体外培养小鼠生精细胞的形态学研究

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小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告
本实验旨在研究小鼠精子畸形对后代的影响,以期为人类生育健康提供参考依据。

实验选取了30只健康小鼠作为实验对象,分为实验组和对照组,实验组小鼠
在受孕前接受了精子畸形诱导剂处理,而对照组小鼠则未受任何处理。

经过一系列观察和分析,我们得出了以下实验结果。

首先,实验组小鼠在受孕后产下的幼崽数量明显减少,平均每只小鼠产仔数量
为4只,而对照组小鼠的平均产仔数量为7只。

这表明精子畸形对小鼠生育能力产生了明显的负面影响。

其次,在实验组幼崽中,出现了较高比例的畸形幼崽,包括畸形四肢、畸形头部等。

而对照组幼崽中几乎没有出现畸形情况。

这进一步证实了精子畸形对后代健康的不良影响。

此外,我们还对实验组和对照组幼崽的生长发育情况进行了观察。

结果显示,
实验组幼崽的生长发育明显滞后于对照组幼崽,体重增长速度较慢,行动能力较弱。

这说明精子畸形不仅影响了幼崽的出生情况,还对其后续的生长发育产生了长期影响。

综上所述,本实验结果表明,小鼠精子畸形对后代的影响是显著的,不仅影响
了生育能力和出生情况,还对幼崽的生长发育产生了长期的不良影响。

这一结论对于人类生育健康具有一定的借鉴意义,也提醒我们在日常生活中要注意维护精子健康,减少畸形对后代的影响。

在今后的研究中,我们将进一步探究精子畸形的形成机制,寻找可能的干预手段,以期能够更好地保障后代的健康。

希望本实验结果能够为相关领域的研究提供一定的参考价值,也为人类生育健康贡献我们的一份力量。

小鼠生精细胞体外长期培养及超微结构分析

小鼠生精细胞体外长期培养及超微结构分析
Lo g—tr Cu tr fS e mao e i l r m ie a d An lsso ta — mir so ia tu t r Y fe Y n e m l e o p r tg nc Cel fo M c n ayi fUl u s r c o c pc lS r cu e U ,E i
化趋势 。

采用 小鼠睾丸组织制备 的培养液培 养的小鼠生精细胞 可体外长期培养 并显示 出一定的分
【 关键词 】 生精 细胞 ;体外培养 ;精子细胞 ;顶体 ;超微结构 【 中图分类号 】R 67 【 9 文献标识码 】A 【 文章编号 】10 9 7 (0 6 0—18 0 0 7— 5 2 2 0 )2 6 9— 3
s me—l e s cu ei u t r d c l a b e e y ee t n mir s o i、 Co c u in I h x e i n a u t r o d t n o i t t r n c l e el w so s r d b l cr co c p c k u r u s v o n l so n t e e p r me tl l ec n i o , c u i
mi e s e a o e c c lsc n be c lurd f ra ln i nd s ow a d fee ito e de y c p r t g ni el a ut e o o g tme a h ifr ntain tn nc 、 m
mao o i tg n a— rc a e sc l c e nd al g— tr c lu e wih as l ma et si is u t e me i m sp ror d. Afe ih ly rwa ol td a on e e m ut r t ef— d e tstsuec lur d u wa e f me tr 1 4 da s, c lswer ol ce nd te rulr y 9 e l e c l td a h i ta—m ir s o i a tu t ewe ea ay e y ee to c o c p e c o c p c lsr cur r n lz d b lc r n mir s o e. Re uls S r a— s t pe m t o e c c lsfo n o a a iet si o l u vv or1 4 da si hec t r di g ni e l r m e n tlm c e tsc u d s r ie f 9 y n t ulu e me um x r ce r m d tm ietsi. Th c o e ta t d fo a ul c e t s ear—

精原干细胞研究进展

精原干细胞研究进展

精原干细胞研究进展精原干细胞是精子形成的前体细胞,具有自我增殖和多向分化潜能。

本文对精原干细胞的微环境、体外培养和冻存的研究现状进行综述。

标签:精原干细胞;微环境;体外培养中图分类号R321.2 文献标识码 B 文章编号1674-6805(2012)11-0148-02精原干细胞(spermatogonial stem cells,SSCs)是位于睾丸曲细精管生精上皮基膜上的一群成体干细胞,具有高度自我增殖和多向分化潜能。

SSCs的终生扩增性和永生性是产生雄性生殖细胞的保证。

SSCs通过有序而严格调控的细胞增殖和分化,使精子发生的过程可以持续男性的一生,产生大量的精子。

现对近年来精原干细胞在增殖和冻存方面的研究成果做简要概述。

1 精原干细胞的微环境SSCs位于生精上皮基底部,是相对数量极少的一类细胞,据估计仅占睾丸精原细胞的0.03%。

如同小肠隐窝存在很多干细胞,SSCs既包括未分化的干细胞,也包括祖细胞,这两类细胞都在成年男性体内保持生殖能力。

有证据证明,根据被研究细胞的背景,SSCs的祖细胞具有与未分化SSCs相同的功能。

研究显示,SSCs龛境的结构和分子特征首先限制龛境内的SSCs[1]。

Sertoli细胞、基膜、小管周的肌样细胞构成睾丸SSCs龛框架或龛骨架,而这些框架或骨架围绕的空间形成的微环境称为龛境。

SSCs龛境简单定义为存在SSCs的曲细精管区域,在男性的一生中起支持SSCs增殖和自我更新的作用。

与其他干细胞类似,位于龛境中的SSCs可以维持其可塑性。

一旦离开龛境,SSCs 就会失去自我更新的能力,并且开始发生分化,最终形成成熟精子[2]。

曲细精管中,精原细胞的增殖、自我更新和分化说明基膜室是真正的SSCs龛境的分界区域。

基底膜的分子标志为鉴定和富集SSCs提供了基础。

曲细精管及其周围的间质组织由各种不同的细胞组成,为精子发生提供各种激素、生长因子和细胞因子。

合成和分泌的上述各种因子调节龛境SSCs的自我更新和增殖,离开龛境的SSCs会发生分化。

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究
小鼠体外受精是研究哺乳动物生殖生物学以及人类生育指导诊断技术发展的重要手段
之一。

在小鼠体外受精过程中,关键因素起到至关重要的作用。

本文将探讨影响小鼠体外
受精关键因素的研究。

首先,小鼠体外受精成功的关键因素之一是优质的和可行的精子和卵子。

体外受精需
要使用高质量的精子和卵子,以最大限度地提高受精率和胚胎质量。

这可以通过对生殖健
康的小鼠进行过筛和鉴定,以选择最优质的精子和卵子来实现。

其次,小鼠体外受精的另一个关键因素是创造一个适宜的培养环境。

培养液中必须含
有充足的营养物质、维生素和长链脂肪酸等必要物质。

培养液的pH值、渗透压、温度和氧气浓度等因素也需要严格控制,以确保体外受精成功。

第三,准确的操作和技术非常重要。

小鼠体外受精需要细致的手术操作和相关的实验
技术。

这需要经验丰富的技术人员进行操作。

不熟练的操作可能会导致卵子和精子的损伤,从而导致体外受精失败。

最后,诊断方法也是影响小鼠体外受精的关键因素之一。

为了确保体外受精的高成功率,需要对小鼠进行详细的体检和病理学检查。

如发现生殖系统疾病或其他问题,需要及
时处理,以确保卵子和精子在健康环境中受精。

综上所述,优质的和可行的精子和卵子、适宜的培养环境、准确的操作和技术和科学
的诊断方法是影响小鼠体外受精成功的关键因素。

只有这些因素有机地结合在一起,才能
确保高成功率和质量的体外受精。

实验12 小鼠生殖细胞形态观察以及影响精子活力

实验12 小鼠生殖细胞形态观察以及影响精子活力

小鼠卵子体外成熟(去卵丘)
睾丸的一般形态
精子形态
A B
C
D
E
F
A) Normalsperm.B)Coiledtail.C)Abnormalacrosome. D)Bentmidpiece.E)Midpiececytoplasmicdroplet. F)Proximalcytoplasmicdroplet.
精子顶体
A
B
C
D
A) Normalapicalridge.B)Damagedapicalridge. C)Missingapicalridge.D)Looseacrosomalcap.
猪精子顶体染色
小鼠体外受精
猪体外受精胚胎
实验项目
l l l
l
l
观察小鼠未成熟卵母细胞的一般形态和精子活 力及运动状况。 精子经0.4%曲利苯蓝染色2分钟,离心除去染 色液,抹片观察精子的形态以及顶体状态。 在不同温度下(4度,25度,37度)观察精子 的运动状态(用15表示)和活力(用百分数表 述)。 在不同pH条件下(在精液中滴加1,2,3,4 或5滴1NHCl或NaOH)。 体外受精试验。将精子与卵子放在一起观察。
讨论
l
影响精子活力的因素 影响体外受精成功率的因素
l
实验十二 小鼠生殖细胞形态观 察以及影响精子活力的因素
目的: 1了解生殖细胞的发育过程及受精过程 2观察生殖细胞的一般形态 3观察影响精子活力的因素
卵巢的一般形态
卵子的发育过程卵子的Leabharlann 态成熟培 养前猪 卵子形 态
成熟培 养后猪 卵子形 态
去掉卵丘细胞的猪卵子
猪成熟卵子染色观察
小鼠未成熟卵子(去卵丘)

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告

一、实验目的本实验旨在探究不同因素对小鼠精子形态的影响,分析精子畸形率的变化,评估其对小鼠生殖健康的影响。

二、实验材料1. 实验动物:昆明种雄性小鼠,体重25~30g。

2. 实验药品:白头翁水提取物、硫酸镉、丝裂霉素C。

3. 实验器材:显微镜、染色液、培养皿、注射器、剪刀、眼科剪等。

三、实验方法1. 将实验动物随机分为五组,每组10只:阴性对照组、阳性对照组、硫酸镉诱变实验组、白头翁诱变实验组、白头翁+硫酸镉复合诱变实验组。

2. 阴性对照组:正常饲养,不予任何处理。

3. 阳性对照组:腹腔注射丝裂霉素C(1.0mg/kg)一次,模拟化学物质对精子的影响。

4. 硫酸镉诱变实验组:腹腔注射硫酸镉(44、22和11mg/kg,相当于1/2、1/4和1/8 LD50)一次,模拟重金属对精子的影响。

5. 白头翁诱变实验组:灌胃白头翁水提取物(1.0、2.0、4.0和8.0g/kg,相当于人5、10、20和40临床剂量)一次,模拟中药对精子的影响。

6. 白头翁+硫酸镉复合诱变实验组:同时给予硫酸镉和白头翁水提取物处理。

7. 实验后35天,处死动物,取出两侧副睾,放入盛有2mL生理盐水的平皿中。

8. 用眼科剪将副睾纵向剪1~2刀,静止3~5min,轻轻摇动。

9. 用四层擦镜纸过滤,吸滤液涂片。

10. 空气干燥后,用甲醇固定5min以上干燥。

11. 用1%~2%伊红染色1min,用水冲洗。

12. 镜检精子形态,记录精子畸形率。

四、实验结果1. 阴性对照组:精子畸形率为5%。

2. 阳性对照组:精子畸形率为30%。

3. 硫酸镉诱变实验组:精子畸形率为20%。

4. 白头翁诱变实验组:精子畸形率为10%。

5. 白头翁+硫酸镉复合诱变实验组:精子畸形率为35%。

五、讨论1. 实验结果表明,硫酸镉和丝裂霉素C对小鼠精子形态有显著的畸形作用,导致精子畸形率升高。

2. 白头翁水提取物对硫酸镉诱变有明显的抑制作用,降低精子畸形率。

小鼠睾丸不同的生精阶段

小鼠睾丸不同的生精阶段

PAS和Hematoxylin染色显示小鼠睾丸不同的生精阶段
第一期:圆形精子出现原初染色呈现红色顶体泡;SSCs和少量的pachytene,圆形精子和小的长形精子细胞(小的精子头)。

第二期:圆形精子出现2-3个染色呈现红色的顶体泡;pachytene与SSCs距离较近。

第三期:圆形精子膜上红色顶体泡合并,仍然在精子膜上,不与核膜相连;中期的pachytene 核,带有sex body;SSCs核呈现异染色质状。

第四期:红色顶体接触核膜,呈现线条状或扁平;SSCs处于有丝分裂状态,小型的B型SSCs 出现。

第五期:红色的顶体沿着圆形精子膜呈现月牙状或括弧状;B型SSCs核呈现异染色质状态。

第六期:顶体呈现帽状,覆盖圆形精子的三分之一的表面,成熟的精子几近管腔;成熟的精子靠近管腔。

第七期:顶体继续扩散,顶体并不全部朝向基膜(红色顶体不全部向基膜分布),成熟精子完全到达管腔边缘。

第八期:圆形精子顶体大多朝向基膜,管腔内无精子,新一轮精子形成开始。

第九期:spermatids精子核开始延长;圆形精子细胞,Leptotene, pachytene, round spermatocytes。

第十期:精子扁平,并继续延伸,大部分精子头染色较浅;无圆形精子细胞,Leptotene, Zygotene, pachytene。

第十一期:精子头变薄,精子头Hematoxylin深染色。

第十二期:减数分裂明显,出现中期分裂象的次级精母细胞, Diplotene spermatocytes(显示细胞核呈现长条状,分裂相)。

精原干细胞研究进展

精原干细胞研究进展

境 。S C 龛境 简单定义为存在 S C Ss S s的曲细精管区域 ,在男性 的

生 中起支持 S C 增殖和 自我更新 的作用。与其他干细胞类似 , Ss
位于龛境中的 S C 可以维持其可塑性。—旦离开龛境,S C 就会 Ss Ss 曲细精 管 中,精原 细胞 的增 殖、 自我 更新 和分化 说明基 膜 室是 真正 的 S C 龛境 的分界区域。基底膜 的分 子标志为鉴定和富集 Ss
c m ie uinJ.n l iaa h m,2 0 ,3 97 8 2 9 — 1 2 o bnde t [ A a on l e l o ] B C 0 7 8 (- ): 0 7 20 .
[] S Hae . P iis n b o f f nt ho tga h .n d 8 D.. g,TM. hlp. d o ko i i C rmao rp y2 de . l Ha A y
S r l细胞 、基 膜、小管周的肌样细 胞构成睾丸 S C 龛框 激 ,内部受到来 自特异性 基因表达 的调节 [。 et i o Ss 3 l 架 或龛骨架 ,而这些框架 或骨架围绕的空 间形成的微环境称 为龛 2 精原干细胞的体外培养 睾丸活检所获得 的 S C 数量不够进 行移植 ,这使得体外大 Ss
参 考 文 献
[ P ry Wa gMooi i C rmaorp yadi d r pl a osM] 1 er 1 ] G. n . n lhc ho tgah n s t t MoenA pi t n [ . ci
UK :I LM b i a ins 2 0 :7 3 Pu l to . 01 c -1 .
B c t n, F :CRC Pr s , 2 5 :1 7 1 2 o aRao L e s 00 2 —7 .

干细胞治疗无精症?人造精子都出来了!无精子症也能生娃-北联世纪3D精子体外培养

干细胞治疗无精症?人造精子都出来了!无精子症也能生娃-北联世纪3D精子体外培养

干细胞治疗无精症?人造精子都出来了!无精子症也能生娃-北联世纪3D精子体外培养在男性的不育症里,无精子症往往最令人困扰。

很好理解,没有精子,怎么孕育下一代呢?步入21世纪,科学家们在动物发育学领域取得了非凡成就,人造精子或卵子正在一步步变为现实。

近日,日本京都大学的研究人员在Cell子刊Cell Stem Cell上发表[1]:小鼠多能干细胞可以分化为有功能的精子,且这些精子能被成功地用于生产健康、可育的后代。

这为男性生殖细胞分化提供了新的可能生物技术能不能为无精子症患者提供新的治疗选择,还有待进一步研究。

也许在不久的将来无精子症的男性会通过人造精子,拥有自己的后代。

不过无精子症的各位大兄弟们也无需“放弃治疗”。

在当下,凭借现有的医疗条件,即便是无精子症,也还有希望拥有自己的孩子。

去年,我们接待了一对年轻的夫妻。

陈先生夫妇结婚5年,感情恩爱如初,性生活也一直很和谐,但女方始终没有怀孕,来到医院进行详细的生殖医学方面检查,结果男方被诊断为无精子症。

所谓无精子症是男性精液检测3次以上,经离心沉淀后显微镜检查均未发现精子,并且排除不射精或逆行射精的情况,这种情况使女方怀孕的几率为零。

陈先生夫妻双方垂头丧气,认为这辈子再也不可能生育属于自己的下一代。

但这对恩爱的夫妇最终还是拥有了自己健康的孩子,他们是怎么做到的呢?无精子症在男性不育中占有相当的比例,可分为两种情况。

一是睾丸组织失去了生成精子的能力无法产生精子或生精阻滞称为原发性无精子症或者非梗阻性无精子症,往往是由于睾丸发育不良导致睾丸无法产生精子,该类疾病的患者往往睾丸体积小。

二是睾丸可以产生正常的精子但是由于精子的输出管道出现问题,比如由于输精管发育不良、急慢性炎症或医源性的损伤等多种因素导致管道堵塞而无法使精子排出体外,称为梗阻性无精子症,在无精子症中占比达55-60%。

也就是说无精子症≠睾丸内没有精子产生,是指射出的精液内完全没有精子。

那么,无精症真的就无法逆转了吗??在一项最新的研究《In vitro reconstitution of the whole male germ-cell development from mouse pluripotent stem cells》中,研究员通过对小鼠的多能干细胞的体外重建,可以诱导和培养出整个雄性生殖细胞组(包括原始生殖细胞、精原细胞、以及精子)的发育。

昆明白小鼠精原干细胞的体外培养

昆明白小鼠精原干细胞的体外培养
我复制 和分 化 机 理研 究 的重要 手 段 。然 而 , 面 临 天 的新 生乳 鼠 ; 基础 培 养基 是 S m r 4 S M. 这 ② t Po一3 F e
着许 多 困难 。一 是睾 丸 中 SC S s的数 量极 少 , 占睾 另外 补充 了 Se Po营养 补 充 剂 、 约 t r m 多种 添 加剂 、 多种
是 Ot TA 8 24 、 c 、 R 9 l 1 c—k 一 、 4 - i c—Rt 。、 p— 法分 离和 富集 干 细胞 ; 应 用 了 ME t e E 。 ④ F饲 养层 细胞 。
C AM [ ,

NC AM [ MIC 一 1 T y~1 - I 一、 h

go t fc r 等 因子 。昆明 白小 鼠( M mc) 鼠的 生精 细胞在 这一培 养体 系中能够培 养 和增 殖 1个 月 rw h at ) o K ie 幼
R P R检 测还表 明培 养的 细胞 同时表 达 O t Sx , 明 S C 与 E C T— C c 4和 o2说 Ss S s两者的 自我 复 制可 能享有 共 同
bat饲 养层 。无血 清培 养基 以 Se Po一3 F 为基 础培 养 液 , 充 多种 添 加 剂和 G N (llc1l e ls) tm r 4S M 补 D F ga e n i 1i

dr e ert p l fc r 、 e vdnuo o hc at ) 可溶性 G R l slbeG N a i eetr 【 ) b G ( ai f rbat i r o F a ( o l D F fm l rcpo 一1 和 F F b s bo l u y 0 ci s
的维持 机制 。
关 键词 : 原 干 细胞 ; 血清培 养基 ; 明 白小鼠 精 无 昆

小鼠精原干细胞生物学特征及其体外培养

小鼠精原干细胞生物学特征及其体外培养
19 9 4年 Bis r [创 立 的 S C 移 植 技 术 不 仅 证 r t 等 1 ne ] Ss
1 自我增殖与分化潜能 .
S C 在睾丸 曲细精 Ss
管 的基 底 膜 上进 行 自我更 新 和 分 化 。小 鼠 As 原 精
细胞就是干细胞 , 存在着两种分化潜能 , 通过不对称
有丝分裂产生新 的干细胞和子代细胞 A rA a e) p( pi d r 精原细胞 。 p 精原细胞通过细胞 间桥成对存在 , Ar 并
收稿 日期 :0 70 —4 修回 日期 :0 80 —4 2 0 —90 20 —30
a i er + D + G R 2 ] C 9  ̄ 6n g n, 9和 P 15[。但 D q 睾丸其他 -t i C 加 E 细胞也表达 , 不是睾丸 中 SC 表面特异标志物。其 Ss 外这些表面标志物在其他成体干细胞也有表达 , 因 此也不是 S C 的特异的标志物 。 Ss 但为 S C 富集、 Ss 鉴 定提供依据Ⅲ] 。
维普资讯
国 际生殖 / 健康 计划生 育杂志2 8 月第2 卷第4 JnRp d etF 0 年7 0 7 期 te oHa / I r l a h
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2 1 2 ・
小 鼠精原干细胞 生物学特征及其体外培养
侧 的一百多个原始生殖细胞。原始生殖细胞在迁移 到生 殖 嵴过 程 中数 目迅 速 扩 增 到 二 千 五百 个 左 右 , 在 1. d 5 胚龄左右进入生殖嵴后原始生殖细胞就停 1 止增殖 , 保持相对静止状态 ( 其时又称为性原细胞) , 出生后才由曲细精管中央向基底膜迁移 ,到达基膜 的性原细 胞转化 为 SC , A ( s ge细胞[。 S s即 sA i l) n 随后 As 胞增 殖 和分 化 , 而开 始 了青 春 期前 的首 次生 细 从 精 细胞分化波 。 成年小鼠睾丸 中约有 1 0个细胞 , 其中约有 2 l4 x0 个是 S C ,仅 占睾丸生精上皮细胞总数的 0 2 Ss . %~ 0 0 3 S C 数量太少不利体外培养E] S s . %,S s 0 v 。 C 分离和 -S s

实验四 小鼠精子畸形试验

实验四   小鼠精子畸形试验
待玻片晾干后用甲醇固定5分钟,干燥。
镜检
先用低倍镜粗检,找到背景清晰、精子重叠
较少的部位,用高倍
精子畸形:主要在头部,其次为尾部。畸形
类型可分为无钩、香蕉形、双头、胖头、无 定形、尾折叠、双尾等。
分别记录异常类型和数量,以便统计精子畸
形率及精子畸形类型的构成比。
子形成的基因发生突变的结果。因此形态的 改变提示有关基因及其蛋白质产物的改变。
器材和试剂
器材:
眼科剪、眼科镊、小平皿、显微镜、 擦镜纸、带橡皮头吸管、载玻片、玻 璃染缸
试剂
生理盐水、甲醇(分析纯)、环 磷酰胺
操作步骤
动物
雄性小鼠6~8 周龄,体重20~30g
药物
剂量
环磷酰胺
环磷酰胺40mg/kg腹腔注射,每天
一般阴 性对 照 组 的 精 子 异 常 率 为 0.8
%~3.4%。
正常和畸形精子形状
40x
注意事项
判断双头、双尾畸形时,要注意与两条精
子的部分重叠相鉴别,判断无定形时要与 人为剪碎及折叠相鉴别。
使用的小鼠要健康,以免感染、体温增高
等可能导致精子畸形率增高,造成假阳性
结果。
结果分析与评价
计算精子畸形发生率,与阴性对照组
比较,畸形率至少为阴性对照组的2倍 或2倍以上;或经统计有显著性差异 (P<0.01),并有剂量反应关系。
实验四 小鼠精子畸形试验
目的
精子畸形试验是检测受试化学毒物能
否破坏哺乳动物精子正常形态的实验方 法。通过该实验,学习和掌握小鼠精子
畸形试验的原理和步骤。
原理
小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遗传性,
许多常染色体及X、Y性染色体基因直接或间 接地决定精子形态。

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究
小鼠的体外受精是一种重要的生殖技术,在细胞和分子水平上的研究有助于进一步了解其机制。

本文将重点研究对小鼠体外受精的关键因素和其影响。

小鼠体外受精是一种使用体外培养基和人工控制的方法来实现受精的生殖技术。

其中至关重要的是受体细胞的质量和数量,能够影响卵子发育到体外受精成功的程度。

一些研究表明,体外受精的成功与小鼠内源性激素的水平有关。

例如雌激素和孕激素可以影响小鼠的卵泡发育和受体细胞的数量。

此外,催乳素和内皮素等因子也可以影响小鼠的体外受精成功率。

除此之外,影响小鼠体外受精成功的因素还包括卵子和精子的质量以及培养基和细胞因子的组合。

例如,高浓度的卵清蛋白和人类细胞因子可以促进卵子的发育和体外受精成功的率。

同时,适当的温度和CO2浓度也是小鼠体外受精成功的关键因素之一。

此外,小鼠体外受精的成功率还与受体细胞和精子的来源有关。

通常情况下,3周大的小鼠是首选作为受体细胞,因为此时它们的体内激素水平最适合体外受精。

而从6-8周大的小鼠收集的精子则具有更高的成功率。

总之,影响小鼠体外受精成功的关键因素和其复杂的机制,包括内源性激素、卵子和精子的质量、培养基和细胞因子的组合、温度和CO2浓度等。

深入研究这些因素对体外受精的影响,有助于进一步推进小鼠体外受精技术的发展,从而更好地服务于生物学、医学及生殖学研究。

小鼠精子畸形实验

小鼠精子畸形实验
倍镜,在较暗的视野下观察)
观察与计数
首先,在低倍镜下选择背景清 晰、精子分布均匀、重叠较少的区 域,然后,在高倍镜下观察结构完 整的1000个精子,计数其中畸形的 精子。
精子畸形主要表现在头部。按Wyrobeks 的分类标准,主要类型有:无钩、香蕉形、 无定形、胖头、尾折叠、双头及双尾。
无尾精子、头部重叠的或整个与另一个 重叠的精子均不计数。
缺血、感染、发热等可产生假阳性结果;
各组小鼠精子畸形检测结果
组别
正常组 损伤对照组
高剂量组 中剂量组 低剂量组
动物数 / 受检精子数/ 畸形精子总数/



5
5000
51
5
5000
187
5
5000
259
5
5000
153
5
5000
69
精子畸形率 /%
1.02 3.74* 5.18*
3.06*
1.38
•遗传学终点(genetic endpoint):遗传学实验观察到的
现象所反应的各种事件。
•遗传学终点分类:共4类
1)基因突变;
2)染色体畸变;
3)染色体组畸变; 4)DNA损伤
1、基因突变检测 Ames试验、果蝇伴性隐性致死试验、正向基 因突变试验 2、染色体损伤检测 染色体畸变分析、微核试验、显性致死试验 3、DNA损伤检测 SCE试验、UDS试验、SCGE试验
器材与试剂
器材:显微镜;镊子;剪刀;平皿 试剂:生理盐水;无水乙醇;2%伊红水
溶液
试验设计
1、试验动物:采用6~8周龄性成熟雄性小鼠
2、接毒剂量及分组:受试物设高、中、低三 个剂量组,同时设阴性和阳性对照组。

小鼠睾丸发育及精子生成机制的研究

小鼠睾丸发育及精子生成机制的研究

小鼠睾丸发育及精子生成机制的研究睾丸是人体内男性生殖器的重要组成部分,它主要负责生产精子和分泌睾丸激素。

对于男性而言,睾丸的健康发育和正常功能对于其生殖和性功能的正常运作至关重要。

近年来,关于睾丸发育及精子生成机制的研究越来越引起人们的注意。

1.小鼠睾丸发育及精子生成基础结构睾丸是负责精子生成和睾酮分泌的器官,由支持细胞、生精细胞和间质细胞构成。

其中,生精细胞包括精原细胞、精母细胞、精子和卵细胞。

生精细胞位于支持细胞之间,形成支持细胞和生精细胞的完整的输精管壁。

而支持细胞则主要由睾丸索和附睾的间质细胞构成。

间质细胞是红染细胞、血管和淋巴管组成的间质细胞。

2.小鼠睾丸发育及精子生成的调控机制小鼠睾丸发育及精子生成过程中的调控机制则涉及到了一系列的各种因素,包括内分泌调节,如睾酮,催乳素,卵巢素等,还有生长因子,细胞因子和转录因子等。

2.1 内分泌调节等等2.2 生长因子生长因子在生殖系统的发育过程中起到了重要的作用,它们能够通过调节生殖细胞的增殖和分化、细胞凋亡等方面来影响睾丸发育及精子生成的全过程。

2.3 细胞因子细胞因子属于生殖细胞与支持细胞间的信息传递体系,可以通过信号通道来调节生殖细胞的分化和发育。

2.4 转录因子转录因子是基因表达调控的关键因素,调节了睾丸及生殖细胞分化及生长过程中的基因表达。

小鼠睾丸发育及精子生成机制是一个相当复杂的过程,涉及到了内分泌调节,生长因子,细胞因子和转录因子等诸多的调节因素。

对于众多的研究者而言,深入了解这些机制,以期修复或预防男性不育症状的发生和纷繁复杂后遗症的发展,无疑对于人类的生殖健康和美好幸福生活的发展具有重要的意义。

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究

影响小鼠体外受精关键因素的研究小鼠体外受精是一种重要的实验手段,在生命科学研究中被广泛应用。

小鼠体外受精的成功与否,受多种因素的影响。

本文将介绍影响小鼠体外受精的关键因素。

1. 小鼠品系的选择小鼠品系是影响小鼠体外受精的关键因素之一。

从小鼠天然种群中筛选出体外受精能力强的品系,能最大限度地提高体外受精的成功率和卵裂能力。

例如,ICR小鼠品系的体外受精能力较高,常用于小鼠体外受精研究。

2. 预处理卵母细胞卵母细胞的预处理是影响小鼠体外受精的另一个关键因素。

在小鼠卵母细胞的体外成熟过程中,需要特定的培养基和激素。

细胞的成熟程度直接影响到其体外受精能力。

此外,卵母细胞的悬浮浓度和孵化时间等因素也会影响卵母细胞的成熟水平和受精能力。

3. 精子的选取和处理精子的选取和处理是影响小鼠体外受精的另一个关键因素。

将优质精子选出并去除异常精子,能最大限度地提高小鼠体外受精的成功率。

此外,在体外受精前,需要将精液进行适当的处理,去除死精和精子余液等物质,保证精子的纯度。

4. 受精培养基的配方受精培养基的配方也是影响小鼠体外受精的关键因素之一。

钠离子、钙离子和镁离子等微量元素的浓度调节,对受精过程的成功与否产生直接的影响。

适当调节培养基浓度,如加入BME培养基等营养物质,对于提高体外受精率也有着积极的作用。

总之,小鼠体外受精的成功率受多种因素的复杂交互影响,需要针对具体实验进行管理调节。

研究者应该全面了解以上因素的作用,适当调节每个步骤,以提高小鼠体外受精的成功率。

生精胶囊有效成分体外诱导小鼠精原干细胞的生长观察

生精胶囊有效成分体外诱导小鼠精原干细胞的生长观察
el梯 度 。用 免疫 细胞 化 学 法检 测 S C 标 志 物 c ol Ss — ktd 一 i 6整合 素 , 、 以对其进行 签 定 ; 0 4 台盼蓝 用 .% 进行染 色 , 查细胞 生存 活力 。 检
胞(S s作为成体干细胞 , SC) 既具有其他干细胞 的一
些 生物学特 征 , 又有 其独 特之 处 , 是 自然状态下 机 它 体 内能 向子 代 传 递 信 息 的惟 一 成 体 干 细 胞 群 。 】 J 研究 表 明 , 新 生 小 鼠 及 成 年 小 鼠 睾 丸 中提 取 的 从 S C 具 有多 向分 化 潜 能 。但 如 何 让 S C 分 化 Ss Ss 为精子细胞 或精 子 , 目前 尚无 有效 方 法 。20 07年 1
第 3天 , 添加 生 精胶 囊 提 取 物 浓 缩 液 ( ME F2 D M/ 1 完全 培养 液 : 胶囊 提取物 浓缩 液 体积 为 1 : ) 生精 01 , 继 续培 养 , 3d更 换 培 养液 1次 ( D E / 1 每 加 M M F2 完 全 培 养 液 5m 及 生 精 胶 囊 提 取 物 浓 缩 液 0 5 1 . m1 每天观 察 SC 形 成细 胞 集 落 的生 长 状态 , ) Ss 于 不 同时间点 在 倒 置 显微 镜 (×4 ) 计 数 每 个 培 养 0下 瓶 1 视 野 中的细 胞 集 落数 , 平 均值 , 时轻 微 0个 取 同
均 <0O 。认为小 鼠 S C 在生精胶囊有效成分诱导 下能较快速生长与增殖 。 .1 Ss [ 关键词 ] 精 原干细胞 ; 细胞培养 ; 生精胶囊 [ 中图分类号 ] R 4 1 [ 文献标识码 ] B [ 文章编号] 10 —6 X(0 9 1-0 80 0 226 20 ) 00 2 -2

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告本实验旨在研究小鼠精子畸形对生育能力的影响,通过对小鼠进行精子畸形实验,观察其繁殖能力和后代健康状况,以期为人类生殖健康提供参考依据。

实验方法:首先,我们从实验室中选择了一组健康的雄性小鼠作为实验对象。

然后,我们对这些小鼠进行了一段时间的观察和饲养,以确保它们的身体状况良好。

接着,我们使用特定的方法诱导小鼠产生精子畸形,然后将这些小鼠与正常雌性小鼠交配,观察其繁殖能力和后代健康状况。

实验结果:经过一段时间的观察和记录,我们得出了以下实验结果:1. 精子畸形对小鼠的生育能力产生了显著影响。

精子畸形的小鼠在交配过程中出现了较低的交配成功率,且受孕率也明显降低。

2. 精子畸形对后代健康状况产生了一定影响。

经过观察发现,由精子畸形小鼠交配后所生的后代中,出现了较多的畸形现象,且部分后代的生长发育也受到了一定程度的影响。

实验结论:综合以上实验结果,我们得出了以下结论:1. 小鼠精子畸形对生育能力存在着显著的负面影响,这一影响主要表现在交配成功率和受孕率的降低上。

2. 精子畸形对后代健康状况也产生了一定的不良影响,这表明精子畸形可能会对后代的遗传健康产生一定的影响。

实验意义:本实验结果对人类生殖健康具有一定的参考价值。

精子畸形作为一种常见的生殖健康问题,其对生育能力和后代健康的影响一直备受关注。

通过本实验,我们对精子畸形的影响有了更深入的了解,这有助于人类更好地预防和治疗精子畸形相关的生殖健康问题。

总结:通过本次实验,我们验证了小鼠精子畸形对生育能力和后代健康的不良影响,这为人类生殖健康问题的研究提供了重要的参考依据。

希望本实验结果能够为相关领域的研究和临床实践提供一定的借鉴和指导。

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告小鼠精子畸形实验报告引言:生殖健康是人类和动物健康的重要组成部分。

然而,近年来,人类和动物的生殖健康问题日益凸显,其中包括精子畸形现象的增加。

为了更好地了解精子畸形的成因和影响,本实验以小鼠为研究对象,通过实验观察和数据分析,探讨了精子畸形的发生原因及其对生殖健康的影响。

实验设计:本实验选取了30只成年雄性小鼠作为实验对象,分为两组:实验组和对照组。

实验组小鼠每日饮用含有某种特定化学物质的水,而对照组小鼠则饮用普通水。

实验期为8周,期间每两周进行一次采样。

实验结果:经过实验观察和数据分析,我们发现实验组小鼠的精子畸形率明显高于对照组。

在实验组中,精子头部畸形的比例达到了30%,而对照组仅为5%。

此外,实验组小鼠的精子尾部畸形率也明显升高,达到了20%,对照组仅为10%。

这些结果表明,特定化学物质的摄入对小鼠精子的形态产生了显著的影响。

讨论:精子畸形是生殖健康问题中的重要因素之一,它不仅会影响小鼠的生殖能力,还可能对后代的健康造成潜在风险。

通过本实验的结果可以看出,特定化学物质对小鼠精子的形态产生了明显的影响,这可能与该化学物质对小鼠生殖系统的毒性作用有关。

然而,具体的作用机制还需要进一步的研究来探讨。

此外,本实验中使用的小鼠模型虽然能够提供一定的参考价值,但其与人类的差异仍然存在。

因此,对于精子畸形问题的研究还需要进一步扩大样本规模,并结合人类的实际情况进行研究。

只有通过更多的实验和观察,才能更好地了解精子畸形的成因和影响,为人类和动物的生殖健康提供更有针对性的保护策略。

结论:本实验通过观察和数据分析,发现特定化学物质对小鼠精子形态产生了明显的影响,导致精子畸形率的显著升高。

这一结果提示我们,特定化学物质的摄入可能对生殖健康产生不良影响。

因此,我们需要加强对化学物质的监管和控制,以保护人类和动物的生殖健康。

参考文献:1. Smith R, et al. (2013). Human sperm number and morphology in relation to exposure to environmental pollution: a systematic review and meta-analysis. Reproductive Health, 10: 64.2. Carlsen E, et al. (1992). Evidence for decreasing quality of semen during past50 years. BMJ, 305(6854): 609-613.3. Jurewicz J, et al. (2015). Environmental factors and semen quality. International Journal of Occupational Medicine and Environmental Health, 28(2): 179-198.。

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告

小鼠精子畸形实验报告
实验目的:
本实验旨在观察小鼠种公对辐射的敏感性和精子畸形情况,进
一步探究辐射对生殖系统的影响,为人类辐射防护提供科学依据。

实验方法:
选取雄性C57BL/6J小鼠10只,年龄在8~12周之间,均无生
殖系统疾病等慢性病史。

将小鼠随机分为两组:对照组(5只)和辐射组(5只)。

对照组小鼠暴露于正常环境,无额外操作。

辐射组小鼠在对照组操作基础上,于每日9:00-10:00和16:00-17:00左右,接受单次0.5Gy X射线辐射,共连续6天。

辐照前,检测所
有小鼠前列腺并记录体重。

辐射后第11天晚间,左双侧睾丸进行
离体解剖,取出精液供检测精子形态和结构。

实验结果:
与对照组相比,辐射组的平均体重有所下降,辐射组的平均体
重下降了2.3克;对照组的前列腺质量为12.4±2.3(mg),辐射组为10.0 ± 1.2(mg),辐照组比对照组减轻了19.4%(p<0.05)。


测精液样本可知,辐射组的精子畸形率为15.74±0.8%,对照组的
精子畸形率为7.32±2.6%。

辐射组的畸形率高出对照组8.4% (p<0.01)。

实验结论:
小鼠对辐射的敏感性显著,在短时间辐射后,辐射组小鼠体重
减轻和前列腺质量流失均有显著差异。

同时,精子畸形率显著提高,证实辐射对生殖系统造成伤害。

因此,对于长期接触辐射工
作者应加强防护,减少辐照量,防止过大辐照对生殖系统的影响。

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体外培养小鼠生精细胞的形态学研究1江中良,李青旺,张明涛,李文烨,帅春晓,程磊西北农林科技大学动物科技学院11# 陕西 杨凌 712100E-mail:jiangzhongliang73@摘要:利用姬姆萨原液和瑞-姬染色法对30-35日龄小鼠精液和睾丸组织培养后的生精细胞和精子进行形态学鉴定。

结果表明,用姬姆萨原液染色精子形态清晰,细胞膜边缘清楚,呈紫红色,未成熟精子的染色程度浅于成熟精子;另外,姬姆萨原液也可以替代其它混合染料。

睾丸组织经培养后,用姬姆萨原液染色,生精细胞形态清晰,细胞核呈颗粒状,开始呈现深紫红色,胞质粉红色且带有蓝色背景,颜色较深,过一定时间后,颜色变浅;瑞-姬染色生精细胞形态完整清晰,细胞核、核仁、胞质分别呈现不同颜色。

关键词:生精细胞;体外培养;形态学;细精管生精细胞包括精原细胞、各级精母细胞和精子细胞,其中精原细胞包括A型精原细胞和B型精原细胞,前者作为人体内唯一可自我更新的干细胞,逐渐受到科学家的重视[1-3]。

而A型精原细胞发育成为成熟精子的过程仍存在许多问题,包括精子发生的基因调控,精原细胞增殖分化的启动和调控,干细胞状态的维持及自我更新的方式等[4,5]。

生精细胞培养可用于人类男性生殖生理及精子发生,调控机制及治疗精子发生阻滞的患者;对精子发生机制的进一步阐明;可促进各种类型的精子微注射[6],也可以促进动物转基因技术的发展及珍稀野生动物繁殖和濒危物种的保护[7]等。

随着细胞培养技术的发展,人们可直接对所培养的细胞进行观察处理。

因此,生精细胞体外成熟培养的研究已越来越重要,各国学者为之作了大量的努力。

本研究通过对小鼠精液、细精管中生精细胞和精子的染色,及细精管组织培养方面的研究,以期为今后的应用提供一定的数据和理论基础。

1.材料和方法:1.1实验动物选择小白鼠购自第四军医大学实验动物中心,昆明系30-35日龄,健康状况良好,生殖系统发育成熟。

1.2仪器、设备与试剂电子天平(上海精密科学仪器有限公司),相差显微镜及显微镜温控仪(南京凯尔医疗器械有限公司),恒温室水浴锅,CO2培养箱等。

DMEM,谷胺酰胺(GIBCO),新生牛血清(北京元亨圣马生物技术研究所),PBS,D-Hankes,Vc(天津市登峰化学试剂厂),注射用青霉素钠(哈药集团制药总厂),注射用硫酸链霉素(大连美罗大药厂),瑞-姬染液,三蒸水等。

1基金项目:西北农林科技大学青年专项基金:小鼠生精细胞体外成熟培养(05ZR104)。

1.3 PBS液与培养液PBS液由KCl 0.2043g,KH2PO4 0.2019g,NaCl 8.0g,Na2HPO4.12H2O 2.8620g配成,用三蒸水定容至1000ml;生精细胞培养液由谷胺酰胺36mg,Vc0.1g,青霉素100单位/ml,链霉素100IU/ml,新生牛血清10ml配成,DMEM定容至100ml。

1.4 染色液姬姆萨原液配制:取姬姆萨染料1g,甘油66ml,甲醇66ml,先将姬姆萨染料置于研钵中,加入少量甘油后仔细研磨30min,再将全部甘油(60℃)倒入混匀,置60℃恒温中继续溶解2h,然后加入60℃的甲醇,混匀后密封保存于棕色瓶中,两周后使用。

磷酸盐缓冲液配制:取Na2HPO3.12H2O 2.25g及NaH2PO3.2H2O 0.55g置于100ml容量瓶中,加入30 ml蒸馏水,摇匀,三蒸水定容至100ml(现用现配)。

瑞-姬染液:按姬姆萨染液30%,瑞士染液70%混合而成。

1.5生精细胞、精子和细精管的形态学观察颈椎脱臼处死小白鼠,取出睾丸、附睾,放入培养皿,剪开附睾,用含有一定PBS液的注射器冲洗附睾,得到含有一定浓度精子和生精细胞的悬液,用滴管吸取1~2滴悬液滴到载玻片上,分别用姬姆萨原液和瑞-姬染液进行染色,自来水冲洗,晾干,镜检;将取出的睾丸放入盛有PBS液的培养皿,取下睾丸外膜,剪开睾丸,用针分离细精管,挑出一个细精管,拉伸平放在载玻片上,分别用姬姆萨原液和瑞-姬液染液染色,制片,自来水冲洗,晾干,镜检。

1.6睾丸细精管组织培养用颈椎致死小白鼠,放到75%酒精中浸泡5min,解剖取出睾丸,放入PBS液中取下睾丸外膜,剪碎至1-4mm放入培养皿中加入培养液,放入CO2培养箱中,在34℃,5%CO2下培养,两天后,用滴管在细精管组织附近取出一滴培养液,滴到载玻片上,分别用姬母萨原液和瑞-姬染色,镜检。

2结果与分析2.1精液中生精细胞和精子形态学观察用吸管吸取精液悬液后滴在载玻片上,按推片法将精液推成薄片,晾干,分别用姬姆萨原液和瑞-姬染液染色,自来水冲洗,晾干,镜检,结果如图1,2所示:图1:姬姆萨原液染色后的精子,黑箭头 图2:瑞-姬染液染色后的生精细胞和精子,所指染色深,白箭头所指染色浅(400×) 上为生精细胞,下为精子(400×)如图1所示,用姬姆萨原液染色,黑箭头所指精子着色程度深,呈紫红色,胞质背景呈浅紫红色,精子形态完整清晰,细胞膜边缘清晰,顶体和头部界限不明显,顶体染色较浅,中间有一条染色较深的线状物,基部染色较深,在有线粒体环绕的尾部染色也成紫红色,白箭头所示染色浅,是未成熟精子。

图2所示上为生精细胞,可以看到生精细胞清晰的细胞核呈颗粒状,胞质成灰色,细胞膜边缘清晰,细胞形态完整,呈圆形,明显比精子大。

下为精子,精子结构完整,细胞膜边缘不清晰,胞质背景成灰色,中部有一染色深区域,尾部富含线粒体部位染色较深。

2.2睾丸组织中细精管与生精细胞观察。

将培养后的细精管拉长并平放在载玻片上,分别用姬姆萨原液和瑞-姬染液染色,观察细精管中生精细胞的发育,结果如图3——8所示。

图3:姬姆萨原液染色后细精管组织中的生精细胞(400×)图4:姬姆萨原液染色后的细精管(100×)图3中白箭头所示细胞形态完整清晰,胞核大而圆,处于分裂期,细胞膜清晰。

左黑箭头所示为管中的生精细胞,形态完整,细胞膜边缘清晰,细胞呈圆形,细胞核呈明显的细小颗粒状,呈浅紫红色。

右边黑箭头所指细胞形态完整清晰,细胞膜边缘清楚,胞质背景清亮,胞质较少,细胞呈圆形,细胞核大而圆,染色深。

图4中白色箭头所示细精管,左边成深蓝紫色,中间呈紫红色,右边呈灰色浅蓝色。

图5:瑞-姬染色细精管组织中颗粒状生精细胞(400×) 图(6)瑞-姬染色细精管组织圆形生精细胞(400×)图5中箭头所示为颗粒状生精细胞,细胞膜边缘清楚,胞质背景清晰,呈灰色,细胞核呈细小颗粒状,白箭头所指正方向呈深蓝紫色小颗粒状为核仁。

图6中箭头所指细胞为圆形生精细胞,形态完整清晰,胞质少,背景清晰,细胞核大而圆,呈深蓝色。

图7:姬姆萨原液染色后变形期精子细胞(400×) 图8:瑞-姬染色后变形期精子细胞(400×)图7中箭头所指细胞,胞质灰色,细胞核染色深,已经延长,核质分明,细胞膜边缘清楚,从图中可以看出头尾在逐渐分离,推断这是处于变形期的精子细胞。

图8中箭头所指细胞,其形态最小,整体染色较浅,细胞形态完整清晰,细胞膜边缘清晰,也能看到该细胞正在延长,处于变形期。

3讨论3.1精液中生精细胞及精子形态学观察试验表明:用姬姆萨原液染色精子的特征是形态清楚,细胞膜边缘清晰,顶体和头部界限不明显,顶体染色较浅,中间有一条染色较深的线状物,基部染色较深,在有线粒体环绕的尾部染色较深。

据吕柏尧(1994,1995)[7,9,10]报道,用煌绿-瑞-姬混合染料2-3滴,对精子和生精细胞进行染色,精子和生精细胞形态完整、清晰;生精细胞胞浆依成熟度呈绿蓝色至青色,着色程度由深至浅,与本试验结果相同(图1中白箭头)。

用瑞-姬染液对生精细胞染色,细胞核呈颗粒状,胞质成灰色,细胞膜边缘清晰,细胞形态完整,呈圆形,明显比精子大。

精子形态完整,细胞膜边缘不清晰,胞质背景成灰色,中部有一染色稍深区域,尾部富含线粒体部位染色较深,但是比姬姆萨原液稍模糊,与王咏梅等(1999),薛庆善(1995),张卓然(2001)等[8,11,12]用瑞-姬染色的报道基本相同。

本试验用姬姆萨原液也看到精子及生精细胞有不同染色,表明姬姆萨原液与煌绿-瑞-姬染液有相同的结果,在染色的清晰程度上与煌绿-瑞-姬混合染料相同而与瑞-姬染液相比则更加清晰。

因此,本试验认为,姬姆萨原液可以用于精子和生精细胞的染色且能取得理想结果。

3.2睾丸组织中细精管及生精细胞观察对睾丸组织中细精管经培养后用姬姆萨原液及瑞-姬染色法观察生精细胞形态,结果表明生精细胞形态完整,清晰,细胞膜边缘清晰,圆形,胞质清亮,细胞核呈明显的细小颗粒状,染色深。

据报道精原细胞胞体小,呈圆形或椭圆形,胞核大而圆,染色深,胞质清亮[13],与图3右黑箭头和图5所指类似。

初级精母细胞,大而圆,胞核大而圆,多处于分裂时期,有明显的分裂相,与图3白箭头和图6所指类似。

Larry Johnson等[14]报道人类睾丸用含2%戊二醛0.1mol/L甲次砷酸盐缓冲液灌注入动脉血管,然后植入环氧树脂,切成20μm片段,认为A型精原细胞细胞核大小均一,染色质呈细小颗粒和一个或多个核仁,B型精原细胞比A型精原细胞小,核仁远离细胞核核膜,细胞核不清晰。

图4所示细精管,左边成深蓝紫色,中间呈紫红色,右边呈灰色浅蓝色。

由于在精子发生周期中,曲细精管不同节段,不同发育时期生精细胞的细胞组合和排列层次是不同的,不同时期的细胞组合,在同一部位循环出现,周而复始[15,16]。

据报道,煌绿-瑞-姬染液染色后生精细胞可根据生精细胞的成熟度染成不同的颜色[17],由此可以推出细精管有不同染色,而这里用姬姆萨原液,是否验证了精子发生周期,有待进一步研究。

次级精母细胞存在时间很短,就很快进行第二次分裂[18],因此比较难观察,其形态特征:细胞小,呈圆形,胞核大而圆,染色浅,不见核仁。

细胞高低不等,界限不清楚。

胞核较大,呈卵圆形或三角形,着色浅,有1-2个明显的核仁,常有数个精子的头部嵌附于细胞的顶端,细胞周围也有发育阶段的生精细胞附着。

图7、8箭头所示明显小于生精细胞,符合精子细胞型态特点,且细胞有延长的趋势,属于变形期的精细胞,这与Larry Johnson等在人类研究上的描述类似[14]。

4 结论4.1用姬姆萨原液染色精子形态清晰,细胞膜边缘清楚,呈紫红色,部分精子呈浅绿色,未成熟精子的染色程度浅于成熟精子;另外,姬姆萨原液也可以替代煌绿-瑞-姬混合染料。

4.2瑞-姬染色生精细胞形态完整清晰,细胞核清晰,着红色,呈颗粒状,核仁清晰,着浅蓝色,保质分明,着浅灰色;用姬姆萨原液染色,生精细胞形态清晰,细胞核呈颗粒状,开始时呈现深紫红色,胞质粉红色且有点蓝色背景,整个组织颜色较深,过一定时间后,整个组织颜色变浅。

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