分子克隆实验流程

分子克隆的五个步骤

分子克隆的五个步骤1 选择载体：在分子克隆的过程中，首先需要选择一种合适的载体来实现这一过程。

载体是要被克隆的DNA片段，生物体中的某种大分子结构，可以为克隆提供容器。

一般来说，载体选择最好是含有可重复使用的重组信息，如使用多种重组酶克隆更为容易和可靠，能在实验室之间转移。

该步骤需要考虑选择对于试验类型最合理、在实验中表现最佳的载体，与之相符的必要条件是有可操作和稳定的复制介质，以及品质可靠、价格相对划算的供应商。

2 将载体与要克隆的DNA片段连接：接下来需要将载体与要克隆的DNA片段连接。

这样一来，DNA片段就会受到载体中的重组酶以及其余细菌特有的信息影响，从而生存，复制，得以分离，克隆出多个相同的DNA断片。

连接DNA片段和载体的技术有各种方法，最常见的方法为用复制酶切割载体的方法，这种技术利用重组酶将DNA片段片段插入载体结构中，实现载体与DNA片段的融合。

3 转化：经过第二步的操作，则可以将融合的载体片段转入细菌，进行转化，实现将载体片段覆盖到细菌细胞中，形成细菌外源DNA的转基因，从而使细菌体系内发生变化，从而开始转化过程。

4 筛选：经过第三步的转化，载体就可以移植到细菌体内，从而形成转基因细菌，这时候就可以采用测试细胞以及一些标记物质来进行筛选，将转基因细菌与其他细菌相区分开来，根据一些指定条件进行筛选，从而得到被克隆的特异性DNA片段，实现分子克隆的目的。

5 收集：经过第四步的筛选，就可以将特异性的DNA断片收集起来，被收集的DNA断裂片段就是分子克隆的结果，可以得到被克隆的特异性DNA 断片，将其用于进一步的研究。

最后，分子克隆是一种复杂的实验过程，需要经过以上5个步骤，才能实现分子克隆的目的，如正确选择载体、把该DNA片段片段插入载体结构、将融合的载体片段转入细菌、用测试细胞以及一些标记物质对转基因细菌进行筛选，从而得到被克隆DNA片段，最终收集被克隆的DNA断片，这样就可以实现分子克隆的目的，得出满意的实验结果。

分子克隆实验标准步骤

分⼦克隆实验标准步骤分⼦克隆实验标准步骤⼀、常规分⼦克隆实验流程：⼆、分⼦克隆实验标准步骤（含实验编号）：1. PCR 扩增⽬的基因（编号Clone SOP-1）以本实验室常⽤酶KOD-Plus-Neo （TOYOBO ）为例体系（50ul ）：10×KOD buf 5uldNTP(2mM) 5ulMg 2+ 3ulPrimer1 1ulPrimer2 1ulTemplate50-200ngKOD0.5ulddH 2O up to 50ul程序：95℃2min98℃10s58℃30s 35cycle68℃2kb/min68℃7min12℃∞2.PCR产物的琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶的制备（编号Clone SOP-2）琼脂糖溶液的制备：称取琼脂糖，置于三⾓瓶中，按1%-1.5%的浓度加⼊相应体积的TBE或TAE缓液，将该三⾓瓶置于微波炉加热⾄琼脂糖溶解。

胶板的制备：①取有机玻璃内槽，洗净、晾⼲；②将有机玻璃内槽置于⼀⽔平位置模具上，安好挡板，放好梳⼦。

在距离底板上放置梳⼦，以便加⼊琼脂糖后可以形成完好的加样孔。

③将温热琼脂糖溶液倒⼊胶膜中，使胶液缓慢地展开，直到在整个有机玻璃板表⾯形成均匀的胶层。

④室温下静置30min左右，待凝固完全后，轻轻拔出梳⼦，在胶板上即形成相互隔开的上样孔。

制好胶后将铺胶的有机玻璃内槽放在含有0.5～1×TAE（Tris-⼄酸）或TBE（Tris-硼酸）⼯作液的电泳槽中使⽤，没过胶⾯1mm以上。

3.试剂盒回收DNA⽚段（编号Clone SOP-3）以本实验室常⽤DNA凝胶回收试剂盒（天根）为例使⽤前请先在漂洗液PW中加⼊⽆⽔⼄醇，加⼊体积请参照瓶上的标签。

①柱平衡步骤：向吸附柱CA2中（吸附柱放⼊收集管中）加⼊500µl平衡液BL，12,000rpm(~13,400×g)离⼼1min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。

（请使⽤当天处理过的柱⼦）②将单⼀的⽬的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下（尽量切除多余部分）放⼊⼲净的离⼼管中，称取重量。

分子克隆(亚克隆)实验总体流程详解

一、扩增1、LB培养基5ml；2、抗生素：1000X，即1:1000比例。

种类根据细菌抗性决定；3、菌体：看浑浊度，1%-5%，取500ul于其中；4、37℃摇床220转，过夜，12-16h。

二、纯化质粒DNA1、1.5ml离心管，编号一定要写清楚；2、加满离心管，离心12000xg. 1min，弃上清。

取三次；3、加Buffer S1 200ul，溶解沉淀，5min；4、加S2（用完立刻盖紧瓶盖，以免CO2中和Buffer中的NaOH）200ul，不能剧烈（以免基因组DNA的污染），上下翻转4-6次，直至形成透亮的溶液，时间少于5min。

目的是使蛋白包裹基因组DNA，游离质粒；5、加S3 280ul，温和充分翻转混合6-8次，12000xg，10min(此步呈白色絮状)；*备注：S1：S2：S3=5:5:76、取上清加入制备管（置于2ml离心管），12000xg，1min，去滤液；7、加Buffer W1 500ul，12000xg，1min，弃滤液；8、加Buffer W2 700ul，12000xg，1min，弃滤液。

重复一遍；9、空管离心12000xg，1min；10、制备管移入新的1.5ml离心管，管膜中加60-80ul去离子水，静置1min，12000xg，1min。

（将去离子水加热至65度，将提高洗脱效率）四、跑胶回收：sost回收失败1、2%浓度胶，Loading Buffer如是6X，则加10ul到样品，全部加样到胶孔中。

插入：配胶方法大块胶60ml；小块胶25ml；需要配置大块胶、大孔胶；Agarose 0.6g，TAE60ml，微波中火2min；趁热但不烫手时加入gold view 0.5ul/25ml；倒入槽里。

2、跑胶：单位厘米/5-10v。

所以大槽25cm，150v即可。

小槽100v即可。

3、紫外灯下切胶，纸巾吸进液体，计算凝胶重量（1mg=1ul）；4、加3个凝胶体积的凝胶结合液DB（0.1ul视为100ul；如凝胶浓度大于2%，则加入6倍体积溶胶液；凝胶块最大不能超过400ul，超过可多个离心柱）；5、56℃水浴放置10分钟，至完全溶解；6、每100mg最初的凝胶重量加入150ul的异丙醇，震荡混匀，回收大于4Kb的片段可不加异丙醇，加入反而降低回收效率；7、将上一步所得溶液加入吸附柱AC中（吸附柱放入收集管中），12000rpm，30-60s，弃液体；8、加700ul漂洗液WB，12000rpm，1min，弃废液；9、加500ul漂洗液WB，12000rpm，1min，弃废液；10、空离心2min，弃废液；11、晾干乙醇，以免抑制下游反应；12、将吸附柱放入新的1.5ml离心管，加入50ul（最少30ul）洗脱缓冲液EB或者去离子水（65-70水浴加热效果更好，或将得到的溶液重新加入离心柱可增加洗脱量）；五、连接体系：六、转化1、加感受肽：连接产物=10:1，冰浴30min；2、激活：42℃，90s，不能震动；3、加500ul LB培养基；4、37℃，150转摇床，45min；5、铺板子七、检测1、细菌长势良好，对照组不长；2、酶切检测：（1）1ml LB体系：1ml LB培养基+1ul抗生素于1.5mlEP管中；（2）15ul Pcr体系：7.5ul Mix（2X）5.5ul water1ul上游引物1ul下游引物（3）用枪头挑培养皿中的菌体，吹打于1ml LB体系中，再吹打于15ul Pcr体系中；（4）1ml LB体系放入37℃摇床，150rpm；显示4°/4°时，结束。

分子克隆基本流程及技术原理

分子克隆基本流程及技术原理分子克隆是一种重要的实验技术，可用于制备大量的DNA和蛋白质，探索基因功能，研究生物学过程等。

其基本流程包括DNA片段选择、PCR 扩增、限制性内切酶切割、连接、转化和筛选等步骤。

以下将详细介绍分子克隆的基本流程及技术原理。

PCR扩增：接下来，使用聚合酶链反应（PCR）技术扩增DNA片段。

PCR是一种有效的DNA扩增方法，它通过反复复制DNA模板，生成大量的DNA片段。

PCR反应基本包括三个步骤：变性、引物结合和扩增。

-变性：将DNA模板加热至95°C，使其两个链分离，得到单链DNA。

-引物结合：将反应体系温度下调到适宜的引物结合温度，引物与DNA模板的互补序列结合，形成DNA-DNA复合物。

-扩增：在一定的温度下，聚合酶通过DNA-DNA复合物进行扩增。

扩增过程包括DNA链合成、DNA链延长、DNA链分离和DNA链结合。

多次循环后，可以得到大量的目标DNA片段。

限制性内切酶切割：在PCR扩增后，可选用特定的限制性内切酶切割目标DNA片段。

内切酶是一种具有特异性的酶，它能够在特定的DNA序列上切割产生特定的片段。

通过切割，可以克隆所需的片段，并在连接过程中提供黏性末端。

连接：将目标DNA片段与载体DNA（如质粒）连接起来。

连接可采用多种方法，如T4DNA连接酶方法、PCR重叠延伸法等。

连接时，需要确保目标DNA片段与载体DNA能够互补配对，并生成稳定的连接。

转化：将连接后的混合物转化到宿主细胞中。

转化可通过化学方法（如钙离子转化法）或生物方法（如细菌电穿孔法）实现。

转化后，将细胞培养在含有适当选择压力（如抗生素）的培养基中，这样只有转化成功的细胞才能存活。

筛选：根据实验目的选择合适的筛选方法。

通常，使用抗生素抗性标记和荧光蛋白等进行筛选，以识别并纯化所需克隆产物。

技术原理：-PCR技术：PCR技术是通过DNA聚合酶的模板依赖性合成，将DNA片段按特定序列进行扩增。

分子克隆技术操作手册

分子克隆技术操作手册【最新版】目录1.分子克隆技术的概念2.分子克隆技术的操作步骤3.分子克隆技术的应用4.分子克隆技术的优缺点正文一、分子克隆技术的概念分子克隆技术是一种生物技术方法，用于在体外将各种来源的 DNA 片段进行拼接组合，形成新的 DNA 分子。

这种技术可以在短时间内大量复制特定 DNA 序列，为基因工程、生物制药等领域提供重要的研究手段。

二、分子克隆技术的操作步骤分子克隆技术主要包括以下几个操作步骤：1.提取 DNA：从实验材料中提取 DNA，并通过特定方法进行纯化。

2.切割 DNA：使用限制性内切酶将 DNA 切割成特定大小的片段。

3.链接 DNA：将切割好的 DNA 片段通过 DNA 连接酶进行拼接组合。

4.转化细胞：将拼接好的 DNA 分子转化到受体细胞中，让细胞表达新的 DNA 序列。

5.筛选克隆：通过特定筛选方法，选出含有目标 DNA 序列的克隆细胞。

三、分子克隆技术的应用分子克隆技术在生物领域有广泛的应用，主要包括：1.基因工程：通过分子克隆技术，可以对特定基因进行拼接组合，研究基因的功能和调控关系。

2.生物制药：利用分子克隆技术，可以大量生产具有特定功能的蛋白质，用于药物研发和生产。

3.基因诊断：通过分子克隆技术，可以制备特定基因片段作为诊断试剂，用于疾病的早期诊断。

4.基因治疗：将正常或功能性基因通过分子克隆技术导入患者细胞，以治疗遗传性疾病。

四、分子克隆技术的优缺点分子克隆技术的优点包括：操作简便、效率高、可大量制备特定 DNA 序列。

但其缺点是：可能产生非特异性拼接、克隆产物可能不稳定、需要使用有毒的化学试剂等。

总之，分子克隆技术是一种重要的生物技术手段，广泛应用于基因工程、生物制药等领域。

分子克隆法

分子克隆法
分子克隆法是一种分子生物学技术，用于在体外制备和复制DNA 分子，包括基因、DNA片段和整个染色体。

这种技术允许科学家复制和操纵DNA，以进行各种研究和应用，包括基因工程、药物开发和基因治疗。

下面是分子克隆法的主要步骤：
1.DNA提取：首先，需要从源材料（通常是细胞或组织样本）中
提取DNA。

这可以通过细胞裂解和蛋白质分离等方法来完成。

2.DNA切割：提取的DNA通常是大片段，需要将其切割成较小
的片段，以便后续克隆。

这一步通常使用限制性内切酶来实现，
这些酶可以在特定DNA序列上切割。

3.DNA连接：切割后的DNA片段可以通过DNA连接酶与载体
DNA（如质粒或病毒DNA）连接在一起，形成重组DNA分子。

这个过程称为DNA重组。

4.DNA转化：重组DNA可以被引入宿主细胞中，这个过程称为
DNA转化。

这可以通过热激冷却法、电穿孔法、化学法等方法
来实现。

5.宿主细胞培养：转化后的细胞被培养，以允许它们繁殖并扩增
重组DNA。

6.筛选与识别：在宿主细胞中，可以筛选出携带重组DNA的细
胞，通常使用抗生素抗性标记或荧光标记等方法来进行筛选。

7.DNA提取与纯化：从筛选出的细胞中提取和纯化重组DNA，
以便进一步的研究或应用。

8.分析与验证：最后，分析和验证克隆的DNA，确保它是所需的
目标DNA，并不包含错误或突变。

分子克隆法有许多应用，包括基因表达、基因编辑、蛋白质生产、疾病研究等。

它在生物学研究和生物工程领域发挥着关键作用，允许科学家操纵和研究DNA，以深入了解生命的分子机制。

分子克隆主要步骤

分子克隆主要步骤分子克隆是一种常用的分子生物学技术，用于复制DNA分子。

下面是分子克隆的主要步骤：1.DNA提取：首先需要从一个已知的DNA源（例如细菌、动物组织等）中提取所需的DNA。

这可以通过使用不同的提取方法（如酚/氯仿提取、自动提取仪等）来实现。

2.限制性内切酶切割：将目标DNA切割成片段。

此步骤可以通过使用限制性内切酶来实现，这些酶可以识别特定的DNA序列，并在这些序列中切割DNA，形成切割产物。

3.DNA修饰：如果需要，在第2步切割的DNA片段末端添加修饰，以便后续步骤的操作。

例如，可以在DNA片段的末端添加磷酸基团（通过激酶酶和ATP）或羟基（通过糖转移酶和dTTP）。

4.连接DNA片段：将目标DNA片段与载体DNA（通常是质粒）连接起来。

这可以通过使用DNA连接酶，如DNA连接酶I或T4DNA连接酶，将DNA片段与载体DNA的末端连接。

5.转化：将连接好的DNA导入到宿主细胞中。

这可以通过转化（常见的转化宿主细胞包括大肠杆菌和酵母）来实现。

转化可以通过热冲击法、电转化或使用化学方法来进行。

6.筛选：在经过转化的细胞中筛选出带有目标DNA的细胞。

这可以通过将转化后的细胞接种到含有适当选择标记的培养基上来实现。

只有带有目标DNA的细胞才能生长并形成克隆。

7.复制：选取带有目标DNA的细胞进行培养，并使其进行大量复制。

这可以通过将细胞培养在含有适当培养基和条件的培养皿中来实现。

8.提取：从大量复制的细胞中提取含有目标DNA的质粒。

这可以通过使用质粒提取试剂盒来实现，其中包含了一系列的化学试剂和步骤，用于纯化和提取目标DNA。

9.鉴定：验证提取的DNA是否为目标DNA。

这可以通过进行限制性内切酶切割、PCR扩增或测序等方法来实现。

分子克隆是一种重要的实验技术，可用于构建重组DNA分子、研究基因功能、制备蛋白质等。

虽然上述步骤描述了分子克隆的基本过程，但具体操作可能会因实验目的和需求而略有不同。

分子克隆详细步骤

分子克隆详细步骤分子克隆是通过重组DNA分子来产生大量完全相同的DNA序列的技术。

在分子克隆工作中，我们主要进行克隆载体的构建、目标DNA的扩增、将目标DNA插入克隆载体中、转化和筛选等步骤。

下面将详细介绍这些步骤：1.克隆载体的构建：克隆载体是用于插入目标DNA的DNA分子。

常用的克隆载体包括质粒、噬菌体和人工染色体等。

在构建克隆载体时，我们首先需要选择适合的载体，并提取载体的DNA。

然后，利用酶切酶对载体进行酶切，生成线性的载体DNA。

接下来，将目标DNA插入克隆载体的相应位点上，形成重组的载体。

2.目标DNA的扩增：目标DNA可以通过PCR（聚合酶链反应）来扩增。

首先，设计引物，使其与目标DNA的两端末端相互互补。

然后，在PCR反应中，通过DNA聚合酶的扩增作用，使目标DNA得以扩增。

PCR反应通常包括模板DNA、引物、核苷酸和聚合酶等成分。

3.目标DNA的插入：将扩增后的目标DNA与酶切后的载体进行连接，利用DNA连接酶催化目标DNA与载体之间的连接反应，生成重组的克隆载体。

连接后的载体含有目标DNA的序列。

4.转化：将克隆载体引入宿主细胞中进行复制。

这一步骤通常称为转化。

转化可以通过电击、热激、化学方法等方式进行。

宿主细胞通常是大肠杆菌等细菌。

5.筛选：利用筛选方法来选择包含目标DNA的克隆。

常用的筛选方法包括抗生素筛选、报告基因筛选和限制性内切酶酶切筛选等。

抗生素筛选是将带有选择性抗生素耐受基因的克隆引入含有相应抗生素的培养基中，只有带有目标DNA的克隆才能生长。

报告基因筛选是通过将报告基因插入克隆载体中，使之与目标DNA一起被转录和翻译，从而表达报告基因的蛋白质，以此来筛选包含目标DNA的克隆。

限制性内切酶酶切筛选是通过限制性内切酶对重组载体和目标DNA进行酶切，并通过凝胶电泳的方法来分离并检测含有目标DNA的克隆。

以上就是分子克隆的详细步骤。

通过这些步骤，我们可以获得大量完全相同的DNA序列，并用于各类分子生物学研究和应用中。

分子克隆详细步骤

分子克隆步骤：一、贴壁细胞总RNA提取：1、吸掉培养液，用PBS洗一遍?2、往培养皿中加入1ml,TRIzol,吹打几次(每10cm2面积,即3.5cm直径的培养板加1ml)3、移至1.5mlEP管，静置5分钟4、加入200ul三氯甲烷，震荡混匀，室温静置5分钟5、4度12000r/min，离心15分钟，取上清，约600ul6、加入500ul异丙醇，混匀后，静置30分钟？7、4度12000r/min，离心15分钟，弃上清8、加入1ml70%预冷酒精洗涤沉淀物9、4度7500r/min，离心5分钟10、弃上清，自然晾干11、加入50ulDEPC水溶解，测OD值＊鼠尾基因组DNA粗提取：1、100ul lysis buffer for each tail,and 2ul 10mg/ml PK,55℃,overnight.2、Then,100℃ for 10min to denature the PK, use 0.5~1ul lysate as template to do PCR.Lysis buffer:(store at 4℃)KCl 0.5MTris 0.1MNP-40 1%Tween-20 1%二、RT-PCR：1、预变性体系12ul：Total RNA 2ulOligo（dT18）primer 1ulDH water 9ul65℃ 5min 速置冰上2、RT体系：20ul：预变性体系12ul5×buffer 4ulRNAase inhibiter 1ul10m dNTP 2ulMMLV 1ul42℃ 60min70℃ 5min12℃ forever3、PCR体系20ul：10×buffer 2ul10m dNTP 0.5ulPrimer(F+R) 1ul （0.5ul+0.5ul）稀释后cDNA（50ul）1ulPfu 0.2uldd water 15.3ul95℃3min、（95℃30s，55℃30s，72℃35s）×29cycle、72℃10min、12℃forever三、跑胶鉴定PCR产物：四、醇沉PCR产物：1、将PCR产物转移至1.5mlEP管中2、加入0.1倍体积预冷NaAC，3倍体积70%预冷乙醇，混匀3、—80℃静置30min4、4度14000r/min，10min离心弃上清，加1ml70%预冷乙醇洗涤沉淀5、4度14000r/min，10min离心弃上清，自然晾干6、加入25-20ul dd water 吹匀静置10-20min待溶解五、原始质粒/PCR醇沉产物双酶切体系50ul：Enzyme1 1ulEnzyme2 1ul10×Buffer 5ul （在体系中被稀释成1×）10×BSA 5ul （看需要）Template 1ugADD dd water to 50ul酶切过夜？六、单独鉴定质粒酶切产物：1、采用20ul体系：酶各0.5ul、buffer2ul、bsa0.5ul、template2ul）酶切2h2、跑胶鉴定七、电泳，切胶回收与纯化：使用DNA回收试剂盒（QIAquick Gel Extraction Kit Protocol）PCR酶切产物纯化：1.将PCR产物于需要的电压和电流下跑电泳2. 紫外灯下仔细切下含待回收DNA的凝胶，置1.5ml离心管中，称重。

分子克隆实验流程分子克隆是将DNA分子从一个生物体中复制并插入另一个生物体中的过程。

这种技术广泛应用于生物学研究和生物工程领域。

下面将详细介绍分子克隆的实验流程。

1.提取DNA首先，需要从源生物体中提取所需的DNA。

这可以通过不同的方法来完成，例如琼脂糖凝胶电泳、菌落PCR和基因组DNA提取试剂盒等。

提取的DNA需要是目标基因的完整、纯净的样本。

2.回收DNA片段将提取的DNA片段和载体（例如质粒）切割，以回收想要克隆的DNA 片段。

常用的酶剪切酶包括限制性内切酶和退火酶。

将酶切割后的DNA片段与载体的切割端黏合，形成重组DNA。

3.转化纯化将重组DNA转化到宿主细胞中。

通常使用大肠杆菌作为宿主细胞。

这可以通过脉冲电击、热激转化或化学转化来实现。

这一步的目的是将重组DNA导入到宿主细胞中，以便宿主细胞可以复制和表达克隆的DNA。

4.鉴定克隆细胞通常，我们通过选择性培养、荧光染色、PCR检测等方法来鉴定具有克隆DNA的细胞。

在选择性培养基上生长可以表明细胞成功地接受了重组DNA。

此外，如果重组DNA带有可观察的荧光标记，可以使用荧光显微镜进行观察。

PCR检测可以验证目标基因的存在。

5.扩增克隆细胞选取鉴定出的克隆细胞进行扩增。

这可以通过将克隆细胞培养在含有选择性抗生素的培养基上来实现。

只有带有插入DNA的细胞可以在这种培养条件下生存。

选择性培养的目的是增加克隆细胞的数量，以便后续的实验。

6.提取插入DNA从扩增的克隆细胞中提取含有插入DNA的重组质粒。

通常使用薄膜过滤法将细菌细胞去除，然后使用DNA提取试剂盒从细菌残渣中提取质粒。

提取的质粒可以通过琼脂糖凝胶电泳等方法进行纯化和鉴定。

7.鉴定插入DNA使用不同的试验方法来鉴定插入DNA的准确性和完整性。

这可能包括核酸测序、酶切鉴定、PCR扩增等。

通过这些方法可以验证克隆的DNA是否与目标基因的序列完全一致。

8.进一步应用得到插入DNA后，可以进行进一步的应用，例如重组蛋白表达、基因改良、产生转基因生物等。

分子克隆组装实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 学习分子生物学中最基本的技术——分子克隆的操作过程。

2. 掌握基因克隆的概念，了解基因克隆的基本原理和方法。

3. 熟练掌握DNA提取、限制性内切酶切割、DNA连接、转化、筛选和鉴定等分子克隆实验操作。

4. 提高实验操作技能，培养严谨的科学态度。

二、实验原理分子克隆是指将目的基因（或DNA片段）与载体DNA连接，使其在宿主细胞中复制和表达的过程。

本实验采用分子克隆组装技术，将目的基因插入载体中，实现基因克隆。

三、实验材料1. 基因组DNA提取试剂盒2. 限制性内切酶3. DNA连接酶4. 载体DNA5. 目的基因片段6. 转化宿主细胞7. LB培养基、琼脂糖、氨苄青霉素等四、实验步骤1. 提取目的基因片段和载体DNA（1）取适量基因组DNA，按照试剂盒说明书进行提取。

（2）取适量载体DNA，按照试剂盒说明书进行提取。

2. 限制性内切酶切割（1）将目的基因片段和载体DNA分别用限制性内切酶进行切割。

（2）酶切反应体系：10×酶切缓冲液5μl，限制性内切酶1μl，DNA模板5μl，加双蒸水至50μl。

（3）酶切条件：37℃反应2小时。

3. DNA连接（1）将酶切后的目的基因片段和载体DNA进行连接。

（2）连接反应体系：10×连接缓冲液5μl，DNA连接酶1μl，酶切后的目的基因片段5μl，酶切后的载体DNA5μl，加双蒸水至50μl。

（3）连接条件：16℃反应4小时。

4. 转化宿主细胞（1）将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞。

（2）转化条件：42℃热激45秒。

5. 筛选和鉴定（1）将转化后的细胞涂布于含有氨苄青霉素的LB培养基平板上，37℃培养过夜。

（2）挑取单克隆菌落，提取质粒DNA。

（3）对提取的质粒DNA进行PCR扩增，检测目的基因是否插入载体。

（4）对阳性克隆进行测序，验证插入序列的正确性。

五、实验结果1. 成功提取目的基因片段和载体DNA。

2. 目的基因片段和载体DNA经限制性内切酶切割后，酶切图谱与预期相符。

分子克隆技术操作手册

分子克隆技术操作手册摘要：一、分子克隆技术简介二、分子克隆实验材料与设备三、分子克隆实验步骤1.设计引物2.合成目的基因3.构建表达载体4.转化受体细胞5.筛选转化子6.鉴定目的基因四、分子克隆实验注意事项五、实验结果分析与应用正文：一、分子克隆技术简介分子克隆技术是一种生物技术方法，通过复制特定DNA序列，将目的基因在受体细胞中稳定表达。

该技术在基因工程、生物科学等领域具有广泛应用，有助于研究基因功能、蛋白质表达及药物筛选等。

二、分子克隆实验材料与设备1.实验材料：DNA模板、引物、dNTPs、DNA聚合酶、缓冲液等。

2.实验设备：PCR仪、离心机、电泳仪、凝胶成像系统等。

三、分子克隆实验步骤1.设计引物根据目的基因序列，设计一对互补的引物。

引物应具备一定的特异性，避免非特异性扩增。

2.合成目的基因利用PCR技术，以DNA模板为基础，通过引物扩增目的基因。

反应条件需根据所使用DNA聚合酶的要求进行优化。

3.构建表达载体将目的基因与载体DNA连接，形成表达载体。

常用的载体有质粒、噬菌体等。

4.转化受体细胞将构建好的表达载体转化到受体细胞中，如大肠杆菌、酵母等。

转化方法有化学法、电转化法等。

5.筛选转化子转化后的受体细胞在含相应抗生素的培养基上生长，筛选出含有目的基因的转化子。

6.鉴定目的基因对筛选出的转化子进行进一步鉴定，如DNA测序、基因表达分析等。

四、分子克隆实验注意事项1.实验过程中要保持无菌操作，避免污染。

2.选择合适的引物长度和退火温度，以提高扩增特异性。

3.转化受体细胞时，注意操作力度，避免细胞损伤。

4.筛选转化子时，严格控制抗生素浓度，避免过度筛选。

五、实验结果分析与应用1.分析PCR产物，判断目的基因是否成功克隆。

2.鉴定目的基因的表达水平，评估实验效果。

3.将成功克隆的目的基因应用于基因敲除、基因表达等研究。

通过以上步骤，您可以顺利完成分子克隆实验。

实验过程中需严格操作，确保实验结果的准确性。

分子克隆技术步骤

分子克隆技术步骤第一步：选取目标DNA在开始分子克隆之前，需要从一个生物体中选择一个含有所需DNA序列的样本。

这可以是任何生物体的DNA，例如人类、动物、植物或微生物。

第二步：DNA提取从所选生物体提取DNA。

这可以通过使用一系列化学和物理方法来完成，例如细胞裂解、蛋白酶处理、DNA沉淀和洗涤等。

第三步：选择一个合适的载体载体是一种DNA分子，可以容纳目标DNA序列并将其复制。

在分子克隆中最常使用的载体是质粒。

质粒是圆形的双链DNA分子，存在于许多细菌和酵母种类中，并被广泛用于分子生物学研究。

第四步：限制性内切酶切割将目标DNA和载体同时使用限制性内切酶（Restriction Enzymes）酶切。

限制性内切酶是一种可以识别和切割特定DNA序列的酶。

通过在目标DNA和载体的特定位置上切割，可以为将两者连接提供互补的末端。

第五步：DNA连接将目标DNA和载体连接在一起。

将目标DNA和载体的DNA片段混合，并在其末端形成互补碱基，然后使用DNA连接酶将两者连接在一起。

连接后的DNA分子被称为重组质粒。

第六步：转化将重组质粒引入细菌或酵母等微生物细胞中，这个过程称为转化。

这可以通过将细菌细胞暴露在低温高压胁迫下来实现，使得细胞膜变得更加渗透性，可以将质粒引入细胞内。

第七步：筛选和鉴定筛选出含有重组质粒的细菌或酵母细胞。

一种常用的筛选方法是将细菌培养在含有抗生素的培养基上，只有携带重组质粒的细菌才能在含有抗生素的环境下存活。

此外，还可以使用标记基因和特定染色剂等方法来鉴定重组质粒。

第八步：扩增和纯化用培养液扩增含有重组质粒的细菌或酵母细胞。

随着细菌或酵母细胞的生长，它们会复制重组质粒并将其传递给后代细胞。

然后使用一系列纯化步骤，如离心、洗涤和电泳等手段，将其中的重组质粒提取纯化。

总结：分子克隆技术的主要步骤包括选取目标DNA、DNA提取、选择合适的载体、限制性内切酶切割、DNA连接、转化、筛选和鉴定，以及扩增和纯化。

分子克隆操作程序-ABclonal

分子克隆操作程序操作程序1 实验试剂及仪器1.1 试剂：质粒DNA小量试剂盒DNA 凝胶回收试剂盒DNA 产物回收试剂盒DNA 产物回收试剂盒Pfu，DNA marker，感受态DH5αBamHI酶，XhoI酶，EcoRI酶，T4 DNA ligase 1.2 实验仪器：PCR仪离心机凝胶成像系统：Tanon 2500，天能公司1.3 耗材：实验中所用到的PCR管，枪头2 试验步骤2.1 引物的稀释2.1.1引物一般以干粉形式保存于-20℃，临用前稀释。

12.1.2 由于引物呈很轻的干膜状附在管壁上，打开时极易散失，所以打开管子前请先离心10,000rpm,1min,然后再慢慢打开管盖。

然后在装有引物的管内根据引物说明书加入双蒸水稀释至10uM，盖上管盖，充分上下振荡30秒，再次离心，小离心机30秒(管上标注好引物名称、浓度、稀释时间)2.2 PCR扩增反应体系在0.2ml离心管中加入以下成分：（做多管的时候可以把除引物模板以外的组分混合后分装）轻弹混匀，离心收集管壁上的液滴至管底, 在PCR扩增仪上进行PCR反应，反应参数如下（不同基因的退火温度以及延伸时间略有差异,退火温度为引物Tm 上下5℃）94℃ 3 min94℃30sec58℃40sec72℃(1kb/min)2372℃ 8min4℃ ∞反应结束后，取2ulPCR 产物进行1%琼脂糖凝胶电泳，并以DNA Marker 6ul 做对照。

120V 恒压条件下电泳20min 后，于凝胶成像系统下观察并将电泳图贴到记录本中（扩增产物大约30ng/μl ）2.3 PCR 产物的回收2.3.1 如果扩增产物条带单一用 Axygen AP-PCR-250纯化PCR 产物，具体操作按试剂盒说明书进行（回收产物用35ul ddH 2O 洗脱两遍）2.3.2 如果出现非特异性扩增，目的产物用AxyPrep DNA 凝胶回收试剂盒回收（AP-GX-250），具体操作按试剂盒说明书进行（回收产物用35ul ddH 2O 洗脱两遍） 2.4目的产物及载体酶切目的产物酶切（在1.5ML 离心管中加入以下成分, 以BamHI 和XhoI 为例）振荡混匀，短暂离心；载体酶切（载体使用中抽质粒试剂盒）37℃温育过夜；80℃水浴20min 终止反应2.5 酶切产物回收酶切产物用DNA 产物回收试剂盒回收，具体操作按试剂盒说明书进行（目的产物酶切用35ul ddH2O 洗脱两遍，载体酶切用50ul ddH2O 洗脱两遍），将电泳图贴到记录本中。

分子克隆的基本流程

分子克隆的基本流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。

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分子克隆实验

分子克隆实验设计一、总体实验流程二、实验内容(一)PCR（聚合酶链式反应）1.原理：利用DNA在体外摄氏95度时解旋，45-60度时引物与单链按碱基互补配对的原则结合，再调温度至72度左右，DNA聚合酶沿着磷酸到五碳糖(5'-3')的方向合成互补链。

2.PCR操作：反应体系：Template 1ulPrimer1 1ulPrimer2 1ul2*Taq master MIX 25ulH2O 22ulTotal 50ul反应条件：94℃5min94℃30s58℃30s 40 cycles72℃40s72℃5min(二)琼脂糖凝胶电泳1.原理：琼脂糖凝胶具有网络结构，分子通过时会受到阻力，大分子物质在涌动时受到的阻力大，因此在凝胶电泳中，带电颗粒的分离不仅取决于净电荷的性质和数量，而且还取决于分子大小。

2.凝胶电泳步骤：1)称取0.5g琼脂糖至50ml 电泳缓冲液（TAE）中，摇匀；同时装置制胶架。

2)加热至琼脂糖完全融化，期间停止加热摇动3次，即无可见漂浮物，澄清为止。

3)加入1ulEB染液，充分摇匀。

4)缓慢倒入制胶架内，冷却30-60min，至凝胶充分凝固，放入电泳槽中即可使用。

5)使用时，将样品点入相应的加样孔内，即可开始电泳，待指示剂位于整块凝胶2/3位置时，停止电泳，在紫外灯下观察样品条带。

(三)切胶回收（天根生化公司凝胶回收试剂盒）1. 将空小离心管称重。

将回收的带DNA 片段的凝胶放入其中、再次称重，确定凝胶净重。

2. 将离心管中的凝胶捣碎以助于凝胶溶解。

按胶的重量加入三倍体积的Extraction buffer （1mg凝胶加3μl Extraction buffer ）。

3. 55℃恒温加热直到凝胶完全融化（5-15 分钟）,每隔2-3分钟需将管内混悬液混匀一次。

4. 按照1：1比例加入异丙醇（1mg凝胶加1μl异丙醇），混匀。

5. 将混合液全部移入Spin column、6000rpm离心1分钟，弃去接液管中的液体。

分子克隆(亚克隆)实验总体流程详解

一、扩增1、LB培养基5ml；2、抗生素：1000X，即1:1000比例。

种类根据细菌抗性决定；3、菌体：看浑浊度，1%-5%，取500ul于其中；4、37℃摇床220转，过夜，12-16h。

二、纯化质粒DNA1、1.5ml离心管，编号一定要写清楚；2、加满离心管，离心12000xg. 1min，弃上清。

取三次；3、加Buffer S1 200ul，溶解沉淀，5min；4、加S2（用完立刻盖紧瓶盖，以免CO2中和Buffer中的NaOH）200ul，不能剧烈（以免基因组DNA的污染），上下翻转4-6次，直至形成透亮的溶液，时间少于5min。

目的是使蛋白包裹基因组DNA，游离质粒；5、加S3 280ul，温和充分翻转混合6-8次，12000xg，10min(此步呈白色絮状)；*备注：S1：S2：S3=5:5:76、取上清加入制备管（置于2ml离心管），12000xg，1min，去滤液；7、加Buffer W1 500ul，12000xg，1min，弃滤液；8、加Buffer W2 700ul，12000xg，1min，弃滤液。

重复一遍；9、空管离心12000xg，1min；10、制备管移入新的1.5ml离心管，管膜中加60-80ul去离子水，静置1min，12000xg，1min。

（将去离子水加热至65度，将提高洗脱效率）四、跑胶回收：sost回收失败1、2%浓度胶，Loading Buffer如是6X，则加10ul到样品，全部加样到胶孔中。

插入：配胶方法大块胶60ml；小块胶25ml；需要配置大块胶、大孔胶；Agarose 0.6g，TAE60ml，微波中火2min；趁热但不烫手时加入gold view 0.5ul/25ml；倒入槽里。

2、跑胶：单位厘米/5-10v。

所以大槽25cm，150v即可。

小槽100v即可。

3、紫外灯下切胶，纸巾吸进液体，计算凝胶重量（1mg=1ul）；4、加3个凝胶体积的凝胶结合液DB（0.1ul视为100ul；如凝胶浓度大于2%，则加入6倍体积溶胶液；凝胶块最大不能超过400ul，超过可多个离心柱）；5、56℃水浴放置10分钟，至完全溶解；6、每100mg最初的凝胶重量加入150ul的异丙醇，震荡混匀，回收大于4Kb的片段可不加异丙醇，加入反而降低回收效率；7、将上一步所得溶液加入吸附柱AC中（吸附柱放入收集管中），12000rpm，30-60s，弃液体；8、加700ul漂洗液WB，12000rpm，1min，弃废液；9、加500ul漂洗液WB，12000rpm，1min，弃废液；10、空离心2min，弃废液；11、晾干乙醇，以免抑制下游反应；12、将吸附柱放入新的1.5ml离心管，加入50ul（最少30ul）洗脱缓冲液EB或者去离子水（65-70水浴加热效果更好，或将得到的溶液重新加入离心柱可增加洗脱量）；五、连接体系：六、转化1、加感受肽：连接产物=10:1，冰浴30min；2、激活：42℃，90s，不能震动；3、加500ul LB培养基；4、37℃，150转摇床，45min；5、铺板子七、检测1、细菌长势良好，对照组不长；2、酶切检测：（1）1ml LB体系：1ml LB培养基+1ul抗生素于1.5mlEP管中；（2）15ul Pcr体系：7.5ul Mix（2X）5.5ul water1ul上游引物1ul下游引物（3）用枪头挑培养皿中的菌体，吹打于1ml LB体系中，再吹打于15ul Pcr体系中；（4）1ml LB体系放入37℃摇床，150rpm；显示4°/4°时，结束。

分子克隆实验步骤总结

分子克隆实验步骤总结分子克隆实验步骤1.对目的片段进行pcr扩增：Pcr体系：（50μL）DNA Template：10-100ng10×PCR buffer：5μL50mM dNTPs：0.5μLPrimers：1μM eachWater：add to 49μLTaq Polymerase：1μL2.琼脂糖电泳，看有无目的条带3.对目的条带进行切胶回收4.对pcr产物加尾: 72℃，20min（如用高保真酶，则需加尾；Taq酶，则无需加尾）加尾体系：（10μL）胶回收DNA: 8μLBuffer: 1μLdNTPmix: 0.5μLTaq Polymerase：0.5μL5.T载体连接：室温，30min体系：（6μL）加尾后产物：4μLT载体：1μLSalt solution 1μL6.30-40μL感受态加入重组后的质粒。

7.放冰上30min。

8.42℃热击90s（放冰上冷:1-2min）9. 加SOC（200-250μL）10.37℃，300rpm，1h11.平板涂布：加氨苄的培养基，37℃培养箱倒置培养过夜12.挑单菌落：用牙签挑单菌落，放到含6mL液体培养基的试管中，37℃摇床培养过夜13.试剂盒提质粒14.酶切：37℃，2h体系：（20μL）Buffer2: 2μL酶：0.5μL模板：1μLBSA：0.2μLH2O：16.31μL15.琼脂糖凝胶电泳分析是否正确导入目的片段鉴定阳性克隆的另一个方法----菌落PCR从平板挑单菌落到含1ml LB（Amp+）的1.5drof管中，37℃摇床培养8小时左右，进行菌落PCR鉴定，引物可选用载体的通用引物，如T载体用M13F/R。

菌落PCR体系（20ul）10*taq buf 2uldNTPs（2.5mM）1.6ul Mg2+（25mM）1.6ul Primer F （10uM）0.5ul Primer R（10uM）0.5ul DNA 1 ul Ex taq 0.3 ul ddH2O 12.5ul程序：94度10min94度30sec56度30sec72度2:10 30cycle 72度10min4度forever。

分子克隆——主要顺序

笔记3（分子克隆2——主要步骤）
分子克隆可以分为以下几个步骤：
下，就可以形成重组DNA分子。

在没有互补单链末端的情况下，也可以用酶学方法造成一个互补单链末端之后再进行连接。

3.重组DNA分子的转化和重组克隆的筛选：
重组DNA分子必须进入宿主细胞中，才能得到扩增和表达．这个过程叫做转化。

大肠杆菌是目前使用最广泛的宿主细胞。

除此以外．其他细菌、酵母、哺乳动物细胞等也可作为宿主细胞，可以根据实验的需要加以选择。

在被转化的宿主细胞中，不同的单个细胞(在平板上表现为单个菌落，
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亦称克隆)中可能含有不同的重组质粒或非重组质粒，因此必须进行筛选，以便确定哪些是重组克隆。

筛选可以使用抗菌素抗性或其他方法，依载体的性质而定。

4.特定重组克隆的鉴别：
由于重组克隆往往是较多的，而在某一克隆实验中，我们感兴趣的目的克隆只有一个或几个，所以需要进一步鉴别。

使用的方法主要有核酸杂交法和免疫化学法。

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