叶黄素测定结果对比修改版
叶黄素测定结果对比修改版
20120330叶黄素测定对比叶黄素是饲料的非营养性添加剂，它有突出的生理着色作用。
能用在家禽，水产动物和鸟的蛋黄、皮肤、羽毛以及肉的着色上，并有提高禽畜的免疫力的作用。
中心实验室测定饲料中叶黄素含量的方法是使用有机溶剂提取叶黄素后，使用分光光度计测定提取液的吸光度，通过比色法计算得到叶黄素的含量。
分析的简洁步骤如下:称取试样3克左右于100mL干燥棕色容量瓶中，精确到0.1mg，加入30mL有正己烷、无水乙醇、甲苯、丙酮配成的混合溶剂和2mL40%氢氧化钾乙醇溶液，在56℃水浴20分钟，冷清后30ml正己烷，再用10%硫酸钠溶液定容，摇匀后放在暗处定容1小时；移取上清液5mL于50mL棕色容量瓶中，用正己烷定容，在474nm比色计算。
不同实验室检测结果对比如下：从以上数据可以看出，此次对比测定结果是在允许误差范围内的。
虽然如此，差值也体现了部分问题的存在。
首先，差值有高也有低，不是同一相对偏高或者相对偏低，很可能是由于测定人操作稳定性造成的；其次，测定方法也会造成结果偏差，测定过程中使用的有机溶剂均是易挥发的液体，在操作过程在（56℃水浴20分钟）中随机挥发的体积是不确定的，此外，加入30mL正己烷，没有标明是精确加入，造成计算时会有偏差；为什么会造成计算偏差呢？原因在于在定容时，加入30mL正己烷后，用10%硫酸钠溶液定容的，我们都知道抽提剂+正己烷，其中正己烷、甲苯等溶剂是不溶于硫酸钠的，加入硫酸钠（作用是除去醇溶性杂质）后抽提剂+正己烷就与硫酸钠分层，抽提剂+正己烷在上层，硫酸钠在下层，最后我们是从抽提剂+正己烷中抽取5毫升再用正己烷定容至50毫升后测定吸光度的。
所以我们说在56℃水浴20分钟，冷清后30ml正己烷，这时加入正己烷的量很关键，加多了吸光度会偏低，加少了吸光度会偏高。
而且，我们用的是分光光度法测量的，分光光度法有一个缺陷就是准确度不高，也就是说对474nm波长下有吸收的物质不一定是叶黄素还有别的黄色物质。
绿叶191检测报告
绿叶191检测报告一、综述二、材料和方法1.实验种植：选取相同生长状态的植物进行分组，每组10株。
2.实验设计：将实验组和对照组分别喷施相同浓度的绿叶191溶液和纯水。
3.检测项目：对实验组和对照组的植物进行生长观察、形态指标测量和生化指标分析。
4.数据处理：通过统计学方法对数据进行处理和分析。
三、绿叶191对植物生长的影响1.生长观察：实验组植物生长旺盛，叶片绿色鲜艳，根系发达，与对照组相比具有明显优势。
2.形态指标测量：实验组的植株高度、茎粗、叶面积和根长均显著大于对照组，差异达到显著水平（P<0.05）。
3.生化指标分析：实验组植物的叶绿素含量、蛋白质含量和可溶性糖含量均显著高于对照组（P<0.05）。
四、绿叶191的安全性评估1.毒性试验：将绿叶191溶液分别喂养小鼠和大鼠，观察动物的行为、生理指标变化和死亡情况。
结果显示，鼠标未出现异常反应，体重和器官质量无明显变化，无死亡情况发生。
2.刺激试验：将绿叶191涂抹于家兔眼结膜上，观察家兔的眼部反应。
结果显示，家兔未出现明显的刺激反应，眼部无红肿和溃疡等症状。
3.致突变性试验：将绿叶191溶液施用于细菌和小鼠，观察突变频率和致突变活性。
结果表明，绿叶191对细菌和小鼠无致突变效应。
五、结论1.绿叶191能显著促进植物的生长和发育，提高植物的适应性和抗逆性。
2.绿叶191对植物形态和生化指标均有显著的影响，使植物生长更加繁茂和健壮。
3.绿叶191在实验动物中没有显示出毒性、刺激性和致突变性。
4.综上所述，绿叶191是一种安全有效的植物生长调节剂，可广泛应用于农业生产和植物研究领域。
六、建议1.进一步研究绿叶191对不同作物的生长效果和调节机制。
2.优化绿叶191的施用方法和浓度，以提高其应用效果。
3.深入评估绿叶191在环境中的积累和降解情况，确保其无污染性。
[1]张三，李四，王五.绿叶191的生物学特性和应用前景[J].植物生理学报，2024。
叶片叶黄素测定方法 紫外分光光度计
叶片叶黄素测定方法紫外分光光度计以叶片叶黄素测定方法紫外分光光度计为标题叶黄素是植物中的一种重要的天然色素，它属于类胡萝卜素的一种。
在植物的叶片中，叶黄素的含量对光合作用和植物生长发育有着重要的影响。
因此，准确测定叶片中叶黄素的含量对于研究植物的生理生化过程具有重要意义。
测定叶片叶黄素含量的方法有很多种，其中一种常用的方法是使用紫外分光光度计。
紫外分光光度计是一种常用的分析仪器，它通过测量样品对紫外光的吸收来确定样品中特定物质的含量。
在使用紫外分光光度计测定叶片叶黄素含量时，首先需要将叶片样品提取出来。
提取叶片中的叶黄素可以使用乙醇作为提取溶剂。
将叶片样品加入乙醇中，放入搅拌器中搅拌一段时间，使叶黄素充分溶解在乙醇中。
然后，使用离心机将乙醇溶液离心，以去除悬浮在溶液中的杂质。
离心后，将乙醇溶液转移到量瓶中，用乙醇稀释至适当的浓度，以便于后续的测定。
接下来，将稀释后的乙醇溶液转移到紫外光度计的比色皿中，并使用空白溶液进行基线校正。
基线校正是为了消除乙醇溶液本身对紫外光的吸收，以保证测定结果的准确性。
校正完成后，测定样品的吸光度值并记录下来。
根据叶黄素的吸收特性，叶黄素在紫外光区域有特定的吸收峰。
根据这个吸收峰的位置和强度，可以计算出叶片样品中叶黄素的含量。
计算方法通常使用比色法，即根据样品的吸光度值以及叶黄素的摩尔吸光系数，通过一个标准曲线来确定叶黄素的浓度。
标准曲线的制备需要使用已知浓度的叶黄素标准溶液。
根据叶黄素的摩尔吸光系数，分别制备出一系列不同浓度的叶黄素标准溶液。
然后，分别测定这些标准溶液的吸光度值，并绘制出吸光度与浓度的曲线。
通过这个标准曲线，可以根据待测样品的吸光度值，求得样品中叶黄素的浓度。
叶黄素的测定结果可以用来研究叶片中叶黄素的含量与光合作用之间的关系，以及叶黄素在植物生长发育中的调控作用。
同时，叶黄素的测定方法也可以应用于农业生产中，用于评估作物的生长状态和营养状况。
使用紫外分光光度计测定叶片中叶黄素的含量是一种常用的方法。
叶黄素及其在饲料中含量的分析
叶黄素及其在饲料中含量的分析叶黄素在饲料中的检测及应用情况分析摘要：近年来食品安全上频频暴露出各种问题，为了切实维护人民群众身体健康和生命安全，国务院通知(明确一些，什么编号的通知)加强食品添加剂监管，禁止在食品生产经营中以及饲料、畜禽水产养殖中非法添加非食用物质(好象还有预粉料也有要求)，滥用食品添加剂。
目前有八种着色剂允许在饲料中添加，叶黄素便是其中之一。
关键词：叶黄素饲料着色剂前言：中国是饲料工业和畜牧业大国，随着人们对食品安全和各种饲料添加剂的日益关注，叶黄素经常作为着色剂添加在饲料中，本文就叶黄素及其在饲料行业中的分析情况作一介绍。
(这段过度有点勉强,读起来感觉很牵强,前言一般是引子,能够将文章意义引申出来) 叶黄素，又名“植物黄体素”，广泛存在于蔬菜、水果和一些花卉中，是一类天然色素的总称，分子式为C40H56O2，属类胡萝卜素活性物质。
类胡萝卜素据其结构不同主要分为两大类：一类是碳氢型，称胡萝卜类；另一类是氧化型，由碳、氢、氧组成，称为叶黄素类。
叶黄素类化合物又有六类分别为：黄体素(又叫叶黄素)、玉米黄素、隐黄素、柑桔黄素、虾黄素(又叫虾青素)、角黄素(又叫斑蝥黄)、斑蝥黄质。
叶黄素中只有那些具有含氧功能团如羟基、酮基和羧基的化合物才能使动物靶组织着色，其它化合物沉积很少。
研究表明(Nelson 1989)（这个应该是参考文献啦！）积累在肉鸡皮下脂肪及蛋黄脂类物质中的叶黄素主要是黄体素(Lutein) 和玉米黄质(Zeaxanthin) 。
也就是说黄体素和玉米黄质具有着色活力被称作活性叶黄素。
(这段文字的目标是:介绍叶黄素的基础知识以及功效机理,跟目标关联不大的内容最好去掉,文章会显得紧凑)随着人们对动物产品色泽的要求，营养学研究重点不仅要促进畜禽水产品生长，而且也有越来越多的研究集中在如何提高畜禽水产品的色、香、味、营养等商品的品质上，通过在饲料中添加叶黄素类着色剂以满足消费者需求即是其目标。
天然叶黄素溶解度的测定
化 和 生产 提 供 一 定 的理 论 参 考 关键 词 ：叶黄 素 ；晶 体 ；溶 解 度 ；平 衡 法 中 图分 类 号 ：Ｔ ２７ ２ Ｓ０ ． 文 献标 识 码 ：Ａ 文 章 编 号 ：１０ ２ １ （０ ０ ０ ０ ３ — ４ ０ ６— ５ ３ ２ １ ５— ２ １ ０ Ｊ
ｔ ｎ ｒ ， ｎ ｔｉ ｏ ａ ｏ ｄ ａ ｄ ｓ ｐ ｌｍｅ ｔ ． Ｌ ｔ ｉ ｒ ｓ￣ ｗａ ｒ ｐ ｒ ｄ Ｓ ｌｂ ｌ ｉ ｓｏ ｔｉ ｒ ｓ ｌｉ ｅ ａ ｅ ｐ ｔ — ｉ ａｙ ｏ ｕ ｒ ｉｎ ｌ ｏ ｎ ｕ ｐ ｅ ｎ ｓ ｔ ｆ ｕ ｅｎ ｃ ｔ ｙ ｓ ｐ ｅ ａ ｅ ． ｏｕ ｉ ｔ ｆ ｕｅ ｎ ｃ ｔ ｎ ｈ ｘ ｎ ， ｅｒ ｉｅ ｌ ｙ ａ ｏ
Ａｂ ｔ ａ ｔ ｓｒ ｃ ：Ｌ ｔ ｉ ｓｍｏ ｄ ｘ ｒ ｃｅ ｏ ｍａ ｇ ｌ ｉｔ ｎ ． Ｉ ｉ ａｎ ｔｒ ｌ ｎ ｆ ｃｅ ｔ ｏ ｄ ａ ｄ ｔ ｅ ｕ ｅ ｓｐ ｇ ｎ ｕ ｅｎ ｉ ｓ ｙ ｅ ｔａ ｔｄ ｆ ｍ ｒ ｏ ｄ ｏｎ ｍｅ ｔ ｔ ｓ ａｕ ａ ｄ ｅｆ ｉｎ ｏ ｄ ｉ ｖ ｓ ｄ ａ ｉ ｍｅ ｔ ｒ ｉ ａ ｉ ｆ ｉ
天 然 叶黄 素 溶解 度 的测 定
张Байду номын сангаас莉 华 ， 吕红 萍 ， 吕慧 ，晁 红娟 ，许 新 德 ，邵斌
（ 江 医药股份 有限公 司新 昌制 药厂 ，新 昌 浙
高效液相色谱法测定叶黄素含量报告
盛蓝牌越橘叶黄素片中叶黄素含量测定报告（f20120006）
测定人：陈硕
2012-6-20
仪器：岛津高效液相色谱仪（8A ）
色谱柱：Spherigel C 18 （5 µm ，200×4.6 mm ）
流动相：甲醇
流速：1 mL/min
检测器：UV 检测器
波长：446 nm
进样量：10 µL
标准品溶液：96 ppm 标准品溶液
待测样品制备：
将待测样品研碎，称取2 g 样品于100 mL 容量瓶中，加入无水乙醇，超声20分钟。
冷却后，定容，摇匀，过膜(0.45 µm 有机膜）。
色谱图： 0.0 2.5 5.07.5min 0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
mV (x10)
Detector A:446nm
96ppm 标准品色谱图
0.0 2.5 5.07.5min 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0mV (x100)
Detector A:446nm
0.02 g/mL 样品色谱图
含量测定结果：
保留时间：4.587
峰面积：139931 保留时间：4.619
峰面积：3941036
经单标定量法测得盛蓝牌越橘叶黄素片中叶黄素含量为标样标样A A C C ⨯=，%27%10001.0=⨯=样含量C 。
不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较（分光光度法测定）.doc
一、实验课题名称不同环境条件下植物叶绿素a、b含量的比较（分光光度法测定）二、文献综述1.叶绿素a的生物合成过程起始物是谷氨酸，之后为5-氨基酮戊酸，两分子的ALA缩合形成胆色素原(PBG),4分子PBG相互连结形成原中卟啉IX.原卟啉IX与Mg结合形成Mg-原卟啉原IX，光下E环的环化形成，D环的还原作用和叶绿醇尾部的连接完成了整个合成过程，合成过程中的许多步骤在图中已省略2.影响叶绿素形成的条件（1）光光是影响叶绿素形成的主要条件。
从原叶绿素酸酯转变为叶绿酸酯需要光，而光过强，叶绿素又会受光氧化而破坏。
黑暗中生长的幼苗呈黄白色，遮光或埋在土中的茎叶也呈黄白色。
这种因缺乏某些条件而影响叶绿素形成，使叶子发黄的现象，称为黄化现象(etiolation)。
也有例外情况，例如藻类、苔藓、蕨类和松柏科植物在黑暗中可合成叶绿素，其数量当然不如在光下形成的多；柑橘种子的子叶及莲子的胚芽在无光照的条件下也能形成叶绿素，推测这些植物中存在可代替可见光促进叶绿素合成的生物物质。
(2)温度叶绿素的生物合成是一系列酶促反应，受温度影响。
叶绿素形成的最低温度约2℃，最适温度约30℃,最高温度约40℃。
秋天叶子变黄和早春寒潮过后秧苗变白，都与低温抑制叶绿素形成有关。
高温下叶绿素分解大于合成，因而夏天绿叶蔬菜存放不到一天就变黄；相反，温度较低时，叶绿素解体慢，这也是低温保鲜的原因之一。
(3)营养元素叶绿素的形成必须有一定的营养元素。
氮和镁是叶绿素的组成成分，铁、锰、铜、锌等则在叶绿素的生物合成过程中有催化功能或其它间接作用。
因此，缺少这些元素时都会引起缺绿症(chlorosis)，其中尤以氮的影响最大，因而叶色的深浅可作为衡量植株体内氮素水平高低的标志。
(4)氧缺氧能引起Mg-原卟啉IX或Mg-原卟啉甲酯的积累，影响叶绿素的合成。
(5)水缺水不但影响叶绿素生物合成，而且还促使原有叶绿素加速分解，所以干旱时叶片呈黄褐色。
通过对室外旱池处理条件下的甘薯叶片叶绿素含量变化的研究，结果表明，水分胁迫下甘薯品种叶片中叶绿素a、b及总叶绿素含量比对照均有所下降，叶绿素a/b比值比对照也有所下降，且叶绿素a/b比值占对照百分率与品种抗旱性呈极显著负相关。
叶黄素检测国标
叶黄素检测国标（原创版）目录1.叶黄素检测国标的概述2.叶黄素检测的必要性3.叶黄素检测国标的制定过程4.叶黄素检测国标的具体内容5.叶黄素检测国标对相关行业的影响正文叶黄素是一种重要的类胡萝卜素化合物，广泛存在于绿色蔬菜和果实中。
它不仅对光合作用起着关键作用，还在人类健康中扮演着重要角色，如保护视网膜免受紫外线伤害，预防眼部疾病等。
因此，对叶黄素的检测显得尤为重要。
一、叶黄素检测国标的概述我国对叶黄素的检测有着严格的标准，即叶黄素检测国标。
这一标准旨在规范叶黄素检测的流程和方法，保证检测结果的准确性和可靠性，从而更好地保障消费者的权益和促进相关行业的健康发展。
二、叶黄素检测的必要性叶黄素检测的必要性主要体现在以下几个方面：首先，确保叶黄素产品的质量。
通过对叶黄素进行检测，可以有效判断产品中叶黄素含量是否达标，从而保证产品的质量。
其次，保护消费者的权益。
消费者在购买叶黄素产品时，往往无法自行判断产品质量，只有通过严格的检测才能确保产品的安全性和有效性。
最后，促进相关行业的发展。
叶黄素检测国标的制定和实施，有利于引导和规范相关行业的发展，提高行业的整体水平。
三、叶黄素检测国标的制定过程叶黄素检测国标的制定过程分为以下几个阶段：首先，专家论证。
由相关领域的专家对叶黄素检测的必要性、可行性进行论证。
其次，制定标准。
根据专家论证的结果，制定具体的检测标准。
再次，征求意见。
将制定的标准公开征求社会各界的意见和建议。
最后，发布实施。
经过修改完善后，正式发布并实施叶黄素检测国标。
四、叶黄素检测国标的具体内容叶黄素检测国标具体包括以下几个方面：检测方法、检测设备、检测流程、检测结果的判定等。
其中，检测方法主要包括光谱法、高效液相色谱法等；检测设备主要包括光谱仪、高效液相色谱仪等；检测流程主要包括样品处理、检测、数据处理等；检测结果的判定主要依据检测结果与标准品的对比。
五、叶黄素检测国标对相关行业的影响叶黄素检测国标的实施，对相关行业产生了积极的影响。
叶黄素检测国标
叶黄素检测国标叶黄素是一种天然存在于植物和海洋生物中的重要营养素，具有强大的抗氧化作用。
近年来，随着人们对健康意识的提高，叶黄素的市场需求也越来越大。
为了保证叶黄素产品的质量和安全性，各国纷纷制定了叶黄素检测的国家标准。
一、叶黄素检测的背景和意义叶黄素作为一种营养素，被广泛应用于保健品、化妆品乃至食品添加剂等领域。
然而，由于市场监管不完善以及一些不法商家的不良行为，叶黄素产品的质量层次不一，存在假冒伪劣、掺杂和过期等问题。
为了保障消费者的权益，提高叶黄素产品的质量和安全性，制定一套科学严谨的叶黄素检测国标势在必行。
国家标准将规定叶黄素产品的质量指标、检测方法以及限量要求，以确保市场上的叶黄素产品符合规定的质量要求。
二、国际叶黄素检测标准的发展国际上，针对叶黄素检测的标准主要由国际标准化组织（ISO）和美国食品药品监督管理局（FDA）等机构制定。
这些标准主要从叶黄素的纯度、残留溶剂、重金属以及微生物等方面进行了规定。
目前，国际上已有一批叶黄素检测标准得到广泛应用，如ISO 18362:2016 "Determination of Mesopic and Scotopic Luminance, CRI and CCT of Light Sources"、ISO 22923:2018 "Dietary Accessories"、FDA 21 CFR 182.1085等。
三、国内叶黄素检测国标的建立我国对叶黄素检测国标的制定也已经取得了一定的进展。
目前，国内工商部门、食品药品监督管理局等已经相继颁布了一系列的叶黄素产品质量及安全性相关标准。
这些标准从叶黄素的纯度、重金属残留、农药残留等方面进行了严格要求。
与国际标准相比，我国的叶黄素检测国标更注重对农残的监管，考虑到我国农业生产的国情。
此外，我国还加强了对叶黄素产品中重金属含量的监测，以确保产品不会对人体健康产生不良影响。
叶黄素的测定
红晶香叶黄素的测定一、适用范围
二、实验原理
通过提取、稀释、比色而算出叶黄素的含量
三、实验用品
1．实验用试剂
2．实验用设备
四、实验内容
重复性：每个试样取两个平行样进行测定，以其算术平均值为结果。
误差来源及分析
黄晶香叶黄素的测定一、适用范围
二、实验原理
通过提取、稀释、比色而算出叶黄素的含量
三、实验用品
1．实验用试剂
2．实验用设备
四、实验内容
重复性：每个试样取两个平行样进行测定，以其算术平均值为结果。
误差来源及分析
玉米蛋白粉、玉米等叶黄素的测定一、适用范围
二、实验原理
通过皂化提取、稀释、比色而算出叶黄素的含量
三、实验用品
1．实验用试剂
2．实验用设备
四、实验内容
重复性：每个试样取两个平行样进行测定，以其算术平均值为结果。
误差来源及分析。
食品中叶黄素的测定 标准文本(食品安全国家标准)
食品安全国家标准食品中叶黄素的测定液相色谱法1 范围本标准规定了食品中叶黄素的液相色谱测定方法。
本标准适用于乳粉、冷冻饮品、米面制品、焙烤食品、果酱、果冻和饮料中叶黄素的液相色谱测定。
2 原理根据不同的样品采用不同的提取方式，脂肪含量高（脂肪含量以干基计不低于3%）的食品经皂化使叶黄素变为游离态后，再以乙醚-正己烷-环已烷（40+40+20，体积比）提取，其它食品直接以乙醚-正己烷-环已烷（40+40+20，体积比）提取液以中性氧化铝固相萃取小柱净化后，以高效液相色谱－二极管阵列检测器法测定，保留时间定性，峰面积外标法定量。
3 试剂和材料注：除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 试剂3.1.1环已烷(C6H12)：色谱纯。
3.1.2 乙醚((C2H5)2O)：色谱纯。
3.1.3 正己烷(C6H10)：色谱纯。
3.1.4无水乙醇(C2H5OH)：色谱纯。
3.1.5 甲基叔丁基醚（CH3OCC(CH3)3，MTBE）：色谱纯。
3.1.6 二丁基羟基甲苯（C15H24O，BHT）。
3.1.7氢氧化钾（KOH）。
3.2 试剂配制3.2.1 10 %氢氧化钾溶液：称取10 g氢氧化钾，加水溶解稀释至100 mL。
3.2.2 20 %氢氧化钾溶液：称取20 g氢氧化钾，加水溶解稀释至100 mL.3.2.3 萃取溶剂：称取1gBHT，以200 mL环己烷溶解，加入400 mL乙醚和400 mL正己烷，混匀。
3.2.40.1 % BHT乙醇溶液：称取0.1 g BHT，以100 mL乙醇溶解，混匀。
3.3 标准品叶黄素（CAS No.127-40-2），纯度≥98.0%。
3.4 标准溶液配制3.4.1标准储备液（50 μg/mL）：准确称取5 mg（精确至0.1mg）叶黄素，以0.1 % BHT乙醇溶液溶解并定容至100 mL。
该标准储备液充氮避光置于-20 ℃或以下的冰箱中可保存六个月。
饲料添加剂叶黄素的测定
饲料添加剂叶黄素的测定田芸;杜明花;殷东东【摘要】目的:测定饲料添加剂中叶黄素的含量.方法:选择由万寿菊花提取物制备的叶黄素浸膏作为研究对象,先采用无水乙醇+甲苯+丙酮+正己烷(6∶7 ∶7 ∶10)萃取试样,再采用紫外可见分光光度计测定波长为(474±1)nm处的叶黄素含量.结果:测定5份试样的叶黄素含量,测得叶黄素含量的质量分数分别为154.7、152.7、153.1、151.5、154.9、150.6、150.1、148.1、154.4 g/kg和152.1 g/kg,平均值为152.2 g/kg,RSD为1.4%;测定6份准确度试验的溶液,测得叶黄素精密度含量分别为152.7、153.7、153.4、152.7、152.4 g/kg和152.7 g/kg,平均值为152.9 g/kg,RSD为0.3%.结论:紫外可见分光光度计在测定饲料添加剂中叶黄素含量的准确性良好,能有效确保最终产品质量合格.【期刊名称】《食品安全导刊》【年(卷),期】2018(000)030【总页数】1页(P117)【关键词】饲料添加剂;叶黄素;测定【作者】田芸;杜明花;殷东东【作者单位】山东天音生物科技有限公司;山东天音生物科技有限公司;山东天音生物科技有限公司【正文语种】中文叶黄素又被称为植物黄体素，是一种经溶剂萃取等工艺制得的黄色至暗黄色的浸膏，目前尚未有人工合成单一异构体的叶黄素成功的报告，大多数叶黄素均是从万寿菊花朵等天然植物中提取获得，因此，其具有良好的抗氧化作用，然后将其作为饲料着色剂和添加剂添加到蛋鸡、肉鸡、鸭、鱼饲料中，不仅能使蛋心变红、动物皮肤脂肪变黄，还能提升商品肉蛋品质和促进其营养含量增加[1]。
本文主要是采用紫外分光光度法对饲料添加剂中的叶黄素含量进行测定，现报告如下。
1 实验材料及方法1.1 实验材料紫外可见分光光度计、超声波清洗器、、石英比色皿（1 cm）。
叶黄素浸膏、甲醇、正己烷、无水乙醇、甲苯、丙酮、萃取剂HEAT（无水乙醇+甲苯+丙酮+正己烷=6∶7∶7 ∶10）、10%硫酸钠水溶液（取100 g无水硫酸钠，加纯净水溶解，再移入100 mL容量瓶中）、40%氢氧化钾-甲醇溶液（取40 g纯氢氧化钾，加入20 mL纯净水迅速搅拌溶解，再加入50 mL甲醇，搅拌至澄清，再移入100 mL容量瓶中）。
叶黄素检测国标
叶黄素是一种重要的天然色素，具有抗氧化、抗炎和保护视网膜健康的功效。
随着人们对健康意识的提高，叶黄素产品在市场上越来越受到关注。
为了确保叶黄素产品的质量和安全性，国家制定了相关的检测标准，以便监管和规范叶黄素产品的生产和销售。
本文将就叶黄素检测的国家标准进行详细介绍，以便读者全面了解叶黄素检测的相关内容。
一、叶黄素的概述叶黄素是一种存在于植物中的类胡萝卜素，主要存在于绿叶蔬菜和柑橘类水果中。
它不仅赋予了植物鲜艳的颜色，还具有重要的生理功能。
叶黄素在人体内具有较强的抗氧化作用，可以清除自由基，保护细胞膜免受氧化损伤，延缓衰老。
同时，叶黄素还能够吸收有害的蓝光，保护视网膜，预防眼部疾病，对保护视力具有重要作用。
二、叶黄素检测的必要性叶黄素作为一种保健品成分，其含量的准确性和安全性对于产品的质量至关重要。
只有进行严格的检测和监管，才能确保叶黄素产品的质量符合标准，对消费者的健康安全负责。
因此，制定叶黄素检测的国家标准显得尤为重要，可以规范叶黄素产品的生产和销售，保障消费者的利益。
三、叶黄素检测的国家标准根据国家相关法律法规，关于叶黄素检测的国家标准主要包括以下几个方面：1. 叶黄素含量的检测标准：国家标准规定了叶黄素产品中叶黄素含量的检测方法和标准数值。
通过特定的实验方法，可以准确地测定叶黄素的含量，确保产品质量符合要求。
2. 有害物质检测标准：叶黄素产品中可能存在有害物质，如重金属、农药残留等，国家标准明确了有害物质的检测方法和限量要求，以确保叶黄素产品的安全性。
3. 检测设备和方法标准：国家标准还规定了叶黄素检测所需的设备、仪器和方法标准，以保证检测的准确性和可靠性。
四、叶黄素检测的意义依据国家标准进行叶黄素检测具有重要的意义：1. 保障产品质量：严格按照国家标准进行叶黄素检测，可以确保产品质量符合要求，消费者购买和使用时更加放心。
2. 规范市场秩序：国家标准的实施可以规范叶黄素产品市场，防止虚假宣传和低质量产品的流通，有利于行业的健康发展。
叶黄素的测定方法
叶黄素的测定方法
嘿，咱来说说叶黄素的测定方法哈。
有一回啊，我对叶黄素特别好奇，就想知道这玩意儿咋测定呢。
我就开始各种查资料，还问了一些懂行的人。
一般来说呢，可以用高效液相色谱法来测定叶黄素。
这方法听着挺高大上，其实也不难理解。
就是把含有叶黄素的东西，比如食物啊、保健品啊啥的，弄成溶液，然后放到一个仪器里。
这个仪器就像个小侦探一样，能把叶黄素给找出来，还能算出有多少。
我记得有一次，我看到一个实验室的人在测定叶黄素。
他们穿着白大褂，戴着眼镜，看起来可专业了。
他们把一些蔬菜打成汁，然后过滤一下，就放到那个高效液相色谱仪里去了。
我在旁边看着，心里可好奇了。
过了一会儿，仪器上就显示出了一些数据。
他们就根据这些数据，算出了蔬菜里叶黄素的含量。
除了高效液相色谱法，还有分光光度法也可以测定叶黄素。
这个方法就比较简单了，就是用一些化学试剂，让叶黄素变色。
然后根据颜色的深浅，来判断叶黄素的含量。
我觉
得这个方法就像变魔术一样，挺好玩的。
其实啊，测定叶黄素的方法还有很多呢。
不过不管用啥方法，都得小心仔细，不能出错。
不然得出的结果就不准确了。
总之啊，叶黄素的测定方法有很多种，我们可以根据自己的需要选择合适的方法。
这样就能知道我们吃的东西里有多少叶黄素啦。
游离型VS酯化型 ２种叶黄素差在哪里？
游离型VS酯化型２种叶黄素差在哪里？叶黄素是现在当红的营养补充品，但日前传出，部分保健食品的叶黄素剂量不足，其中不乏知名大厂，让消费者在震惊之余，更大骂业者是黑心厂商！业者出面喊冤，指出是检测方式不同造成的落差。
究竟怎么回事？民众真的吃到黑心保健品了吗？这一切，得先从游离型和酯化型叶黄素的差异说起。
叶黄素近年窜升为热门保健食品，与现代人大量使用手机、电脑等3C产品有关。
市面上的叶黄素百百种，民众往往不知该如何挑选。
其实，可以从最基本的叶黄素型态着手，就能轻松挑选适合自己的品项。
游离型吸收效率高酯化型较不易吸收一般建议，叶黄素的每日摄取量约为6~12毫克，但在选择叶黄素时，不能光从含量判断其在体内发挥的作用，因为叶黄素分为酯化型(ester form)、游离型(free form)两种，前者是比较传统的型态，后者则是改良过往缺点所研发出的新一代剂型。
由于游离型叶黄素已透过水解技术去除脂肪酸，分子量大幅减少，约只有酯化型的1/2，不需经过人体消化过程，可以直接在小肠被吸收，转变成人体所需的营养素，所以游离型叶黄素会比脂化型的还要容易吸收。
相较之下，酯化型叶黄素虽在价格上较便宜，却因含有脂肪成分，分子量较大，又需透过肠道酵素辅助，将其分解为叶黄素和脂肪酸后，叶黄素的部分才能被吸收，因此吸收效率、生物利用率都较低。
若只从含量来看，酯化型叶黄素可能含有高剂量，但其实并不容易吸收。
而且，酯化型叶黄素容易堆积在体内，长期摄取可能囤积过多，反而造成肝脏代谢负担。
若要增加脂化型叶黄素的吸收率，一般建议在饭中或饭后食用，搭配餐食中的油脂帮助吸收。
不过，游离型叶黄素因技术先进，不需特地搭配油脂或是挑选服用时机，在便利性和吸收效率上都比较高。
改进叶黄素测定方法的探讨
改进叶黄素测定方法的探讨黄秋婵;许元明;韦友欢;黄敏敏;黄晓云【摘要】[目的]为改进叶黄素的测定方法.[方法]采用丙酮和酒精混合液(体积比1∶1)进行萃取,用分光光度法在不同的萃取时间对胡萝卜、黄槐决明花和柑橘皮中的叶黄素含量进行测定.[结果]胡萝卜萃取12 h时其叶黄素含量达最高(0.315 5 mg/gFW),可见12h是胡萝卜中叶黄素的最佳萃取时间；黄槐决明花萃取14 h时其叶黄素含量最高(0.818 5 mg/gFW),说明14 h是黄槐花中叶黄素的最佳萃取时间；柑橘皮萃取8h时其叶黄素含量达最高(0.001 9 mg/gFW),可知8h是柑橘皮中叶黄素的最佳萃取时间.[结论]为改进叶黄素的测定方法提供了理论依据.%[Objective] To improve determination method for lutein. [Method] By using acetone and alcohol volume ratio (1:1) to extract, the lutein content in Daucus carrot, Senna surattensis and Citrus reticulata Banco at different extraction time were determined with spectropho-tometry method.[ Result] The results showed that lutein content in Daucus carrot was up to the highest at 12 h (0.315 5 mg/gFW) , and Senna sumttensisn at 14 h(0. 818 5 mg/gFW) , Citrus reticulata Banco at 8 h(0. 001 9 mg/gFW).[ Conclusion] The study will provide theoretical basis for improving lutein determination method.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2012(040)033【总页数】4页(P16099-16101,16112)【关键词】胡萝卜;黄槐决明;柑橘;叶黄素【作者】黄秋婵;许元明;韦友欢;黄敏敏;黄晓云【作者单位】广西民族师范学院化学与生物工程系,广西崇左532200;广西民族师范学院化学与生物工程系,广西崇左532200;广西民族师范学院化学与生物工程系,广西崇左532200;广西民族师范学院化学与生物工程系,广西崇左532200;广西民族师范学院化学与生物工程系,广西崇左532200【正文语种】中文【中图分类】S631.2叶黄素是类胡萝卜素之一，来源于胡萝卜、柑橘、黄槐决明花等色彩鲜艳的植物器官，属光和色素，分子式为C40H56O2。
HPLC法测定保健食品中叶黄素含量
HPLC法测定保健食品中叶黄素含量周立梅;杨磊;张金秋;高畅;姜文月【摘要】[目的]建立改良的HPLC-C18法测定保健食品中叶黄素含量.[方法]优化样品前处理方法,通过单因素考察对破囊溶剂种类、破囊时间、提取时间、提取溶剂进行优化,采用常规HPLC-C18分析方法进行测定.色谱条件为:流动相甲醇,流速1.0 mL/min,检测波长446 nm,柱温30℃,进样量20μL.[结果]叶黄素在0.1396～2.0940μg/mL与峰面积线性关系良好,平均回收率为99.55％,RSD为2.21％.[结论]改良后的方法操作简便、准确、稳定,所用试剂绿色环保,可用于保健食品中叶黄素含量测定.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2018(046)020【总页数】3页(P164-166)【关键词】高效液相色谱;保健食品;叶黄素;含量测定【作者】周立梅;杨磊;张金秋;高畅;姜文月【作者单位】长春康彼达科技有限公司,吉林长春130000;长春康彼达科技有限公司,吉林长春130000;长春康彼达科技有限公司,吉林长春130000;长春康彼达科技有限公司,吉林长春130000;长春康彼达科技有限公司,吉林长春130000【正文语种】中文【中图分类】TS207.3叶黄素属于含氧类胡萝卜素，主要存在于深绿色蔬菜(菠菜、羽衣甘蓝等)、蛋黄、玉米、柑橘类等水果中，人体不能直接合成。
越来越多流行病学和临床试验表明，膳食或血清中较高含量的叶黄素可降低眼部疾病患病风险[1]。
作为生理活性物质，叶黄素在医学和功能食品领域具有广阔的研究开发前景[2]。
目前，利用HPLC法测定保健食品中叶黄素含量的方法有2种，一种是以C30为分离色谱柱的测定方法[3]，另一种是党亚敏等[4]以C18为分离色谱柱的测定方法，其中C30分离色谱柱使用不广泛。
测定叶黄素的色谱条件相对成熟，但是样品处理方法很多，如无水乙醇超声提取法[4]、石油醚超声提取法[5]、水提正己烷—乙酸乙酯萃取法[6]等。
叶黄素提取实验报告
一、实验目的1. 学习叶黄素的提取方法，了解其提取原理。
2. 掌握叶黄素提取过程中的操作技巧。
3. 分析影响叶黄素提取效果的因素。
二、实验原理叶黄素是一种天然色素，广泛存在于植物、藻类、真菌等生物中。
叶黄素具有良好的抗氧化性能，对眼睛健康有益。
本实验采用溶剂提取法，利用叶黄素易溶于有机溶剂的特性，从植物材料中提取叶黄素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜菠菜、乙醇、石油醚、蒸馏水、无水硫酸钠、滤纸、漏斗、烧杯、研钵、电子天平、冰箱、超声波清洗器等。
2. 实验仪器：电热套、旋转蒸发仪、分光光度计等。
四、实验步骤1. 称取新鲜菠菜100g，用剪刀剪碎，放入研钵中。
2. 向研钵中加入10g无水硫酸钠，搅拌均匀。
3. 将研钵中的菠菜与无水硫酸钠混合物转移到烧杯中，加入100mL乙醇，超声处理30分钟。
4. 将烧杯中的混合液用滤纸过滤，收集滤液。
5. 将滤液转移到旋转蒸发仪中，在40℃下减压浓缩至约10mL。
6. 向浓缩液中加入50mL石油醚，搅拌均匀。
7. 将混合液转移到分液漏斗中，静置分层。
8. 将石油醚层收集到烧杯中，加入无水硫酸钠干燥。
9. 将干燥后的石油醚溶液转移到旋转蒸发仪中，在40℃下减压浓缩至约1mL。
10. 将浓缩液转移至10mL容量瓶中，用石油醚定容至刻度。
11. 使用分光光度计在440nm波长下测定叶黄素溶液的吸光度。
12. 根据叶黄素的标准曲线计算叶黄素提取率。
五、实验结果与分析1. 叶黄素提取率：根据标准曲线计算，本实验叶黄素提取率为0.65%。
2. 影响因素分析：a. 溶剂选择：乙醇、石油醚等有机溶剂对叶黄素有较好的溶解度，实验中选择乙醇作为提取溶剂。
b. 超声处理时间：超声处理时间过长会导致叶黄素降解，实验中选取30分钟为最佳处理时间。
c. 浓缩温度：浓缩温度过高会导致叶黄素降解，实验中选取40℃为最佳浓缩温度。
d. 溶剂用量：溶剂用量过多会导致叶黄素提取率降低，实验中选取100mL乙醇为最佳溶剂用量。
jecfa叶黄素标准
jecfa叶黄素标准JECFA是世界卫生组织下的食品添加剂联合专家委员会，主要负责对食品添加剂的安全性进行评估。
在JECFA的评估中，叶黄素是一种重要的类胡萝卜素，被广泛应用于食品添加剂中，特别是在婴幼儿配方食品和特殊医学用途食品中。
JECFA对叶黄素的标准主要基于其安全性、纯度、稳定性以及功能性等方面进行评估。
安全性是JECFA评估叶黄素标准的重要因素之一。
叶黄素是一种天然存在的类胡萝卜素，广泛存在于蔬菜、水果和油料作物中，如万寿菊和玉米。
JECFA认为，叶黄素是安全的食品添加剂，并且对其每日允许摄入量（ADI）没有限制。
此外，JECFA还指出，叶黄素在人体内不会积累，而是随着尿液排出体外，因此不会对人体健康造成长期影响。
纯度也是JECFA评估叶黄素标准的重要因素之一。
叶黄素的纯度越高，其质量越好，因此JECFA规定了叶黄素的纯度标准。
根据JECFA的规定，叶黄素的纯度应不低于97％，并且其中的杂质含量应尽可能低。
此外，JECFA还规定了叶黄素中的重金属、农药残留等物质的限量，以确保叶黄素的质量和安全性。
稳定性也是JECFA评估叶黄素标准的重要因素之一。
叶黄素在光照、氧气、温度等因素的作用下容易发生氧化降解，导致其失去原有的功能和安全性。
因此，JECFA规定了叶黄素的稳定性标准，以确保其在食品中的有效性和安全性。
功能性是JECFA评估叶黄素标准的另一个重要因素。
叶黄素具有多种生理功能，如抗氧化、抗炎、抗癌等，因此被广泛应用于食品添加剂中。
JECFA根据多项研究结果，规定了叶黄素在食品中的使用量和使用范围，以确保其功能的发挥和安全性。
总之，JECFA对叶黄素的标准是基于其安全性、纯度、稳定性以及功能性等方面进行评估的。
植物色素检测报告
植物色素检测报告
报告编号：PLT-2022-001
报告日期：2022年3月15日
委托单位：XXX公司
被检测样品：XXX品种西红柿叶片
检测项目：植物色素含量测定
检测方法：高效液相色谱-紫外检测（HPLC-UV）法
检测结果：
样品中叶绿素a含量为XXmg/g，叶绿素b含量为XXmg/g，类胡萝卜素含量为XXmg/g。
结论分析：
本次检测结果显示，样品中叶绿素a和叶绿素b的含量接近，类胡萝卜素含量稍低。
根据采集后处理方法的不同，叶绿素a和叶绿素b含量会有所差异，且植物色素含量会随环境、气候、生长阶段等因素而变化。
因此，建议在同一生长条件下进行反复检测，以获得更准确的结果。
附录：
本次检测所使用的标准品和试剂均为有资质的供应商提供，检测设备为XXX（品牌）HPLC-UV检测仪，检测人员持有相关证书和资质。
本检测报告仅对样品在测定条件下所得结果负责，不对其它条件或未列明的因素负责。
XXX检测中心
2022年3月15日。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
20120330叶黄素测定对比
叶黄素是饲料的非营养性添加剂，它有突出的生理着色作用。
能用在家禽，水产动物和鸟的蛋黄、皮肤、羽毛以及肉的着色上，并有提高禽畜的免疫力的作用。
中心实验室测定饲料中叶黄素含量的方法是使用有机溶剂提取叶黄素后，使用分光光度计测定提取液的吸光度，通过比色法计算得到叶黄素的含量。
分析的简洁步骤如下:称取试样3克左右于100mL干燥棕色容量瓶中，精确到0.1mg，加入30mL有正己烷、无水乙醇、甲苯、丙酮配成的混合溶剂和2mL40%氢氧化钾乙醇溶液，在56℃水浴20分钟，冷清后30ml正己烷，再用10%硫酸钠溶液定容，摇匀后放在暗处定容1小时；移取上清液5mL于50mL棕色容量瓶中，用正己烷定容，在474nm比色计算。
不同实验室检测结果对比如下：
从以上数据可以看出，此次对比测定结果是在允许误差范围内的。
虽然如此，差值也体现了部分问题的存在。
首先，差值有高也有低，不是同一相对偏高或者相对偏低，很可能是由于测定人操作稳定性造成的；其次，测定方法也会造成结果偏差，测定过程中使用的有机溶剂均是易挥发的液体，在操作过程在（56℃水浴20分钟）中随机挥
发的体积是不确定的，此外，加入30mL正己烷，没有标明是精确加入，造成计算时会有偏差；为什么会造成计算偏差呢？原因在于在定容时，加入30mL正己烷后，用10%硫酸钠溶液定容的，我们都知道抽提剂+正己烷，其中正己烷、甲苯等溶剂是不溶于硫酸钠的，加入硫酸钠（作用是除去醇溶性杂质）后抽提剂+正己烷就与硫酸钠分层，抽提剂+正己烷在上层，硫酸钠在下层，最后我们是从抽提剂+正己烷中抽取5毫升再用正己烷定容至50毫升后测定吸光度的。
所以我们
说在56℃水浴20分钟，冷清后30ml正己烷，这时加入正己烷的量
很关键，加多了吸光度会偏低，加少了吸光度会偏高。
而且，我们用的是分光光度法测量的，分光光度法有一个缺陷就是准确度不高，也就是说对474nm波长下有吸收的物质不一定是叶
黄素还有别的黄色物质。
再次，叶黄素对光很敏感，测定的整个过程都应该在避光条件下操作为好。
这样可能是造成差值逐渐减小的原因。