微生物碳氮磷测定
土壤微生物生物量的测定方法
土壤微生物生物量的测定方法1土壤微生物碳的测定方法(熏蒸提取----仪器分析法)基本原理新鲜土样经氯仿熏蒸后(24h),土壤微生物死亡细胞发生裂解,释放出微生物生物量碳,用一定体积的LK2SO4溶液提取土壤,借用有机碳自动分析仪测定微生物生物量碳含量。
根据熏蒸土壤与未熏蒸土壤测定有机碳的差值及转换系数(K EC),从而计算土壤微生物生物量碳。
实验仪器自动总有机碳(TOC)分析仪(Shimadzu Model TOC—500,JANPAN)、真空干燥器、烧杯、三角瓶、聚乙烯熟料管、离心管、滤纸、漏斗等。
实验试剂1)无乙醇氯仿(CHCL3);2)L硫酸钾溶液:称取87g K2SO4溶于1L蒸馏水中3)工作曲线的配制:用L硫酸钾溶液配制10ugC/L、30ugC/L、50ugC/L、70ugC/L、100ugC/L系列标准碳溶液。
(其实一般情况下,仪器会自带的标曲,一般不用自己做的)操作步骤土壤的前处理(过筛和水分调节略)熏蒸称取新鲜(相当于干土,这个可以根据自己土样的情况而定)3份分别放入25ml小烧杯中。
将烧杯放入真空干燥器中,并放置盛有无乙醇氯仿(约2/3)的15ml烧杯2或3只,烧杯内放入少量防暴沸玻璃珠,同时放入一盛有NaOH溶液的小烧杯,以吸收熏蒸过程中释放出来的CO2,干燥器底部加入少量水以保持容器湿度。
盖上真空干燥器盖子,用真空泵抽真空,使氯仿沸腾5分钟。
关闭真空干燥器阀门,于25℃黑暗条件下培养24小时。
抽真空处理熏蒸结束后,打开真空干燥器阀门(应听到空气进入的声音,否则熏蒸不完全,重做),取出盛有氯仿(可重复利用)和稀NaOH溶液的小烧杯,清洁干燥器,反复抽真空(5或6次,每次3min,每次抽真空后最好完全打开干燥器盖子),直到土壤无氯仿味道为止。
同时,另称等量的3份土壤,置于另一干燥器中为不熏蒸对照处理。
(注意:熏蒸后不可久放,应该快速浸提)※浸提过滤从干燥器中取出熏蒸和未熏蒸土样,将土样完全转移到80ml聚乙烯离心管中,加入40ml L硫酸钾溶液(土水比为1:4,考虑到土样的原因,此部分熏蒸和不熏蒸土均为4g,即,4g土:16ml的硫酸钾溶液,当然这个加入量要根据TOC仪器的进入量决定)300r/min振荡30min,用中速定量滤纸过滤。
土壤微生物量碳测定方法
土壤微生物量碳测定方法及应用土壤微生物量碳(Soil microbial biomasS不仅对土壤有机质和养分的循环起着主要作用,同时是一个重要活性养分库,直接调控着土壤养分(如氮、磷和硫等)的保持和释放及其植物有效性。
近40 年来,土壤微生物生物量的研究已成为土壤学研究热点之一。
由于土壤微生物的碳含量通常是恒定的,因此采用土壤微生物碳(Microbial biomass carbon, Be来表示土壤微生物生物量的大小。
测定土壤微生物碳的主要方法为熏蒸培养法(Fumigatio n-i ncubatio n. Fl)和熏蒸提取法(Fumigation-extraction, FE)。
熏蒸提取法(FE法)由于熏蒸培养法测定土壤微生物量碳不仅需要较长的时间而且不适合于强酸性土壤、加-1入新鲜有机底物的土壤以及水田土壤。
Voro ney(1983)发现熏蒸土壤用0.5mol LK2SO4提取液提取的碳量与生物微生物量有很好的相关性。
Vanee等(1987)建立了熏蒸提取法测定土壤微生物碳的基本方法:该方法用0.5mol L-1K2SO4 提取剂(水土比1:4)直接提取熏蒸和不熏蒸土壤,提取液中有机碳含量用重铬酸钾氧化法测定;以熏蒸与不熏蒸土壤提取的有机碳增加量除以转换系数KEC取值0.38)来计算土壤微生物碳。
Wu 等(1990)通过采用熏蒸培养法和熏蒸提取法比较研究,建立了熏蒸提取——碳自动一起法测定土壤微生物碳。
该方法大幅度提高提取液中有机碳的测定速度和测定结果的准确度。
林启美等(1999)对熏蒸提取-重铬酸钾氧化法中提取液的水土比以及氧化剂进行了改进,以提高该方法的测定结果的重复性和准确性。
对于熏蒸提取法测定土壤微生物生物碳的转换系数KEC的取值,有很多研究进行了大量的14研究。
测定KEC值的实验方法有:直接法(加入培养微生物、用C底物标记土壤微生物)和间接法(与熏蒸培养法、显微镜观测法、ATP法及底物诱导呼吸法比较)。
生物量碳氮测定方法(熏蒸提取法)
一、土壤微生物生物量碳测定方法(熏蒸提取-碳自动仪器法)1、试剂配制去乙醇氯仿制备:普通氯仿试剂一般含有少量乙醇作为稳定剂,使用前需除去。
将氯仿试剂按1 : 2(v : v)的比例与去离子水或蒸馏水一起放入分液漏斗中,充分摇动1min,慢慢放出底层氯仿于烧杯中,如此洗涤3次。
得到的无乙醇氯仿加入无水氯化钙,以除去氯仿中的水分。
纯化后的氯仿置于暗色试剂瓶中,在低温(4℃)、黑暗状态下保存(Williamss等,1995)。
注意氯仿具有致癌作用,必须在通风橱中进行操作。
硫酸钾提取剂[c(K2SO4)= 0.5mol L-1]:87.12分析纯硫酸钾,溶于1L去离子水。
六偏磷酸钠溶液[ρ( NaPO3)6 = 5g 100ml-1,pH2.0]:50.0g分析纯六偏磷酸钠缓慢加入盛有800ml 去离子水的烧杯中(注意:六偏磷酸钠溶解速度很慢,且易粘于烧杯底部结块,加热易使烧杯破裂),缓慢加热(或置于超声波水浴器中)至完全溶化,用分析纯浓磷酸调节至pH2.0,冷却后定容至1L。
过硫酸钾溶液[ρ(K2S2O8)= 2g 100ml-1]:20.0g分析纯过硫酸钾溶于去离子水,定容至1L,避光存放,使用期最多为7d。
磷酸溶液[ρ(H3PO4)= 21 g 100ml-1]:37ml 85%分析纯浓磷酸(H3PO4,ρ= 1.70g ml-1)与188ml 去离子水混合。
邻苯二甲酸氢钾标准溶液[ρ(C6H4CO2HCO2K)= 1000mg C L-1]:2.1254g分析纯邻苯二甲酸氢钾(称量前105℃烘2~3h),溶于去离子水,定容至1L。
2、仪器设备土壤筛(孔经2mm)、真空干燥器(直径22cm)、水泵抽真空装置(图6–1)或无油真空泵、pH–自动滴定仪、塑料桶(带螺旋盖可密封,体积50L)、可密封螺纹广口塑料瓶(容积1.1L)、高温真空绝缘酯(MIST–3)、烧杯(25、50、80ml)。
碳–自动分析仪(Phoenix 8000)、容量瓶(100ml)、样品瓶(40ml)。
氯仿熏蒸浸提法测定土壤微生物碳氮
氯仿熏蒸浸提法测定土壤微生物碳氮
采用氯仿熏蒸0.5 mol/L K2SO4浸提法测定土壤微生物量碳、氮。
首先将土样在25℃下密封培养7d 左右,然后称取预处理土样6 份放入烧杯中,将 3 份其置于底部有少量Na OH、200 m L 水和去乙醇氯仿的真空干燥器中,抽真空后保持氯仿沸腾3~5 min,然后,将干燥器移置在黑暗条件下25℃熏蒸土壤24 h,再次抽真空完全去除土壤中的氯仿。
将熏蒸好的土壤转移到200 m L 提取瓶中,加入0.5 mol/L K2SO4浸提液(水∶土质量比为4∶1)。
另外3 份做未熏蒸空白试验,每份重复3 次,分别测定浸提液中的有机碳和全氮含量。
其中浸提液中的可溶性有机碳采用总有机碳分析仪(Phoenix 8000,美国)测定,由熏蒸与未熏蒸土样有机碳的差值除以转换系数,计算得到微生物量碳。
浸提液中土壤可溶性全氮采用碱性过硫酸钾氧化法测定,浸提液中无机氮采用流动分析仪测定,土壤可溶性有机氮是可溶性全氮和无机氮的差值。
熏蒸与未熏蒸土样的全氮的差值除以转换系数,计算得到微生物量氮。
微生物量碳、氮的转换系数为0.45。
土壤的有机质、全氮、全磷、有效磷、速效钾、NO3--N、NH4+-N、pH 值采用常规的土壤农化分析方法测定。
微生物碳氮磷测定
土壤微生物量碳氮磷测定方法一、试剂配制微生物量碳试剂:1 硫酸钾溶液[c(K2SO4)=0.5mol·L-1]:称取硫酸钾(K2SO4,化学纯)87.10g,先溶于300ml去离子水中,加热,转移溶液至容器中,再加少量去离子水溶解余下的部分,转移溶液至同一容器中,如此反复多次。
最后定容至1L;(需大量配制)2 生物量C氧化剂:1.2800g在130℃下烘干两个小时的K2Cr2O7与400mlH2O,2L的优级纯浓硫酸混合,配成2.4L的混合氧化剂溶液,在室温,棕色瓶中保存;3 葡萄糖标准储备液(100mg/L):准确称取0.2502g的无水葡萄糖溶于1000mL的容量瓶中,存放在4℃冰箱,使用时稀释为所需标准溶液;微生物量氮试剂:4 醋酸锂溶液:称取氢氧化锂(LiOH·H2O)168g,加入冰乙酸(优级纯)279mL,,加水稀释到1000mL,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH 至5.2;5 茚三酮试剂:23g分析纯水合茚三酮溶解于750ml二甲基亚砜,加入250ml醋酸锂缓冲液,混合30min,使氧气和氮气排出;(注意此试剂在使用前一天配置,室温下密封保存)6 氢氧化钠溶液(10mol/L):400g分析纯氢氧化钠溶于去离子水,稀释至1L;7 柠檬酸缓冲液:42.0g分析纯柠檬酸和16.0g氢氧化钠,溶于900ml去离子水,用10mol/L氢氧化钠调节Ph至5.0,再用水稀释至1L;8 乙醇溶液:95%分析纯乙醇与去离子水按体积比1:1比例混合;9 1mg/ml的硫酸铵标准储存液:称取4.7167g分析纯硫酸铵(称前105℃烘2h)溶于0.5moL/L硫酸钾溶液中,并用硫酸钾溶液定容至1000mL,摇匀,于4℃冰箱中保存。
10 0.1mg/ml的硫酸铵[(NH4)2SO4]标准液:吸取10mL1mol/L的硫酸铵标准储存液于100mL容量瓶中,用0.5mol/L硫酸钾溶液定容至100mL.摇匀。
土壤微生物生物量的测定方法(氯仿熏蒸)
土壤微生物生物量的测定方法1土壤微生物碳的测定方法(熏蒸提取----仪器分析法)1.1 基本原理新鲜土样经氯仿熏蒸后(24h),土壤微生物死亡细胞发生裂解,释放出微生物生物量碳,用一定体积的0.5mol/LK2SO4溶液提取土壤,借用有机碳自动分析仪测定微生物生物量碳含量。
根据熏蒸土壤与未熏蒸土壤测定有机碳的差值及转换系数(K EC),从而计算土壤微生物生物量碳。
1.2 实验仪器自动总有机碳(TOC)分析仪(Shimadzu Model TOC—500,JANPAN)、真空干燥器、烧杯、三角瓶、聚乙烯熟料管、离心管、滤纸、漏斗等。
1.3 实验试剂1)无乙醇氯仿(CHCL3);2)0.5mol/L硫酸钾溶液:称取87g K2SO4溶于1L蒸馏水中3)工作曲线的配制:用0.5mol/L硫酸钾溶液配制10ugC/L、30ugC/L、50ugC/L、70ugC/L、100ugC/L系列标准碳溶液。
(其实一般情况下,仪器会自带的标曲,一般不用自己做的)1.4 操作步骤1.4.1 土壤的前处理(过筛和水分调节略)1.4.2 熏蒸称取新鲜(相当于干土10.0g,这个可以根据自己土样的情况而定)3份分别放入25ml小烧杯中。
将烧杯放入真空干燥器中,并放置盛有无乙醇氯仿(约2/3)的15ml烧杯2或3只,烧杯内放入少量防暴沸玻璃珠,同时放入一盛有NaOH溶液的小烧杯,以吸收熏蒸过程中释放出来的CO2,干燥器底部加入少量水以保持容器湿度。
盖上真空干燥器盖子,用真空泵抽真空,使氯仿沸腾5分钟。
关闭真空干燥器阀门,于25℃黑暗条件下培养24小时。
1.4.2 抽真空处理熏蒸结束后,打开真空干燥器阀门(应听到空气进入的声音,否则熏蒸不完全,重做),取出盛有氯仿(可重复利用)和稀NaOH溶液的小烧杯,清洁干燥器,反复抽真空(5或6次,每次3min,每次抽真空后最好完全打开干燥器盖子),直到土壤无氯仿味道为止。
同时,另称等量的3份土壤,置于另一干燥器中为不熏蒸对照处理。
土壤微生物量碳氮测定方法
土壤微生物量碳氮测定方法土壤微生物量碳氮测定是评估土壤有机质含量和土壤微生物活性的重要方法之一、它可以帮助我们了解土壤中有机质的分解和氮素的转化过程,对土壤健康和养分循环有重要意义。
下面将从土壤微生物量碳氮的测定原理、方法以及应用等方面进行详细的阐述。
一、原理与意义:土壤微生物量碳(Microbial Biomass Carbon, MBC)是土壤中微生物所含有的碳量,包括微生物本体的碳和微生物产生的胞外有机物的碳。
土壤微生物量氮(Microbial Biomass Nitrogen, MBN)则是土壤微生物所含有的氮量。
土壤微生物量碳氮的测定主要利用的是微生物生物量对有机碳氮的吸收和蓄积能力,在土壤中有机质降解与微生物活动之间存在着紧密的关系。
测定土壤微生物量碳氮的主要意义在于:1.评估土壤质量:土壤微生物是土壤中的重要组成部分,对土壤生态系统的功能发挥起着重要作用。
通过测定土壤微生物量碳氮,可以判断土壤中的微生物含量和活性,进而评估土壤的质量和健康状况。
2.预测土壤肥力:土壤微生物参与了有机质的降解和养分的转化过程,因此它们的代谢活动直接影响土壤肥力。
测定土壤微生物量碳氮可以预测土壤中有机质的分解速率和养分的供应状况,为合理施肥提供依据。
3.监测土壤生态系统的健康:土壤微生物对环境变化非常敏感,其数量和活性的变化可以反映土壤生态系统的稳定性和健康状况。
通过定期测定土壤微生物量碳氮,可以监测土壤生态系统的变化,帮助我们了解土壤的自净能力和恢复能力。
二、测定方法:目前,常用的土壤微生物量碳氮测定方法主要有不同源于Chen et al. (1998) 和Jenkinson及仪器方法(如戴弗尔仪器、百威仪器等)。
1.直接抑制剂法:该方法基于土壤微生物量碳氮含量对微生物生长的抑制作用。
通过向土壤样品中加入抑制剂(如消费抑制剂氟愈刀或氯化丙夫),抑制土壤中微生物的生长,然后测定加入抑制剂后土壤中微生物量碳氮的变化。
微生物量碳氮测定方法
微生物量碳氮测定方法微生物量、碳氮测定方法是研究微生物数量和代谢活性的关键手段,可用于土壤、水体和生物体等环境中的微生物研究。
常用的微生物量、碳氮测定方法包括显微镜计数法、流式细胞术、气体产量法、碳氮比测定法等。
下面将详细介绍这些方法的原理和操作步骤。
一、显微镜计数法显微镜计数法通过显微镜观察和计数微生物的数量来测定微生物量。
其原理是将样品置于显微镜下,在显微镜下观察样品中的微生物数量,并进行计数。
根据计数结果以及标定样品数量的因数,可以推算出样品中微生物的数量。
显微镜计数法的操作步骤如下:1.获取样本并制备薄片。
根据需要采集样本,并将样本制备成薄片或涂片。
可以使用高温固定、化学固定或热固定等方法固定样本。
2.显微镜观察和计数。
将固定的样本放入显微镜下,通过放大镜头观察样本中的微生物,并进行计数。
为了避免重复计数和遗漏计数,可以使用方格计数器。
3.根据计数结果计算微生物量。
根据计数结果以及标定样品数量的因数,可以推算出样品中的微生物数量。
通常计算结果以每克(或每升)样品中的微生物数量表示。
二、流式细胞术流式细胞术是用于计数、分类和分析微生物的一种高通量、高精读的方法。
其原理是将样品中的微生物通过细胞色素或抗原标记,通过流式细胞仪进行激光扫描,扫描到的细胞信号通过计算机进行分析,从而得到微生物的数量、大小和类型等信息。
流式细胞术的操作步骤如下:1.准备样品和染色。
根据需要采集样本,并给样本进行染色。
染色可以使用细胞色素或抗原标记法,将需要测定的微生物区分出来。
2.流式细胞仪扫描。
将染色的样品装入流式细胞仪中,通过激光扫描仪器扫描染色的细胞,并记录扫描到的细胞信号。
3.数据分析。
通过计算机分析扫描到的细胞信号,得到微生物的数量、大小和类型等信息。
三、气体产量法气体产量法是通过测定微生物代谢过程中产生的气体来间接测定微生物的数量和代谢活性。
常用的气体产量法有氧呼吸测定法和甲烷产量测定法。
气体产量法的操作步骤如下:1.准备培养基和反应器。
土壤微生物生物量的测定方法(氯仿熏蒸)
土壤微生物生物量的测定方法1土壤微生物碳的测定方法(熏蒸提取----仪器分析法)1.1 基本原理新鲜土样经氯仿熏蒸后(24h),土壤微生物死亡细胞发生裂解,释放出微生物生物量碳,用一定体积的0.5mol/LK2SO4溶液提取土壤,借用有机碳自动分析仪测定微生物生物量碳含量。
根据熏蒸土壤与未熏蒸土壤测定有机碳的差值及转换系数(K EC),从而计算土壤微生物生物量碳。
1.2 实验仪器自动总有机碳(TOC)分析仪(Shimadzu Model TOC—500,JANPAN)、真空干燥器、烧杯、三角瓶、聚乙烯熟料管、离心管、滤纸、漏斗等。
1.3 实验试剂1)无乙醇氯仿(CHCL3);2)0.5mol/L硫酸钾溶液:称取87g K2SO4溶于1L蒸馏水中3)工作曲线的配制:用0.5mol/L硫酸钾溶液配制10ugC/L、30ugC/L、50ugC/L、70ugC/L、100ugC/L系列标准碳溶液。
(其实一般情况下,仪器会自带的标曲,一般不用自己做的)1.4 操作步骤1.4.1 土壤的前处理(过筛和水分调节略)1.4.2 熏蒸称取新鲜(相当于干土10.0g,这个可以根据自己土样的情况而定)3份分别放入25ml小烧杯中。
将烧杯放入真空干燥器中,并放置盛有无乙醇氯仿(约2/3)的15ml烧杯2或3只,烧杯内放入少量防暴沸玻璃珠,同时放入一盛有NaOH溶液的小烧杯,以吸收熏蒸过程中释放出来的CO2,干燥器底部加入少量水以保持容器湿度。
盖上真空干燥器盖子,用真空泵抽真空,使氯仿沸腾5分钟。
关闭真空干燥器阀门,于25℃黑暗条件下培养24小时。
1.4.2 抽真空处理熏蒸结束后,打开真空干燥器阀门(应听到空气进入的声音,否则熏蒸不完全,重做),取出盛有氯仿(可重复利用)和稀NaOH溶液的小烧杯,清洁干燥器,反复抽真空(5或6次,每次3min,每次抽真空后最好完全打开干燥器盖子),直到土壤无氯仿味道为止。
同时,另称等量的3份土壤,置于另一干燥器中为不熏蒸对照处理。
土壤微生物学特征的测定
土壤微生物学特征的测定一土壤微生物量碳、氮的测定将新鲜的土壤样品含水量调节至田间含水量的30%~50%,25℃下密封预培养7~10d,以保持土壤均匀和不同的地方所得结果的可比性。
然后迅速测定土壤微生物量碳氮,或在低温4℃下保存。
采用氯仿熏蒸-K2SO4提取法测定土壤微生物量碳氮,即称取预处理的湿润土壤每份20.0g(烘干基重)放入50ml烧杯中,将其置于底部有少量NaOH、少量水(约200ml)和去乙醇氯仿的真空干燥器中,抽真空后保持氯仿沸腾3-5min;然后,将干燥器移置在黑暗条件下25℃熏蒸土壤24h,再次抽真空完全去除土壤中的氯仿。
将熏蒸好的土壤转移到200ml提取瓶中,加入约80ml0.5mol/LK2SO4提取液(土水比为1∶4),振荡30min后过滤,得土壤提取液每份土样重复3次。
同时做未熏蒸空白和试剂空白。
土壤微生物量碳:用重铬酸钾氧化法测定吸取10ml土壤提取液于150ml消化管中,加入0.2mol/LKCrO和浓硫酸各5.0ml,再加入少量沸石,混匀,于175℃磷酸浴中煮沸10min。
冷却后全部移入150ml三角瓶中,使总体积约80ml,加入2滴邻啡罗啉指示剂,用0.05mol/LfeSO滴定至砖红色。
土壤微生物量碳(Bc)=Ec/Kc,Ec表示未熏蒸与熏蒸对照土壤的浸取有机碳的差值,Kc未转换系数,取值0.38。
土壤微生物量氮:用凯氏定氮法测定取20ml土壤提取液于250ml消化管中,加入0.19mol/LcuSO溶液0.4ml、浓硫酸6.7ml 消化至澄清,冷却后进行定氮。
土壤微生物量氮(Bn)=En/Kn,En为熏蒸与未熏蒸对照土壤矿质态氮的差值,Kn为转换系数,取值0.45。
二土壤酶活性的测定土壤过氧化氢酶活性用高锰酸钾滴定法、脲酶活性用靛酚蓝比色法测定。
过氧化氢酶活性以20min后每克土消耗。
0.02mol/L高锰酸钾毫升数表示,脲酶活性一24h后每百克土NH3-N的毫克数表示。
土壤微生物生物量的测定(滴定法)
土壤微生物生物量(碳、氮)的测定(滴定法)一、实验目的和内容土壤微生物生物量是指土壤中体积小于5~10μm3活的微生物总量,是土壤有机质中最活跃的和最易变化的部分。
耕地表层土壤中,土壤微生物量碳(Bc)一般占土壤有机碳总量的3%左右,其变化可直接或间接地反映土壤耕作制度和微生物肥力的变化,并可以反映土壤污染的程度。
近30年来,国外许多学者对土壤微生物生物量的测定方法进行了比较系统的研究,但由于土壤微生物的多样性和复杂性,还没有发现一种简单、快速、准确、适应性广的方法。
目前广泛应用的方法包括:氯仿熏蒸培养法(FI)、氯仿熏蒸浸提法(FE)、基质诱导呼吸法(SIR)、精氨酸诱导氨化法和三磷酸腺苷(ATP)法。
氯仿熏蒸浸提法(FE)的原理是:土壤经氯仿熏蒸处理,微生物被杀死,细胞破裂后,细胞内容物释放到土壤中,导致土壤中的可提取碳、氨基酸、氮、磷和硫等大幅度增加。
通过测定浸提液中全碳的含量可以计算土壤微生物生物量碳。
二、实验材料和用具仪器:培养箱;真空干燥器;真空泵;往复式振荡机(速率200次每min);1L广口玻璃瓶;定量滤纸;紫外分光光度计;LNK-872型消煮炉(江苏省宜兴市科教仪器研究所)试剂:1.无乙醇氯仿:市售的氯仿都含有乙醇(作为稳定剂),使用前必须除去乙醇。
方法为:量取500ml氯仿于1000ml 分液漏斗中,加入50ml硫酸溶液[ρ(H2SO4)=5%],充分摇匀,弃除下层硫酸溶液,如此进行3次。
再加入50ml去离子水,同上摇匀,弃去上部的水分,如此进行5次。
将下层的氯仿转移存放在棕色瓶中,并加入约20g无水K2CO3,在冰箱的冷藏室中保存备用。
2.硫酸钾溶液[c(K2SO4)=0.5mol·L-1]称取硫酸钾(K2SO4,化学纯)87.10g,先溶于300ml去离子水中,加热,转移溶液至容器中,再加少量去离子水溶解余下的部分,转移溶液至同一容器中,如此反复多次。
最后定容至1L;3.重铬酸钾[c(1/6 K2Cr2O7)=0.4000mol·L-1]:称取经130℃烘干2~3h的重铬酸钾(K2Cr2O7,分析纯)19.622g,溶于1000ml去离子水中;4.邻啡罗啉亚铁指示剂:称取邻啡罗啉(C12H8N2H2O,分析纯)1.49g,溶于含有0.70gFeSO4·7H2O的100ml 去离子水中,密闭保存于棕色瓶中;5.硫酸亚铁溶液[c(FeSO4·7H2O)=0.0667mol·L-1]:称取硫酸亚铁(FeSO4·7H2O,化学纯)18.52g,溶解于600ml~800ml去离子水中,加浓硫酸(化学纯)15ml,搅拌均匀,定容至1000ml,于棕色瓶中保存。
微生物碳氮的测定方法——熏蒸提取法
1.主题内容与适用范围本方法采用氯仿熏蒸—提取测定土壤微生物量碳、氮,适用范围广,既适用于中性和微碱性土壤,也适用于强酸性土壤,并且适用于滞水土壤(如水稻土)和新施有机肥土壤。
2.方法提要土样经氯仿熏蒸和未熏蒸两种不同处理后,用K2SO4溶液浸提,提取液一部分用K2CrO7(重络酸钾)氧化法测定微生物量碳,另一部分用浓H2SO4消煮、碱化蒸馏法测定微生物量氮。
3.提取液的制备仪器、设备:抽气皿(真空干燥器)、无醇氯仿、抽气机、大铝盒、分析天平(感量:)、小烧杯(50ml)、大塑料瓶(250ml)、大三角瓶(150ml)、40C的冰箱、定量滤纸(15cm)、漏斗、保鲜膜试剂的制备: M K2SO4溶液(化学纯)、无醇氯仿(提纯方法:用1N H2SO4溶液与氯仿(CHCl3三氯甲烷)按体积比2:1于分液漏斗中振荡混匀,净置分离,共做3次;再用水代替硫酸与氯仿2:1混匀,振荡分离,共5次,将提纯的氯仿放入到棕色试剂瓶中,加一勺无水硫酸钠,保存)分析步骤:称取鲜土(取土要准确、均匀,不要夹入有机残体)于大铝盒中。
在抽气皿中放入盛有25ml无醇氯仿的小烧杯,小烧杯中放几张小纸片以便于观察沸腾。
放入装土的大铝盒,连上抽气机,抽真空使氯仿沸腾5分钟,关紧活塞,关闭抽气机。
包上黑布,置于阴暗处(250C)熏蒸24小时。
到时间后,取出小烧杯后反复抽真空2~3次(每次5分钟),排除氯仿。
另称取一批同等重量的土放入大塑料瓶中,不做熏蒸处理,同样包上黑布,置于阴暗处24小时。
将步骤中的两批土样转移到离心管中(红壤适宜离心管)。
用注射器注入每瓶50ml K2SO4溶液,盖紧瓶塞,振荡30分钟,离心5分钟后取出,用15ml定量滤纸过滤到150ml大三角瓶中,应立即测定。
如不立即测定,用保鲜膜封口(防止污染和挥发),保存在40C的冰箱中。
4.生物量碳的测定—K2CrO7氧化法仪器、设备:DOC测定仪(冷凝装置4套、配套沸瓶装16个)、玻璃沸珠、1500W电炉两个、变压器两个、滴定管(25ml)试剂的制备:蒸馏水、混合酸(浓硫酸:浓磷酸=2:1,分析纯) 、 K2CrO7标准溶液邻菲罗啉指示剂、( N)K2CrO7溶液(L,分析纯)(NH4)2Fe(SO4)2溶液:取L溶于蒸馏水,用20ml浓硫酸(98%,分析纯)酸化,而后定容至1L、分析步骤:吸取2ml N K2CrO7溶液放入沸瓶,再吸15ml 混酸放入沸瓶,混合,加入等量的玻璃球(约一小药匙,10个)。
微生物生长碳氮磷比例
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微生物量碳氮测定方法
微生物量碳氮测定(赵宁宁版)氯仿熏蒸提取法CFE(Chloroform fumigations extractions-Method)Literature:Brookes PC, Landman A, Pruden G, Jenkinson DS (1985). Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: Arapid direct extraction method to measure microbial biomass nitrogen in soil. Soil Biology & Biochemistry 17: 837-842.试剂处理:1.氯仿必须是除去乙醇的,乙醇除去方法是先加入约200l的氯仿至1L的分液漏斗中,然后用5% v/v H2SO4溶液20ml洗涤两次,每次手摇动2-3min左右。
之后在用蒸馏水洗涤2-3次,然后加入5g左右的无水硫酸镁或者无水氯化钙干燥,最后使用旋转蒸发仪蒸馏。
2.沸石处理:玻璃珠事先用丙酮洗净,然后在105度下烘干。
使用清洗烘干后的玻璃珠,否则氯仿有可能不会沸腾。
上述处理均在通风橱里操作。
3.检查真空干燥器的气密性,事先使用真空泵抽取真空,待一天后轻微打开干燥器的开关,听到是否有呲呲的声音。
若是气密性不好,使用少些凡士林密封。
步骤:1.鲜土样过2mm筛子后,在40C冷藏室贮藏。
2.在熏蒸提取之前,测定土壤重量含水量,之后用蒸馏水调节土壤水分含量至统一(一般是调节到土壤的最大持水量或者调节至土壤样品中含水量最高值),这是为了保证熏蒸效果一致。
3.称取15g新鲜土样到50ml的小烧杯中(标签要用铅笔记录)。
4.将氯仿,真空干燥器事先放入通风橱中(氯仿有毒),在真空干燥器底部放入平底100ml或者200ml烧杯,烧杯中加入用丙酮洗净烘干的玻璃珠至小半杯即可,然后加入处理完毕的氯仿至2/3左右。
微生物在土壤碳氮磷循环中的功能与调控研究
微生物在土壤碳氮磷循环中的功能与调控研究土壤是地球上最重要的生态系统之一,它承载着丰富的生物多样性和庞大的微生物量。
微生物在土壤碳、氮、磷循环中扮演着至关重要的角色。
它们通过多种功能和调控机制参与到这些关键元素的转化和循环过程中。
本文将重点探讨微生物在土壤碳氮磷循环中的功能与调控研究。
1. 微生物在土壤碳循环中的功能与调控1.1 分解有机质土壤微生物通过分解有机质,将有机物转化为无机碳,使之能够被其他微生物和植物利用。
这一过程称为有机质矿化,能够释放大量的二氧化碳。
腐生微生物,如真菌和细菌,是主要的分解者,它们分泌酶类解聚有机物质,并利用产生的碳源维持自身生长和代谢。
1.2 呼吸作用微生物通过呼吸作用将有机碳和无机碳氧化为二氧化碳。
这一过程释放出的二氧化碳可供植物进行光合作用,从而形成碳循环的闭合循环。
微生物呼吸的速率会受到环境因素的影响,如温度、湿度和土壤质地等。
1.3 产生胞外酶微生物分泌的胞外酶能够降解有机质分子,从而提高土壤中的可利用碳。
胞外酶的活性受到土壤理化性质和微生物本身的调控。
2. 微生物在土壤氮循环中的功能与调控2.1 固氮作用一些微生物具有固氮的能力,可以将大气中的氮气转化为可供植物吸收利用的氨或亚硝酸盐。
植物合作菌根真菌和一些自由生活的氮结固菌是主要的固氮微生物。
固氮作用能够提供土壤中的有效氮源,从而促进植物生长和生态系统的氮循环。
2.2 氨化作用微生物通过氨化作用将有机氮转化为氨,这一过程称为氨化。
氨化作用主要由硝化细菌和硝化古菌参与,它们在土壤中将有机氮、氨和亚硝酸盐转化为硝酸盐。
硝酸盐是植物的主要氮源之一,对植物的生长发育具有重要影响。
2.3 反硝化作用反硝化作用是一种微生物呼吸过程,微生物通过反硝化作用将硝酸盐还原为氮气,从而释放出大量的氮气。
反硝化细菌是主要的反硝化微生物,它们在缺氧条件下对硝酸盐进行还原。
反硝化作用在土壤氮循环中起到重要的调控作用,能够减少土壤中的硝酸盐浓度,影响植物对氮营养的吸收。
生物量碳氮测定方法
生物量碳氮测定方法
熏蒸提取法首先需要标定氯仿和浓硝酸的用量。
氯仿用于提取生物样品中的有机碳,而硝酸用于氧化有机物质并释放出氮。
实验过程中,首先将称量好的生物样品放入一个带有砂浴和回流装置的烧瓶中,并加入适量的硝酸和氯仿。
然后,用火焰加热烧瓶,使溶液进行蒸发和浓缩。
随着溶液的蒸发,有机物质被转化为气体,并被冷凝在装有冷冻剂的收集瓶中。
在冷凝过程中,氯仿中的有机碳会沉积在冷凝瓶底部。
完成冷凝后,将氯仿从冷凝瓶中转移到预先称量的烧瓶中,然后再进行蒸发和浓缩,直到氯仿蒸发殆尽。
最后,将烧瓶中残余的有机物质转移到燃烧船中,放入燃烧炉中进行燃烧。
燃烧后,生成的CO2和N2通过吸收器中的饱和硫酸被捕获,并被转移到室外的装有碱液的收集瓶中。
碱液中的CO2被氢氧化钠中和,并转化为氢氧化钠。
通过在吸收瓶中加入酚酞指示剂,可以测定CO2的体积。
测定氮的过程与测定碳类似,只是在蒸发过程中释放的气体被洗涤瓶中的含硼酸溶液捕集。
然后将含硼酸溶液转移至定容瓶中,用碱液进行中和,再用氯化亚铁标准溶液滴定,从而可以测定氮的含量。
通过测定生物样品中CO2和N2的体积,以及标定剂量和无机碳和氮的含量,可以计算出生物样品中的有机碳和氮的含量。
总的来说,熏蒸提取法是一种通过加热蒸发和燃烧的方法,将生物样品中的有机物质转化为气体或溶液,并通过捕集和测定气体体积的方式,来测定生物体内的碳和氮含量。
微生物碳氮磷测定
土壤微生物量碳氮磷测定方法一、试剂配制微生物量碳试剂:1 硫酸钾溶液[c(K2SO4)=0.5mol·L-1]:称取硫酸钾(K2SO4,化学纯)87.10g,先溶于300ml去离子水中,加热,转移溶液至容器中,再加少量去离子水溶解余下的部分,转移溶液至同一容器中,如此反复多次。
最后定容至1L;(需大量配制)2 生物量C氧化剂:1.2800g在130℃下烘干两个小时的K2Cr2O7与400mlH2O,2L的优级纯浓硫酸混合,配成2.4L的混合氧化剂溶液,在室温,棕色瓶中保存;3 葡萄糖标准储备液(100mg/L):准确称取0.2502g的无水葡萄糖溶于1000mL的容量瓶中,存放在4℃冰箱,使用时稀释为所需标准溶液;微生物量氮试剂:4 醋酸锂溶液:称取氢氧化锂(LiOH·H2O)168g,加入冰乙酸(优级纯)279mL,,加水稀释到1000mL,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH 至5.2;5 茚三酮试剂:23g分析纯水合茚三酮溶解于750ml二甲基亚砜,加入250ml醋酸锂缓冲液,混合30min,使氧气和氮气排出;(注意此试剂在使用前一天配置,室温下密封保存)6 氢氧化钠溶液(10mol/L):400g分析纯氢氧化钠溶于去离子水,稀释至1L;7 柠檬酸缓冲液:42.0g分析纯柠檬酸和16.0g氢氧化钠,溶于900ml去离子水,用10mol/L氢氧化钠调节Ph至5.0,再用水稀释至1L;8 乙醇溶液:95%分析纯乙醇与去离子水按体积比1:1比例混合;9 1mg/ml的硫酸铵标准储存液:称取4.7167g分析纯硫酸铵(称前105℃烘2h)溶于0.5moL/L硫酸钾溶液中,并用硫酸钾溶液定容至1000mL,摇匀,于4℃冰箱中保存。
10 0.1mg/ml的硫酸铵[(NH4)2SO4]标准液:吸取10mL1mol/L的硫酸铵标准储存液于100mL容量瓶中,用0.5mol/L硫酸钾溶液定容至100mL.摇匀。
长期施肥下农田土壤-有机质-微生物的碳氮磷化学计量学特征
长期施肥下农田土壤-有机质-微生物的碳氮磷化学计量学特征王传杰;王齐齐;徐虎;高洪军;朱平;徐明岗;张文菊【摘要】探讨外源养分的输入对土壤系统内碳、氮、磷化学计量特征的影响,对于深刻认识农田土壤有机碳(C)和养分循环及其相互作用过程具有重要意义.以26年的农田长期定位施肥试验为平台,分析长期不同施肥条件下土壤、有机态及微生物生物量碳、氮、磷含量及其化学计量学特征,并根据内稳性模型y=c x1/H计算其化学计量内稳性指数H.结果表明:与长期撂荒处理(CK0)相比,种植作物条件下26年化肥配施有机肥处理(MNPK和1.5MNPK)显著降低微生物生物量氮含量,但显著提高了微生物生物量磷的含量.相对于撂荒处理,即使长期配施化肥磷处理(NP、PK、NPK),其土壤有机磷降低显著.对于C∶N比而言,化肥配施有机物料处理(秸秆或有机肥)的土壤C∶N比、有机质C∶N及微生物生物量C∶N比均显著低于化肥处理(N、NP、PK和NPK).对于C∶P比而言,相对于撂荒处理,26年施用磷肥(化肥磷或有机磷)显著降低了土壤C∶P比和微生物生物量C∶P比,而CK和偏施化肥处理(N、NP和PK)显著降低了土壤有机质C∶P比.对于土壤N∶P比而言,撂荒处理土壤N∶P比显著高于其他处理,而撂荒处理土壤有机质N∶P比显著高于CK和化肥处理,表明不施肥或化肥条件下作物种植加剧了土壤有机质中氮素的消耗.微生物生物量C∶N、C∶P、N∶P比的内稳性指数H分别为0.24、0.75、0.64,不具有内稳性特征.微生物生物量C∶N、C∶P、N∶P比分别与土壤C∶N、C∶P、N∶P比呈显著正相关关系,但与土壤有机质碳氮磷化学计量比之间无显著相关性.表明土壤碳、氮、磷元素的改变会直接导致微生物生物量碳、氮、磷化学计量比的改变,但微生物生物量碳氮磷化学计量比对土壤有机质碳氮磷化学计量比无显著影响,土壤有机质的碳氮磷计量比可能更多是受到作物和施肥等养分管理措施的影响.%Investigating the impact of exogenous input of nutrients on thestoichiometric ratio of carbon (C),nitrogen (N),and phosphorus (P) in arable soil is of significance for better understanding of the cycling and interaction of C and N in agroecosystems.Based on a 26-years fertilization experiment in a cropland,we analyzed content and stoichiometric ratio of C,N,and P in bulk soil,soil organic matter,and microbial biomass under various fertilization treatments.The regulation coefficient,H was calculated according to the model y =c x1/H,where y is consumer stoichiometry,x is resource stoichiometry,c is a constant and H is regulationcoefficient.Results showed that,compared with fallow (CK0),soil microbial biomass nitrogen under the manure treatments (MNPK and 1.5MNPK) with cropping,significantly decreased,but soil microbial biomass phosphorus was significantly increased (P < 0.05).Long-term application of chemical fertilizers significantly decreased organic P.The C ∶ N ratio in bulk soil,soil organic matter,and soil microbial biomass under treatments with organic amendments (maize straw and livestock manure) was significantly lower than that of the chemical fertilization treatments (N,NP,PK,andNPK).Compared with CK0 treatment,application of P (chemical P fertilizer or organic amendments) significantly reduced C ∶P ratio in bulk soil and soil microbial biomass,but no fertilization (CK) and unbalanced fertilization treatments (N,NP,and PK) significantly decreased C ∶P ratio of soil organic matter.The N ∶P ratio under CK0 treatment was the highest of all treatments.Moreover,N ∶P ratio of soil organic matter under CK0 treatment was higher than that of the CK and the chemical fertilization treatments,indicating the N depletion in soil organic matter under CK andchemical fertilization treatments.The homeostatic regulation coefficient H of C ∶N,C ∶P,N ∶P was 0.24,0.75,0.64,respectively,indicating no stoichiometric homeostatic characteristic.There were significant positive correlations of C ∶N,C ∶P,and N ∶P ratios between bulk soil and soil microbial biomass.However,there was no significant relationship ofC ∶N,C ∶P,and N ∶P ratios between soil organic matter and soil microbial biomass.Our results indicated that change in soil carbon,nitrogen,and phosphorus can directly affect the stoichiometric ratio in soil microbial biomass.The stoichiometric ratio of soil organic matter might be influenced by cropping and nutrients management practices,other than the stoichiometric ratio in soil microbial biomass.【期刊名称】《生态学报》【年(卷),期】2018(038)011【总页数】11页(P3848-3858)【关键词】化学计量学;长期施肥;黑土;土壤有机质;微生物生物量;内稳性【作者】王传杰;王齐齐;徐虎;高洪军;朱平;徐明岗;张文菊【作者单位】中国农业科学院农业资源与农业区划研究所/耕地培育技术国家工程实验室,北京 100081;中国农业科学院农业资源与农业区划研究所/耕地培育技术国家工程实验室,北京 100081;中国农业科学院农业资源与农业区划研究所/耕地培育技术国家工程实验室,北京 100081;吉林省农业科学院农业环境与资源中心,长春130033;吉林省农业科学院农业环境与资源中心,长春130033;中国农业科学院农业资源与农业区划研究所/耕地培育技术国家工程实验室,北京 100081;中国农业科学院农业资源与农业区划研究所/耕地培育技术国家工程实验室,北京 100081【正文语种】中文在农田生态系统中,土壤有机质(包含有机碳,Soil Organic Carbon, SOC; 有机氮,Soil Organic Nitrogen, SON; 有机磷,Soil Organic Phosphorus, SOP)的循环不仅是生物地球化学循环最基本的过程,也是衡量土壤肥力的重要指标[1]。
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土壤微生物量碳氮磷测定方法
一、试剂配制
微生物量碳试剂:
1 硫酸钾溶液[c(K2SO4)=0.5mol·L-1]:称取硫酸钾(K2SO4,化学纯)87.10g,先溶于
300ml去离子水中,加热,转移溶液至容器中,再加少量去离子水溶解余下的部分,转移溶液至同一容器中,如此反复多次。
最后定容至1L;(需大量配制)
2 生物量C氧化剂:1.2800g在130℃下烘干两个小时的K2Cr2O7与400mlH2O,2L的优级纯浓硫酸混合,配成2.4L的混合氧化剂溶液,在室温,棕色瓶中保存;
3 葡萄糖标准储备液(100mg/L):准确称取0.2502g的无水葡萄糖溶于1000mL的容量瓶中,存放在4℃冰箱,使用时稀释为所需标准溶液;
微生物量氮试剂:
4 醋酸锂溶液:称取氢氧化锂(LiOH·H2O)168g,加入冰乙酸(优级纯)279mL,,加水稀释到1000mL,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH 至5.2;
5 茚三酮试剂:23g分析纯水合茚三酮溶解于750ml二甲基亚砜,加入250ml醋酸锂缓冲液,混合30min,使氧气和氮气排出;(注意此试剂在使用前一天配置,室温下密封保存)
6 氢氧化钠溶液(10mol/L):400g分析纯氢氧化钠溶于去离子水,稀释至1L;
7 柠檬酸缓冲液:42.0g分析纯柠檬酸和16.0g氢氧化钠,溶于900ml去离子水,用10mol/L
氢氧化钠调节Ph至5.0,再用水稀释至1L;
8 乙醇溶液:95%分析纯乙醇与去离子水按体积比1:1比例混合;
9 1mg/ml的硫酸铵标准储存液:称取4.7167g分析纯硫酸铵(称前105℃烘2h)溶于0.5moL/L硫酸钾溶液中,并用硫酸钾溶液定容至1000mL,摇匀,于4℃冰箱中保存。
10 0.1mg/ml的硫酸铵[(NH4)2SO4]标准液:吸取10mL1mol/L的硫酸铵标准储存液于100mL容量瓶中,用0.5mol/L硫酸钾溶液定容至100mL.摇匀。
此溶液最好现配现用。
11 工作曲线的制备:分别吸取0.00mL、0 .50mL、1.00mL、2.00mL、3.00mL、4.00mL、
5.00mL 0.1mg/ml的硫酸铵标准液于1000mL容量瓶中,用0.5moL/L硫酸钾溶液定容至
100mL,摇匀。
然后取1.5ml,按照样液的步骤进行显色和比色。
微生物量磷试剂:
12 1mol L-1 HCl溶液:用8.33 mL的浓盐酸用蒸馏水定容至100 mL。
13 碳酸氢钠浸提液[c(NaHCO3)= 0.5mol L-1,pH 8.5]:42.0g分析纯碳酸氢钠溶于800ml 蒸馏水,用1mol L-1 NaOH溶液缓慢调节pH至8.5,再用蒸馏水定容至1L。
注意该浸提液放置时期过长时,因CO2释放使溶液pH升高。
14 硫酸溶液[c(H2SO4)= 2.5mol L-1]:70.0ml分析纯浓硫酸(H2SO4,ρ= 1.89g ml-1),用蒸馏水稀释定容至500ml。
14 钼酸铵溶液(4%):20.0g分析纯钼酸铵溶于蒸馏水,定容至500ml。
16 抗坏血酸溶液[c(C6H8O6)= 0.1mol L-1]:1.32g抗坏血酸溶于75ml蒸馏水。
抗坏血酸溶液极易被氧化,应在使用时当天配制。
如需保存可于75ml此溶液中加入25mg乙烯二胺四烷基醋酸二钠和0.5ml蚁酸使其稳定。
17 酒石酸锑钾溶液[ρ(Sb)= 1mg ml-1]:0.2743g分析纯酒石酸锑钾溶于蒸馏水,定容至100ml。
18 混合显色液:取上述125ml硫酸溶液与37.5ml钼酸铵溶液混合,再加入75ml抗坏血酸溶液和12.5ml酒石酸锑钾溶液,混匀。
此溶液保存时间不宜超过24h。
19 标准磷酸二氢钾溶液[ρ(KH2PO4)= 4µg P ml-1]:0.1757g分析纯磷酸二氢钾(称量前先经105℃烘2~3h),溶于少量蒸馏水,再加入少量硫酸,用蒸馏水定容至1L,即为40µg P ml-1磷贮存液,置4℃下保存。
取50ml贮存液稀释至500ml,即得到浓度为4µg P ml-1磷溶液,此溶液不宜久存。
二、样液制作
1 土壤灭菌
(1)土壤混合均匀后过2mm筛,除去根、秸秆、石头等杂质,烘干法测定土壤样品含水量,以及土壤田间饱和持水量(一般是土壤质量的30%);
(2)调节土壤含水量到田间饱和持水量的80%(水稻土适当冷冻干燥)左右。
一般调节土壤含水量到25%;
(3)每个样品称取相当于10克干土的土壤样品于100毫升塑料瓶中。
(或称10克样品后根据含水量换算);
(4)塑料瓶盖上盖(注意盖上要钻孔以防止微波炉加热样品时爆炸),放入微波炉加热;(5)加热量:每1克土800焦耳热量。
即为:每1克土应在功率为800W的微波炉加热1秒。
每个样品10克土,则为10秒。
若有10个样品(100克土),加热100秒。
依次类推,注意样品不能太多。
微波炉1层较适宜;
(6)在加热时间到一半时,从微波炉中拿出样品来均匀搅拌后再继续加热,杀灭效果更好。
2 浸提
微生物量碳氮:
将灭菌和未灭菌的两批土样每瓶加入40ml 0.5M K2SO4溶液(土水比为1:4),盖紧瓶塞,振荡30分钟(25℃),用慢速定量滤纸过滤到150ml大三角瓶中,应立即测定。
如不立即测定,用保鲜膜封口(防止污染和挥发),保存在-20℃的冰箱。
同时做不加土壤的空白对照。
微生物量磷:
将灭菌与不灭菌土壤完全无损地转入250ml塑料浸提瓶中,加入200ml 0.5mol L-1 NaHCO3浸提液(土水比为1 : 20,w : v),充分振荡浸提30min,用慢速定量滤纸过滤。
如果滤液浑浊,应使用双层滤纸,或先离心再过滤。
浸提液应立即测定或在–18℃下保存。
做不加土壤的空白对照。
三、分析测定
1 微生物量碳测定
(1)吸取土壤灭菌浸提液1.6ml于50ml锥形瓶中,再加入2.4ml的生物量C氧化剂,摇匀;(2)将锥形瓶放置在140℃的消煮炉上维持30min(待温度达到140℃后开始计时),冷却后用1cm石英比色皿在350nm波长下进行比色,读取吸光值A。
同时测定不灭菌土壤浸提液,3次重复;
(3)工作曲线:用葡萄糖储备液分别稀释成含碳量为0,10,20,30,40和50mgC·L-1的标准溶液,然后分别吸取1.6ml加入硬质玻璃管中,在加入2.4ml的生物量C氧化剂后,摇匀与样品一起在消煮炉中进行消煮,在350nm条件下进行比色。
以A值为纵坐标,碳的浓度为横坐标绘制工作曲线,根据样品A值查得测定溶液中碳的浓度。
2 微生物氮测定
(1)取1.5ml浸提液和标准曲线溶液于40ml硬质试管中,加入3.5ml柠檬酸缓冲液,使浸提液中的硫酸钙和硫酸钾彻底溶解,再缓慢加入2.5ml茚三酮试剂,彻底混匀;
(2)将试管置于沸水浴中加热25min(放入试管2min后水浴应再次沸腾),使加入试剂时产生的沉淀彻底溶解;
(3)待溶液冷却至室温,加入9.0ml乙醇溶液,混匀,于570nm波长下比色。
3 微生物量磷测定
(1)取适量的浸提液(1.5~5ml)于20ml比色管中,加入适量的1mol L-1 HCl溶液进行中和,HCl溶液的加入量通常为浸提液体积的1/2;
(2)放置4h并间隙摇动以排除CO2。
补充蒸馏水至约10ml,加入4ml混合显色液,再加蒸馏水定容,完全显色后在882nm波长处比色。
(3)工作曲线:分别取0、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0ml 4µg P ml-1标准磷溶液于20 ml比色管中,加入与样液等量的NaHCO3浸提剂,同上进行显色和比色,得到浓度为0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8µg P ml-1标准磷工作曲线。
四、结果计算
1 微生物生物量碳的计算
ω(C)=Ec/KEc
式中:ω(C)——微生物生物量碳(Bc)质量分数,mg·kg-1;
Ec——灭菌土样有机碳与未灭菌土样有机碳之差,mg·kg-1;
KEc——氯仿灭菌杀死的微生物体中的碳(C)被浸提出来的比例,一般取0.33
2 微生物生物量氮的计算
BN=m*Emin-N
式中,Emin-N为灭菌和未灭菌土壤的差值(通过标准曲线查得样品中硫酸铵含量,mg);m 为转换系数,取值为5.0。
3 微生物量磷的计算
BP = EPi /kP
式中:EPi = 灭菌土壤浸提的Pi –不灭菌土壤浸提的Pi
kP为所浸提并测定出来的微生物生物量磷占土壤微生物生物量磷的比例,亦即浸提效率,也称转换系数,取值0.4。