第八章 重组蛋白的分离与纯化-修改
重组蛋白质的表达与纯化
重组蛋白质的表达与纯化重组蛋白质是指通过基因工程技术将目标蛋白的基因导入到宿主细胞中,使其在宿主中表达并纯化得到的蛋白质。
这项技术应用广泛,被广泛用于生物制药、医学研究以及工业生产等领域。
下面将详细介绍重组蛋白质的表达与纯化过程。
一、重组蛋白质表达过程1. 选择表达宿主重组蛋白质表达宿主的选择十分重要。
常用的表达宿主包括大肠杆菌(E. coli)、酵母(yeast)、哺乳动物细胞等。
不同的表达宿主具有不同的特点和适用范围。
例如,大肠杆菌是最常用的表达宿主之一,具有高表达水平、易操作、成本低等特点。
2.构建表达载体表达载体是将目标基因导入宿主细胞的载体。
常用的表达载体有质粒、病毒载体等。
质粒是最常用的表达载体,它可轻松被细菌胞内扩增,并在细胞内产生大量目标蛋白。
3.转染和表达将构建好的表达载体导入到宿主细胞中,实现转染。
转染有多种方法,如电穿孔法、化学法、微粒子轰击法等。
转染后,宿主细胞会开始表达目标基因,合成目标蛋白。
4.优化表达条件为了提高重组蛋白质的产量和纯度,需要对表达条件进行优化。
常见的优化方法包括调节培养基成分、改变培养条件、优化诱导剂浓度等。
二、重组蛋白质的纯化过程1.细胞破碎与分离表达宿主中产生的重组蛋白质往往与其他细胞组分混合在一起,需要通过细胞破碎与分离来获取目标蛋白。
细胞破碎方法包括机械法、超声法、高压法等。
分离方法包括离心、电泳、柱层析等。
2.柱层析柱层析是常用的蛋白质纯化方法之一,它基于蛋白质在柱中不同吸附剂上的亲和力差异来实现分离纯化。
常用的柱层析方法有离子交换层析、亲和层析、凝胶过滤层析等。
3.其他纯化方法除了柱层析外,还有许多其他的纯化方法可供选择。
例如,凝胶电泳、过滤、冷冻干燥等。
这些方法通常用于进一步提纯和去除杂质,以获得纯度更高的重组蛋白质。
三、重组蛋白质应用与挑战重组蛋白质的应用广泛,涉及到生物制药、医学研究、农业等领域。
例如,通过重组蛋白质技术,可以生产用于治疗疾病的药物,如人胰岛素、白介素等。
蛋白质的表达纯化
完全紧贴。)正常安装则会形成一个密闭的容
器。
蛋白质的表达纯化
5.将底座的开关打开, 并向外拨动透明的架子, 使中间空隙增大,放入 电极架。
6.如图所示将电极架往下 压(约1~2mm),使底面 完全接触。
蛋白质的表达纯化
7.关上底座开关。
8.放入电泳槽内,加上加样 架加样。注意加样架与刚才 制胶所用的梳子齿数必须一 致。
• 3. 细胞裂解液3mL以10-15mL/h 流速上Ni2+-NTA柱,收集流 出液。
• 4.洗脱杂蛋白:用50mL洗涤缓冲液UWB以10-15mL/h流速洗柱, 分别取10ul洗涤开始与结束时的样品用于SDS-PAGE 分析。
• 5.洗脱目标蛋白:用10mL洗脱缓冲液洗柱,每管0.5-1 mL, 共收集6-10管,分别取1蛋0白u质l样的表品达纯用化于SDS-PAGE 分析。
蛋白质的表达纯化
实验步骤
• 一、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的诱导 • 1. 接种含有重组氯霉素酰基转移酶蛋白的大肠杆菌
BL21菌株于5mL LB液体培养基中 (含100ug/mL 氨苄 青霉素),37℃震荡培养过夜。 • 2. 转接1mL过夜培养物于100mL(含100ug/mL 氨苄青霉 素)LB液体培养基中,37℃震荡培养至OD600 = 0.6 0.8。取10ul 样品用于SDS-PAGE 分析。 • 3. 加入IPTG至终浓度0.5 mmol/l, 37℃继续培养1-3h. • 4. 12,000rpm 离心10 min, 弃上清,菌体沉淀保存于20℃或-70℃冰箱中。
蛋白质的表达纯化
• 3.制浓缩胶:按所需的浓度配制4%的浓缩胶,配
方如下:
30%Arc- Tris-HCl H2O
Bis
重组蛋白质的表达纯化和结构鉴定
重组蛋白质的表达纯化和结构鉴定在生物医学领域中,重组蛋白质凭借其广泛的应用前景成为了研究热点。
然而,要想获得高纯度的重组蛋白质,并对其结构进行准确的鉴定,需要经历一系列复杂而细致的实验步骤。
本文将从表达、纯化和结构鉴定三个方面介绍重组蛋白质的研究过程。
一、表达重组蛋白质的表达是研究重组蛋白质最初的关键步骤之一。
通常采用大肠杆菌(Escherichia coli)作为表达宿主。
首先,需要将目标基因克隆至表达载体中,确保其与启动子、转录因子等相互配合,并携带一定的标签,如His 标签、GST 标签等。
接着,将修饰好的表达载体转化至大肠杆菌中,采用选择性培养基筛选出目标菌株。
最后,将筛选得到的菌株进行大规模培养,促使目标基因在细胞内表达。
二、纯化获得表达目标蛋白的菌株后,需要将蛋白从细胞中纯化出来。
首先,采用超声波或高压颠破细胞壁,释放出蛋白质。
接着,通过离心等手段将蛋白质与其他细胞组分分离。
此时,可以利用目标蛋白质特异性的亲和层析柱,如镍柱、葡聚糖柱等,吸附目标蛋白质,并通过逆向洗脱等方法,得到高纯度的目标蛋白质。
三、结构鉴定获得纯度较高的重组蛋白质后,需要对其结构进行进一步的鉴定。
常用的结构鉴定方法包括X射线晶体学、核磁共振(NMR)、电子显微镜等。
X射线晶体学是目前应用最广泛的方法,通过将蛋白质结晶并进行X射线衍射实验,得到蛋白质的高分辨率结构。
NMR则通过测量蛋白质中核自旋的相对位置和相互作用关系,获取蛋白质的三维结构信息。
电子显微镜是一种能够获得蛋白质高分辨率结构的技术,主要应用于研究大分子复合物和纤维形态的蛋白质。
除了上述常用技术外,近年来还涌现出一些新的结构鉴定方法,如质谱联用技术、光学显微镜成像、负染电镜等。
这些方法的出现,为蛋白质结构鉴定提供了更多的选择和便利。
由于篇幅所限,本文仅对重组蛋白质的表达、纯化和结构鉴定进行了简要介绍。
事实上,研究重组蛋白质的过程还包括目标基因的设计与合成、蛋白质的功能分析等环节。
重组蛋白质的表达与纯化技术
重组蛋白质的表达与纯化技术蛋白质是生命体活动的重要组成部分,对于生命体的生长、繁殖和免疫功能起着至关重要的作用。
而重组蛋白质则是利用基因工程技术,将人工合成的外源基因导入到特定的宿主细胞中,通过细胞表达和纯化技术得到的转录翻译产物。
这种技术不仅可以生产天然蛋白质,还可以生产人工合成的新型蛋白质,对于疾病的治疗和新药的研发有着重要的意义。
一、蛋白质表达技术蛋白质表达是获得大量重组蛋白质的重要方法。
选择适当的宿主细胞和表达载体是获得高水平表达的关键。
常用的宿主细胞包括大肠杆菌、酵母菌、昆虫细胞、哺乳动物细胞等。
1.大肠杆菌表达系统大肠杆菌表达系统具有生长快、表达量高等优点,广泛应用于重组蛋白质的表达和纯化。
其表达载体主要有pET和pBAD两种,pET系统一般用于产生可以形成包涵体的重组蛋白,pBAD系统用于在分泌表达中产生滞留蛋白。
2.昆虫细胞表达系统昆虫细胞表达系统包括SF9、Sf21、HighFive等细胞系,常用的表达载体为pIB/V5-His、pFastBac等。
昆虫细胞表达系统通常用于表达大分子蛋白质,如糖蛋白、膜蛋白等。
3.哺乳动物细胞表达系统哺乳动物细胞表达系统是目前表达规模最大、表达产物最接近人体蛋白质的一种表达系统。
其表达载体主要有pCDNA3.1、pCI 等,常用于表达与人体有关的蛋白质,如抗体、生长因子等。
二、蛋白质纯化技术蛋白纯化是重组蛋白质生产的重要环节,其目的是得到高质量的、纯度较高的蛋白质样品。
常见的纯化方法包括亲和层析法、离子交换层析法、凝胶过滤层析法、逆流式层析法等。
1.亲和层析法亲和层析法是指因与载体中固定的亲和剂相互结合而纯化目标蛋白质的一种方法。
亲和剂通常是与目标蛋白质有特异性结合作用的化合物,如亲和标签、酶底物、抗体等。
常见的亲和层析方法有亲和柱层析、亲和膜层析等。
2.离子交换层析法离子交换层析法是根据蛋白质带有正或负电荷的差异性进行分离的一种方法。
离子交换层析的柱填充物常为离子交换树脂,其一般分为阴离子交换树脂和阳离子交换树脂两种。
基因工程的下游技术重组蛋白的表达、纯化和分析
基因工程的下游技术是实现基因功能研究和基因产品开发的关键环节,对于生 命科学研究、生物医药、农业、工业等领域具有重要意义。
基因工程下游技术的分类与流程
01
02
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分类
1. 目的基因的克 2. 重组载体转化 3. 表达产物的分 4. 表达产物的分
隆和…
宿主…
离和…
析
基因工程下游技术主要包 括重组蛋白的表达、纯化 和分析等技术。
根据宿主细胞的偏好性, 对重组蛋白基因的密码子 进行优化,以提高重组蛋 白的表达水平。
载体优化
通过改造载体,增加重组 蛋白的表达量和稳定性, 如使用分泌型载体、融合 标签等。
培养条件优化
通过调整培养基成分、温 度、pH等培养条件,提高 重组蛋白的表达水平。
03 重组蛋白的纯化
重组蛋白的分离与纯化方法
详细描述
纯化是重组蛋白制备的关键步骤,通常采用多种分离纯化技术,如离心、过滤、沉淀、离子交换、亲和层析等, 以去除杂质并获得高纯度的目的蛋白。
案例二:重组蛋白的结构与功能分析
• 总结词:重组蛋白的结构与功能分析是了解蛋白性质和功能的重要手段,通过 X射线晶体学、核磁共振等技术,可以解析蛋白质的三维结构,进一步揭示其 生物学功能。
重组蛋白纯化的优化策略
选择合适的亲和配基
针对目的蛋白的特性选择特异性结合的配基,提高亲和 色谱的纯度。
结合多种分离方法
综合运用多种分离技术,如凝胶过滤色谱和反相色谱等 ,提高目的蛋白的纯度和回收率。
ABCD
优化离子交换色谱条件
通过调整离子强度、pH等参数,提高分辨率和纯度。
优化缓冲液和添加剂
选择合适的缓冲液和添加剂,如稳定剂、还原剂等,保 持目的蛋白的稳定性和活性。
重组蛋白分离与纯化技术 ppt!!!
影响盐析的因素
1)温度:除对温度敏感的蛋白质在低温(4度)操作外,一般 可在室温中进行。
2)pH值:大多数蛋白质在等电点时在浓盐溶液中的溶解度最 低。
周质蛋白质浓缩
收集菌体,重溶细胞沉淀于 30mM Tris-HCl pH8.0 20%的蔗糖中。加入EDTA, pH8.0(终浓度 为1mM)。加入磁力搅拌棒,室温下缓慢搅拌10分 钟。
离心收集细胞,去除上清液。 加入预冷的5mM MgSO4 中彻底重溶沉淀,在冰上
缓慢搅拌悬液10分钟。此时周质蛋白被释放入缓 冲液中。 收集上清以备活性分析
注意: 处理过程会产生大量的热,应采取相应降温措施。、 超声破碎细菌一般不宜超过10分钟,溶液变澄清即可停止破碎
蛋白质的盐析
中性盐对蛋白质的溶解度有显著影响,一般在低盐 浓度下随着盐浓度升高,蛋白质的溶解度增加,此
称盐溶;当盐浓度继续升高时,蛋白质的溶解度不 同程度下降并先后析出,这种现象称盐析。
蛋白质技术专题
重组蛋白分离与纯化技术
Mcstone
重组蛋白的富集
原核表达(pET载体)
诱导时间 诱导体积(溶氧量) 温度 IPTG用量 转速
酵母表达
温度 时间
分泌蛋白质浓缩
指溶质 从半透 膜的一 侧透过淀法
用与水可混溶的有机溶剂,甲醇,乙醇或丙酮,可 使多数蛋白质溶解度降低并析出,此法分辨力比盐 析高,但易导致蛋白质变性,应在低温下进行。
蛋白质沉淀的主要原因之一是改变了介质的介电常 数。
蛋白质分离纯化的目的
重组蛋白的高效表达及纯化技术研究
重组蛋白的高效表达及纯化技术研究随着生物技术的发展,蛋白表达与纯化技术在医疗、工业以及科学研究等领域中扮演着越来越重要的角色。
其中,重组蛋白的高效表达及纯化技术是蛋白质学研究的关键环节之一。
本文旨在探讨目前被广泛应用的几种重组蛋白表达及纯化技术,以及它们的新进展与应用前景。
一、背景介绍重组蛋白指的是通过基因重组技术将人工合成的DNA片段引导到细胞中,使其在受到特定刺激后大量表达特定功能蛋白的一种新型蛋白质。
由于其具有高度专一性、易制备性以及更高的效力和安全性,越来越多的药物被开发为基于重组蛋白的生物制剂。
二、重组蛋白表达技术1. 原核表达系统原核表达系统是将DNA片段导入大肠杆菌等细菌中,在其形成菌落的过程中进行表达。
该系统的优点在于表达速度快、操作简便、表达产量高。
但同时,由于原核表达与真核细胞中的表达相比,它对于蛋白翻译辅助因子和蛋白修饰等生物特征的模拟程度较差,不利于蛋白的正确折叠,因此该系统表达的蛋白质通常需要经过重新折叠处理。
2. 原核表达系统与原核表达系统相比,真核表达系统更接近真实情况中的表达方式,对于全长的蛋白大多数时候能够实现正确的折叠。
在真核表达系统中,常用的系统包括昆虫细胞、哺乳动物细胞以及酵母菌表达系统等。
其中,哺乳动物细胞表达系统能够实现高产量、高质量的蛋白质表达,因此被广泛应用于蛋白质制备。
三、重组蛋白纯化技术1. 亲和层析法亲和层析法是一种将目标蛋白质从混合物中分离出来的技术。
该技术的依据是一种特定的与目标蛋白质具有相互作用的配体分离柱。
在该技术中,目标蛋白质与配体分离柱上的特定功能团结合,非特异性的蛋白质能够在洗脱过程中被去除。
2. 总体分离法总体分离法是将目标蛋白从混合物中分离出来,采用离心、可溶性和非可溶性的分离方法。
其中,在采用可溶性分离的方式时,常用的方法有两相法、分配层析等。
四、新兴技术及应用前景近年来,3D打印技术的应用逐渐渗透到生物医疗领域,并开始用于制备组织工程器官和人造蛋白质等领域。
重组蛋白的表达与纯化技术研究
重组蛋白的表达与纯化技术研究随着基因工程和生物技术的发展,重组蛋白的表达及纯化技术在生物医药领域得到了广泛应用。
重组蛋白是通过将目标基因转移到宿主表达系统中,利用宿主细胞表达并合成特定蛋白的技术。
表达后的蛋白需要经过纯化、鉴定和活性分析,以确保获得高纯度和高活性的蛋白。
本文将介绍重组蛋白的表达与纯化技术研究的相关内容。
重组蛋白表达技术是通过将目标基因克隆到表达载体中,然后将表达载体转入宿主细胞中进行表达。
常用的表达系统包括大肠杆菌、酿酒酵母、昆虫细胞和哺乳动物细胞等。
在选择表达载体时,需要考虑载体的复制数、启动子的强度和宿主细胞的适应性。
而在选择宿主细胞时,需要考虑宿主细胞的生长特性、表达能力以及宿主细胞的酶切位点等因素。
表达载体和宿主细胞的选择将直接影响重组蛋白的表达水平和纯化效果。
在重组蛋白的表达过程中,除了选择适合的表达系统外,还需要优化培养条件和表达工艺。
培养基的组成、培养温度、培养时间、诱导条件等因素都会影响蛋白的表达水平和纯度。
常见的优化方法包括调整培养基的成分、优化培养条件和诱导条件、构建工程菌株以及使用辅助因子等。
通过合理的优化,可以提高蛋白的表达水平和纯度,为后续的纯化工作奠定基础。
重组蛋白的纯化是确保蛋白质高纯度和高活性的关键步骤。
常见的纯化方法包括亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤层析、逆流色谱和层流洗脱等技术。
亲和层析是通过目标蛋白与特异性结合剂之间的亲和力选择性地捕获目标蛋白。
离子交换层析是利用蛋白质与带电离子交换剂间的相互作用进行纯化。
凝胶过滤层析则是根据蛋白分子大小进行分离纯化。
逆流色谱和层流洗脱则是利用目标蛋白与静电荷间的相互作用进行分离。
通过合理选择和组合这些方法,可以获得高纯度和高活性的重组蛋白。
在纯化过程中,还需要进行蛋白质的结构鉴定和活性分析。
结构鉴定可以通过质谱分析、核磁共振、X射线晶体学等技术来实现。
活性分析则是通过特定的活性测定方法来验证蛋白的功能和活性。
蛋白的分离纯化详解(分析“蛋白质”文档)共63张PPT
学反应。 蛋白质印迹最常用的探针是酶联抗体(HRP酶或AP酶)。
最常用的蛋白定量方法是凯氏定氮法, Lowry Folin法、考马斯亮蓝法、紫外分光光度法等。 带电粒子在电场中向与自身电荷相反的电极移动的现象称为电泳。 生物分子的特点是有专一的活性,如酶与底物的结合,抗原与抗体,激素与受体,糖与凝集素……等。 而可用于ELISA的抗体则有些是识别氨基酸序列特异性,有些是识别构像特异性。 配体特异性结合 重点 为减少非特异性干扰,需对固相载体进行处理,即用一种与待测物不反应的物质如蛋白质、核酸、吐温20等封闭载体上印迹以外的剩余吸附点(该 过程称为封闭),使探针仅与印迹物起反应,且不吸附到载体上。
Ve,即可从图中得到样品的分子量。
SDS-PAGE与凝胶过滤法是互补的
• 凝胶过滤法测得的是蛋白质四级结构(如果它有的话) 的分子量;
• SDS-PAGE测得的是蛋白质亚基的分子量; • 在有2-巯基乙醇(或DTT)存在时,SDS-PAGE可测得
蛋白质每条多肽链的分子量。 • 综合应用这两种方法,可得到待测蛋白质结构的许多信
平衡离子:H+, Na+, Cl-, OH-
基本液中) 3. 洗脱:穿透峰,洗脱峰
4. 收集、鉴定
离子交换层析有两种洗脱方式
• 分步洗脱:用间断地递增的不同离子强度的流动相分 次洗脱样品蛋白的方法;
• 梯度洗脱:连续改变流动相离子强度的方法。
变性和复性
• 原理:蛋白质在一定的理化条件下失去原 有的空间结构、生物学功能及部分理化特 性等称为变性。当变性条件去除后恢复原 有的空间结构及生物学功能即为复性。
• 方法:尿素变性复性从包涵体中纯化 原核表达蛋白
重组蛋白表达与纯化实验报告
重组蛋白表达与纯化实验报告重组蛋白表达技术用于研究基因调控以及蛋白结构和功能。
重组蛋白表达应用也有很大不同—从体内功能研究到大规模生产,用于生物治疗药物的发现和结构研究。
为您的特定应用使用正确的蛋白质表达系统是成功的关键。
选择表达系统时,需要考虑蛋白的溶解度、功能性、纯化速度和产量。
我们提供多种优质的哺乳动物、昆虫、酵母、细菌、藻类和无细胞蛋白表达系统,满足您的不同研究需求,并由Gibco 和Invitrogen 等值得信赖的品牌提供支持。
如果你打算将目的蛋白应用于下游实验,那么成功表达重组蛋白是很重要的。
如果一开始,你花点时间优化蛋白的可溶性,将会大大节约你后续纯化的时间。
关于重组蛋白表达和纯化,可参考如下建议:选择“正确”标签可能是一项艰巨的任务。
理想的标签将帮助你获得可溶性蛋白,简化你的纯化方案,并且不会干扰下游应用。
然而,考虑到载体可用的切割位点过多,你唯一的担心应该是哪个标签将有助于目标蛋白的溶解、表达和纯化—标签总是可以切除的,如果你担心它会干扰目标蛋白的行为。
某些标签,例如谷胱甘肽-S-转移酶(GST)或麦芽糖结合蛋白(MBP)被认为可增加蛋白的溶解性。
这些标签的缺点是它们的大小—GST约26kDa,MBP 为41kDa。
其他标签(六聚组氨酸,FLAG,链霉亲和素)相对较小,通常选择它们以便于捕获和纯化。
选择几个不同的标签,然后克隆!如果可能的话,使用C端标签,这意味着你纯化的任何蛋白将是全长,没有任何截断。
获得可溶性蛋白重组蛋白表达的常见问题是真核蛋白在细菌中表达时倾向于不溶。
变性,聚集和/或截短形式的蛋白形成不可溶的包涵体,需要进一步纯化和重折叠,这可能是低效的和不完全的。
以下是获得可溶性天然蛋白质的三个关键参数:IPTG浓度有可能,宿主中的蛋白表达将通过lac操纵子系统操作。
这个系统的详细解释可以在别处找到,你加入异丙基β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG),一种乳糖类似物,控制蛋白的表达。
重组蛋白质的分离纯化
重组蛋白质的分离纯化摘要:90年代以来基因重组技术得到很大的发展,基因工程产品的分离纯化的成本约占其全部成本的60%~80%,因此重组蛋白的分离纯化技术越来越重要。
本文主要介绍了沉淀、液液萃取、层析等常用分离重组蛋白方法的原理及应用,旨在为开展蛋白质的制备及其应用研究提供理论依据。
关键词:重组蛋白质;分离;纯化;沉淀;液液萃取;层析;包涵体随着基因重组技术的发展,出现了很多基因工程产品,而作为基因工程技术的下游工程中的基因重组蛋白的分离纯化技术越来越显示其重要性。
据有人统计,基因工程产品的分离纯化成本约占到其全部成本的60%~80%[1]。
由此可见产品的分离纯化是获得目的产物的关键一步,也是比较困难的一步,它标志着生物产业的高低。
纯化重组蛋白质和普通蛋白质的不同就在于要选择合适的表达系统,因为表达系统决定了细胞培养过程中产物的性质以及可能产生的杂蛋白,而纯化重组蛋白质的主要目的是去除杂蛋白质,通常对一种重组蛋白质的纯化会采用多个系统[2]。
但是重组蛋白有几种不同的表达形式,如细胞外的分泌表达;细胞内可溶性表达以及包涵体形式的存在,因此对于重组蛋白的纯化要依据其表达形式的不同,采取不同的纯化工艺。
与传统方式相似,重组蛋白的分离纯化也是利用其物理和化学性质的差异,即以分子的大小、形状、溶解度、等电点、亲疏水性以及与其它分子的亲和性等性质建立起来的。
目前主要的纯化方法有浓缩沉淀法,层析和电泳技术。
重组蛋白质在分离纯化的过程中,必须维持一定的浓度和生物活性形式,以及防止被降解。
因此从生物体中有效分离纯化重组蛋白质一直是个难题。
90 年代以来,国内外许多科学工作者在蛋白质分离纯化技术和工艺上进行了大量的研制和开发,将原有的纯化技术水平提高到一个新的高度。
本文将简单介绍一些传统的分离纯化方法,并介绍近10 年来重组蛋白分离纯化中的新进展和一些新出现的技术。
1 沉淀分离技术1.1 盐析法其原理是蛋白质在高浓度盐溶液中,随着盐浓度的逐渐增加,由于蛋白质水化膜被破坏、溶解度下降而从溶液中沉淀出来。
重组蛋白分离纯化的流程
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重组蛋白的提取纯化原理
重组蛋白的提取纯化原理重组蛋白是指通过基因工程技术将外源基因导入到宿主细胞中,使其表达出目标蛋白。
重组蛋白具有广泛的应用价值,如药物研发、生物制药、农业生产等领域。
然而,重组蛋白的提取纯化是制约其应用的关键环节之一。
本文将从不同的角度介绍重组蛋白的提取纯化原理。
一、基于物理性质的提取纯化原理1. 离子交换层析离子交换层析是一种基于蛋白质表面电荷的分离技术。
其原理是利用离子交换树脂的静电吸附作用,将带有相反电荷的蛋白质分离出来。
离子交换层析适用于分离电荷差异较大的蛋白质,但对于电荷差异较小的蛋白质分离效果较差。
2. 凝胶过滤层析凝胶过滤层析是一种基于蛋白质分子大小的分离技术。
其原理是利用不同孔径大小的凝胶过滤树脂,将分子大小不同的蛋白质分离出来。
凝胶过滤层析适用于分离分子大小差异较大的蛋白质,但对于分子大小相近的蛋白质分离效果较差。
3. 亲和层析亲和层析是一种基于蛋白质与配体之间的特异性结合作用的分离技术。
其原理是利用亲和树脂上的配体与目标蛋白之间的特异性结合作用,将目标蛋白分离出来。
亲和层析适用于分离具有特异性结合能力的蛋白质,但对于没有特异性结合能力的蛋白质分离效果较差。
二、基于化学性质的提取纯化原理1. 氢氧化铝沉淀法氢氧化铝沉淀法是一种基于蛋白质表面亲水性的分离技术。
其原理是利用氢氧化铝与蛋白质表面的羧基和氨基之间的静电吸附作用,将蛋白质分离出来。
氢氧化铝沉淀法适用于分离亲水性较强的蛋白质,但对于亲水性较弱的蛋白质分离效果较差。
2. 盐析法盐析法是一种基于蛋白质表面电荷和溶液离子强度的分离技术。
其原理是利用盐对蛋白质表面电荷的影响,使蛋白质在高盐浓度下发生沉淀,从而分离出来。
盐析法适用于分离电荷差异较大的蛋白质,但对于电荷差异较小的蛋白质分离效果较差。
三、基于生物学性质的提取纯化原理1. 亲和纯化法亲和纯化法是一种基于蛋白质与其特异性结合分子之间的亲和性分离技术。
其原理是利用特异性结合分子与目标蛋白之间的亲和性结合作用,将目标蛋白分离出来。
重组蛋白的分离纯化
疫苗: 大肠杆菌, 酵母, 大多数沿用细胞培养产物进行灭毒
单抗生产: 杂交瘤细胞 工业酶生产: 各种微生物
重组蛋白分离纯化方法选择的基因原则
针对不同的产物表达形式采取不同的策略 针对不同性质的重组蛋白选择不同的层析类型 多种分离纯化技术的联合运用 合适分离纯化介质的选择
1、重组载体的构建
特导引物设计,以pBV220-ALR质粒为模板扩增目的条带 构建酵母表达重组质粒,转化毕赤酵母GS115 重组蛋白的表达及鉴定 rhALR的纯化
菌液上清经低盐透析后,超过DEAESepharose FF柱的饱和吸附量上样,洗脱组 分脱盐后再上DEAE-Sepharose FF 柱,然后 再用Sephades G-75 柱进一步纯化。
这个末端突出通常由大约20个氨基酸组成, 并且在内质网中从成熟蛋白上剪切下来。
人们已经利用含有合适重组质粒的酵母细 胞分泌了大量的非酵母多肽,而且绝大多 数情况下都用到了a-因子信号序列。
外源基因的表达产物,通过运输或分泌的方式穿过细胞 的外膜进入培养基中,即为分泌型外源蛋白。
外源蛋白以分泌型蛋白表达时,须在N端加入15~30个 氨基酸组成的信号肽(signal peptides)序列。信号肽N端的 最初几个氨基酸为极性氨基酸,中间和后部为疏水氨基酸, 它们对蛋白质分泌到细胞膜外起决定性作用。当蛋白质分泌 到位于大肠杆菌细胞内膜与外膜之间的外周质时,信号肽被 信号肽酶所切割。
• Moreover , gel filtration is more generic, can be performed in any buffer condition, and can be used to resolve the oligomerization state of the target protein.
蛋白质分离纯化
2. 3 等电聚焦
依据:在pH梯度中的平衡位置。
用两性电解质,多乙烯多胺与丙烯酸的同系多异构体 混合物。在电场作用下,形成连续平滑的pH梯度, 而酶样品在其中也形成相同的等电点pH梯度。 分辩率高,pI相差0.01 pH的酶与蛋白质可分离 。
注意:在pI附近蛋白质容易沉淀,影响分离的数量和 质量。
1 蛋白质的分离方法
(1)以大小或质量为依据: 离心(300000g)、凝胶过滤(Sephadex交联葡聚糖、
Bio-Gel交联聚丙烯酰胺)、透析、超过滤
(2)以电荷为依据: 离子交换色谱(低离子强度、适当pH) DEAE-
Sephadex、 CM- Sephadex、 DEAE-纤维素、CM-纤维 素;电泳(电荷、分子大小、分子形状)、纤维素粉末、 淀粉、聚丙烯酰胺;等电聚焦(pH梯度中的平衡位置)
(3)以溶解度变化为依据
3.1 盐析--改变pH(等电点沉淀法) 3.2 盐析--改变离子强度 3.3 PEG沉淀法
3.1 改变pH (等电点沉淀法)
调整pH至酶的等电点。
原理: 溶解度随分子引力加大而减小,其他条
件相同,当pH在等电点附近时,分子引力最大, 蛋白质就沉淀。
一般不单独使用,配合其他方法使用。
3.2 改变离子强度
• 盐溶现象:加入离子有助于分散大分子上 所带的电荷而使溶解度提高。
• 盐析:离子强度提高到超过某一数值,带 电分子将会沉淀下来。
1. 在蛋白质溶液中加入大量中性盐,以破坏蛋白质 的胶体性质,使蛋白质从溶液中沉淀析出,称为盐 析。 2. 常用的中性盐有:硫酸铵、氯化钠、硫酸钠等。 3. 盐析时,溶液的pH在蛋白质的等电点处效果最好。 4. 盐析沉淀蛋白质时,通常不会引起蛋白质的变性。
重组蛋白技术
重组蛋白技术引言重组蛋白技术是一种通过基因工程手段来合成人工蛋白的方法。
它在医药、生物工程、农业和食品科学等领域有着广泛的应用。
本文将详细介绍重组蛋白技术的原理、应用和发展趋势。
一、原理重组蛋白技术主要包括以下几个步骤:1.基因克隆:从特定生物体中提取目标基因,并通过限制性内切酶切割目标基因和载体DNA,然后将目标基因插入载体DNA中。
2.转化:将重组质粒导入宿主细胞,使其能够表达目标基因。
3.表达:经过转化的细胞会利用其自身的生物机制,将目标基因转录成mRNA,然后翻译成蛋白质。
4.提取与纯化:利用各种分离纯化技术,如离心、层析和电泳等方法,从细胞中提取并纯化目标蛋白。
二、应用重组蛋白技术在以下领域有着广泛的应用:1. 医药领域•药物研发:重组蛋白技术可以用于合成多种生物药物,如重组人胰岛素、重组人生长激素和重组抗体等。
这些药物在治疗糖尿病、生长激素缺乏症和肿瘤等疾病中具有重要作用。
•疫苗制备:通过重组蛋白技术可以合成多种疫苗,如乙型肝炎疫苗和流感疫苗。
相比传统的制备方法,重组蛋白技术能够更精确地合成目标抗原,提高免疫效果。
2. 生物工程领域•酶的生产:利用重组蛋白技术可以大规模合成各种酶,并将其应用于工业生产中。
例如,通过合成纤维素酶可以提高纸浆的制备效率。
•基因治疗:将修复基因导入人体细胞中,通过表达目标蛋白来治疗遗传性疾病。
这一技术在遗传性免疫缺陷病、囊性纤维化等疾病的治疗中具有潜在的应用价值。
3. 农业领域•转基因作物:通过重组蛋白技术可以将特定基因导入农作物中,使其具有抗虫、耐旱或抗逆性等特征。
这一技术可以提高农作物的产量和抗病能力,减少对农药和化肥的依赖。
•动物克隆:利用重组蛋白技术可以合成克隆动物所需的蛋白质,促进胚胎发育和妊娠过程。
这对于动物克隆技术的发展具有重要意义。
4. 食品科学领域•食品添加剂:通过合成特定蛋白质,可以生产出各种食品添加剂,如增稠剂、乳化剂和防腐剂等。
这些食品添加剂可以改善食品质地、延长保质期,并提高产品的市场竞争力。
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fusion protein
IMAC
Purification of Trx-PLA2-9 fusion protein
Purified protein
Functional expression and characterization of a recombinant phospholipase A2 from sea snake Lapemis hardwickii as a soluble protein in E. coli. Toxicon 41 (2003) 713–721
为人们克隆与表达外源基因的首选。
但在外源基因的表达过程中,常常会遇到表达效率不高和 产率较低等困难。以往的研究表明,影响外源基因表达效率 的因素主要有密码子的选用、目的基因的量、载体的选择、
宿主菌的培养控制等。
大肠杆菌基因表达载体
1 启动子的强度
诱导型启动子: 原核生物启动子 组成型启动子:
启动子的分离
Purification of the soluble fusion protein and mature rPLA2-9. (A) Affinity chromatography of the bacterial cell lysates in a Ni2+-chelating sepharose column. (Flow rate 5 ml/min): 1, flow-through peak; 2, eluted peak of 50 mM Tris (pH 7.0), 500 mM NaCl, 150 mMimidazole; 3, eluted peak of 50 mM Tris (pH 7.0), 500 mM NaCl, 400 mM imidazole. (B) DEAE-sepharose chromatography of the fusionprotein resulted from affinity chromatography. (Flow rate 4 ml/min): 4, flow-through peak with 50 mM Tris (pH 8.0), 100 mM NaCl; 5, eluted peak of 50 mM Tris (pH 8.0), 500 mM NaCl. (C) DEAE-sepharose chromatography of the fusion protein after EK cleavage. (Flow rate 3 ml/min): 6, flow-through peak (purified rPLA2-9); 7, eluted peak of 50 mM Tris (pH 8.0), 500 mM NaCl. The three selected fractions were indicated by arrows.
1. T7· Tag抗体琼脂。
2. B/W缓冲液:4.29mM Na2HPO4,1.47 mM KH2PO4, 2.7 mM KCl,3. 0.137mM NaCl,1%吐温-20,pH7.3。 4. 洗脱缓冲液: 0.1M柠檬酸,pH2.2。 5. 中和缓冲液:2M Tris,pH10.4. 6. PEG 20000.
a)融合蛋白表达:融合蛋白氨基端是原核序列,羧基端是真 核序列。优点:操作简便,蛋白质在菌体内比较稳定; 易高效表达;但只能做抗原,一般不做人体注射用药 ?? b)非融合蛋白表达:易被蛋白酶破坏;N端有甲硫氨酸,易 引起免疫反应 c)分泌蛋白表达:外源基因融合到原核蛋白信号肽序列的下 游
外源基因在大肠杆菌表达的形式 •包涵体蛋白
第八章 重组蛋白的分离与纯化
一 大肠杆菌表达系统
1. 大肠杆菌 (Escherichia coli) 表达蛋白产物
1.1 大肠杆菌表达系统的特征
优势 • 技术成熟,基因克隆表达载体众多,受体细胞类型丰富
•
• • •
繁殖迅速,培养代谢易于控制
易于进行遗传操作和高效表达 操作安全,致病能力低 成本相对低得多
6 蛋白质的翻译系统
在原核生物中影响翻译起始的因素有:起始密码子、核糖
体结合位点(SD序列)、起始密码子于SD序列之间的距离和
碱基组成、mRNA的二级结构、mRNA上游的5′端非翻译序列 和蛋白编码区的5′端序列等。 核糖体结合位点(SD序列) 蛋白质的翻译系统 翻译起始密码子 翻译终止密码子
b 重组表达方式
(三)注意事项
蛋白在过层析柱前,要0.45μm膜抽滤,否则几次纯化后,柱子中会有不溶物。
PCR技术体 外扩增
IMAC
构建出
pET28a的 重组质粒
转入
E.coliBL 21(DE3)
目标蛋白有 6个His Tag
纯蛋白
融合His Tag重组蛋白的基因克隆、表达及亲和纯化[D],付丽棠,天津:天津大学
• 重组质粒有较高拷贝数且表达量高。 • 适用范围广。 • 稳定性高。 • 表达产物容易纯化。
带纯化标签的表达载体
• 6个组氨酸(His)的核苷酸置于待表达基因的N
端,个别情况下置于待表达基因的C端
• 可以通过金属螯合亲和层析一步分离纯化
5 宿主菌的培养控制
• 质粒稳定性与拷贝数的控制
• 重组大肠杆菌培养方式
低速离心沉淀
提取包涵体 变性的蛋白质 离子交换层析 凝胶过滤
进行离子交换(2)
进行其它层析方法(3) 纯化蛋白质 干燥浓缩 无菌过滤 纯化的蛋白质 进行其它层析方法(3)
1.4 可溶性产物的纯化(融合T7· Tag的表达蛋白)
(一)试剂准备 采用T7· Tag Affinity Purification Kit
(二)操作步骤
1.100ml 含重组表达质粒的菌体诱导后,离心5000g×5min,弃上清,收获菌
体,用10ml预冷的B/W缓冲液重悬。 2. 重悬液于冰上超声处理,直至样品不再粘稠,4℃离心 14000g×30min,
取上清液,0.45μm膜抽滤后作为样品液。
3. 将结合T7· Tag抗体的琼脂充分悬起,平衡至室温,装入层析柱中。 4. B/W缓冲液平衡后样品液过柱。 5. 10ml B/W缓冲液过柱,洗去未结合蛋白。 6. 用5ml洗脱缓冲液过柱,每次1ml,洗脱液用含150μl中和缓冲液的离心管收 集,混匀后置于冰上,直接SDS-PAGE分析。 7. 将洗脱下来的蛋白放入透析袋中,双蒸水透析24hr,中间换液数次。 8. 用PEG 20000浓缩蛋白。
Functional expression and characterization of a recombinant phospholipase A2 from sea snake Lapemis hardwickii as a soluble protein in E. coli. Toxicon 41 (2003) 713–721
②表达效率高;
③较易于分离纯化。
宿主菌
枯草芽孢杆菌 常用的宿主菌
短小芽孢杆菌
地衣芽孢杆菌
1.3 分离纯化的线路和要点
大肠杆菌细胞 破碎细胞,机械法:高压细胞破碎仪,酶法:溶菌酶 可溶性蛋白分离 离心 (10000 ×g离心 30min) 不可溶性蛋白分离
低速离心上清 澄清裂出水物
进行离子交换(1) 交换缓冲液
糖核蛋白、外膜蛋白以及表达载体编码的蛋白 等。 包括DNA、RNA和脂多糖等。
包涵体形成的本质——是细胞内蛋白质的不断聚集,主要包括 三个方面:
①折叠状态的蛋白质的聚集作用;
②非折叠状态的蛋白质的聚集作用;
③蛋白质折叠中间体的作用。
•融合蛋白
融合蛋白——将外源蛋白基因与受体菌自身 Nhomakorabea白基因重组在
一起,但不改变两个基因的阅读框,以这种方式表达的蛋白 称为融合蛋白。 *融合蛋白与单独表达的外源蛋白相比具有以下优点: ①稳定性好;
大肠杆菌表达系统构建的方法是将控制某一目的功能
蛋白的基因表达序列(CDS)重组到表达载体,而后转化到
细菌细胞株中,使重组基因借助细菌细胞内蛋白表达系统
而进行表达,而后分离纯化所表达的蛋白。
一个成功的表达系统构建和筛选,首先要求对所选择
表达载体的特征特性有清楚的了解。
大肠杆菌由于遗传背景简单,可进行大规模发酵培养,表 达周期短,操作简单及已有大量可供选择利用的载体,而成
包涵体:在一定条件下,外源基因的表达产物在大肠杆 菌中积累并致密地集中在一起形成无膜的裸露结构,这种结 构称为包涵体。 包涵体存在部位:细胞质、细胞周质
外源基因的表达产物:占大部分,具有正确的
蛋白质 包涵体 的组成 非蛋白质
氨基酸序列,但空间构相错误,因而包涵体蛋
白一般没有生物学活性。
受体细胞本身的表达产物:如RNA聚合酶、核
SDS-PAGE (15% gel) analysis of the expression and purification of rPLA2-9. (A) Purification of PLA2-9 fusion protein by affinity chromatography. 1, total proteins of transformed BL21 (DE3) cells without IPTG induction; 2, marker; 3, crude cell extract after IPTG induction; 4, proteins from flow-through peak; 5, proteins from eluted peak of 50 mMTris–HCl (pH 7.0), 500 mM NaCl, 150 mMimidazole; 6,proteins from eluted peak of 50 mM Tris–HCl (pH 7.0), 500 mM NaCl, 400 mM imidazole. B, Purification and characterization of mature rPLA2-9. 1, fusion protein from eluted peak of 50 mM Tris– HCl (pH 8.0), 500 mM NaCl on DEAE-sepharose chromatography; 2, PLA2-9 fusion protein after EK cleavage; 3, purified rPLA2-9; 4, western blot of cell lysates after IPTG induction; 5, western blot of purified rPLA2-9. Functional expression and characterization of a recombinant phospholipase A2 from sea snake Lapemis hardwickii as a soluble protein in E. coli. Toxicon 41 (2003) 713–721