白蛋白测定与线性范围试验
血清前白蛋白测定标准规程
血清前白蛋白测定标准操作规程1 检验申请单独检验项目申请:血清前白蛋白(缩写PAB)测定,组合项目申请:血生化中肝功能项目测定。
临床医生根据需要提出检验申请。
2 标本采集与处理2.1标本采集2.1.1常规静脉采血约2 ml,不抗凝,置普通试管中。
或采用含分离胶的真空采血管。
检查体液乳酸脱氢酶的体液标本应用肝素抗凝。
2.1.2检验申请单和血标本试管标上统一且唯一的标识符。
2.1.3急诊标本采集后,在检验申请单上填写标本采集时间。
2.1.4标本采集后与检验申请单一起及时运送至检验科。
专人负责标本的接收并记录标本的状态,对不合格标本予以拒收。
2.1.5下列标本为不合格标本2.1.5.1标本量不足:少于0.3ml的全血标本,或少于0.1ml的血清或血浆。
2.1.5.2对反应吸光度有干扰的标本,包括严重溶血、严重浑浊的标本。
2.1.5.3无法确认标本与申请单对应关系的。
2.1.5.4其他如标识涂改、标本试管破裂等。
2.2标本保存2.2.1接收标本后在30min内将标本离心分离出血清。
2.2.2标本保存时间:室温(15~25℃)下可稳定8h,普通冰箱中(2~8℃)稳定24h。
-20℃保存稳定30天。
为避免标本中水分挥发使血清浓缩,对保存时间超过1天的标本均加塞密闭或覆盖湿巾。
2.2.3已完成测试的标本保持完整的识别号,置4~8℃冰箱内保存7天。
2.3标本采集的注意事项2.3.1采血前使受检者保持平静、松弛、避免剧烈活动,24h不饮酒和12h以上禁食空腹状态。
2.3.2注意有无应用影响测试项目的药物。
2.3.3可以使用肝素抗凝的血液标本。
3 方法原理人血清PA与其相应抗体在液相中相遇,立即形成抗原-抗体复合物,并形成一定浊度。
该浊度的高低在一定量抗体存在时与抗原的含量成正比。
通过与同样处理的校准比较,计算未知样品的PA含量4 试剂及其他用品4.1试剂:前白蛋白试剂盒,由北京利德曼生化技术有限公司出品。
4.2试剂盒保存:未开瓶的试剂储存在2~8℃可稳定至有效期。
线性范围评估的指南
5
低浓度血清(ml) 1.00 0.75 0.50 0.25 0.00
高浓度血清(ml) 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00
线性范围的评估及数据处理方法
实验样本的制备方法
样本的特殊处理:在无法得到适用的人血清时,需对 样本进行一些特殊处理以满足实验要求。这些处理过 程包括稀释、加入添加物或透析、热处理等,无论进 行何种处理均应以保持基质恒定为基本原则。在评价 报告中应对所使用的稀释液、添加物、溶剂等的材料 来源加以注明。
线性范围评估指南
郑金来 zhengjinlai@
前言
线性范围评估资料是评价拟上市产品有效
性的重要依据,也是产品注册所需的重要 申报资料之一
依据国家食品药品监督管理局《体外诊断
试剂注册管理办法(试行)》、《中华人 民共和国卫生行业标准---定量测定方法的 线性评价》的有关要求,参考CLSI有关标 准
建立一种定量测定方法的线性范围时,需在预期测定 范围内选择7-11个浓度水平。如将预期测定范围加宽至 130%,在此范围内选择更多的浓度水平,然后依据实 验结果逐渐减少数据点直至表现出线性关系,可发现 最宽的线性范围。
线性范围的评估及数据处理方法
实验样本的基本要求
对标称线参数进行验证时,需在已知线性范 围内选择5-7个浓度水平。
无论是建立或验证线性范围,所选用的浓度水 平应可覆盖整个预期测定范围并包括与临床有 关的重要评价浓度,如最小测定浓度或线性范 围的最低限、不同的医学决定水平、最大测定 浓度或线性范围的高限等。
线性范围的评估及数据处理方法
实验样本的制备方法
不同浓度水平的样本可通过将高浓度样本与低浓度样 本进行倍比稀释得到,注意在进行液体吸取时应选择 精密度与准确性好的移液装置。制备时应将样本完全 混合并避免蒸发或其他使样本变质的情况。每份样本 的浓度与体积单位应统一。
血清白蛋白测定标准操作规程
血清白蛋白测定标准操作规程1 检验申请单独检验项目申请:血清白蛋白测定(缩写ALB);组合项目申请:血生化中肝功能测定项目组合。
临床医生根据需要提出检验申请。
2 标本采集与处理2.1标本采集2.1.1常规静脉采血约2ml,不抗凝,置普通试管中。
或采用含分离胶的真空采血管。
2.1.2检验申请单和血标本试管标上统一且唯一的标识符。
2.1.3急诊标本采集后,在检验申请单上填写标本采集时间。
2.1.4标本采集后与检验申请单一起及时运送至检验科。
专人负责标本的接收并记录标本的状态,对不合格标本予以拒收。
2.1.5下列标本为不合格标本2.1.5.1标本量不足:少于0.3ml的全血标本,或少于0.1ml的血清或血浆。
2.1.5.2对反应吸光度有干扰的标本,包括严重溶血、严重浑浊的标本。
2.1.5.3无法确认标本与申请单对应关系的。
2.1.5.4其他如标识涂改、标本试管破裂等。
2.2标本保存2.2.1接收标本后在30min内将标本离心分离出血清。
2.2.2标本保存时间:室温(15~25℃)下可稳定一周,普通冰箱中(2~8℃)稳定一个月。
为避免标本中水分挥发使血清浓缩,对保存时间超过1天的标本均加塞密闭或覆盖湿巾。
2.2.3已完成测试的标本保持完整的识别号,置4~8℃冰箱内保存7天。
2.3标本采集的注意事项2.3.1采血前使受检者保持平静、松弛和空腹状态。
2.3.2不建议采集抗凝血标本,如果必须使用血浆,推荐的抗凝剂是肝素。
3 方法原理血清中的白蛋白与溴甲酚绿在PH=4.2的条件下结合生成绿色复合物,溶液由黄色变为绿色,其颜色深浅与白蛋白浓度成正比,通过在630nm处测定其吸光度可得出白蛋白的含量。
PH=4.2白蛋白 + 溴甲酚绿 --------------- 绿色复合物4 试剂及其他用品4.1试剂:溴甲酚绿法测定白蛋白试剂盒,由北京利德曼生化技术XXX出品。
4.2试剂盒保存:保存于2~8℃,不开盖情况下至标签的失效期。
白蛋白检测试剂盒(BCP法)产品技术要求
医疗器械产品技术要求编号:白蛋白检测试剂盒(BCP法)1.产品型号/规格及其划分说明序号规格12×300Tests22×2000ml3R:5×60ml4R:6×50ml5R:5×80ml6R:5×120ml7R:10×50ml8R:3×100ml9R:4×54ml2.性能指标2.1外观试剂R溶液褐黄色、无颗粒、无杂质。
2.2净含量试剂盒各试剂装量应不小于标示值。
2.3试剂空白吸光度应≤0.50。
用蒸馏水作为样品加入试剂测试,试剂空白吸光度A600nm2.4分析灵敏度测试48g/L被测物时,吸光度差值(△A)应不小于0.10。
2.5线性范围在(0~60)g/L范围内,其线性相关系数r≥0.990;浓度≥10g/L时,相对偏差≤20%;浓度<10g/L时,绝对偏差≤4g/L。
2.6测量精密度2.6.1重复性用控制血清重复测试所得结果的重复性(变异系数,CV)应≤6.0%。
2.6.2批间差批间差应≤10.0%。
2.7准确度用参考物质进行测试,其相对偏差应≤10.0%。
3.检验方法仪器基本要求a)波长:600nm;恒温装置温度:37℃±1℃。
b)全自动生化分析仪。
测试方法按说明书规定,因不同机型使用试剂最终浓度相同。
在此推荐以本公司BECKMAN或HITACHI全自动生化分析仪进行测试。
3.1外观和性状目测检查,试剂R溶液性状应符合2.1的要求。
3.2净含量用通用量具进行测量,应符合2.2的要求。
3.3试剂空白吸光度用蒸馏水作为样品测试试剂(盒),在测试波长600nm下,记录测试启动时的吸光度(A1)和约5min(t)后的吸光度(A2),A2测试结果即为试剂空白吸光度测定值,应符合2.3的要求。
3.4分析灵敏度用48g/L的样品测试试剂(盒),记录试剂(盒)在600nm下产生的吸光度改变,换算为吸光度差值(△A),结果应符合2.4的要求。
白蛋白
检验原理试剂采用溴甲酚绿染料结合法,即在PH4.2条件下,白蛋白与溴甲酚绿结合形成蓝绿色络合物。
反应形成的蓝绿色络合物与样本中白蛋白浓度成正比。
通过在630nm处测定吸光度值的变化值,即可测得样本中白蛋白的浓度。
临床意义白蛋白是主要的血浆蛋白。
其主要功能包括调节细胞外液的分布;运输诸如激素、脂类、维生素、钙和其它微量元素;构成体内部分氨基酸库;维持渗透压。
测定血清白蛋白常用于病人状态的非特异监视。
高白蛋白血症常见于脱水或血液浓缩。
低白蛋白通常是由于血稀释;体内水分过多;蛋白质丢失过多,如肾病综合征,烧伤等;摄入不足、吸收不良或肝脏疾病而导致蛋白合成降低;分解代谢增加,如甲状腺机能亢进、糖尿病和发热。
储存条件及有效期在2~25°C避光、密封的储存条件下,试剂盒自生产之日起有效期18个月。
样本要求1血清或血浆样本均应不溶血。
2样本在2-8℃可稳定20天。
检验方法1试剂配制:试剂为液体形式,可直接用于测定。
2测定条件:温度37℃波长630nm 测定模式:终点法反应方向:吸光度上升的反应校准模式:两点定标注:两点定标:其中一点为实验用水,另一点为校准品3校准程序①校准品:复星长征临床化学校准血清为本试剂配套使用的校准品。
复星长征临床化学校准血清是以人与人源性物质为基础的含有26个不同组分、29个不同方法学定标值(校准浓度)的冻干校准血清。
临床化学校准血清中白蛋白浓度的溯源性与校准浓度见相应批号临床化学校准血清的说明书。
②校准及校准频次的要求:正常情况下,应每周至少对测定进行一次校准。
当发生下列情况(试剂批号改变时、配套使用的仪器进行维修、保养或关键部件进行更换后、质控品的测定结果发生偏移或超出规定的范围等)应重新对测定进行校准后,再对患者样本进行检测。
4质量控制程序①质控品:复星长征临床化学校准血清为本试剂配套使用的质控品。
复星长征临床化学控制血清是以人血清为基质的由正常/水平I与异常/水平II组成的冻干品控制血清。
血清前白蛋白测定标准规程(知识资料)
血清前白蛋白测定标准操作规程1 检验申请单独检验项目申请:血清前白蛋白(缩写PAB)测定,组合项目申请:血生化中肝功能项目测定。
临床医生根据需要提出检验申请。
2 标本采集与处理2.1标本采集2.1.1常规静脉采血约2 ml,不抗凝,置普通试管中。
或采用含分离胶的真空采血管。
检查体液乳酸脱氢酶的体液标本应用肝素抗凝。
2.1.2检验申请单和血标本试管标上统一且唯一的标识符。
2.1.3急诊标本采集后,在检验申请单上填写标本采集时间。
2.1.4标本采集后与检验申请单一起及时运送至检验科。
专人负责标本的接收并记录标本的状态,对不合格标本予以拒收。
2.1.5下列标本为不合格标本2.1.5.1标本量不足:少于0.3ml的全血标本,或少于0.1ml的血清或血浆。
2.1.5.2对反应吸光度有干扰的标本,包括严重溶血、严重浑浊的标本。
2.1.5.3无法确认标本与申请单对应关系的。
2.1.5.4其他如标识涂改、标本试管破裂等。
2.2标本保存2.2.1接收标本后在30min内将标本离心分离出血清。
2.2.2标本保存时间:室温(15~25℃)下可稳定8h,普通冰箱中(2~8℃)稳定24h。
-20℃保存稳定30天。
为避免标本中水分挥发使血清浓缩,对保存时间超过1天的标本均加塞密闭或覆盖湿巾。
2.2.3已完成测试的标本保持完整的识别号,置4~8℃冰箱内保存7天。
2.3标本采集的注意事项2.3.1采血前使受检者保持平静、松弛、避免剧烈活动,24h不饮酒和12h以上禁食空腹状态。
2.3.2注意有无应用影响测试项目的药物。
2.3.3可以使用肝素抗凝的血液标本。
3 方法原理人血清PA与其相应抗体在液相中相遇,立即形成抗原-抗体复合物,并形成一定浊度。
该浊度的高低在一定量抗体存在时与抗原的含量成正比。
通过与同样处理的校准比较,计算未知样品的PA含量4 试剂及其他用品4.1试剂:前白蛋白试剂盒,由北京利德曼生化技术有限公司出品。
4.2试剂盒保存:未开瓶的试剂储存在2~8℃可稳定至有效期。
白蛋白检测操作程序
白蛋白检测操作程序白蛋白(albumin ,ALB )是一种仅含有氨基酸的单纯蛋白质,在血浆中发挥多种生理功能。
溶于水和中性盐,易与阴离子染料结合,故本试验采用溴甲酚绿(阴离子染料)法测定,在反应中加入丁二酸缓冲液能够避免溶液混浊,降低空白吸光度。
主要用于肝、肾等疾病的诊断。
实验原理在pH4.2条件下,白蛋白与溴甲酚绿结合形成蓝绿色结合物,蓝绿色结合物与样本中白蛋白浓度成正比,在630nm 处测定吸光度值,即可求得样本中白蛋白的浓度。
试剂与仪器1. 试剂1.1. 白蛋白试剂盒(由上海复兴长征医学科学有限公司提供)化学组成:溴甲酚绿0.35mmol/L 丁二酸缓冲液50mmol/L工作参数:在开展项目之前或更换试剂品牌时,将以上工作参数输入到仪器内,并按要求进行调整后,方可进行实验。
技术性能指标:试剂空白起始吸光度(630nm37℃)≤0.20A 。
线性范围:50g/L ±10%。
准确度:相对偏差(RE%)≤±10%。
精密度:批内精密度变异系数(CV%)≤5%;批间精密度相对极差(%)≤5%。
储存条件、有效期:储存于2~25℃,避光可稳定18个月。
以蒸馏水为空白在630nm 处光吸收值高于0.3A时,则不能使用。
计算公式: 白蛋白深度(g/L )= ×校准液浓度(g/L )样品管吸光度校准管吸光度以上是依据化学实验计算测试结果的公式,全自动分析时将校准液浓度值(Conc值)输入仪器即可。
1.2. 英国郎道(RANDOX)质控品,每次采用正常和异常两个水平,并参照质控品测试要求进行。
1.3. 校准液2. 仪器采用日立(HITACHI)7060型全自动生化分析仪。
选择波长340-800nm之间,能对终点、速率、两点、免疫比浊等方法的实验进行测定。
标本测定程序1. 开机:开机前要加清洗液、上打印纸、接蒸馏水等。
然后打开电源及中文计算机信息管理系统。
2. 试剂准备:开机后将所需试剂置于试剂盘相应位置。
Cisbio成功开发出”一步法”定量检测人血清白蛋白(Albumin)
Cisbio成功开发出“一步法”定量检测人血白蛋白(Albumin)
作者:鲁延军(luyanjun83@)
白蛋白(又称清蛋白,Albumin)是由肝脏合成,含量丰富的多功能非糖基化血浆蛋白,通常占血浆蛋白质总含量的50%以上。
白蛋白具备多种生理功能,如:维持血浆胶体渗透压、物质的结合
和转运、协调血管内皮完整性、保护血细胞,调节凝血、不激活炎症反应、器官保护、抗氧化,
损伤修复等。
因此,白蛋白是一个重要的新药开发靶点,以及有着重大意义的临床检测指标。
Cisbio China已利用HTRF技术,成功开发出“一步法”,定量检测人血白蛋白。
实验原理
该方法是采用夹心结合分析法。
分别在夹心配对的两个抗人血白蛋白抗体上标记能量供体荧光素(Eu/Tb Cryptate)和能量受体荧光素(XL665/d2),用人血清白蛋白作为标准品,制作标准曲线。
在384孔微孔板中加入10 uL样品或标准品,再加入两个检测抗体各5 uL,孵育2小时,即可上
机读数。
原理示意图
实验结果
Albumin标准曲线
稳定性测试 Z值测试应用实例
稀释线性测试
稀释倍数浓度回算
结论
•该方法操作简单:只需一步加入样品和检测试剂,孵育2个小时即可读值。
•高灵敏度和线性范围:1 ng/ml —— 1000 ng/ml。
•方法非常稳定:孵育从1小时至过夜,Z值为0.87。
•良好的样品稀释线性:R2 > 0.85。
白蛋白性能验证
白蛋白(ALB) 检测方法学性能验证评价报告验证内容:正确度、重复精密度、中间精密度、线性范围、临床可报告范围及参考区间的确认验证人员:一检测系统信息项目:ALB仪器名称: Vitros仪器型号:V350试剂及厂商:强生公司检测方法:溴甲酚绿比色法二厂商提供的相关参数三验证过程1 正确度1.1 目的:评价仪器测试结果与接受参考值之间的一致程度。
通过实验室检测数据的偏倚从而评价和验证实验室检测结果的准确性。
1.2 评价方法:参加卫生部临检中心的室间质评,本组参加室间质评的项目一律用回报结果作为评价标准,最近一次参加卫生部室间质评卫生部质控值。
1.3 结果判断方式:<1/2 CLIA’88正确度验证试验数据记录表2 精密度2.1 重复精密度2.1.1 目的:考察仪器检测方法的随机误差2.1.2 原理:在检测系统处于优良的条件下,连续测定20个结果,判断这20个独立结果间的一致程度2.1.3 方法:选择新鲜混合血清标本(病人高值、低值)各20份,测量前先定标,再做质控,质控结果在控制范围内,连续重复测定20次,计算SD,CV,得到重复性精密度。
2.1.4 标本来源:高、低值标本均为混合血清。
2.1.5 结果判断方式:<1/4CLIA’88重复性精密度验证试验数据记录表2.2 中间精密度:2.2.1 目的:考察目前实验室检测方法中间精密度。
2.2.2 原理:在检测系统处于优良的条件下,连续测定20天,取得20个结果,判断这20个独立结果间的一致程度。
2.2.3 方法:取一个月的室内质控值(高值、低值)计算CV、SD,得到批间精密度。
2.2.4 结果判断方式:<1/3 CLIA’ 883.33%中间精密度验证试验数据记录表3 线性范围(Linearity range, AMR)3.1 目的:在确定某项目检测上限的同时检测其上下限是否呈线性关系,从而保证该浓度范围检测结果的准确性。
3.2 标本要求:高值标本可使用病人混合血清。
白蛋白检测标准操作规程
8.1校准品来源
美康生物
8.2校准品名称
多项生化校准品
8.3校准品规格:
1×5ml
8.4用途
校准品与宁波美康生物科技有限公司生产的白蛋白检测试剂盒及全自动生化分析仪配套使用,用于上述检测系统进行项目的校准。
8.5主要组成成分
校准品组成成分为非人源性。
校准品中白蛋白的活性成分浓度具有批特异性,准确浓度见随附的数值表或说明书反面。
6.检测仪器
日立7180全自动生化分析仪,使用具体要求和校准程序详见《仪器操作规程》。
7.试剂
7.1试剂品牌
美康生物
7.2包装规成分
试剂
成分
终浓度
试剂
琥珀酸缓冲液
0.05mol/L
聚氧乙烯(23)十二烷基醚
2.4g/L
溴甲酚绿
1.8×10-4mol/L
不同批次的试剂不推荐混合使用
8.8校准周期
按照生化分析仪操作手册中的校准程序进行校准。至少每两周校准1次。
当发生以下情况时建议重新校准:变更试剂批号;质控值发生显著偏移;生化分析仪进行了较大维护。
9.质量控制程序
9.1质控品来源
BACKMAN质控品,上海市临检中心提供
9.2质控品浓度
低/中/高三个浓度
9.3储存条件
-20℃冷冻保存
4.2恶性肿瘤、重症结核、营养不良、急性大失血、严重烫伤、肝脏合成功能障碍、胸腹水、肾病、怀孕后期等
5.标本采集及干扰因素
5.1标本要求
空腹不抗凝静脉血2~3ml。
5.2标本保存
室温保存,及时送检。血清在2-8℃储存可稳定6d,-20℃冰冻保存可稳定3个月。
5.3注意事项
推荐选用血清。因为采用肝素抗凝血浆可能使溴甲酚绿染料结合法测得的ALB值偏高。推荐早晨空腹采血。标本应避免溶血、脂血、黄疸。
血清总蛋白和白蛋白测定实验方案(参考资料)
血清中总蛋白和白蛋白测定的实验方案血清总蛋白的测定:实验原理血清(浆)中蛋白质的肽键(-CO-NH-)在碱性溶液中能与2价铜离子作用生成稳定的紫红色络合物。
此反应和2个尿素分子缩合后生成的双缩脲(H2N-OC-NH- CO-NH2)在碱性溶液中与铜离子作用形成紫红色的反应相似,故称之为双缩脲反应。
这种紫红色络合物在540nm处有明显吸收峰,吸光度在一定范围内与血清蛋白含量呈正比关系,经与同样处理的蛋白质标准液比较,即可求得蛋白质含量。
实验器材分光光度计实验试剂1.6mol/L NaOH溶液称取NaOH 240g,溶于新鲜制备的蒸馏水约800ml中,定容至1L,贮于有盖塑料瓶中。
2.双缩脲试剂称取硫酸铜结晶(CuSO4·5H2O)3g溶于新鲜制备的蒸馏水500ml 中,加入酒石酸钾钠(NaKC4H406·4H2O),用以结合Cu2+,防止CuO在碱性条件下沉淀)9g和KI(防止碱性酒石酸铜自动还原并防止Cu2O的离析)5g。
待完全溶解后,在搅拌下加入6mol/L NaOH溶液100ml,并用蒸馏水定容至1L,置塑料瓶中盖紧保存。
此试剂室温下可稳定半年,若贮存瓶中有黑色沉淀出现,则需要重新配制。
3.60~70g/L蛋白质标准液可用定值参考血清或标准白蛋白作标准。
实验操作取试管3支,混匀,置25℃30min或37℃10min,在波长540mm处比色,用空白管调零,测各管吸光度。
参考范围60~80g/L。
注意事项1.黄疸血清,严重溶血,葡萄糖,酚酞及溴磺酞钠对本法有明显干扰,故用标本空白管来消除。
但如标本空白管吸光度太高,可影响测定的准确度。
2.高脂血症混浊血清会干扰比色,可采用下述方法消除:取2支带塞试管或离心管,各加待测血清0.1ml,再加蒸馏水0.5ml和丙酮10ml,塞紧并颠倒混匀10次后离心,倾去上清液,将试管倒立于滤纸上吸去残余液体。
向沉淀中分别加入双缩脲试剂及双缩脲空白试剂,再进行与上述相同的其他操作和计算。
不同实验条件下测定尿液微量白蛋白对结果的影响
2 的尿 量 ( ) 4h L。
结合 的方法 , 主要 与 白蛋 白结合 形成 一种染 料复合 物 , 反
果。本文用两种不 同的方法测定 了尿液微量 白蛋 白, 其线 性 范围、 回收率 、 重复 性均 在可信 范 围内。笔 者认 为双缩 脲法是一种蛋 白质测 定经 典的测 定方 法 , 显色稳定 , 复 重
性 好 。对 白蛋 白 、 蛋 白 的 反 应 的 灵 敏 度 较 一 致 , 是 操 球 只 作 方 法 比较 繁 琐 , 易 因 操 作 中 的 疏 忽 造 成 蛋 白质 的丢 容 失, 引起 结 果 偏 低 。 而 邻 苯 三 酚 红 钼 显 色 法 , 一 种 染 料 是
取上清液备用 。 13 1 双 缩 脲 比色 法 .. ( ) 备 用 的 尿 液 上 清 液5m ; 1取 L ̄ l
成分 , 临床实验 室通 常主要 以测 定尿液微量 白蛋 白的方法
提示 肾功能的早 期损 害 , 随着 临床 治疗 的进 行 , 以作 且 可 为疗效观察 的一种粗 筛实 验 , 以, 所 尿液微 量 白蛋 白的测
2 的尿 液 蛋 白质 总量 。 4h 2 结 果
实质功能的变化 , 本文做 了两种尿 液微量蛋 白质定量测定
方 法 的 比较 实 验 。
1 材 料 与 方 法
2 1 线 性 范 围 我 们 用 两 种 方 法 同 时 做 了 6 . 5份 尿 液 样
本, 并用 0~ / 的 白蛋 白标 准液做 了线 性范 围实验 , 4gL 其
艾美得白蛋白(ALB)测定试剂盒(溴甲酚绿法)说明书
白蛋白(ALB)测定试剂盒(溴甲酚绿法)说明书【产品名称】白蛋白(ALB)测定试剂盒(溴甲酚绿法)【包装规格】a)单一试剂:4×40mLb)单一试剂:5×60mLc)单一试剂:2×100mL【预期用途】用于体外定量测定人体血清中白蛋白的含量。
白蛋白是主要的血清蛋白,主要在肝脏合成,是衡量肝合成功能的一个重要指标。
由于白蛋白独特的分子结构使它成为多种物质如胆红素、脂肪酸、尿酸以及各种药物和抗体的运输载体,此外,白蛋白还具有维持机体渗透压的功能。
白蛋白升高主要见于脱水,降低主要见于营养不良、肝脏疾病、肾功能紊乱和风湿性关节炎等[1]。
【检验原理】在рH为4.2的缓冲液中,白蛋白分子带正电荷,与带负电荷的溴甲酚绿(BCG)生成蓝绿色复合物,在630nm处有吸收峰,复合物的吸收光与白蛋白浓度成正相关。
【主要组成成分】试剂主要组分磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液210mmol/L溴甲酚绿(BCG)0.25mmol/L单十二烷基九乙二醇醚适量注:不同批号试剂盒中各组分未经试验不可互换。
【储存条件及有效期】贮存于2~8℃,有效期为18个月,生产日期、有效期见标签。
【适用仪器】艾威德AS-420/AS-660/AS-1200;日立HITACHI7020型/7060型/7180型/7600型/LABOSPECT008AS型;贝克曼AU400/AU480/AU640/AU680/ AU2700/AU5400/AU5800/AU5811/AU5821;佳能TBA-FX8/TBA-120FR/ TBA-2000FR;罗氏cobas8000c702/cobas8000c701/cobas8000c502;西门子SIEMENS ADVIA1800/ADVIA2400;雅培ABBOTT ARCHITECT c8000/ARCHITECT c16000/ARCHITECT ci8200;西森美康SYSMEX BM6010/C;科华KHB卓越310/卓越330/卓越400/卓越450/ZY-1200/ZY-1280;迪瑞CS-240/CS-T300/CS-300B/CS-380/CS-400A/CS-400B/CS-600A/ CS-600B/CS-800A/CS-800B/CS-1200/CS-1200ISE/CS-1300B/CS-1400;迈瑞MINDRAY BS-220/BS-330/BS-350E/BS-380/BS-390/BS-400/BS-430/BS-600/ BS-800/BS-2000M;颐兰贝ES-200/ES-380/ES-480;赛诺迈德SUNMATIK-9050型;雷杜Chemray420;英诺华D280;特康TC6010L;锦瑞GS400;普康6066。
关于最低检测限与线性范围试验的讨论方案
(一)实验原理 血清中蛋白质分子中的肽键在碱性溶液 中能与Cu2+作用生成稳定的紫红色络合 物,此反应和两个尿素分子缩合后生成 的双缩脲在碱性溶液中与铜离子作用形 成紫红色的反应相似,故称双缩脲反应。
蛋白质 + Cu2+ OH 紫红色络合物 在540nm波长处有吸收峰,在一
定浓度范围内其吸光度增加与蛋白含 量成正比,由此可求得蛋白质含量。
(二)实验试剂 1、双缩脲试剂 氢氧化钠、酒石酸钾钠 硫酸铜、碘化钾 2、标准液 总蛋白 50g/L
(三)操作方法 1、操作参数: 波长:540nm 温度:37℃ 测定模式:终点法
2.操作步骤
(ul)
B
S
U
DH2O
20
标准液
20
血清
20
双缩脲试剂 1000 1000 1000
混匀,37℃水浴10分钟,在540nm波长
(一)原理
选择合适的空白标本,该标本与待测 标本的区别在于不含有待测物质,一般 用处理过的标本或一般标本,在分析步 骤中省去关键试剂或操作。
本次实验采用蒸馏水作为空白标本,采 用双缩脲法进行多次测定,求出吸光度 的均值及标准差,计算最低检测限。
(二)操作步骤
(ul)
B S U(1----10)
3.用统计软件拟合(了解) 最佳拟合曲线与直线方程的平均偏差
<5%的浓度范围为该方法的线性范围。
下次课内容
1.血清白蛋白测定。 2.回收试验。
人有了知识,就会具备各种分析能力, 明辨是非的能力。 所以我们要勤恳读书,广泛阅读, 古人说“书中自有黄金屋。 ”通过阅读科技书籍,我们能丰富知识, 培养逻辑思维能力; 通过阅读文学作品,我们能提高文学鉴赏水平, 培养文学情趣; 通过阅读报刊,我们能增长见识,扩大自己的知识面。 有许多书籍还能培养我们的道德情操, 给我们巨大的精神力量, 鼓舞我们前进。
四种蛋白质测定方法的比较研究
四种蛋白质测定方法的比较研究一、本文概述蛋白质测定是生物化学和分子生物学研究中的基本步骤,对于理解生物体的生理功能和疾病机制具有重要意义。
在众多蛋白质测定方法中,Bradford法、Lowry法、Bicinchoninic Acid (BCA)法和Kjeldahl法是常用的几种。
本文旨在对这些方法进行比较研究,分析各自的原理、优缺点以及适用范围,为科研工作者在选择合适的蛋白质测定方法时提供参考。
本文将简要介绍每种方法的原理和操作步骤。
Bradford法基于蛋白质与考马斯亮蓝G250染料的结合反应Lowry法基于蛋白质与FolinCiocalteu试剂的反应,以及后续的铜离子参与的反应BCA法则是基于蛋白质与Cu2在碱性条件下与BCA形成复合物的原理而Kjeldahl法则是一种经典的有机物氮含量测定方法,通过测定蛋白质中的氮含量来计算蛋白质浓度。
本文将深入探讨这些方法的优缺点。
例如,Bradford法操作简便、灵敏度高,但易受某些氨基酸的影响Lowry法准确度较高,但操作复杂、耗时较长BCA法准确度和灵敏度均较高,适用范围广泛,但试剂成本较高Kjeldahl法则适用于大批量样品的测定,但前处理复杂,且无法区分不同类型的蛋白质。
本文将结合实际应用场景,讨论各种方法的适用范围。
例如,在实验室规模的研究中,Bradford法和BCA法因其操作简便、灵敏度高而受到青睐而在需要高准确度的研究中,Lowry法则可能是更好的选择对于大批量样品的测定,Kjeldahl法则显示出其独特的优势。
本文通过对四种常见蛋白质测定方法的比较研究,旨在为科研工作者在选择合适的蛋白质测定方法时提供理论依据和实践指导。
二、蛋白质测定的四种主要方法蛋白质是生命活动的主要承担者,其浓度的测定在生物化学研究中占有举足轻重的地位。
目前,有多种方法可用于蛋白质的定量分析,但本文将重点介绍四种最常用且被广泛认可的方法:比色法、Bradford法、Biuret法以及Kjeldahl法。
全自动生化仪免疫比浊法检测血清白蛋白的方法学评价
全自动生化仪免疫比浊法检测血清白蛋白的方法学评价目的使用免疫比浊法对血清白蛋白(ALB)测定的方法学进行评价。
方法根据美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)的标准,对免疫比浊法测定血清白蛋白的精密度、线性范围、回收率及准确性等指标进行测试,同时与溴甲酚绿法进行相关性的比较。
结果精密度批内CV55 g/L)进行比较。
不同水平血清白蛋白的检测结果比较见表3。
结果表明两法差异无统计学意义(P > 0.05),直线回归方程Y =1.05X +5.56(Y:免疫比浊法;X:溴甲酚绿法),F = 103.3,r = 0.926,提示两法有良好的相关性。
2.6 干扰试验取一份混合血清(血清白蛋白为50.7 g/L)分别加入不同浓度血红蛋白、胆红素和脂肪乳剂(以TG浓度表示),分别测定血清白蛋白值。
结果显示,TG≤23.0 mmol/L,Hb≤50 g/L,TBIL≤400 μmol/L时对本法无显著干扰。
3 讨论ALB是血浆中含量最多、功能最重要的一种蛋白质。
它广泛地存在于人体的血液、淋巴、肌肉组织中,属于非专一性的运输蛋白,其含量的测定对临床疾病的诊断、治疗、预后判断都具有非常重要的意义,其测定结果的准确性也因此而受到广泛的重视[5]。
长期以来,溴甲酚绿(bromcresol green,BCG)染料结合法测定ALB广泛应用于临床,目前国内大多数医院仍然沿用这一方法,但该法会因BCG与非ALB类蛋白质非特异性结合,使得其检测特异性一直以来不是很理想。
因此,近年来外国某些公司开发出来的白蛋白高特异性免疫比浊法就受到了高度关注[6-7]。
免疫比浊法也称浊度法,属于散射光谱分析,是在比色的基础上发展起来的,其测定理论、方法、计算等许多方面和比色法相似,但本质上又有区别[8]。
最近几年免疫比浊开始应用于临床体液中白蛋白含量检测的领域。
再由于配合全自动生化分析仪的优势,白蛋白的检测基本能够实现高速、灵敏和自动化。
牛血清白蛋白标准曲线
牛血清白蛋白标准曲线牛血清白蛋白是一种重要的蛋白质,在生物医药领域有着广泛的应用。
在实验室研究中,我们经常需要对牛血清白蛋白进行检测和分析,而标准曲线是进行定量分析的重要工具之一。
本文将介绍牛血清白蛋白标准曲线的构建方法和应用。
1. 标准曲线的构建方法。
构建牛血清白蛋白标准曲线的第一步是准备一系列不同浓度的牛血清白蛋白标准溶液。
通常我们会选择5个不同浓度的标准溶液,分别为0.1 mg/mL、0.2mg/mL、0.5 mg/mL、1 mg/mL和2 mg/mL。
接下来,我们需要使用合适的检测方法对这些标准溶液进行测定,比如紫外-可见吸收光谱法或者比色法。
将各标准溶液的吸光度值作为纵坐标,对应的蛋白质浓度作为横坐标,绘制标准曲线图。
2. 标准曲线的应用。
构建好标准曲线后,我们就可以将待测样品的吸光度值代入标准曲线中,通过对应的蛋白质浓度计算出待测样品中牛血清白蛋白的浓度。
这样,我们就可以进行定量分析,比如测定样品中牛血清白蛋白的含量,或者评估不同条件下牛血清白蛋白的稳定性等。
3. 注意事项。
在构建标准曲线和进行样品测定时,有一些注意事项需要特别关注。
首先,标准曲线的各个标准点之间要尽量均匀分布,这样可以提高曲线的准确性和可靠性。
其次,在进行样品测定时,要选择合适的稀释倍数,确保样品吸光度值在标准曲线的线性范围内。
最后,要注意仪器的校准和标定,确保测定结果的准确性和可比性。
4. 结语。
牛血清白蛋白标准曲线是进行定量分析的重要工具,它的构建和应用对于实验室研究具有重要意义。
通过本文的介绍,相信大家对牛血清白蛋白标准曲线有了更深入的了解,希望能够在实验工作中发挥更大的作用。
在今后的实验研究中,我们应该加强对标准曲线构建方法和应用技巧的学习和实践,不断提高实验数据的准确性和可靠性。
临床生化检验:6-线性范围试验
实验六 线性范围试验
检验系生化教研室
临床生化试剂盒的性能指标
• 试剂空白吸光度 • 试剂空白吸光度变化速率 • 分析灵敏度 • 线性范围 • 重复性 • 准确度 • 稳定性 • 时间反应曲线 • 临床试验
1、线性范围:
• 在试剂盒评价中很重要,是指试剂盒按 说明书使用可准确测量的范围。试剂盒 测定线性范围是衡量其质量的重要指标 ,也是鉴定试剂盒和保证正确使用的关 键指标之一。
注意事项
1.葡萄糖标准液的加量必须十分准确,应用计量 性能准确度很高的微量进样器加样。
2.本方法线性可达22.24mmol/L,(指生化分析仪) 造成线性变窄的原因试剂配料中组分投料不 足;试剂配制后组分稳定性差;因运输或储存 不当等导致试剂组分的含量发生变化。
3.酶法测定时,有时当酶量相对不足时,用标准 液所作的线性范围可以达到指定的高值,但在 测定同样高值样本时,结果却明显偏低,这往 往是样本中介质效应引起的,值得注意。
•熟悉线性范围变窄的原因;了解影响线性 的因素.
原理
使用不同浓度的葡萄糖标准溶液,用GODPOD法试剂测定各自的吸光度,以标准浓 度为横坐标,以其对应的吸光度为纵坐标, 在方格纸上作图.即可绘制出一条直线,即 剂量反应曲线(dose-response curve).
试剂与器材
• 40mmol/L葡萄糖标准液 • 蒸馏水 • GOD-POD试剂盒 • 可见分光光度计 • 水浴锅
操作步骤
加入物
0
葡萄糖标准液(ul) 0
蒸馏水(ul)
50
GOD-POD试剂(ml) 5
标准管 1 23 10 20 30 40 30 20 555
45 40 50 10 0 55
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• 相关系数r——是说明有直线关系的两个变量 间相关关系的密切程度和相关方向的统计指 标。 • 相关系数没有单位,其值-1 ≤r≤ 1。 • |r|越大,两变量的关系越密切。
• 当两变量呈同向变 化时,0<r<1,为 正相关;
• r=1为完全正相关。
• 当两变量呈反向变 化 时 , -1 < r < 0 , 为负相关;
• 配对样本是指同一样本进行两次测试所获得 的两组数据,或对两个完全相同的样本在不 同条件下进行测试所得的两组数据。
• SPSS13.0操作: 1、录入数据; 2、选择菜单:Analyze > Compare Means >Paried-Sample T Test 3、生成统计结果,查看P“sig.(2-tailde)” (值(P值>0.05,可以认为两种方法的结 果差别无显著性差异;P<0.05,有显著性 差异。)
血清总蛋白(TP)测定 与线性范围试验
邹佳峻
一、双缩脲法测定血清总蛋白(TP) 二、线性范围试验
一、双缩脲法测定血清总蛋白(TP)
1.实验目的:
• 掌握双缩脲法测定蛋白质含量的原理、方法
• 熟悉722分光光度计的使用 • 了解TP测定的临床意义
2.实验原理:CO(NH2) 2 + CO(NH2) 2
6.总蛋白测定的临床意义:
(1)血清总蛋白浓度增高见于:
a.蛋白质合成增加(如多发性骨髓瘤); b.血浆浓缩(如呕吐、严重腹泻、高烧)。
(2)血清总蛋白浓度降低见于:
a.蛋白质合成障碍(如肝严重受损); b.蛋白质丢失增加(如严重烧伤、肾病综合 征); c.营养不良或消耗增加(如低蛋白饮食、严 重结核病、甲亢); d.血液稀释。
• 回归直线的求法 最小二乘法: 各实测点到直线的纵向 距离的平方和最小。
(二)直线相关
• 直线相关——如果两个随机变量中,一个变 量由小到大变化时,另一个变量也相应地由 小到大(或由大到小)地变化,并且测得两个 变量组成的坐标点在直角坐标系中呈直线趋 势,就称这两个变量存在直线相关关系。
• 可用相关系数r表示。
血清(用蒸馏水稀释,浓度为120g/L)。
• 需用到的公式: C1*V1=C2*V2 • 器材:试管、加样枪、吸量管、722分光光
度计、水浴箱。
4.实验方法:
取试管 31 支,除空白管外, 1~10 号管各做 3 个平行 管,一共有10个浓度。按表三加样:
5.实验结果:
所得数据如实填入表四:
6.注意事项:
• ŷ=a+bx称为Y对X的回归直线方程,相应 的直线称为回归直线。
• a:是回归直线在Y轴上的截距,即X=0时 Y的预测值。 • b:是回归直线的斜率,又称为回归系数。 表示自变量X对因变量Y影响大小的参数, 即当X改变一个单位时,Y的预测值平均改 变|b|个单位。 • 要确定回归直线方程,只要确定截距a与回 归系数b即可。
4、修改小数点和输入标签名称 :
5、选择“Data View”选项卡 :
6、输入数据,注意“自变量”和“因变量” 所对应的位置 :
7、选择“分析”→“回归分析” →“线 性” : Analyze >Regression >Linear
8、选择自变量(X),因变量(Y): 将“因变量”选入“Dependent”下框内, “自变量”选入“ Independent” 下框,点击 “OK”
( 1 )标本、试剂的加量必须十分准确,应用 加样枪进行加样。
( 2 )稀释时,应使测定管系列成为精确的浓 度等差系列。
( 3 )质控血清稀释时,要严格规范操作,准 确加样。
( 4 )同一浓度应采用三管平行操作,初步判 断测出的吸光度值,若相差超过 0.100 ,应 去掉其中的异常数值后再算平均值。
7.注意事项:
( 1 )样品中 TP 含量超过 100.0g/L 则用蒸馏水 稀释后测定,结果乘以稀释倍数。 ( 2 )黄疸、溶血标本对本法有干扰,故用标 本空白管来消除。 (3)取量要准确,操作要规范。
8.思考题:
(1)氨基酸可以用双缩脲法测定吗?为什么? (2)结合实验数据分析结果进行讨论,最后得 出本次实验的结论。
缩合
(1)双缩脲反应: H2N-OC-NH-CO-NH2 Cu2+ OH紫红色化合物
+
(2)双缩脲法测定TP的原理
OH蛋白质分子中的肽键 + 铜离子
(-CO-NH-)
Cu2+
紫红色复合物
• 紫色复合物在 540nm 波长有特定的吸收峰, 其颜色的深浅(吸光度)与蛋白质的浓度在 一定范围内成正比。
• 此反应和 2 个尿素分子缩合后生成的双缩脲 2+ 在碱性溶液中与Cu 作用生成紫红色复合物 的反应相似,故称双缩脲反应。
• 相关:表达两个变量之间相互关系的密切程 度和方向。 • 回归:表达两个变量之间的数量关系,已知X 值可以预测Y值。
8.思考与讨论
(1)结合实验数据分析的结果进行讨论,最后 得出本次实验的结论。
(2)线性范围试验在方法学评价中有何作用?
SPSS13.0统计学软件 回归分析步骤
1、SPSS13.0软件的安装:
• 在此情况下,待测物浓度与吸光度的比值为 一常数,直线上任何一点的斜率tanθ都相等, 即 tanθ=A1/C1=A2/C2=A3/C3=……An/Cn =K此处K即为校正常数。
• 在实际工作中并不存在理想的反应曲线,当 被测物浓度过高、仪器处于非理想状态时, 都可导致对 Lambert-Beer 定律的偏离,出 现正偏离和负偏离现象。
二、线性范围试验
1.实验目的:
• 通过线性范围的测定,选择线性段作为该测 定方法的分析范围。 • 掌握线性范围试验的评价及意义。 • 熟悉线性范围试验的具体操作过程。
2.实验原理:
• 在比色分析中,在符合Lambert-Beer定律 的条件下,有色溶液的吸光度与被测物质浓 度成正比。 • 以标准物质浓度C为横坐标,吸光度A为纵坐 标,可在普通方格纸上绘出一条直线,即剂 量反应曲线或校正曲线。
(一)线性回归
• 在两个具有相关关系的变量的一组数据(X 与 Y)间,通过散点图我们可观察出所有数 据点都分布在一条直线附近,这样的直线可 以画出许多条,而我们希望其中的一条能最 好地反映 X 与 Y 之间的关系,即我们要找出 一条直线,使这条直线“最贴近”已知的数 据点。
• 线性回归 —— 用直线方程表达 X (自变量) 和Y(因变量)之间的数量关系。 • ŷ :是 y(实测值)的预测值,表示当 x取 值xi=(1, 2,……,n)时, y相应的预 测值为yi。
3.实验材料:
• 试剂:(1)商品双缩脲试剂
(2)自配双缩脲试剂 (3)血清样品 (4)总蛋白标准液(70.0g/L)
• 器材:试管、加样枪、吸量管 、722分光光
度计、水浴箱
4.实验方法:
取5支试管,按下表操作:
另取5支试管,按下表操作:
5.实验结果:
• 参考值:
60~82g/L
• 结合实验数据分析结果进行讨论,用SPSS13.0 分析两组数据间有无统计学意义(配对t检 验)。
• r=-1为完全负相关。
• r=0 为零相关, 表示无直线相关 关系 。
• 决定系数 r² :反映了回归平方和占总平方和 的比例,其越接近于 1 ,回归直线拟和的效 果越好。 • 拟合度越大,自变量 X 对因变量 Y 的解释程 度越高,自变量引起的变动占总变动的百分 比高,观察点在回归直线附近越密集。
9、生成分析结果 “Regression” 并标注 :
• 因此,新建立的分析方法,其线性范围尚未 确定时,为较准确地测出该方法符合 Lambert-Beer 定律的浓度范围,我们需要 进行线性范围的测定。
• 线性范围的确定: 要求能覆盖临床上的参考值和常见疾病 的医学决定水平,以减少标本稀释重测的机 会。
3.实验材料:
• 试剂:自配双缩脲试剂、TP标准液、质控
( 5 )标准溶液和样品溶液的蛋白质浓度均应 超过10mg/mL。
7.数据处理与分析:
(1)用Excel软件制作出浓度C 对吸光度值 A的标准曲线图,求出线性范围。
( 2)采用 SPSS13.0软件对线性范围内的浓 度 C 与对应吸光度值 A作直线回归分析,求 出回归方程ŷ=a + bx,并求出相关系数(r) 和决定系数(r2)。
(1)运行“SPSS13Eval,点击“下一步”, 直至安装完成; (2)复制“Patch.exe”至SPSS安装文件夹 (默认为C:\Program Files\SPSSEVAL),“运行”→“破 解”。
2、运行SPSS13.0,选择“输入数 据” :
3、选择“Variable View”选项卡 :