部结构、四肢形态等特征；4. 观察动物的感觉器官如眼睛、耳朵等的形态和构造；5. 记录动物的运动能力和适应环境的特征。
二、动物的生态环境：1. 调查动物栖息地的地理位置和气候条件；2. 分析动物所处环境的地形和植被状况；3. 记录动物栖息地的海拔高度和水域特征；4. 探究动物栖息地的食物来源和天敌情况；5. 分析动物栖息地对其生活和繁殖的影响。
三、动物的行为模式：1. 观察动物的觅食行为和觅食策略；2. 记录动物的睡眠习性和活动规律；3. 探究动物的社交行为和群体组织结构；4. 观察动物的逃避和防御行为；5. 分析动物的繁殖行为和繁殖季节。
四、动物的饮食习性：1. 调查动物食性类型和摄食方式；2. 记录动物的主要食物来源和摄入量；3. 探究动物的消化系统结构和功能；4. 观察动物对不同食物的偏好和适应能力；5. 分析动物的饮食选择和食物摄入与能量需求的关系。
五、动物的繁殖方式：1. 调查动物的性别比例和交配方式；2. 记录动物的交配行为和繁殖季节；3. 探究动物的受精方式和卵胎生或胎生特征；4. 观察动物的孵化或生育过程和育儿行为；5. 分析动物的繁殖成功率和繁殖对后代生存的影响。
总结：综上所述，通过对动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式进行观察和分析，我们对该组动物的生活习性和繁殖生态有了更加深入的了解。
这些信息对于保护和管理特定动物群体以及生态环境的保护具有重要的参考价值。
动物学科实验报告
实验名称：动物心脏功能实验实验目的：1. 了解动物心脏的结构和功能。
2. 学习心脏功能实验的基本操作和数据分析方法。
3. 通过实验验证心脏功能的相关理论知识。
实验时间：2023年X月X日实验地点：动物实验室实验材料：1. 实验动物：成年家兔1只2. 实验仪器：手术显微镜、手术器械、心脏功能测定仪、生理盐水、记录纸、笔等实验方法：1. 家兔麻醉：将家兔置于手术台上，采用吸入麻醉法进行麻醉。
2. 心脏暴露：沿家兔胸部正中线切开皮肤，暴露心脏。
3. 心脏连接：将心脏功能测定仪的电极连接到心脏表面，确保连接牢固。
4. 数据采集：开启心脏功能测定仪，记录心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据。
5. 心脏功能实验：分别进行心脏负荷实验、心脏缺血实验和心脏药物实验，观察心脏功能的变化。
实验步骤：1. 心脏负荷实验：向家兔体内注入生理盐水，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
3. 心脏药物实验：向家兔体内注入心脏药物，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
实验结果：1. 心脏负荷实验：家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据在注入生理盐水后无明显变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高。
实验分析：1. 心脏负荷实验：生理盐水对心脏功能无显著影响，说明心脏具有较好的耐受性。
2. 心脏缺血实验：阻断冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低，说明心脏在缺血状态下功能受到损害。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高，说明心脏药物具有改善心脏功能的作用。
实验结论：1. 心脏具有较好的耐受性，在正常生理状态下能够承受一定的负荷。
动物测试实训报告
一、实训背景随着科学技术的不断发展，动物实验在医学、生物学、药理学等领域扮演着重要的角色。
为了提高学生对动物实验的理解和操作技能，我们组织了本次动物测试实训。
本次实训旨在让学生了解动物实验的基本原理、操作流程和安全规范，并通过实际操作，提高学生的动手能力和科学素养。
二、实训目的1. 熟悉动物实验的基本原理和操作流程。
2. 掌握动物实验的安全规范和注意事项。
3. 培养学生的实验操作技能和科学思维能力。
4. 增强学生对动物实验伦理的认识。
三、实训内容1. 实验动物的选择与饲养本次实训选择的是小白鼠作为实验动物。
小白鼠体型较小，易于操作，且在实验中较为常见。
在实训过程中，我们学习了小白鼠的饲养方法，包括饲料、饮水、温度和湿度等环境条件的控制。
2. 动物实验基本操作在实训中，我们学习了动物实验的基本操作，包括抓取、固定、注射、采血等。
这些操作对于后续实验的顺利进行至关重要。
3. 实验设计与实施本次实训设计了一个简单的实验：观察小白鼠在不同浓度的药物溶液中的行为变化。
实验过程中，我们学习了如何设计实验方案，包括实验分组、实验步骤、数据记录等。
4. 实验数据分析与结果处理实验完成后，我们学习了如何对实验数据进行整理和分析，并得出结论。
通过统计分析软件，我们得出了实验结果，并对结果进行了讨论。
四、实训过程1. 实验准备在实训开始前，我们首先对小白鼠进行了适应性饲养，确保其在实验过程中能够保持良好的状态。
同时，我们还对实验所需的器材和试剂进行了检查和准备。
2. 实验操作在实验过程中，我们严格按照操作规程进行操作，确保实验的准确性和安全性。
在抓取、固定小白鼠时，我们注意动作轻柔，避免造成动物伤害。
3. 实验数据记录与分析实验过程中，我们对小白鼠的行为变化进行了详细记录，并按照实验设计进行分组。
实验结束后，我们对数据进行了整理和分析，得出了实验结论。
五、实训成果与体会1. 成果通过本次实训，我们掌握了动物实验的基本原理和操作流程，提高了实验操作技能。
实验动物学实验报告(大鼠,小鼠),小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：昆明小鼠2只（1雌1雄）三、实验步骤1、抓取和固定，标记2、去毛3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉6、处死：脊椎脱臼法7、解剖：雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）雌性：双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定标记：抓取：抓小鼠的尾根部固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
并标记：2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml3、注射给药：腹腔注射：从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
4、采血从眼角内侧0.5cm处进针眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉：0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功6、处死：脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖：雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性：双角子宫、卵巢 3.7.2 肾上腺：米粒大小胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状 3.7.4 ，胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
动物试验报告
精品文档实验动物学实验报告学院:学号:姓名时间:精品文档实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法；4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法；6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。
另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。
2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法精品文档用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2〜0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。
动物各种实验报告
一、实验目的1. 了解动物实验的基本原理和方法；2. 掌握动物实验的基本操作技能；3. 培养学生的实验操作能力和科学素养；4. 为后续相关研究提供实验依据。
二、实验内容1. 实验动物：选用健康、体重相当的成年小白鼠（♂）和成年雌性小白鼠（♀）各5只，编号为A1-A5、B1-B5。
2. 实验材料：实验动物、生理盐水、实验试剂、手术器械、显微镜、细胞培养箱、恒温培养箱等。
3. 实验分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组5只。
4. 实验方法：（1）实验组：采用手术方法，对实验动物进行器官摘除手术，如肾脏、肝脏、脾脏等，观察术后动物的生命体征、器官功能恢复情况。
（2）对照组：不进行手术操作，仅进行生理盐水注射。
（3）观察指标：观察实验动物术后生命体征（呼吸、心率、体温）、器官功能恢复情况、细胞培养生长情况等。
三、实验结果1. 实验组动物在手术过程中表现出一定的应激反应，如呼吸加快、心率增快等。
术后，实验动物的生命体征逐渐恢复正常，但部分动物出现器官功能受损现象。
2. 对照组动物生命体征稳定，器官功能正常。
3. 细胞培养实验结果显示，实验组细胞生长速度较对照组慢，细胞活力降低。
四、实验分析1. 手术对动物机体造成一定程度的损伤，导致实验动物出现应激反应。
术后，动物生命体征逐渐恢复正常，但部分动物器官功能受损。
2. 手术对细胞培养实验结果产生影响，实验组细胞生长速度较对照组慢，细胞活力降低。
五、实验结论1. 动物实验是研究生物学、医学等领域的重要手段，了解动物实验的基本原理和方法对于科研工作者具有重要意义。
2. 手术对动物机体和细胞培养实验结果产生一定影响，需在实验过程中严格控制手术操作和实验条件。
3. 本实验为后续相关研究提供了实验依据，有助于进一步探讨动物实验在生物学、医学等领域中的应用。
六、实验建议1. 在动物实验过程中，严格遵循动物实验伦理，确保动物福利。
2. 优化实验方案，提高实验结果的可重复性。
动物实验实习报告
动物实验实习报告一、实习背景及目的近年来，随着生命科学和医学研究的不断深入，动物实验在科研和教学中扮演着越来越重要的角色。
为了提高我国生命科学和医学研究的水平，培养具有实践能力和创新精神的科研人才，我国高校和研究机构纷纷开设了动物实验课程。
本报告旨在总结我在动物实验实习过程中的所学所得，提高自己的实践能力和科研素养。
二、实习内容与过程1. 实习前的准备在实习开始前，我们参加了为期一周的实验操作培训，学习了动物实验的基本操作技能，如小鼠的捉拿、注射、手术等。
同时，我们还学习了实验动物的生物学特性、实验设计和数据分析等方面的知识。
2. 实习过程实习过程中，我们分为若干小组，每组负责一个实验项目。
我所在的小组负责观察小鼠对不同药物的反应。
我们的实验步骤如下：（1）捉拿小鼠，进行体重和身长的测量。
（2）根据实验设计，给小鼠注射不同剂量的药物。
（3）观察并记录小鼠的生理反应，如行为、呼吸、心跳等。
（4）药物作用一段时间后，再次测量小鼠的体重和身长。
（5）对实验数据进行统计分析，探讨药物剂量与小鼠反应之间的关系。
3. 实习中的困难与解决办法在实习过程中，我们遇到了一些困难。
例如，部分同学在捉拿小鼠时，由于手法不当，导致小鼠受到惊吓或伤害。
针对这一问题，我们请教了实验指导老师，学习了正确的捉拿方法，并在实践中逐渐熟练。
另外，部分同学在数据分析过程中，由于统计方法不当，导致结果出现误差。
我们通过查阅资料和请教老师，掌握了正确的统计分析方法。
三、实习收获与反思1. 实习收获通过本次实习，我掌握了动物实验的基本操作技能，了解了实验设计和数据分析的方法，提高了自己的实践能力和科研素养。
同时，我在实习过程中学会了与团队成员协作，提高了团队协作能力。
2. 实习反思回顾实习过程，我认为自己在以下方面还有待提高：（1）实验操作的熟练程度。
虽然我们在实习前进行了培训，但实践中仍存在操作不熟练的现象，需要在今后的实践中多加练习。
实验动物学 实验报告
实验动物学实验报告实验动物学实验报告引言：实验动物学是一门研究动物在实验条件下的生理、行为和遗传等方面的学科。
通过对实验动物的观察和实验研究，我们可以更好地了解动物的生物学特性，推动科学研究的进展。
本篇文章将介绍实验动物学的背景和重要性，并通过实验报告的形式，展示一项关于实验动物行为观察的研究。
一、背景介绍实验动物学作为一门交叉学科，涉及生物学、心理学、医学等多个领域。
通过对实验动物的研究，我们可以更好地了解动物的生理特征、行为模式以及遗传机制。
实验动物学的研究成果不仅对人类健康和医学发展具有重要意义，还对生态学、环境保护等领域有着深远的影响。
二、实验目的本次实验的目的是观察小鼠在不同环境条件下的行为变化，以探究环境对小鼠行为的影响。
通过观察小鼠在不同环境中的活动、探索和社交行为，我们可以了解环境因素对小鼠行为的调节作用。
三、实验设计1. 实验动物选择我们选择了同一品种、同一年龄段的小鼠作为实验对象，以减少个体差异对实验结果的影响。
2. 实验环境设置我们设计了三种不同的实验环境：标准环境、贫乏环境和丰富环境。
标准环境为小鼠常见的饲养条件，包括饲料、水和床材。
贫乏环境中只提供基本的饲料和水，而丰富环境则在标准环境的基础上增加了游戏器具和障碍物等元素。
3. 实验过程我们将小鼠分别放置在三种环境中，并记录它们的行为表现。
观察指标包括活动时间、探索行为、社交行为等。
四、实验结果与分析在标准环境中，小鼠表现出正常的活动行为，包括进食、活动和休息。
在贫乏环境中，小鼠的活动范围受限，表现出较少的探索行为和社交行为。
而在丰富环境中，小鼠表现出更多的活动行为，包括玩耍、攀爬等，同时也表现出更多的探索和社交行为。
通过对实验结果的分析，我们可以得出结论：环境对小鼠的行为有着显著的影响。
贫乏环境对小鼠的行为产生抑制作用，而丰富环境则能够激发小鼠的活动性和探索欲望。
五、实验意义与展望本次实验结果表明，环境对动物行为的调节作用是显著的。
做动物实验实习报告
动物实验实习报告一、实习背景与目的作为一名生物科学专业的学生，为了提高自己的实践操作能力和对动物实验的认识，我于XXXX年XX月参加了为期两周的动物实验实习。
本次实习旨在了解动物实验的基本操作流程，掌握实验动物的解剖、生理和病理变化，培养自己的实验操作技能，同时强化动物实验伦理和生物安全意识。
二、实习内容与过程1.实习前的准备在实习开始前，指导老师详细讲解了动物实验的基本原则、操作流程和注意事项，重点强调了动物实验伦理和生物安全意识。
此外，我们还学习了实验动物的解剖学、生理学和病理学知识，为实习打下了坚实的基础。
2.实习过程实习过程中，我们分为若干小组，每组负责一个实验项目。
以下是本次实习的主要内容：（1）实验动物的捉拿与保定：我们学习了如何正确捉拿和保定实验动物，以减少动物的痛苦和损伤。
（2）实验动物的解剖：在老师的指导下，我们进行了实验动物的解剖，观察了其内部结构和器官。
（3）实验操作：我们参与了各种实验操作，如给药、采血、制作组织切片等。
（4）数据记录与分析：我们认真记录了实验数据，并学会了如何进行数据分析和撰写实验报告。
（5）实验伦理与生物安全：实习过程中，我们始终遵循实验伦理原则，尊重生命，确保生物安全。
三、实习收获与体会1.技能提升通过本次实习，我掌握了实验动物的捉拿、保定、解剖等基本操作技能，学会了实验操作方法和数据处理，提高了自己的实践能力。
2.知识丰富实习过程中，我对实验动物的解剖、生理和病理变化有了更深入的了解，为自己的专业知识体系打下了坚实基础。
3.实验伦理与生物安全意识本次实习使我深刻认识到实验伦理和生物安全的重要性，我将严格遵守相关规定，尊重生命，确保实验的合规性和安全性。
4.团队合作在实习过程中，我与同学们密切配合，共同完成各项任务，学会了团队合作和沟通，提高了自己的综合素质。
四、总结通过本次动物实验实习，我不仅提高了自己的实践操作能力，丰富了专业知识，还强化了实验伦理和生物安全意识。
动物实验实训报告
一、实训目的本次实训旨在通过虚拟仿真技术，模拟动物实验过程，使学生了解动物生理、病理变化，提高实验技能，同时培养实验操作规范性和科学素养，增强动物实验伦理意识。
二、实训时间2023年11月1日至2023年11月5日三、实训地点动物虚拟实训中心四、实训内容1. 动物生理学实验- 实验项目：心脏解剖与生理- 实验目的：了解心脏的结构和功能，观察心脏在生理状态下的活动规律。
- 实验过程：通过虚拟仿真系统，模拟打开动物胸腔，观察心脏外观，识别心脏各结构，如心房、心室、瓣膜等，并通过操作模拟心电生理实验，观察心脏的生理活动。
2. 动物病理学实验- 实验项目：肝脏病理变化观察- 实验目的：了解肝脏在病理状态下的形态变化，掌握病理切片的制作方法。
- 实验过程：通过虚拟仿真系统，模拟肝脏病理切片的制作过程，包括取材、固定、脱水、染色等步骤，观察肝脏在不同病理状态下的形态变化，如脂肪变性、纤维化等。
3. 动物药理学实验- 实验项目：药物对动物生理指标的影响- 实验目的：了解药物对动物生理指标的影响，掌握药物作用机理。
- 实验过程：通过虚拟仿真系统，模拟动物给药过程，观察药物对动物体温、心率等生理指标的影响，分析药物作用机理。
五、实训结果与分析1. 动物生理学实验- 通过虚拟仿真系统，学生对心脏的结构和功能有了直观的认识，掌握了心脏生理活动的规律。
- 学生能够熟练操作虚拟仿真系统，进行心电生理实验，提高了实验技能。
2. 动物病理学实验- 学生掌握了病理切片的制作方法，能够识别肝脏在不同病理状态下的形态变化。
- 通过观察病理切片，学生对肝脏疾病有了更深入的了解。
3. 动物药理学实验- 学生了解了药物对动物生理指标的影响，掌握了药物作用机理。
- 通过虚拟仿真系统，学生能够模拟药物给药过程，提高了实验技能。
六、实训体会1. 虚拟仿真技术为动物实验教学提供了新的手段，有助于提高学生的实验技能和科学素养。
2. 虚拟仿真实验具有安全性高、成本低、操作简便等优点，有助于培养学生的实验操作规范性和伦理意识。
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复旦大学实验动物学实验报告实验报告一小鼠的一般技术操作一、实验目的和要求：通过实际操作，掌握小鼠实验的一般操作方法，包括动物的抓取和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
二、实验基本步骤：（一）抓取和保定先用右手将小鼠的尾巴提起，至于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎行进时，再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤，翻转小鼠至于掌心，拉直后肢。
以小指拉住小鼠尾巴即可。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用专门的小鼠固定器进行保定。
（二）性别鉴定将小鼠抓取后，观察其肛门及生殖器之间的距离，距离远的为雄性，距离近的为雌性。
另外翻转小鼠观察生殖器附近，性成熟的雄性小鼠的睾丸降至阴囊内，会有明显的突起；雌性小鼠的肛门至会阴处有一条无毛覆盖的细线。
（三）编号方法常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。
此外还有断趾法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。
在本次实验中，我们小组使用的是染色法。
（四）去毛方法常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。
（五）给药方法常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。
1．经口给药法（1）灌胃法：左手固定小鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从小鼠的一侧犬齿缺失处插入口中，灌胃针竖起靠向口腔后壁，使小鼠消化道成直线，沿咽喉壁缓慢插入食管，使其前段到达膈肌位置，灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食管或误入气管。
（2）口服法在本次实验中，我们小组使用的是灌胃法。
2.注射给药法（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）腹腔注射（4）静脉注射在本次实验中，我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。
（六）采血方法1.断头取血2.眼眶后静脉丛穿刺采血3.尾静脉切割采血法4.摘眼球采血法5.心脏采血在本次实验中，我们小组使用的是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。
（七）麻醉方法1.常用局部麻醉剂：普鲁卡因、利多卡因2.常用全身麻醉剂：乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。
在本次实验中，对小鼠采用腹腔注射麻醉，方法与腹腔注射给药一样，麻醉剂是2%水合氯醛，剂量为400mg/kg，注射量为0.5ml/25g。
（八）皮肤移植在本次实验中，在小鼠尾巴上切取长8mm，宽3mm的皮肤，切取效果不好。
（九）处死方法1.颈椎脱臼法2.断头法3.击打法4.急性大出血法5.药物致死法在本次实验中，我们小组采用的是颈椎脱臼法。
（十）解剖方法解剖步骤如下：动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。
从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。
按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器的位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。
先在胸腔入口处切断食管和气管，将心和肺一起取出；再依次摘除腹部脏器脾、肝、肾上腺、肾、胃、肠和盆腔器官，分别进行各脏器的检查。
在本次实验中，我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。
在观察各个脏器之后，着重又观察了胸腺（在胸腔入口处，乳白色，由左右2叶组成）、胰腺（分散在十二指肠、胃底和脾门处，色淡红，不规则，似脂肪组织）、肾上腺（位于肾脏上级，白色，周围有较多脂肪组织包绕）、雌性小鼠的子宫（呈“Y”型，为双角子宫，分为子宫角、子宫体、子宫颈）、卵巢（位于双侧肾脏下缘附近，粉红色，为系膜包绕，不与子宫想通）、雄性小鼠的睾丸（椭圆形白色物质）、凝固腺（附着于精液腺内侧，呈半透明的半月形器官）。
实验报告二兔的一般操作技术一、目的和要求通过实际操作，基本掌握兔的抓取和保定、性别鉴定、灌胃、耳缘静脉采血注射、解剖、处死等操作技术。
二、实验基本步骤：（一）抓取和保定1.抓取：轻轻打开笼门，勿使兔受惊，当兔安静下来时，用手伸入笼内，从头前部阻。
它跑动，用右手把两耳轻轻压于手心内，抓住颈背部皮肤提起兔，然后用左手托住臀部，兔身的重量大部分落在左手掌上。
2.保定：将兔置于实验台上，待兔安静后。
双手各抓一侧兔前肢，肘部夹住兔后肢后向胸腹部靠拢，展开兔前肢，暴露兔雄部。
（二）性别鉴定使兔下腹部朝向观察者，将生殖器周围的皮肤拨开，可见一圆孔，里面暴露出阴茎，则为雄性，反之为雌性。
（三）给药方法1.灌胃2.耳缘静脉注射在本次实验中，我们小组采用的是灌胃给药法，由于没有固定器和开口器，灌胃给药由三人完成：第一人固定兔，将兔放于桌面，双手抓住兔的两前肢，前臂与兔身平行，用肘部夹住兔的身体；第二人用止血钳从兔嘴的一侧插入兔嘴中，并压住舌头，将嘴撑开；第三人取12号导尿管插入食管。
（四）采血方法1.耳静脉采血2.耳中央动脉采血3.心脏取血4.后肢颈部皮下静脉取血在本次实验中，我们小组采用的是耳缘静脉采血和心脏取血。
（五）处死方法常用的是空气栓塞法（六）解剖方法腹部朝上置于解剖盘中，将腹中线处的毛湿润，自生殖器开口稍前方提起皮肤，沿腹中线剪至颌底。
然后从颈部向左、向右横剪至耳廓基部。
以左手持镊子夹起颈部剪开的皮肤边缘，右手解剖刀小心的清楚皮下结缔组织。
按实验指导上的顺序观察：腺体、消化系统、呼吸系统、循环系统、生殖系统。
在本次实验中，我们小组解剖的是一只雄性兔，在观察各个脏器后，又着重观察了门齿（3对）、胸腔（与其他动物不同，中部纵膈将胸腔分为左右两室，互不相通，开胸后打开心包暴露心脏进行实验操作时动物不需作人工呼吸）、圆小囊（较黄、壁厚、在回肠和盲肠连接处）。
观察其他小组雌性兔的子宫（双子宫，2个子宫开口于单一的阴道）。
实验报告三豚鼠的一般技术操作一、实验目的通过实际操作，基本掌握豚鼠的抓取和保定、性别鉴定、心脏采血、处死、解剖等操作技术。
二、实验基本步骤（一）抓取和保定先用右手示指和中指轻轻夹住豚鼠颈部，拇指和示指抓住豚鼠左前肢，中指和无名指抓住豚鼠的右前肢，手掌抓住背部，拿起豚鼠，左手托住豚鼠臀部，并固定其后肢。
（二）性别鉴定抓取豚鼠后，翻转观察生殖器附近，雄性豚鼠的睾丸降至阴囊内，会有明显突起。
（三）采血的方法1.耳缘剪口采血2.心脏采血3.股动脉采血4.背中足静脉取血在本次实验中，我们小组采用的是心脏采血。
（四）处死方法心脏大量采血，造成豚鼠急性失血而死亡。
（五）解剖方法解剖操作：将豚鼠处死后，将其仰卧固定于解剖板上，用剪刀沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌和腹膜，暴露豚鼠腹部的内脏器官，先找到豚鼠的结肠，沿着结肠带寻找盲肠。
在本次实验中，我们小组解剖的是雄性豚鼠，在观察胸腔器官、腹腔器官、大脑、生殖系统、豚鼠颞骨后，又着重观察了胸腺（在颈部皮下气管两侧，于下颌骨角到胸腔入口中间，2个光亮淡黄色、细长成椭圆形、充分分叶的腺体）、睾丸（椭圆形、纵行稍向背外侧排列于阴囊）。
实验报告四大鼠的一般操作技术一、实验目的和要求通过实际操作，掌握大鼠实验的一般操作步骤，包括动物的抓取和保定、性别鉴定、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
大鼠急性肺水肿模型的复制；观察阴道涂片阴道涂片的制作及性周期观察。
二、实验基本步骤：（一）抓取和保定将大鼠放置于桌面，右手抓住其尾部，牵制大鼠的活动，左手放在大鼠背部，并迅速向前推移，从其颈部保定；迅速将大鼠翻转过来，同时左手作半握状，大拇指用力顶住大鼠下颌骨，并适当的压住大鼠前肢，力度要适当，以头不能抬、前肢不能挣扎为宜，其余四指在下顶住枕骨。
右手也做半握状，保定其后肢和大鼠尾巴，防止其挣扎，左右两手用力将大鼠身体拉直，力度适宜。
注意：大鼠尾巴覆有短毛和环状角质鳞片，大鼠尾巴表皮角质程度高于小鼠，抓取时应注意避免力度、抓取位置及不要让大鼠尾巴转圈，以免尾巴断裂。
（二）性别鉴定将大鼠抓取后，观察其肛门及生殖器之间的距离，距离远的为雄性，距离近的为雌性。
另外翻转大鼠观察生殖器附近，成年雄性大鼠的睾丸降至阴囊内，会有明显的突起；成年雌性大鼠有6个乳头。
（三）给药方法根据我们的实验目的和要求，对于实验的大鼠采取以下4种给药方法。
1.灌胃法2.腹腔注射3.肌内注射4.静脉注射在本次实验中，我们小组使用的是灌胃法、腹腔注射、静脉注射。
（四）采血方法1.腹主动脉采血法2.眼眶后静脉丛穿刺采血3.尾尖采血法4.颈静脉采血法5.心脏采血6.舌下静脉采血在本次实验中，我们小组使用的是尾尖采血法、心脏采血、舌下静脉采血法。
（五）麻醉方法一般采用腹腔注射麻醉，方法与腹腔注射给药一样，麻醉剂是10%水合氯醛，剂量为400mg/kg，用量为1ml/250g。
（六）处死方法大鼠处死方法可以采用引颈法，此法快速而痛苦小，对一般实验结果无影响。
在本次实验中，我们小组有1只雌性大鼠采用的是引颈法，1只雄性大鼠建立肺水肿模型后，采用引颈法处死。
（七）解剖方法固定大鼠，以下腹部最低点起始，V字开口，沿中线剪开皮肤至剑突，再剪开腹膜，暴露腹部盆腔器官。
腹腔内器官包括肝脏（无胆囊），脾脏，胰腺（位于中部与脾脏相连的分散的脂肪样结构），胃，肠道，肾脏（推开肠管可见），输尿管，膀胱，生殖器官（雌性：子宫和卵巢；雄性：将睾丸挤入盆腔内，即可见两个椭圆形白色睾丸）等，与人类器官位置相近。
继续剪开胸部皮肤和肋骨，见两侧肺脏（左1、右4）和心脏，向上有器官。
在本次实验中，我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。
未剪开头部，没有观察大鼠的头部。
在了解大鼠的基本解剖结构、器官形态和特点，除了观察一般脏器如心脏、肺脏、脾脏等外，主要寻找并观察了胸腺（在胸腔入口处，乳白色，由左右2叶组成）、甲状腺（在颈部环状软骨高度，位于器官两侧，白色脂肪样物质，0.5-1mm，很小，不细分辨别很容易找不到或当成脂肪丢弃）、肾上腺（位于肾脏上级，距离肾脏大约0.3cm，为白色米粒样物质）。
（八）大鼠急性肺水肿模型的复制在本次实验中，我们小组雄性大鼠体重350g,注射8%的氯化铵3.5ml。
观察大鼠出现：口唇紫绀、眼睛突出、四肢无力、头向胸部弯曲及四肢抽搐。
采用引颈法处死，解剖观察，取出双肺称重2.1g，由于实验器材有限，在本次实验中并未计算肺重量系数。
（九）阴道涂片的制作及性周期观察保定大鼠，充分暴露阴道，用滴管吸生理盐水1ml，然后插入大鼠阴道深部反复冲洗4---5次，确保有吸到阴道分泌物。
将1滴冲洗液涂于载玻片上，用酒精灯烘干。
用姬姆萨染液染色20min，流水冲洗，在显微镜下观察。
常见3种细胞：角化上皮细胞的体积较大，呈片状，多变形；有核上皮细胞体积中等，圆形或椭圆形；白细胞体积较小、圆形、透亮。
采用阴道涂片法判断大鼠性周期，具有准确、简便、实用等优点。
实验报告五Beagle犬的常用操作技术的示教实验一、实验目的和要求通过示教和实际操作初步掌握Beagle犬的主要采血和注射给药等操作技术。
二、实验基本步骤（一）Beagle犬年龄的判断判断犬的年龄，主要依靠犬牙齿的磨损和脱落情况。