实验小鼠眼眶静脉丛采血方法
大、小鼠摘眼球采血标准操作规程
大、小鼠摘眼球采血标准操作规程一、目的本规程规定了实验室大、小鼠摘眼球采血的操作步骤、注意事项和安全要求，以确保实验结果的准确性和动物福利的考虑。
二、适用范围本规程适用于实验室进行大、小鼠摘眼球采血的操作。
三、操作步骤1.准备工具和材料：眼科剪、眼科镊、止血棉球、生理盐水或肝素抗凝剂。
2.操作前准备：确保实验动物处于深度麻醉状态，以减少动物的痛苦和应激。
3.保定动物：将动物固定在实验台上，保持头部和身体稳定。
4.剪毛消毒：用剪刀轻轻剪去眼睑周围的毛发，然后使用消毒液对眼部进行消毒。
5.暴露眼球：用眼科镊轻轻分开眼睑，暴露出眼球。
6.采血：用眼科剪在眼球根部剪断血管，然后用止血棉球压迫止血。
如果需要采集较多血液，可以在剪断血管后轻轻挤出血液。
7.抗凝处理：将采集的血液样本放入含有肝素抗凝剂的试管中，轻轻摇匀，防止血液凝固。
8.清理动物：在采血完成后，用生理盐水清洁眼部，避免感染。
9.观察动物：密切观察动物的恢复情况，确保无并发症发生。
四、注意事项1.操作过程中要轻柔、迅速，减少动物的痛苦和应激。
2.采血时要注意血管的选择和剪断，避免破坏其他组织。
3.使用抗凝剂时要注意与血液的比例，防止影响实验结果。
4.在操作过程中要保持实验台和工具的清洁消毒，避免交叉感染。
5.如果动物出现并发症或死亡，应立即停止操作并向上级报告。
五、安全要求1.操作人员必须经过专业培训，熟悉操作步骤和注意事项。
2.实验动物必须处于深度麻醉状态，以减少动物的痛苦和应激。
3.在操作过程中要注意自我防护，避免受伤或感染。
4.对于使用过的工具和材料要进行妥善处理，防止交叉感染或环境污染。
5.在实验结束后要做好记录和分析，以便于数据的追溯和总结。
药理动物采血实验报告
一、实验目的1. 掌握药理实验中动物采血的方法和技巧。
2. 学习不同动物采血点的选择及其适用性。
3. 了解采血过程中的注意事项，确保实验数据的准确性。
二、实验原理药理实验中，动物采血是获取实验数据的重要环节。
通过采血，可以检测动物体内的血液指标，如血糖、血脂、血常规等，从而评估药物对动物的影响。
本实验采用小鼠作为实验动物，分别通过尾静脉采血和眼眶静脉采血两种方法获取血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠（体重18-22g）。
2. 采血器材：采血针、注射器、试管、酒精棉球、止血带等。
3. 实验试剂：生理盐水、抗凝剂等。
四、实验方法1. 尾静脉采血- 将小鼠放入固定盒中，用止血带固定尾部。
- 将尾部毛剪去，用酒精棉球消毒。
- 观察尾静脉，选择较粗的静脉进行采血。
- 用采血针对准静脉，缓慢插入，避免损伤血管。
- 收集血液至试管中，加入适量抗凝剂。
- 采血完毕后，用酒精棉球消毒伤口，压迫止血。
2. 眼眶静脉采血- 将小鼠放入固定盒中，用止血带固定头部。
- 用酒精棉球消毒眼眶周围。
- 用拇指和食指轻轻按压眼球，使眼眶静脉暴露。
- 用采血针对准静脉，缓慢插入，避免损伤血管。
- 收集血液至试管中，加入适量抗凝剂。
- 采血完毕后，用酒精棉球消毒伤口，压迫止血。
五、实验结果1. 尾静脉采血：小鼠体重18-22g，每次采血量约0.1ml，可重复采血3-5次。
2. 眼眶静脉采血：小鼠体重18-22g，每次采血量约0.05ml，可重复采血2-3次。
六、实验讨论1. 尾静脉采血操作简便，采血量充足，适用于一般药理实验。
但反复采血可能导致小鼠尾部损伤，影响实验动物的存活率。
2. 眼眶静脉采血操作相对复杂，采血量较少，但损伤较小，适用于需要多次采血或对动物存活率要求较高的实验。
3. 采血过程中应注意以下几点：- 操作者应熟悉动物解剖结构，避免损伤血管。
- 采血针插入血管后，应缓慢抽拉，避免血液凝固。
- 采血完毕后，应及时对伤口进行消毒和压迫止血。
大小鼠眼眶取血方法(附图)知识讲解
2014-5-5
交流提纲
实验环境 实验材料
具体操作
动物处理
大鼠 PK 取血
血样处理
.
取血容量 时间安排
问题讨论
动物处理
动物 体重要求 一般 不低于250g 给药前 禁食12-24h，给药前 提前 0.5-1.0h 按 0.5-1.0%（V/W）给水
实验期间 ，补充体液 ，目前常规为：取血后灌胃给予 等统计生理盐水/葡萄糖溶液。
5去管止血
Step5.取血完成，立即 除去颈部压力，将采血 器拔出，按压止血
Step 5 A 当得到所需的血量后，即 除去加于颈部的压力，同时，将 采血器拔出，以防止术后穿刺孔 出血。 B 尽量把眼睛周围的血渍搽 干净，避免结块影响下次取血。
6样品摇匀 Step6.血样管轻轻混匀， 防止凝血、溶血
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实验之后，外用消炎药涂布眼部
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容量 时间
取血 容量 时间 安排
选点一般原则
吸收相 3-4个点 吸收相 3-4个点 分布相 3-4个点
一般12h内取血 不超过动物质量 2.0% （v/w）
每次0.25- 0.5 mL
药物性质
预实验建立
给药途径
注射 一般 呈现 降低 趋势，给药后较短时间内采集的点数适当增加； 灌胃 存在Cmax-tmax，需通过考察tmax，根据一般原则，适当调整时间间隔。
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大鼠眼眶取血流程
2压迫颈部
Step2.紧握颈部，压 迫颈两侧，使眼突出， 眶后静脉丛充血
Step2 A 可用管试探性触碰眼球是否已经 突出； B 此时大鼠反抗挣扎最厉害，保证抓 紧的同时，不能太过，使其窒息死亡。
小鼠眼球取血技巧 根据需要捻动拇指与食指的方向,使血液从眼眶内以不同速度垂直流
小鼠眼球取血技巧小鼠摘除眼球采血及分离血清一．器材离心管，弯头镊子，离心机，移液器二．步骤1. 摘除眼球采血（1）左手拇、食指抓取小鼠双耳及颈后皮肤，小指固定尾部；（2）中指将小鼠左侧前肢轻压在胸骨心脏部位，无名指按在腹部，捻动拇指，轻压取血侧眼部皮肤，使眼球充血突出；（3）用弯头镊夹取眼球；（4）根据需要捻动拇指与食指的方向，使血液从眼眶内以不同速度垂直流入离心管；（5）同时用左手中指轻按小鼠心脏部位，以加快心脏泵血速度；（6）当血液流尽时，用脱臼法处死小鼠。
2. 分离血清（1）将离心管中的血置37℃温箱或水浴1小时，也可室温2小时；（2）再置4℃冰箱内3～4小时或过夜；（3）待血液凝固血块收缩后，4000rpm离心10分钟；（4）取上清于干净的离心管中，保存于-20℃，或加入防腐剂(0.01％硫柳汞或0.02％叠氮钠)，置4℃冰箱中保存备用。
三．注意：1. 采血前，可给小鼠喂点水；2. 摘眼球采血取血量能达0.8～1.2ml，但老年和疾病小鼠血量会降低；3. 采血场所有充足的光线；室温夏季保持在25～28℃，冬季，15～20℃为宜；4. 防止血液浸入眼部周围毛发，否则会造成污染和溶血；5. 按压心脏时，用力一定要适度，若用力过度，一是会造成动物采血中途死亡，使采血不完全，二是有可能引起溶血现象发生，影响实验结果；6. 采血用的器材和试管必须保持清洁干燥；7. 采血时要防止小鼠挣扎，否则会损失比较多的血样；8. 血液凝固后不宜在4℃放置过久，否则会溶血。
另附其他几种采血方法1）尾尖取血：当所需血量很少时采用本法。
固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干，剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。
如需间隔一定时间，多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
小鼠采血及给药方法
小鼠采血及给药方法一、小鼠采血方法1.静脉采血法：(1)静脉穿刺法：将小鼠固定在实验台上，清洁采血部位（常常是尾静脉），用适当的方法固定小鼠尾部，例如用取血夹固定。
用消毒棉球涂抹于采血部位，利用一只针筒或采集针对静脉进行穿刺。
(2) 尾静脉切割法：先用消毒棉球涂抹于小鼠尾部静脉附近，接着使用锋利的剪刀剪切尾部皮肤，直到出现静脉。
使用脱针管（micro-hematocrit tube）将血液抽吸出来。
采血结束后，可用消毒剂处理采血点，以防止感染。
2.额高度法：采用颅内针，固定小鼠在颅骨穿刺装置上，选用滑动固定针。
先用洗净针按住头部，再通过颅针插入到穿刺装置中。
同时使用抽吸器抽取出血液。
3.围尾车压法：将小鼠固定在一块平板上，用三个围绳将其尾部固定，留一个关节使小鼠尾部随意摆动。
在上方围绳旁边的固定处架设一只容器，用于收集滴下的尾血。
二、小鼠给药方法1.口服给药：该方法较简单，将药物以适当的剂量溶解于注射用水或生理盐水中，用灌胃针或注射器将药液直接灌入小鼠口腔中。
要确保给药的准确剂量和流量，避免嗓子喉咙堵塞。
2.腹腔注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体，清洗注射部位。
用消毒棉球涂抹于腹部，使用22-25号注射针或微量注射器将药物缓慢注射入腹腔。
注射速度要控制得适当，避免损伤内脏器官。
3.尾静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洁尾部毛发，用爪式血管夹固定尾部血管。
使用注射针插入尾静脉，并注意发现血斗标志。
缓慢将药物注射入尾静脉。
4.静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洗注射部位。
用消毒棉球涂抹于注射部位（通常是尾静脉），固定小鼠尾部。
使用注射针或微量注射器将药物注射入静脉。
5.肌肉注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体。
将药物以适当的剂量溶解后，使用注射针插入小鼠腹股沟或胫肌中缓慢注射。
以上是小鼠采血及给药的常用方法，注意采血和给药的操作应该规范、缓慢、准确，以避免对小鼠造成不必要的伤害。
小鼠眼眶静脉丛采血方法经验总结
小鼠眼眶静脉丛采血1、器材碘伏、1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃管(毛细管内径0.5-1.0mm×100mm，对半折断)、5%葡萄糖注射液或生理盐水。
2、步骤先麻醉小鼠。
（可在采血前给予相应量5%葡萄糖注射液或生理盐水腹腔注射，这样可提高穿刺失血后小鼠的存活率）碘伏消毒眼周皮毛。
（必须等碘伏干后才可穿刺，否则会溶血）采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。
当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。
右手持注射器或玻璃管。
玻璃管平端先沿着鼻侧眼角慢慢滑动至眼球正下方的眼皮内，此时左手微微顺时针旋转，使小鼠头部相对位置微向右下偏转，即相当于玻璃管刺入时是对着口腔方向的（这样做可避免小鼠失明）。
从眼眶下端中间垂直于鼠面略斜向内眦方刺入，针头斜面先向眼球，当感到有阻力时即停止推进，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。
（刺入深度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm，不能插过深！）这个动作应稳且迅速。
一般情况下，即会有血液流出，若不行，则将针退出约0.1-0.5mm，若还不行，可快速拧搓毛细管，进一步破坏内眦静脉丛，加快出血速度。
（若血量还是不足或要不惜处死小鼠以尽可能多取血，可使臀部高于头部）如出血速度满意，最好计数出血小滴数目，一般25g左右的小鼠28小滴血（0.4毫升）的出血量不会危及小鼠生命。
当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，清洁棉球压迫眼部片刻，碘伏消毒眼部。
若要重复采血，可左右两眼轮换，同一动物可反复交替穿刺双眼多次。
（每次采血后需要3到4周才可采下一次）。
小鼠取血方法范文
小鼠取血方法范文小鼠是常用的实验动物之一，常需要从小鼠身上进行取血以获取血液样本进行分析和研究。
小鼠取血方法有多种，包括尾静脉取血、眼眶窝静脉取血、颈静脉穿刺取血等。
下面将对这些方法逐一进行详细介绍。
1.尾静脉取血方法：尾静脉取血是最常用且最方便的小鼠取血方法之一、具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)清洗尾部：将小鼠放置在无菌条件下，用温水和肥皂轻轻清洗尾部，并用酒精擦拭消毒。
4)取血操作：将小鼠的尾部放置于温暖的环境恢复血流，用酒精擦拭尾部的静脉，然后用一只手控制住小鼠的尾巴，用另一只手将注射器针头的一端插入小鼠尾部的静脉中，缓慢地抽取所需的血样。
5)处理伤口：取血完成后，用棉球轻轻地按压尾部，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭尾部的酒精，帮助伤口愈合。
2.眼眶窝静脉取血方法：眼眶窝静脉取血适用于需要大量血样的实验。
具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)定位小鼠：将小鼠的头部固定于工作台上，使眼眶窝静脉暴露。
4)消毒处理：用酒精擦拭眼眶窝上方的毛发，然后用酒精将取血点消毒。
5)取血操作：用一只手控制住小鼠的头部，用另一只手将注射器针头的一端插入眼眶窝静脉中，缓慢地抽取所需的血样。
6)处理伤口：取血完成后，用消毒棉球轻轻按压取血点，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭取血点的酒精，帮助伤口愈合。
3.颈静脉穿刺取血方法：颈静脉穿刺取血方法适用于表层静脉无法清晰可见或不方便取血的情况。
具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)小鼠体位：将小鼠放置于工作台上，头部略微向后仰。
大小鼠眼眶取血方法(附图)课件
在实际操作中，需要注意压迫的力度和时间，以 免对动物造成不必要的损伤或影响实验结果。
采血后需要对动物进行适当的护理和观察，以确 保其健康和生存。
结论应用
眼眶取血方法适用于需要反复采血的 实验，如药物筛选、毒理学研究等。
需要注意的是，眼眶取血方法不适用 于需要大量采血的实验，如血液生理 研究等。
由于该方法对动物损伤小，因此在需 要长时间观察的实验中具有优势。
尽量快速地完成采血过程，以减少动物的不适感 。
观察动物状态
在采血过程中，要密切观察动物的状态，如出现 异常反应应及时停止操作。
操作注意事项
01
02
03
04
消毒措施
在操作前应确保所有工具和材 料都已经消毒，以减少感染的
风险。
动物福利
在采血过程中，要确保动物的 福利，避免对其造成不必要的
பைடு நூலகம்痛苦和应激。
避免损伤其他组织
眼眶取血针
专用的眼眶取血针，确保取血 准确、快速、方便。
试管
用于存放采集的血液样本，根 据需要选择不同规格的试管。
实验台和实验器具
实验台应保持清洁，准备好其 他必要的实验器具，如手术刀 、棉球等。
实验环境
清洁度
实验环境应保持清洁，定期进行消毒，确保无菌操 作。
温度和湿度
控制实验环境的温度和湿度，保持适宜的温湿度， 以减少对实验结果的影响。
光照
实验环境的光照应适度，避免过强或过弱的光照对 实验结果产生影响。
03
方法
操作步骤
准备工具与材料
准备大小鼠固定装置、消毒棉球、 眼科剪、眼科镊、试管、抗凝剂等 。
固定动物
将大小鼠置于固定装置中，确保其 舒适且稳定。
小鼠常用采血方法
小鼠常用采血方法小鼠采血是实验动物学中非常常见的实验操作，用于获得血液样本进行生化分析、免疫学研究以及血液学指标检测等。
常用的小鼠采血方法有尾静脉采血、眼眶静脉窦采血和颌下静脉窦采血等。
尾静脉采血是小鼠采血最简单、最常用的方法之一、下面将详细介绍尾静脉采血方法步骤：1.镇静小鼠：合理使用合适的麻醉方法，如使用乙醚进行麻醉，在适当的安全条件下使用乙醚喷雾或置于乙醚浓度适宜的密闭培养箱内，使小鼠进入麻醉状态。
2.准备采血工具：如细针管、吸球和样本采集管等。
3.绑扎尾部：将小鼠放置在固定装置（如支架）上，用滑动环或橡皮筋等绑扎尾部，使尾静脉充血。
4.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭尾部，以保持清洁。
5.采集血液样本：用细针管小心地刺破尾皮，迅速插入尾静脉，然后通过线性轻压尾部顶部，使血液进入针管中。
可以使用吸球来调节吸力，避免过度吸血，以免小鼠失血过多。
6.采完血样：迅速拔出针管，释放扎绑尾部的绳索或橡皮筋。
7.处理伤口：在采血后，可以用棉球轻轻按压以控制出血，并使用抗菌药膏涂抹伤口，加快伤口的愈合。
眼眶静脉窦采血是另一种常用的小鼠采血方法，这种方法更适合于需大量采血的实验。
具体步骤如下：1.镇静小鼠：使用适当的麻醉方法，如乙醚麻醉。
2.固定小鼠：将小鼠放置在固定装置上，使它的头部稳定。
3.准备采血工具：如微量注射器、吸球和注射针等。
4.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭眼眶区域，以保持清洁。
5.采集血液样本：用微量注射器或注射针小心地插入眼眶角内，慢慢吸取血液样本。
可以使用吸球来调节吸力，避免过度吸血。
6.采完血样：迅速拔出注射器或注射针。
7.处理伤口：在采血后，可以用棉球轻轻按压以控制出血，并使用抗菌药膏涂抹伤口，加快伤口的愈合。
颌下静脉窦采血是适用于大鼠、小狗等大型小型动物的一种采血方法，下面是具体步骤：1.镇静动物：使用适当的麻醉方法，如乙醚麻醉。
2.准备采血工具：如采血针、血液采集管等。
3.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭颌下区域，以保持清洁。
小鼠采血方法实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠采血的方法和技巧。
2. 了解不同采血方法的特点和适用范围。
3. 提高动物实验操作的规范性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠若干只。
2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、无菌手术器械、无菌棉球、液体火棉胶、注射器、无菌生理盐水、消毒液等。
三、实验方法1. 采血方法：本次实验主要采用剪尾采血和眼眶后静脉丛采血两种方法。
（1）剪尾采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将小鼠尾巴浸泡于50℃热水中数分钟，使尾部血管充盈。
c. 擦干尾部，用剪刀或手术刀剪去尾尖1-2mm。
d. 用注射器吸取无菌生理盐水，注入伤口处，使血液流出。
e. 用无菌棉球压迫伤口处止血，并涂上液体火棉胶。
（2）眼眶后静脉丛采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将麻醉药物滴入采血侧眼球，对小鼠眼部进行局部麻醉。
c. 用左手拇指和食指压迫小鼠颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。
d. 右手持硬质毛细玻璃管，沿眼角刺入眼眶底部，轻轻捻动毛细管，使其刺入眼眶静脉丛，可见血液流出。
e. 采集到所需血量后，用无菌棉球压迫伤口处止血。
2. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本注入无菌试管中。
b. 混匀血液样本，按照实验要求进行分离、检测等后续处理。
四、实验结果与分析1. 剪尾采血：a. 采血量：约0.1-0.2mL。
b. 采血时间：约5-10分钟。
c. 采血成功率：95%。
2. 眼眶后静脉丛采血：a. 采血量：约0.2-0.3mL。
b. 采血时间：约10-15分钟。
c. 采血成功率：90%。
五、实验讨论1. 剪尾采血方法操作简便，适用于少量多次采血，但可能导致小鼠尾部疼痛，影响动物福利。
2. 眼眶后静脉丛采血方法适用于中等量采血，成功率较高，但需要局部麻醉，可能对小鼠造成一定程度的刺激。
小鼠眼底采血实验报告
1. 掌握小鼠眼底采血的操作方法。
2. 了解眼底采血在实验研究中的应用。
3. 掌握眼底采血后样本处理的技巧。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠2. 实验仪器：显微镜、载玻片、盖玻片、剪刀、镊子、眼科剪、眼科针、无菌注射器、酒精棉球、碘伏消毒液、生理盐水、EDTA抗凝剂、EP管、离心机等。
3. 实验试剂：0.9%生理盐水、1%肝素钠、2%戊巴比妥钠、眼科局部麻醉剂等。
三、实验方法1. 实验动物选择：选取健康、体重在20-30g的小鼠作为实验对象。
2. 实验动物麻醉：将小鼠置于麻醉箱中，以2%戊巴比妥钠按50mg/kg体重腹腔注射进行麻醉。
3. 眼底采血操作：a. 麻醉后，将小鼠置于载玻片上，用眼科剪剪去小鼠双眼周围的毛，暴露出眼球。
b. 用眼科针在眼球上刺一小孔，插入眼科剪，剪断玻璃体。
c. 将小鼠眼球置于显微镜下观察，找到眼底静脉丛。
d. 用眼科剪将眼底静脉丛剪断，使血液流出。
e. 将血液收集于EP管中，加入EDTA抗凝剂。
4. 样本处理：a. 将采集到的血液样本室温下放置30分钟，使红细胞自然沉降。
b. 取上清液，置于离心机中以3000r/min离心10分钟。
c. 取上清液进行实验研究。
1. 成功完成小鼠眼底采血操作，采集到所需血液样本。
2. 样本处理过程中，血液自然沉降，上清液清晰。
3. 实验结果符合预期。
五、实验讨论1. 小鼠眼底采血操作过程中，需注意动物麻醉和操作技巧，避免损伤眼球。
2. 眼底采血操作应在显微镜下进行，以便准确找到眼底静脉丛。
3. 样本处理过程中，需注意避免污染，保证实验结果的准确性。
4. 眼底采血在实验研究中具有广泛的应用，可用于研究视网膜、脉络膜等组织的病理生理变化。
六、实验结论本实验成功完成了小鼠眼底采血操作，采集到所需血液样本，为后续实验研究提供了有力支持。
实验过程中，操作人员需掌握操作技巧，注意动物福利，确保实验结果的准确性。
小鼠眼眶采血的正确方法
小鼠眼眶采血的正确方法
小鼠眼眶采血是一种常用的实验动物采血方法，以下是正确的小鼠眼眶采血方法：
1. 术前准备：在采血前，要先给小鼠适当的麻醉，通常使用合适的麻醉剂，如异氟醚，在充分麻醉后，将小鼠放在一个舒适的采血台上。
2. 术中操作：用一只手轻轻地按住小鼠头部，小鼠的眼眶区域会突出一些，用另一只手用消过毒的棉签或纱布在眼眶区域上轻轻搽拭，以保持清洁。
3. 采血：使用专业的眼眶采血针或毛细管，将其插入到小鼠眼眶下方的眶隔内，稍微向后侧运动并慢慢吸取血液。
注意要控制好采血的力度和速度，以免对小鼠产生过多伤害。
4. 采血后处理：完成采血后，用消毒纱布或棉签在小鼠的采血点轻轻按压几秒钟，以避免出血。
然后将小鼠放回适当的饲养环境，等待其从麻醉中恢复。
需要注意的是，小鼠眼眶采血是一项技术要求较高的操作，需要经过专业培训并遵循相关的实验动物使用和操作规范，以确保采血的成功率和对小鼠的伤害最小化。
实验小鼠摘除眼球采血方法
实验小鼠摘除眼球采血方法
小鼠是科研实验中常用的实验动物，但由于其体积小，血管细，采血难度大，进而影响采血的质量，小编简要总结了实验小鼠摘除眼球采血方法，仅供参考：
用左手拇指、食指和中指抓取小鼠的颈部头皮，小指和无名指固定尾巴，轻压需要摘取的眼部皮肤，使眼球充血突出。
用眼科剪剪去小鼠的胡须，防止血从胡须处留下引起溶血。
用眼科弯镊夹取眼球并快速摘取，并使血液从眼眶内流入0.5mlEP管中。
待小鼠取血完毕后，断颈处死。
小鼠取血方法
小鼠取血方法主要有三类方法：1、少量取血：鼠尾采血法一一固定动物并露出鼠尾，将尾部侵入45-50度温水中数分钟，使静脉充血，擦干，再用酒精棉球擦拭消毒。
剪掉尾尖约0∙2-0.3cm。
拭去第一滴血。
然后用毛细管定量吸取尾血。
采血完毕用棉球压迫止血2、中等量取血：眼眶静脉丛采血一一左手拇指及食指紧紧握住小鼠颈部，压迫颈部两侧使眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。
右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45度角刺入，刺入深度为2-3mm。
若遇阻力稍后调整角度后再刺入，如穿刺恰当，血液能自然流入毛细管内。
得到血厚，即除去颈部压力，拔出毛细管，用干棉球压迫止血3、大量采血：断头采血一一用于动物实验结束后。
左手握住小鼠，右手持剪刀，快速剪掉头颈部，倒立动物让血液滴入容器。
注意防止断毛落入•卜鼠利大鼠剪尾取IilL祛；将清嘔鼠袈入探顒色的布袁中，粽鼠身塩疾・用酒精涂擦或用锻水浸趟怏机管扩张，剪斷尾光已堆静肚血脚可就出，川丁轻轻地从厘根绷冋尾次挤崔，可取到一定量的血敲U UlIl 后，川柿球斥迫止血・也可采刖交誓切割壓静脉方法収血’用一糠利刀片在尾光部切破一段尾靜J⅛∙ ⅛J⅛ 血即可流曲毎⅛∏Γ⅛0.3-0. S nl・⅛-⅛lfr^⅛⅛J⅛.三根毘清關町替换册害IL ⅛J≡⅛∣5J⅛⅛C切⅛L 由丁鼠血易瓶屈要仝血时，应事先将抗旅刘直丁和IiL管中”如用ιliL⅛D∣J⅛⅛⅛HS・⅛±j½i⅛⅛⅛i⅛.恨琲同抄怵妝取血法：左于持孤脚忻与中捋抓仕现讯皮抓疲壻按托头都向下，阴瞬静膩冋流,便腹球后静肮丛范机，眼球外突.右于持俠肝素浒浸池过的FI制吸血器，从内毗部刺入，沿内卜谨咂⅛向眼球后折谜4~5血.旋转吸Mtt头，切开静脉M t IfiL液H初斑入吸Ill憎筒.轮轻拥吸M管〔防止负乐压1⅛^⅛A⅛抽血电圉恭人拔出吸Ifiith放松手床力.4⅞∣f∣ι⅛J∏⅛⅛f?止-也可用转制的披璃取血管悄长7〜10 Ui IJ前刑憧成毛MU管，内⅛0- 1 -L 5皿1 UIl l后站管悴为0«T “哮要吋可在屈S I剌？L重覆収血・it法也适用諱鼠和家兔。
小白鼠采血三种方法的优缺点
小白鼠采血三种方法的优缺点(1)眼眶后血管丛采血(2)摘除眼球采血(3)心脏采血1.采血部位：眼眶采血采血方法：将鼠固定在实验台边缘，左手抓紧鼠颈部皮肤固定头部，并轻轻向下压迫颈两侧，使眼球充血。
用事先准备好的10号金属针头顶端(针尖斜面朝内)垂直插入内眦并向眼底方向转动以便切开静脉丛，血液便会连续不断地滴入采血管。
用此法大约可取3~5mL 血液。
取血完毕，立刻用脱脂棉压迫止血。
优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。
血流较快，采血量多，能在较短时间内采到3~5mL血。
伤口较小，愈合较快。
成功率高，死亡率低。
缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。
另外，多次使用易引起大鼠的感染。
对后续试验结果存在一定影响。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多练习。
一般来说，可以三人配合取血。
取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡须（胡须过长，血液滴下的时候容易沾在胡须上，既浪费，又造成溶血，故应剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科弯镊、止血钳。
一人抓大鼠并用眼科弯镊摘眼球，一人用止血钳夹住大鼠的嘴部以固定大鼠头部，另一个人拿试管接血。
大鼠在挣扎过程中，很容易导致血液丢失，因此固定头部很重要，否则只有眼看着血液乱飞，却不入试管。
摘眼球也需要技巧，否则眼球摘下来了，而血液却不流出来，应多多练习优缺点不太清楚啊，只知道我一个学长摘眼球的时候被咬了一口，挺残忍的3.采血部位：心脏取血（其实这个一般用在家兔）采血方法：将实验动物做仰卧有助手固定，术者在其左前肢腋下处剪毛及消毒。
在胸部心脏跳动最明显处，用一寸长的12好针头直刺心脏，感到以针头跳动或有血液内流动时。
即可抽血。
一次可采血15-20ml优点：抽血快，血液不易凝集，心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要缺点：心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血。
3‘.采血部位：心脏采血（剪开皮肤）采血方法：从胸部正中剪开皮肤2.0~2.5cm。
大小鼠眼眶取血方法(附图)
• 介绍 • 眼眶取血方法 • 眼眶取血的优点与局限性 • 眼眶取血的实际应用 • 结论
01
介绍
眼眶取血的目的
01
眼眶取血是一种常用的动物实验 取血方法，主要用于获取鼠类的 血液样本。
02
通过眼眶取血可以检测和分析动 物血液中的各种成分，用于评估 药物效果、生理和病理状态等研 究。
对大小鼠眼眶取血的总结
眼眶取血是一种方便、快捷、对 动物损伤较小的采血方法，适用
于大小鼠等小型哺乳动物。
在进行眼眶取血时，应掌握正确 的操作技巧和注意事项，以确保
采血过程的安全和有效性。
眼眶取血可用于多种实验研究领 域，如药理学、毒理学、生理学
等，具有广泛的应用价值。
对未来研究的建议
进一步研究眼眶取血方法的最佳操作流程和注意 事项，以提高采血效率和动物福利。
优化实验设计 根据实验需求合理设计实验方案， 尽量减少对动物的损伤和实验误 差。
提高操作技巧 为提高取血的准确性和动物舒适 度，操作者应熟练掌握操作技巧， 尽量减少对动物的损伤和实验误 差。
注意动物凝血状况 对于凝血功能异常的动物，应避 免使用眼眶取血方法，以防止出 血不止或形成血肿。
04
眼眶取血的实际应用
适用于需要反复或连 续采血的实验场景。
02
眼眶取血方法
大小鼠眼眶取血步骤
固定动物
将大小鼠固定在装 置中，确保其舒适 且稳定。
采血
使用采血针从大小 鼠的眼眶静脉丛中 采集血液。
准备工具
准备大小鼠固定装 置、酒精棉球、采 血针等工具。
消毒
用酒精棉球对大小 鼠眼部周围进行消 毒。
注意事项
采血过程中要轻柔， 避免对动物造成伤 害。
小鼠采血方式实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠采血的基本操作方法。
2. 比较不同小鼠采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
3. 为后续实验选择合适的采血方法提供依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 采血工具：眼眶后静脉丛采血器、剪尾采血器、注射器、酒精棉球、无菌手术刀、无菌棉球、消毒液等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水、实验所需试剂等。
三、实验方法1. 将小鼠随机分为四组，每组5只，分别为A组（眼眶后静脉丛采血）、B组（剪尾采血）、C组（注射器采血）、D组（心脏采血）。
2. 对各组小鼠进行适应性饲养，观察其健康状况。
3. 对A组小鼠进行眼眶后静脉丛采血，B组小鼠进行剪尾采血，C组小鼠进行注射器采血，D组小鼠进行心脏采血。
4. 采集血液后，观察各组小鼠的应激反应，如呼吸、心率等。
5. 对采集的血液进行质量检测，包括血常规、凝血功能等。
6. 比较不同采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
四、实验结果1. 各组小鼠的应激反应A组：眼眶后静脉丛采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
B组：剪尾采血过程中，小鼠出现明显的挣扎，采血结束后出现短暂的不适。
C组：注射器采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
D组：心脏采血过程中，小鼠出现剧烈的挣扎，采血结束后出现明显的不适。
2. 各组小鼠的血液质量A组：血液质量良好，各项指标正常。
B组：血液质量较差，部分指标异常。
C组：血液质量良好，各项指标正常。
D组：血液质量良好，各项指标正常。
五、实验结论1. 眼眶后静脉丛采血和注射器采血对小鼠的应激反应较小，血液质量良好，适合进行实验研究。
2. 剪尾采血对小鼠的应激反应较大，血液质量较差，不适合进行实验研究。
3. 心脏采血对小鼠的应激反应和伤害较大，不适合进行实验研究。
六、实验建议1. 在进行小鼠采血实验时，应根据实验目的和动物福利原则，选择合适的采血方法。
2. 采血过程中，应注意减轻小鼠的应激反应，尽量减少对动物的伤害。
大小鼠眼眶取血方法(附图)
大鼠眼眶取血流程
1左手保定
Step1.将大鼠按压 在鼠笼上，拇+中 +食指固定住头部
Step 1 A 建议笼子内放置重物 防止摇晃； B 一定要带手套； C 开始必须牢牢固定住头部 头部乱 动，扎位置容易得偏离，且易被咬伤； D 可在此时将大鼠取血侧的胡须剪 掉，防止接触凝血。
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大鼠眼眶取血流程
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转载自网络，谢谢！
5、You have to believe in yourself. That's the secret of success. ----Charles Chaplin人必须相信自己，这是成功的秘诀。-Thursday, June 17, 2021June 21Thursday, June 17, 20216/17/2021
10、阅读一切好书如同和过去最杰出 的人谈 话。2021/6/282021/6/282021/6/286/28/2021 12:00:47 PM
11、一个好的教师，是一个懂得心理 学和教 育学的 人。2021/6/282021/6/282021/6/28Jun-2128- Jun-21
12、要记住，你不仅是教课的教师， 也是学 生的教 育者， 生活的 导师和 道德的 引路人 。2021/6/282021/6/282021/6/28Monday, June 28, 2021
实验期间 ，补充体液 ，目前常规为：取血后灌胃给予 等统计生理盐水/葡萄糖溶液。
实验之后，外用消炎药涂布眼部
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容量 时间
取血 容量 时间 安排
选点一般原则
吸收相 3-4个点 吸收相 3-4个点 分布相 3-4个点
一般12h内取血 不超过动物质量 2.0% （v/w）
小鼠取血方法
小鼠取血方法
主要有三类方法：
1、少量取血：鼠尾采血法——固定动物并露出鼠尾，将尾部侵入45-50度温水中数分钟，使静脉充血，擦干，再用酒精棉球擦拭消毒。
剪掉尾尖约0.2-0.3cm。
拭去第一滴血。
然后用毛细管定量吸取尾血。
采血完毕用棉球压迫止血
2、中等量取血：眼眶静脉丛采血——左手拇指及食指紧紧握住小鼠颈部，压迫颈部两侧使
眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。
右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45度角刺入，刺入深度为2-3mm。
若遇阻力稍后调整角度后再刺入，如穿刺恰当，血
液能自然流入毛细管内。
得到血厚，即除去颈部压力，拔出毛细管，用干棉球压迫止血
3、大量采血：断头采血——用于动物实验结束后。
左手握住小鼠，右手持剪刀，快速剪掉
头颈部，倒立动物让血液滴入容器。
注意防止断毛落入。
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实验小鼠眼眶静脉丛采血方法
优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。
血流较快，采血量多，能在较短时间内采约0.5mL血。
伤口较小，愈合较快。
成功率高，死亡率低。
缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。
小鼠经气体麻醉后，左手拇指及食指压迫小鼠的颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，提示眼眶后静脉丛充血。
也可以将小鼠放置在侧卧位，拇指与食指分别置于小鼠头顶和下颌，将皮肤向后及向下拉。
抓握时要避免对气管施压，否则可能会影响小鼠呼吸。
将毛细采血管（建议采用0.5*100mm规格的毛细管，在使用前折成小段，每段大约3-4cm）置于内侧眼角处，并且以与鼻翼平面成30-45度沿内眦插入内眼角，滑入眼球后方，轻轻向眼底方向刺入。
当感到有阻力时即轻轻旋转采血管的同时施加压力以切开静脉丛，血液将通过毛细作用流入采血管。
不能刺地过深，一般2-3mm即可。
采血结束后，立即松开手指对小鼠的压迫，使眼球复位，同时将采血器拔出。
可用干棉球压住眼眶，确保止血。
一般眼眶静脉丛采血量可以达到0.2-0.3ml。