细菌标本采集规范
细菌培养标本的_采集、运送与处理
淋球菌培养
杜克雷嗜血杆菌培养
手术创口、烧伤创面与脓液处理
无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用棉拭子采取病灶深 部的脓液和分泌物，置运送培养基内送检。采2个拭 子，一个培养，一个涂片。 开放性脓肿：尽可能抽吸或将拭子深入伤口，紧贴伤 口前沿取样。从脓肿底部或脓肿壁取样最好。 封闭性脓肿：宜用碘酒、酒精消毒皮肤后，无菌注射 器抽取脓液送检，最好做厌氧培养。 采样前病灶局部应避免用抗菌药物或消毒剂。
采血次数与间隔
急性感染患者： 从两臂分别采2份血样。 感染性心内膜炎患者: 24h内采血3次, 每次间 隔不少于30分钟。 发热原因不明患者: 24-48h后可再采血2次,间 隔不少于60分钟。
采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。 血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
标本采集的普遍原则
避免自身菌群的污染，只要可能的话，应该确定一个代表感染过 程的标本。 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备采集标本。 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的标本。 收集标本量要足够，量少可能导致假阴性结果。 每份标本上注明姓名，标本来源，采集部位，时间和日期。 将标本放在设计用于提高可能病原体的生存、无漏、无菌、无潜 在安全性问题的容器内。
培养条件
视患者的感染、用药情况选用不同的培养瓶。真菌培 养可和普通培养共用一需氧瓶。 不需要每个血培养都作厌氧培养。若同一次抽血既做 需氧也做厌氧，应先厌氧再需氧。 黄色——小儿瓶 蓝色——未用抗生素需氧 绿色——已用抗生素需氧（√） 紫色——未用抗生素厌氧 橙色——已用抗生素厌氧（√）
标本采集、运送标准操作规程
4 7
血培养 淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培 养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞） 标本收集不符合采集要求 样本混入消毒液 或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。 退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本 退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、 夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化 验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、 衣原体检查周一至周六上午做，其余时间 标本一律不接收。 • 3． 空气培养、物表监测周六、周日不做， 于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻 血便或便中有脓液 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人
细菌培养标本采集
细菌培养标本采集1、标本采集时间（1）一般原则应在寒战或高温高峰到来之前采集，因为细菌进入血流与寒战发作通常间隔1小时。
无论何时采集，原则上应选择在抗生素应用前，对已用抗生素而无法停药的病人，应在下次用药前采集。
（2）不明原因发热可于发热周期内多次采血作培养，如果24小时培养结果为阳性，应继续采血2～3份或更多血标本进行培养。
（3）心内膜炎急性心内膜炎：治疗前1～2小时内分别在3个不同部位抽血样，分别进行培养。
炎急性内膜炎：除在发热期采血外，应多次采血，第1天做3次培养，如果24小时培养阴性，应继续抽血3份或更多次进行培养。
（4）肺炎链球菌感染最佳时机是在寒冷、高热休克时，此时采集的标本阳性率较高。
2、标本送检时间采集好的血液培养瓶要及时送检。
如应某种原因不能及时送检，应将已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放在冰箱内，否则使阳性率降低送检要保温，并在化验单上标明采集血液标本的准确时间。
3、血液标本采集的量成人采血量一般为10mL，婴幼儿1～2Ml,儿童4～5Ml,在无法确定病人感染何种微生物时，应同时做多种生物培养，如需氧培养、厌氧培养和真菌培。
如病人应用抗生素时间较长，则应和检验科联系调整血液标本和培养基比例，一般血液标本和培养比例为1：10，如使用抗生素达10～15日以上，比例则为1：20或>1:20，儿童血液培养必须使用相应的儿童血液培养瓶。
4、标本采集部位和次数细菌培养阳性率与标本的采集部位和次数关系很大，而且一般成人菌血症感染率是非常低的，因此要多部位、多次采集血液标本进行培养，以提高阳性率。
通常从肘正中或股静脉抽取，不可从静脉注导管处抽血。
5、采集好的血液标本应更换针头，用酒精消毒培养瓶瓶盖后再将血液注入培养瓶。
细菌培养标本采集及注意事项
注意事项
⑴标本采集应在患者用药之前或停止用药 12天后进行；
⑵疑为淋病性关节炎患者的关节液，采集后立
即送检。
⑶不能用棉拭子浸蘸标本送检。
⑷注明标本名称：如、胸水或腹水、关节液等 等。
e.每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提
高阳性率和区分感染菌与污染菌。
f.采血，周围静脉为宜。
g. 严格执行三步消毒后采血。注入血液时不能 将注射器内的空气加入血瓶内。绝对不能超出10 ml。
二、呼吸道标本培养
人体的上呼吸道有常居菌群，下呼吸 道是无菌，但下呼吸道分泌物经上呼吸 道排出时通常受到正常菌群的污染，故 要正确采集标本，并结合临床表现是否 有该细菌引起的感染。
全自动细菌测定系统
7、送检标本：血液、各种无菌体液
（脑脊液、骨髓、胆汁、胸水、腹水、 心包穿刺液等等。）
注意事项
a. 怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（ 38.5 ℃）采 血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
b. 对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在
下次用药前采血。 c . 切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本， 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 d.血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
黑、黑或紫罗兰色，烧伤边缘水肿。患者发烧>38℃或
低体温<36℃，合并低血压。 ②用无菌生理盐水冲洗伤口创面。③由于创面部 位不同，细菌种类也不尽相同，要用灭菌棉拭子采集 多个部位的炎症区送检。
胃肠道标本培养
正常人的肠道栖居大量的不同种类的微
生物（细菌），具有维护健康的重要作用。疾
病时致腹泻。
1、粪便培养检查的送检指征： a、粪便涂片镜检白细胞＞5／HP.
b.重症腹泻.
细菌培养标本的_采集、运送与处理
18
.
血液和无菌体液的处理
血液或无菌体液抽取后应立即放入血培养瓶,立即送检 或室温保存,不能放冰箱!
实验室接到标本应立即放入血培养仪。中夜班收到标 本放置室温,不用放置35℃温箱 。
对急诊室送来或室温久置的标本，应先检查瓶底有无 变化，如变黄，应先涂片并盲传，以防漏检。
导尿管导尿
无菌操作进行导尿可减少尿道污染。 对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用联空针筒的
细针斜穿管壁抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前 段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。 不可从集尿袋的下端管口留取标本。 长期留置导尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本 。
21
隔不少于60分钟。
13
.
采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。
血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
14
.
采血量
每次采血量成人5～10ml，婴幼儿1～2ml， 培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液 中的抗生素。
在安全性问题的容器内。
4
.
标本转运的原则
所有标本必须立即送交实验室，最好不要超过 2小时，如标本处理不得不延迟，应在合适的 条件下储存，但不超过24小时。
对环境敏感的微生物包括志贺氏菌（应立即处 理）、淋球菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌 （对低温敏感）。脑脊液、生殖器、眼或内耳 标本不要冷冻。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才 能正确实施有效地抗菌治疗，从而有助于提高 治愈率和降低医疗费用。
10
.
采血时机
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间，保证在留取标本后1小时内送至检验科。
粪便标本:自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物，一般取1~3ml，直接装入粪便容器中送检。
清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上.最好留取早晨清洁中段尿标本。
注意:容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中,不要随意乱放。
留取方法：(1）患者睡前少饮水；（2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮,仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；（3）开始排尿,将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。
自然咳痰标本:患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙.先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。
粪便标本：自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物，一般取1～3ml，直接装入粪便容器中送检。
清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。
最好留取早晨清洁中段尿标本。
注意:容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放.留取方法：(1）患者睡前少饮水；(2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围；（3）开始排尿，将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。
自然咳痰标本：患者清晨起床后,用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌，有假牙者应取下假牙。
先轻咳，咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。
细菌标本的采集原则
细菌标本的采集原则
1.选择合适的采集部位：根据患者病情和临床症状选择合适的采集部位，如口腔、咽喉、鼻腔、耳朵、皮肤、泌尿生殖系统等。
2. 采集标本时要避免被污染：在采集标本之前，要保证采集部位干净，并注意避免手部、器具等的污染。
3. 采集标本时要注意采集量：采集标本时要尽可能多地采集，以免产生假阴性结果。
4. 采集标本时要注意采集时间：采集标本的时间应该尽可能在病情发生之后，以便更准确地检测出病原菌。
5. 采集标本时要注意保存温度：采集后的细菌标本应该及时送到实验室检测，并在长时间保存时注意保存温度，避免影响检测结果。
以上是细菌标本的采集原则，医护人员在进行细菌标本采集时应当严格遵守。
- 1 -。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
微生物标本采集、送检及处理原则
微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则：1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。
2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。
3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。
4、注意在不同病程采集不同部位标本。
5、采集标本时要防止传播和自身感染。
二、标本的处理：1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。
脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。
对环境敏感的细菌应保温并立即送检。
2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。
切勿污染环境。
对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。
3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。
Ⅰ血液及骨髓标本：血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。
如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。
常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。
1、采血时间及次数2、抽血部位及抽血量3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。
查见细菌报告菌名和药敏结果。
4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）；2）发病星期后血中抗体滴度上升。
Ⅱ脑脊液标本：脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。
正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。
常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。
1、涂片检查：(1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。
(2)结核分枝杆菌涂片检查(3)新生隐球菌涂片检查2、分离培养3、报告方式：培养48小时，仍无菌生长者报告“培养2天无细菌生长”。
细菌标本的采集和运送
1
．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染原则下认真进行。
2
．已采集原始标本都应置于、密封的容器中运送，含有明显区分各部门文字标
志。
3
．带针头的注射器运送标本到实验室，用无菌试管或防护装置套住注射针，再
置于防漏塑料袋中运送。
4
．避免来自寄生菌的污染，应当保证每份标本代表感染过程。健康宿主在感染
时，
可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，
以诱发咳痰。
粪便标本的采集
当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培养：
(1)
粪
便涂片镜检白细胞
>5
／
HP
；
(2)
重症腹泻；
(3)
体温大于
38.5
℃；
(4)
血便；
(5)
便中
有脓液；
(6)
未经抗菌药物治疗的持续性腹泻患者；
30s
或
10
％碘伏
60s
，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域
直径达
3cm
以上。
3)70
％酒精脱碘。对碘过敏的患者，用
70
％酒精消毒
60s
，待酒精挥发干燥后采
血。
9
．培养瓶消毒程序
1)70
％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用
60s
。
2)
用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。如果是自
配带塞子的三角瓶，此步骤可免去。
2
～
3
份血标本，
24
～
36 h
后估计体温升高之前
临床细菌检验标本的采集、运送-医学资料
然后涂片革兰染色镜检，把镜检结果及时 电话通知主管医师，并填写初检结果临床 通知单。例如：检到葡萄状排列G+C,可报 告“找到G+C，形似葡萄球菌”。
常规培养5天，认为阴性者，报告无菌生长
正常人的血液、骨髓是无菌的，标本中检 出细菌，都应视作病原菌 ﹝需排除污染﹞。
脑脊液标本的处理
涂片查抗酸杆菌：脑脊液以4000r/min离心30min， 取沉淀物涂片，做抗酸染色。涂片查新型隐球菌： 将脑脊液离心沉淀物进行墨汁染色，在黑色背景 中见到菌体周围有透明荚膜，有时可见出芽的酵 母菌。
眼耳鼻喉拭子标本的处理
根据这些部位感染细菌的特点，须用血平 板和巧克力平板作分离培养，必要时加选 麦康凯，需分区划线。巧克力平板在CO2 环境中孵育，利于肺炎链球菌、嗜血杆菌 和脑膜炎奈瑟菌的生长。
涂片检查：将拭子直接在玻片上涂片，革 兰染色镜检查细菌、真菌，如果查真菌还 可以湿片直接在高倍镜下检查芽生孢子和 假菌丝。
脑脊液培养用血培养仪，阳性报警标本处理同血 培养。
注意：涂片检到平面相对、成双排列G—C,可报 告“找到G—C, 形似脑膜炎奈瑟菌”。巧克力平 板于CO2环境分离脑膜炎奈瑟菌和嗜血杆菌。
尿标本的采集运送和处理
中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿， 让尿流不间停，截留中段尿不少于1ml。2hr内送 交实验室，在4ºC也不能超过24hr。实验室接到 标本应立即处理。细菌培养接种血平板和麦康凯， 真菌培养选用TTC-沙保罗平板。
真菌培养：将标本接种两个TTC-沙氏平板 及 血 平 板 ， 置 25℃-30℃ 和 35℃ 孵 育 2448hr。真菌性腹泻多继发于抗生素治疗后， 常见有白色假丝酵母菌。
对化验单上明确要求做霍乱弧菌培养以及 霍乱弧菌快检阳性的均应做霍乱弧菌培养， 以便确诊和做进一步分型。方法是取一环 大便标本或碱性蛋白胨水增菌液接种碱性 平板或TCBS平板及血平板，要求三区划线， 然后置35℃孵箱中孵育。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
微生物标本采集操作规程
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。
为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。
一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。
消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。
值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。
二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。
如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
细菌标本采集注意事项
细菌标本采集注意事项
嘿，你问细菌标本采集注意事项？这可挺重要呢。
采集细菌标本的时候啊，首先得保证干净。
就像你做饭得把锅碗瓢盆洗干净一样，采集标本的工具啊、容器啊都得干净，不能有别的细菌混进去。
要是不干净，那你采的标本就不准啦。
然后呢，得选对采集的部位。
不能瞎采一通。
比如说你要采喉咙里的细菌，那就得用专门的棉签在喉咙那里轻轻擦一下。
要是采错了地方，那也不行哦。
还有啊，采集的时候动作要轻。
不能太粗暴，不然会把组织弄伤，影响标本的质量。
就像你摘个果子，得轻轻地摘，不能硬拽。
另外，采集的时间也有讲究呢。
不同的细菌在不同的时间采集效果不一样。
比如说有些细菌在早上采集比较好，有些在晚上。
得按照要求来。
采集完了，得赶紧把标本送到实验室去。
不能拖拖拉拉的，时间长了细菌可能会变样。
就像你买了新鲜的菜，得赶
紧放冰箱，不然就坏啦。
我记得有一次，我们学校组织体检，要采集细菌标本。
有个同学采集的时候不小心把棉签弄脏了，结果医生说不行，得重新采。
还有个同学采集的部位不对，也得重来。
从那以后，大家都知道采集细菌标本得注意这些事儿啦。
总之呢，采集细菌标本要保证干净、选对部位、动作轻、注意时间、及时送检。
就像做一件精细的活儿，得小心谨慎，才能采到准确的标本。
咋样，明白了不？。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
细菌室标本采集及保存要求
细菌室标本采集及保存要求1、总则：用于细菌培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。
2、临床标本的采集2.1、下呼吸道分泌物(痰液)令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。
2.2、尿液(中段尿)护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌塑料盒中，及时送检。
2.3、粪便取有粘液、脓血部分的粪便置无菌塑料盒中及时送检。
2.4、眼、耳、鼻、喉拭子将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份)，然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌塑料盒中，及时送检。
2.5、脓液用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌塑料盒中，及时送检。
2.6、血液2.6.1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
当然在病人发热或寒颤时采集也可。
2.6.2、成人每次采血5～10m1，小儿采血3～5ml。
2.6.3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。
2.6.4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。
2.7、穿刺液胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液，严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。
2.8、胆汁由专科医生以无菌方法取引流液10m1注入无菌塑料盒内。
2.9、脑脊液以无菌方法取脑脊液3～5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。
2.10、生殖器官标本阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌塑料盒内送检。
如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。
细菌培养标本采集
水化, 生理盐水雾化排痰---重症病人, 气管 抽痰
标本立即送检(1小时内),否则4℃存放 咳痰不宜做厌氧培养---口咽部大量厌氧菌 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如
不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
尿培养 ( Urine Culture )
2 采血量
成人：推荐每个血培养瓶应加的血量为 8～10ml，血液和肉汤比为1：5～10 （体积：体积）。
儿童：因很难获得大量的血液，一般静脉 采血3～5ml 用于血培养。
血液量太多或太少都不利于细菌的检出， 血液的培养量每增加1ml,阳性率增加3～5 ％。人体血液内包含各种抑制细菌生长的 因子或抗生素，注入血液太多可能会抑制 细菌的生长。
体液培养 （Body Fluids Culture）
细菌培养和染色最少需2ml。 需做厌氧培养的体液注意隔绝氧气
接收容器：无抗凝剂的无菌管，密封注 射器。腹腔透析液、腹水、和胸腔积液 更适于种细菌（血）瓶，每瓶接种510ml体液。
抽取尽可能多的液体，不要将拭子放入 液体中。
脑脊液培养 ( Cerebrospinal Fluid Culture )
清洁中段尿：培养前最好停用抗生素48-72 小时, 最好为晨尿。采集标本前,至少清洁尿 道口三次。弃去前段尿，留取中段尿1小时 内送检
无菌导管尿：嘱咐病人憋尿，清洁尿道口， 插尿管，弃去前15-30ML尿液，收集中后段 尿送检
绝对不要送检尿袋尿！！！
ICU病人尿标本采集方法
1.留置导尿管收集尿液：利用留置导尿管 采集标本时，应先消毒导尿管外部，按无 菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液， 操作时应防止混入消毒剂，不能从收集袋 中采集尿液。长期留置导尿患者，应在更 换新尿管时留取尿标本。
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临床微生物学标本采取和处理的规范化要求目的：加大微生物标本送检率；加强微生物标本高质量标本送检率；加强临床与微生物室沟通；重视抗生素应用。
分析前：从临床医生下遗嘱到分析检验程序启动，包括检验单申请，患者的准备，原始样品采集，运送到实验室并在实验室内传输。
分析中：分析后：指检验后的全过程，包括结果的系统性评审，报告的规范格式与解释，报告的发送，标本的储存废弃物处理等。
正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。
标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果，给临床以误导，延误对患者的正确治疗。
为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。
一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。
菌血症：病原菌由局部侵入血液，但未在血液中生长繁殖，只是暂时或一过性通过。
如伤寒和流脑的早期有菌血症期。
败血症：病原菌侵入血液后，在其中大量繁殖并产生毒性产物，引起全身中毒症状，如高热、皮肤和粘膜瘀斑，肝脾肿大等。
鼠疫、炭疽等病原菌均可引起败血症。
毒血症：产外毒素的病原菌在局部组织生长繁殖，只有外毒素进入血循环，并损害易感的组织细胞，引起特殊的毒性症状。
如白喉、破伤风。
内毒血症：侵入血流的G-菌，在血液中大量繁殖、崩解后释放出大量内毒素;或病灶内大量G-菌死亡，释放的内毒素入血所致。
脓毒血症：指化脓性细菌败血症时，细菌通过血流扩散至全身其他组织或器官，产生新的化脓性病灶。
如金葡脓血症，常引起多发性肝脓肿、肾脓肿。
1瓶60% 1对（需氧+厌氧）65%2瓶80% 2对（需氧+厌氧）86%3瓶90% 3对（需氧+厌氧）96%3.采血部位：多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。
要避免从血管插管内取血，因插管常被污染，其培养结果不能反映真实情况。
在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。
4.采血量：采血量与血培养的检出率相关，所以采血量一定要足够。
成人一般为5-10ml，新生儿与婴幼儿为2～5 ml。
考虑为置留管引起的感染，需把置留管入皮肤的一段用无菌方式采下送检微生物室1.一过性菌血症（transientbactermia）：常发生在病人接受抗生素系统治疗且感染的微生物敏感，由条件致病菌引起，可能造成严重的后果。
一过性菌血症发生于治疗初期是由于抗生素的血药浓度不当，发生于治疗晚期是感染部位引流不当或宿主防御功能破坏。
常发生于对感染组织（如脓肿、疖、蜂窝组织炎）的处理、污染粘膜表面的创伤性操作（牙齿修复、膀胱镜检、尿道扩张术及各种插管、引产和乙状结肠镜检查）和污染区的外科手术（经尿道的前列腺切除、阴道子宫切除术和烧伤感染的清创术）。
一过性菌血症亦可发生在全身或局部感染的早期。
据文献报道，脑膜炎、肺炎、化脓性关节炎、骨髓炎、腹膜炎、胆囊炎、小肠结肠炎、外伤或手术感染均可能引发一过性菌血症。
2.持续性菌血症（continuousbacteremia）是感染性心内膜炎、感染性动脉瘤、血栓性静脉炎和其他血管内膜感染的主要特征，亦可发生在伤寒热和波浪热的最初几周。
3.间歇性菌血症（intermittentbacteremia）常发生于腹腔、骨盆、肾周、肝脏、前列腺及其他部位未能及时引流的脓肿，这些脓肿是不明发热的常见原因。
（一）采血指征对入院的危重病人未进行系统性抗生素治疗时，应及时进行血液培养，病人出现以下临床表现时可作为采集血培养的重要指征。
1.发热（》38℃）或低温（《36℃）2.寒战3.白细胞增多（>10×10^9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多）4.粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10^9/L）5.血小板减少6.皮肤、粘膜出血7.昏迷8.多器官衰竭9.血压降低10.呼吸加快或同时具备上述几种临床表现时应采集血培养。
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应该增加尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症患儿（特别是2岁或2岁以下的幼儿）一般在门诊就诊，常伴有明显发热（》38.5℃）和白细胞增多（》20×10^9/L）。
老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎的重要指征。
二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取和处理下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但痰标本的质量往往难以保证，造成病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，直接影响抗菌药物的应用、甚至耐药菌的出现或流行。
痰标本的细菌学检查应注意如下几个问题。
1.标本的采取：自然咳痰：要求患者清晨留取，留取标本前用清水漱口3次，之后用力咳出。
也可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物，咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。
幼儿可用手指轻叩胸骨柄上方以诱发咳痰。
2.气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行操作。
3.纤维支气管镜抽吸：通常用于在给患者行纤维支气管镜检查时顺便抽取。
4.胃液抽取法：多用于可疑患有肺结核的患者在有可能将痰液咽下的情况时采用。
5.标本的运送：标本采集后应立即送检，以避免杂菌过度生长。
6.支气管肺泡灌洗法：肺泡灌洗液。
痰涂片标本质量检查：A.低倍镜下白细胞>25,上皮细胞<10 合格标本B.低倍镜下白细胞>25,上皮细胞<25C.低倍镜下白细胞<10,上皮细胞>25 标本不合格痰培养指证：1.咳痰、咳嗽、痰液可为脓性、血性铁锈色或红棕色胶冻样痰：2.咯血3.呼吸困难呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛；4发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或CRP增高：5.胸部影像学检查提示有感染可能。
肺部感染的患者友25%-50%可能发生菌血症应同时做血培养。
、、、三、尿液细菌培养标本的采集和处理尿液的细菌培养检查对于膀胱和肾脏感染的及早发现和病原学诊断很有价值。
对于尿道、前列腺以及内、外生殖器炎症的诊断也有一定价值。
1.标本收集时间：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5 d之后留取尿液标本；尿液在膀胱内应停留6～8h以上，使细菌有足够时间繁殖。
2.标本收集方法：(1)清洁排尿法：女患者以手指将阴唇分开，用肥皂水或1：1000高锰酸钾水清洗外阴，然后以清水冲洗尿道口周围，擦干并排出前段尿液后，用无菌容器接取中段尿；男患者应翻转包皮冲洗，1：1000新洁尔灭消毒尿道口；婴儿消毒其阴部后，将无菌小瓶直接对准尿道口排尿后立即送检。
(2)膀胱穿刺法：为避免尿道正常菌群的污染，收集尿液最好的方法是膀胱穿刺。
尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。
穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器在耻检验地带网骨联合距脐1/3处穿刺。
膀胱穿刺的适应症有：①有尿道感染的临床症状，但中段尿培养细菌数很低，而又难以确定感染源者。
②婴幼儿、新生儿、不能用导管者。
③怀疑有厌氧菌感染时。
(3)肾盂尿采集法：若取左右两侧肾盂尿，应请泌尿科医生采取，左右侧的标本要标记明确，以免出现错误。
(4)对用封闭式引流装置的留置导尿患者留取尿液标本培养时，用适当的消毒剂严格消毒引流管和导尿管连接处的管壁，用装有21号针头的注射器穿刺导尿管壁吸取尿液。
不可打开导尿管和引流管连接处收集标本，培养用的尿液标本也不能从引流袋中留取。
(5)膀胱镜检查、输尿管插管或逆行肾盂造影时，收集的尿液可用来做细菌培养。
(6)做病毒学检测时用容器收集清洁的标本即可，不需特殊方法收集。
标本中加入抗生素可抑制细菌的过度生长，且标本需冷藏。
2.标本的运送和保存：用无菌带螺帽的容器盛标本，标本应在1 h之内送检，超过2 h 者应重送，否则易致假阳性结果。
评价尿培养标准：1.患者：无症状：>10万CFU/L有症状：1万CFU/L 1-2种条件致病菌；>2种报告“混合菌群”G-菌10万CFU/L G+菌1万CFU/L四、粪便标本微生物学检查的质量要求1.标本采集：粪便标本应在发病早期并且尽量在用抗生素治疗前采集，采集脓血、黏液部分3g以上，外观无异常的粪便应从粪便的表面不同部位取材，液体便取絮状物2-3ML以上。
2.显微镜检查：粪便直接涂片革兰染色，可作为艰难梭菌、弧菌、弯曲菌、葡萄球菌、白色念珠菌等初步筛查，盐水滴片用作肠道寄生虫检查。
3.标本保存和运送：标本置密封好的小瓶中，记录姓名、日期、标本号、及时送检，一般不长于2小时。
五、生殖道标本的采集和处理1.男性标本：(1)如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗龟头部后，以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取，立即送检，或以专用的细拭子插入尿道口1～2cm，旋转采取。
(2)如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺，以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。
2.女性标本：(1)成年妇女自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下，选取有炎症或分泌物部位，先以无菌棉拭子拭去表浅层分泌物，再用另一拭子取分泌物送检。
如做厌氧或真菌培养应另外采取标本。
(2)如未成年幼女疑患性传播疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物送检。
六、胸腹水标本的采集均由医师以无菌手续穿刺取得，必须应用带盖的无菌容器，立即送检。
七、脑脊液:有临床医师采集，一般用腰椎穿刺术，特殊情况可采用小脑延髓池或脑室穿刺术，避免凝固和混入血液，腰穿法无菌取3-5ml为佳八、脓液标本采集1.开放性脓肿分泌物：用无菌盐水冲洗溃疡表面，用拭子在病灶活动区域或基底部采集标本，用2支无菌拭子取溃疡深部分泌物，插入斯氏运送培养基内送检，一支为涂片，一支为培养。
2.大面积烧伤的创面分泌物用灭菌棉拭取多部位创面的服液或分泌物，置灭菌试管内(注明采集部位〉送检。
3.封闭性脓肿消毒局部皮肤或粘膜表面后，用注射器抽取，将脓液注入无菌试管内送检。
疑为厌氧菌感染时，应作床边接种或置厌氧运送培养基内送检。
4.干燥、结痂伤口的标本一般不做培养，除非有渗出物。
脓液和创伤性分泌物标本的采集执征：1.软组织的急性化脓性炎症：如疖、痈、急性蜂窝织炎、丹毒等。
2.化脓性疾病;如甲沟炎、化脓性关节炎、化脓性骨髓炎、气性坏疽、细菌性结膜炎、鼻窦炎、化脓性扁桃体炎、急性化脓性中耳炎、急性化脓性胆囊炎、心包炎、结核性腹膜炎等3.脓肿：扁桃体脓肿、咽部脓肿、脓胸、腹腔脓肿、肾皮质化脓性感染、肾周炎和肾周脓肿、直肠肛管周围脓肿。
4.创伤感染：术后切口感染、导管感染、脐带残端感染。
1.申请单项目与标本不符。
2.申请单姓名、科别、床号与标本的标签不符。
3.标本已有明显的污染迹象(如开塞)。
4.标本量过少或已明显干。