腺病毒载体的构建-体外连接法快速高效构建表达
大鼠骨桥蛋白重组腺病毒的构建及体外表达
口腔颌 面 外科 杂 志 2 1 02年 8月 第 2 2卷 第 4期 Junl f aa dM aioai ug r 1 2No4Au ut 0 2 o ra o l n xl fc l reyVo. . g s2 1 Or l aS 2 ,
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基础 研 究 .
明 显 高 于 对 照组 细胞 .4h感 染 效 率 为 1 %.6h感 染 效 率 为 2 % 结 论 : 用 腺 病 毒 载 体 系 统 R P D 成 功 构 建 了 2 5 3 1 利 AA 含 O N基 因的 重 组 腺 病 毒 载 体 . 进 一 步 研 究 O N对 皮 肤 创 E愈 合 的影 响 提 供 了一 定 的 实 验 基 础 。 P 为 P l [ 键词]骨桥蛋 白; 关 腺病 毒 载体 ; 粒 重 组 ; 因克 隆 质 基 【 图分类号】 7 2 ;7 中 R 8. Q 8 2 【 献标 志码】 文 A [ 章 编 号] 10 —9 9 2 1 )40 3 —5 文 0 54 7 (0 2 0 —2 30
腺病毒与基因传递载体的构建与应用
腺病毒与基因传递载体的构建与应用腺病毒(Adenovirus)是一种以双链DNA为基础的病毒,主要感染哺乳动物,包括人类。
由于具有较高的感染率和传播速度,在临床治疗和基因治疗等领域,被用作基因载体。
这篇文章将会介绍腺病毒作为基因传递载体的构建和应用。
一、腺病毒作为基因传递载体的构建腺病毒是一个十分复杂的病毒,其基因组由约36 kb的双链DNA组成。
它的基因组被分为两个方向,一个方向编码早期基因(E1A、E1B、E2、E3和E4),另一个方向编码晚期基因(L1-L5)。
早期基因编码的转录产物参与了病毒DNA的复制和转录,晚期基因主要编码病毒颗粒结构和组装所需的蛋白质。
基于这个理论框架,可以利用腺病毒基因组进行基因传递。
首先,必须构建一个适当的腺病毒载体(Adenoviral vector),其基本构造是一个缺少大部分基因组的腺病毒。
在此基础上,将感兴趣的DNA片段插入到腺病毒基因组里。
这需要掌握两种方法:重组技术和确认策略。
以重组技术为例,首先要得到一个带有感兴趣DNA片段的载体核酸。
这个DNA完整地包含了带有专门的重组序列的保护酶切位点,使其能够在目标腺病毒基因组上的互补位点诱导重组。
在这个操作后,形成了一个新的腺病毒基因组,其中包括感兴趣的DNA片段。
然后,改造后的基因组可以转染到腺病毒感染容器中,进行繁殖和扩增。
这一步骤可以提高已经构建的腺病毒载体的数量。
其次,需要构建一种辅助病毒(Adenoviral helper)来帮助前述的重组病毒形成成熟的病毒颗粒。
在这个方法中,辅助病毒中没有任何有价值的基因,因此它不能复制自己。
相反,它确保引入的重组病毒可以在感染容器中成功地产生新的病毒颗粒。
通过这样的步骤,可以构建出一种有效的载体,并用于下一步的实验设计。
二、腺病毒作为基因传递载体的应用腺病毒作为基因传递载体可以应用于基因治疗、疫苗研究、基因注入和细胞治疗等领域。
下面分别介绍一下相关应用的基本技术。
腺病毒载体的构建和应用
腺病毒载体的构建和应用随着生物工程技术的不断发展,越来越多的生物医学研究领域开始趋向于基因治疗和基因编辑等方向。
这些技术的实现需要一种特殊的工具——腺病毒载体。
腺病毒(Adenovirus)是一种不包含RNA病毒的DNA病毒,其表面包裹着许多蛋白质,使其具有较好的基因导入能力。
这使得腺病毒成为一种常用的基因载体,被广泛应用于细胞遗传学、基因治疗等领域。
腺病毒的构成腺病毒包含一个大小为36 kb的线性双链DNA,这条DNA上编码了丰富的基因信息,其中大约包含40个基因左右。
腺病毒分为革兰氏正染色体和非冠状病毒两种类型,目前在研究中应用最多的是非冠状病毒型腺病毒。
腺病毒载体构建的两种方法目前有两种主要的构建腺病毒载体的方法,分别是端到端的法和质粒基因重组的法。
端到端的法端到端的法在构建腺病毒载体时需要把目标基因全长克隆进腺病毒的基因组中。
这种方法在基因克隆、重组和转染等方面比较复杂,对实验人员的操作技能要求较高。
同时,这种方法的构建产物相对来说比较容易受到细胞内DNA修饰和限制性酶的影响。
质粒基因重组的法对比之下,质粒基因重组的法相对来说较为容易,需要构建的重组质粒包括表示目标基因的转录单元以及与腺病毒DNA重组所需的旁路序列等。
通过将质粒DNA转染至腺病毒蛋白质、酶和基因表达产物等组分共同构成的细胞核中,将质粒DNA与腺病毒DNA进行重组,从而构建出目标腺病毒载体。
质粒基因重组法不仅可以有效克服端到端法受到限制性酶和DNA修饰的影响,而且富于设计灵活度,从而满足更多的实验需求。
腺病毒载体的应用腺病毒载体广泛应用于人类和动物细胞体内的基因传递、基因治疗和基因工程方面。
通过腺病毒载体可进行基因敲除、基因转录和基因转译等一系列基因编辑操作。
基因敲除基因敲除是研究腺病毒载体理解生命过程和信号转导途径的重要手段之一。
通过基因敲除的方法可以对特定基因进行敲除,从而寻找与该基因相关联的复杂的生物学催化剂。
目前腺病毒载体敲除方法尤其得到广泛应用,对于生命科学研究者来说具有重要的意义。
CRT_MAGE_A3重组腺病毒载体的构建及体外表达的研究
CRT/MAGE -A3重组腺病毒载体的构建及体外表达的研究刘新莉,陈洋,马萍(中国医科大学附属第一医院肿瘤研究所,沈阳110001)摘要:目的构建钙网织蛋白/黑素瘤抗原基因-A3(CRT/MAGE -A3)双基因重组腺病毒载体,并进行体外表达研究。
方法从表达质粒pcDNA3/CRT 中切取目的片段CRT ,定向克隆至穿梭载体pShuttle -GFP -CMV 。
根据Genbank 中提供的黑素瘤基因序列,设计并合成引物,以人肺癌组织cDNA 文库为模板采用RT -PCR 技术扩增人黑素瘤抗原基因-A3基因片段,测序后将黑素瘤抗原基因-A3基因片段定向克隆至穿梭载体,进而将穿梭载体克隆至Pac Ⅰ限制性内切酶线性化的腺病毒载体pAdxsi 。
结果目的片段CRT 转入穿梭载体后,酶切鉴定pShuttle -(ΔGFP )-CRT 正确。
人肺癌组织经RT -PCR 扩增出大小约950bp 的基因片段,测序证实为MAGE -A3DNA 后,克隆至穿梭载体pShuttle -(ΔGFP )-CRT 构建穿梭载体pShuttle -CRT -MAGE -A3,酶切鉴定证实构建正确。
酶切穿梭载体将双基因片段克隆至腺病毒载体pAdxsi 得到Ad -CRT/MAGE -A3病毒载体,酶切鉴定证实构建成功。
转染293LP 细胞并用Western blot 检测到其体外表达。
结论成功构建CRT/MAGE -A3重组腺病毒载体并证实其能在体外有效表达CRT 蛋白及MAGE -A3蛋白。
关键词:钙网织蛋白;黑素瘤抗原基因-A3;腺病毒;基因治疗中图分类号:R73文献标志码:A文章编号:0258-4646(2009)07-0493-04Construction and Expression of Recombinant Adenovirus for CRT/MAGE -A3抗原特异性肿瘤免疫治疗结合抑制肿瘤血管生成治疗的方法能够区分肿瘤与非肿瘤细胞,进而达到系统性治疗肿瘤的目的[1,2]。
4-1BBL重组腺病毒载体的构建及表达
I—n aie ls d p d rc C l erzdpa mi A T ak MV・ 4 1 B a d c—r some no cmptn J 1 3 wt d n vrs b c b n ls i m — B L n ota fr d it o ee tB 5 8 i a e o i a k o e pa— n h u
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1B B L表达。结论 成 功构建 了含 4 1 B —B L基 因的腺病毒载体 , 该载体可用于前列腺癌的免疫治疗 。
钙网织蛋白重组腺病毒载体构建及体外表达
钙网织蛋白重组腺病毒载体构建及体外表达赵丹刘新莉马萍(中国医科大学附属第一医院肿瘤研究所,辽宁沈阳110001)〔摘要〕目的构建钙网织蛋白(CRT )基因重组腺病毒载体,并检测其在293LP 细胞中的表达。
方法根据Genbank 中提供的CRT 基因序列,设计并合成引物,以人乳腺癌组织cDNA 文库为模板采用RT-PCR 技术扩增人CRT 基因片段,测序后将CRT 基因片段定向克隆至pShuttle-CMV 重组穿梭载体,进而将穿梭载体克隆至Pac Ⅰ限制性内切酶线性化的腺病毒载体pAdxsi 。
结果重组穿梭载体pShuttle-CRT 经EcoRI /Kpn Ⅰ酶切鉴定连接成功。
酶切穿梭载体将CRT 片段克隆至腺病毒载体pAdxsi 得到Ad-CRT ,鉴定证实Ad-CRT 载体构建成功。
Ad-CRT 转染293LP 细胞并通过Western 印迹法和Real-time PCR 法证实其体外表达。
结论成功构建CRT 重组腺病毒载体Ad-CRT 并证实其在293LP 细胞中表达。
〔关键词〕钙网织蛋白(CRT );腺病毒载体;基因治疗〔中图分类号〕R73〔文献标识码〕A〔文章编号〕1005-9202(2012)12-2561-03;doi :10.3969/j.issn.1005-9202.2012.12.053通讯作者:马萍(1960-),女,教授,博士生导师,主要从事分子肿瘤学研究。
第一作者:赵丹(1986-),女,硕士,主要从事分子肿瘤学研究。
抗原特异性肿瘤免疫治疗和抑制肿瘤血管生成治疗的方法能够区分肿瘤与非肿瘤细胞,进而达到全身系统性治疗肿瘤的目的〔1,2〕。
钙网蛋白(CRT )是热休克蛋白家族成员,为哺乳动物体内高度保守的Ca 2+结合蛋白。
近期研究表明,由抗原转运蛋白(TAP )转运到内质腔内的肽段与CRT 相连,成为抗原处理及递呈过程中热休克蛋白(HSP )的交接分子,参与诱导MHC-Ⅰ类分子限制的抗原特异性的CTL ,产生细胞免疫。
体外连接法快速高效构建表达β-半乳糖苷酶的重组腺病毒载体(一)
体外连接法快速高效构建表达β-半乳糖苷酶的重组腺病毒载体(一) 作者:王家宁,王传成郭凌郧,黄永章摘要]目的:采用体外连接法构建和制备重组腺病毒Adeno-X-LacZ,为构建具有治疗价值的重组腺病毒载体奠定基础。
方法:PI-SceⅠ/I-CeuⅠ酶切pShuttle2-LacZ穿梭质粒,回收4.6kb的LacZ基因表达盒,与经过相同酶切的Adeno-X病毒DNA连接,连接产物用SwaⅠ酶切,最终产物转化DH5α。
重组质粒用PCR法和PI-SceⅠ/I-CeuⅠ酶切鉴定。
pAdeno-X-LacZ用PacⅠ线性化后,用脂质体介导其转染至AD293细胞内包装扩增出重组腺病毒颗粒,采用CsCl密度梯度离心法纯化重组腺病毒Adeno-X-LacZ。
采用X-gal染色观察Adeno-X-LacZ在AD293细胞内包装和HVSMC表达情况。
结果:PCR扩增可见312bp特异性条带,PI-SceⅠ/I-CeuⅠ酶切重组质粒后释放出4.6kbLacZ基因表达盒。
X-gal 染色证实了在AD293细胞内成功扩增包装出重组腺病毒Adeno-X-LacZ 和LacZ基因在HVSMC中得到有效表达。
结论:体外连接法是一种快速、简便、高效的构建重组腺病毒质粒的方法,本研究为构建具有治疗价值的重组腺病毒奠定了基础,Adeno-X-LacZ为研究腺病毒介导的基因转移提供了一良好的对照载体。
关键词]体外连接;腺病毒;β-半乳糖苷酶;PI-SceⅠ;I-CeuⅠAbstract:ObjectiveToconstructrecombinantadenoviralvectorexpressingβ-ga lactosidasebyinvitroligationandprovideabasisforconstructionofrecombinan tadenovirusvectorexpressingtherapeuticgeneofinterest.MethodspShuttle2-LacZwasdigestedwithPI-SceⅠ/I-CeuⅠand4.6KbfragmentofLacZgeneexpre ssioncassettewasrecovered.ThisfragmentwasligatedtopredigestedAdeno-X viralDNAwithPI-SceⅠ/I-CeuⅠ.TheligatedproductwasdigestedwithSwaⅠ.T heresultantDNAwastransformedintoE.Coli.DH5α.Thecorrectrecombinantpl asmid,pAdeno-X-LacZ,wasidentifiedbyPCRandPI-SceⅠ/I-CeuⅠdigestion.T hePacI-digested,linearizedpAdeno-X-LacZwastransfectedintoAD293cellsbyL ipofectamine.Recombinantadenovirus,Adeno-X-LacZ,waspurifiedwithCsCld ensitygradientultracentrifugation.HVSMCwasinfectedwithAdeno-X-LacZ.X-galstainingwasperformedtomonitortheexpressionofβ-galactosidasegene.R esultsTherewasaspecificbandof312bpwhenpAdeno-X-LacZwasamplifiedby PCR.PI-SceⅠ/I-CeuⅠdigestionofpAdeno-X-LacZreleased4.6KbofLacZgenef ragment.X-galstainingconfirmedAdeno-X-LacZwaspackagedsuccessfullywit hinAD293cellsandtheexpressionofβ-galactosidasegeneinHVSMC.Conclusio nInvitroligationisasimple,rapidandefficientmethodforconstructingrecombin antadenoviralvector.Thisstudyprovidesabasisforconstructionofrecombinant adenoviralvectorcarryingtherapeuticgeneofinterest,Adeno-X-LacZisalsoaus efulcontrolvectorfortheresearchofgenetransfermediatedbyrecombinantad enovirus.Keywords:Invitroligation;Adenovirus;β-galactosidase;PI-SceⅠ;I-CeuⅠ重组腺病毒载体具有转染效率高,感染细胞范围广,病毒滴度高,可感染细胞周期中静止期和分裂期细胞,同时可高效介导基因的体内外转移。
腺病毒载体构建的基本原理与应用
腺病毒载体构建的基本原理与应用1. 简介腺病毒(Adenovirus)是一类非常常见的病毒,它可引起呼吸道、眼部和肠道感染等问题。
在基因工程领域,腺病毒被广泛应用作为基因传递载体。
通过对腺病毒进行适当的改造,可以将外源基因有效地传递到目标细胞中,并实现基因的高表达。
本文将介绍腺病毒载体构建的基本原理以及其在实际应用中的主要用途。
2. 腺病毒载体构建的基本原理腺病毒载体构建的基本原理主要包括以下几个步骤:2.1 选择适当的腺病毒亚型腺病毒有多个亚型,其中最常用的是腺病毒2(Ad2)和腺病毒5(Ad5)。
选择适当的腺病毒亚型取决于目标细胞的特点以及需要传递的基因。
2.2 构建质粒载体构建质粒载体是腺病毒载体构建的第一步。
质粒载体通常由多个部分组成,包括腺病毒的核心序列、外源基因表达的启动子和终止子等。
通过合成或PCR扩增等方法,可以将这些部分组装到一起构建质粒载体。
2.3 建立包装细胞系在构建过程中,需要建立一个能够产生包装腺病毒的细胞系。
这些细胞系通常包括两种类型的细胞:一种是质粒携带者,将质粒转染进细胞内;另一种是包装细胞,它们能够提供所需的腺病毒包装蛋白和其他辅助蛋白。
2.4 转染质粒载体将质粒载体转染到包装细胞系中,使其进入细胞内。
转染的方法可以采用常规的化学方法,如钙磷共沉淀法或使用商业化学试剂。
2.5 腺病毒产生与包装质粒载体进入到包装细胞中后,通过转染和转座等过程,腺病毒基因组会产生复制和转录。
最终,腺病毒包装蛋白和基因组会组装成腺病毒颗粒,从而完成腺病毒载体的构建。
3. 腺病毒载体的应用腺病毒载体在基因治疗、疫苗开发、基因功能研究等方面具有广泛的应用。
以下是腺病毒载体的主要应用领域的列点介绍:•基因治疗:腺病毒载体可以用于治疗多种遗传性疾病,如囊性纤维化、遗传性视网膜疾病等。
通过将治疗基因成功地传递到患者细胞中,可以恢复或增强正常基因的功能,从而治疗相关疾病。
•疫苗开发:腺病毒载体在疫苗开发中具有重要的作用。
〖医学〗重组腺病毒载体的构建
BTEB2简介
基本转录元件结合蛋白2-转录因子 功能:促进VSMC增殖和表型转化
外源性基因的制备
VSMC中提取总RNA RT-PCR得到BTEB2 cDNA 体会:从目的基因丰度高的组织或细胞
中提取。
重组穿梭质粒的构建--将 PCR产物克隆到穿梭质粒
用BamH I 和 EcoR I 双酶切穿梭质粒 pDC315及BTEB2 cDNA
用T4连接酶将BTEB2 cDNA反向连接到 穿梭质粒 定向克隆
体会:设计引物时引入需要的酶切位点 可使基因定向克隆的程序简化
重组穿梭质粒的鉴定
酶切鉴定:用BamH I 和 EcoR I 双酶切 重组穿梭质粒pDC315ASBTET2,电泳
目的片段测序
重组腺病毒的制备
脂质体介导重组穿梭质粒和腺病毒基因组质粒 共转染293细胞
腺病毒载体的包装细胞
HEK293细胞的培养 高糖型DMEM 10%FBS(构建),10%NBS(扩增)
HEK293细胞的传代次数与腺病毒载体构 建和扩增 构建:<20代--构建成功的关键 扩增:无特殊要求
重组原理
重组腺病毒载体构建
以反义BTEB2腺病毒表达载体为例 介绍重组腺病毒载体的构建过程
重组腺病毒的鉴定
病变293细胞于液氮、37°C反复冻融, 离心
取上清提取重组病毒DNA 用目的片段引物和病毒基因组特征片段
引物作PCR
病毒滴度测定
24孔培养板每孔接种1×105个293细胞 培养24小时后,取病毒转染液0.2ml加
PBS至总量2ml,混匀后作10倍比稀释至 第8管,每孔加入不同稀释度的病毒液 0.2ml。 37°C 5%CO2培养1小时后,每孔补加 1.5ml培养液,继续培养36-48小时
腺病毒质粒载体的构建及表达调控机制研究
腺病毒质粒载体的构建及表达调控机制研究第一章引言腺病毒是一种广泛应用于基因治疗和基因表达的载体,由于其病毒自身不具有致病性,可以更安全地应用于临床治疗和药物研发。
腺病毒载体的构建和表达调控机制的研究是基因治疗和药物研发领域的热点问题。
本文将从腺病毒质粒载体的构建方法、载体的表达调控机制、及应用前景等方面进行探讨。
第二章腺病毒质粒载体的构建方法腺病毒的质粒载体构建需要遵循一定的规律和原则,以确保载体的高效性和稳定性。
现将常用的腺病毒质粒载体构建方法进行简要介绍:2.1 插入式构建法插入式构建法是最常用的构建方法之一,其基本原理是将外源基因片段插入到腺病毒质粒载体中,再通过体外转染等方法将整个质粒导入到细胞内进行转染。
插入式构建法具有构建简便、转染效能高、适用性强等优点。
但由于插入的外源基因片段较长且载体承载能力有限,仅适用于小分子基因的插入。
2.2 重组式质粒构建法重组式质粒构建法是从腺病毒DNA中特异性截取相应序列,并将其与外源基因片段重组形成新的质粒载体。
重组式质粒构建法具有高效性、稳定性等优点,能够承载大分子基因片段的插入。
但构建难度较大,需要较为专业的技术支持。
2.3 克隆式质粒构建法克隆式质粒构建法是将腺病毒基因组进行克隆,这种方法能够在保持病毒活性的前提下获得高效的转染效果和稳定性。
克隆式质粒构建法适用于需要经常进行高效转染以及灭活性病毒的构建,但需要高超的实验技能和完善的实验设备。
第三章腺病毒质粒载体的表达调控机制腺病毒质粒载体的表达调控机制是基因治疗和药物研发领域的重要问题之一。
本章将从内在调节和外部控制两个方面进行介绍。
3.1 内在调节内在调节是指在腺病毒质粒载体表达阶段,利用载体本身的启动子、基因调节元件等进行调节。
常用的内在调节方法有以下几种:3.1.1 CMV启动子调节CMV启动子是最常见的内在调节方法之一,其具有高效性、稳定性等优点。
CMV启动子能够在典型的哺乳动物细胞中发挥优异的表达效果,并能够适应细胞类型、转染条件等变化。
腺病毒载体工艺平台介绍
腺病毒载体工艺平台介绍腺病毒载体是一种常用的基因传递工具,被广泛应用于基因治疗和基因工程研究领域。
为了应对不同研究需求和提高载体表达效率,许多研究人员和企业建立了腺病毒载体工艺平台,以帮助加速基因传递和基因治疗的研究进展。
腺病毒载体工艺平台是一种综合的研究和生产系统,主要包括以下几个方面:1. 载体构建:利用分子生物学技术,将感兴趣的基因序列插入腺病毒基因组的合适位点。
在载体构建过程中,可以根据需要选择不同的载体类型、启动子、响应元件等,以调控基因的表达水平和时机。
2. 载体包装:通过与辅助质粒(helper plasmid)共转染细胞,使细胞内形成完整的腺病毒基因组,并通过细胞内重组事件来复制和包装腺病毒颗粒。
载体包装的过程中,通常需要参考文献中的方法和优化步骤,以获得高效的包装效率。
3. 病毒扩增:将包装好的腺病毒载体接种到适宜的宿主细胞中,通过培养和扩增过程,使腺病毒繁殖并增加至足够的浓度。
扩增过程中要注意控制细胞的生长状态、感染剂量和细胞培养条件,以获得高产量和活性的腺病毒。
4. 病毒纯化:通过离心、超滤和柱层析等技术手段,从扩增培养物中纯化腺病毒颗粒。
纯化过程中,可以采用单步或多步骤的方法来去除杂质、浓缩和提纯腺病毒。
5. 固定化:对腺病毒进行固定化处理,可用于获得更稳定、可储存和长期使用的腺病毒制剂。
常用的固定化方法包括酶解固定化、化学固定化、冻干固定化等。
6. 质量检测:对纯化的腺病毒产品进行质量鉴定,包括病毒滴度测定、细胞感染测定、基因表达水平测定等。
同时,还可以进行病毒颗粒观察、基因序列测定、重组蛋白表达等验证实验。
腺病毒载体工艺平台的建立有助于提高基因治疗和基因工程研究的效率和可靠性。
通过系统、规范和高效的工艺流程,可以大幅度减少研究人员在载体构建、病毒包装和纯化等环节上的工作量,同时提高腺病毒的产量和纯度。
这为基因治疗的临床应用以及基因工程研究提供了可靠的技术支持。
腺病毒载体工艺平台是基因治疗和基因工程研究中不可或缺的一部分。
腺病毒载体构建原理与方法的研究进展
作者单位:100052北京,中国预防医学科学院病毒学研究所病毒形态研究室#综述#腺病毒载体构建原理与方法的研究进展何金生王健伟洪涛由于腺病毒(Adenovirus,Ad)载体在哺乳动物及其多种细胞上进行基因转移和蛋白表达的高效性,使其在基因疫苗及基因治疗的研究中受到人们的青睐,成为当今使用最多的病毒载体之一。
为了取得更满意的效果,人们在腺病毒载体构建与改进方面,做了大量工作。
本文谨就近年来腺病毒载体构建原理与方法的研究进展扼要综述如下。
1腺病毒载体的构建原理腺病毒的基因组为线形双链DNA,长度约为36kb,被包装在一个二十面体的蛋白质外壳内,可分为编码区和非编码区。
编码区又可分为早期转录区和晚期转录区两种,前者有E1、E2、E3、E4四个区,编码病毒的调节蛋白,后者有L1、L2、L3、L4、L5五个区,编码病毒的结构蛋白。
非编码区含有病毒进行复制和包装等功能所必需的顺式作用元件。
除E3区外,其余的编码区及顺式作用元件均为病毒复制所必需。
第1代腺病毒载体是由去除腺病毒基因组的E1和P或E3两个区而获得,其复制必须在由5型腺病毒转化的可组成性表达E1蛋白的293细胞中完成。
其主要优点为:在体外有很高的繁殖滴度(1011~1012PFU P ml);易感的宿主细胞范围广,既能感染增殖细胞,又能感染非增殖细胞;病毒基因组存在于细胞染色体外,避免了因整合引起的细胞突变。
但由于病毒载体与表达E1蛋白的293细胞之间存在同源序列。
在293细胞中繁殖时,通过重组,可重新获得E1区,出现复制型腺病毒(Replication-competent Ads, RCAs),这使得第1代腺病毒载体的应用受到限制112。
此外,由于发现在多种转化及原代的细胞内存在具有Ela样活性(Ela-like activity)的物质,因而E1区缺失的腺病毒载体在这些细胞内,仍能进行Ela非依赖性的腺病毒DNA复制,并从头合成病毒的早期和晚期蛋白,激发宿主针对腺病毒的细胞和体液免疫,使载体在体内的持续时间以及再次应用均受到极大影响122。
钙网织蛋白重组腺病毒载体构建及体外表达
钙网织蛋白重组腺病毒载体构建及体外表达赵丹刘新莉马萍(中国医科大学附属第一医院肿瘤研究所,辽宁沈阳110001)〔摘要〕目的构建钙网织蛋白(CRT )基因重组腺病毒载体,并检测其在293LP 细胞中的表达。
方法根据Genbank 中提供的CRT 基因序列,设计并合成引物,以人乳腺癌组织cDNA 文库为模板采用RT-PCR 技术扩增人CRT 基因片段,测序后将CRT 基因片段定向克隆至pShuttle-CMV 重组穿梭载体,进而将穿梭载体克隆至Pac Ⅰ限制性内切酶线性化的腺病毒载体pAdxsi 。
结果重组穿梭载体pShuttle-CRT 经EcoRI /Kpn Ⅰ酶切鉴定连接成功。
酶切穿梭载体将CRT 片段克隆至腺病毒载体pAdxsi 得到Ad-CRT ,鉴定证实Ad-CRT 载体构建成功。
Ad-CRT 转染293LP 细胞并通过Western 印迹法和Real-time PCR 法证实其体外表达。
结论成功构建CRT 重组腺病毒载体Ad-CRT 并证实其在293LP 细胞中表达。
〔关键词〕钙网织蛋白(CRT );腺病毒载体;基因治疗〔中图分类号〕R73〔文献标识码〕A〔文章编号〕1005-9202(2012)12-2561-03;doi :10.3969/j.issn.1005-9202.2012.12.053通讯作者:马萍(1960-),女,教授,博士生导师,主要从事分子肿瘤学研究。
第一作者:赵丹(1986-),女,硕士,主要从事分子肿瘤学研究。
抗原特异性肿瘤免疫治疗和抑制肿瘤血管生成治疗的方法能够区分肿瘤与非肿瘤细胞,进而达到全身系统性治疗肿瘤的目的〔1,2〕。
钙网蛋白(CRT )是热休克蛋白家族成员,为哺乳动物体内高度保守的Ca 2+结合蛋白。
近期研究表明,由抗原转运蛋白(TAP )转运到内质腔内的肽段与CRT 相连,成为抗原处理及递呈过程中热休克蛋白(HSP )的交接分子,参与诱导MHC-Ⅰ类分子限制的抗原特异性的CTL ,产生细胞免疫。
CRTMAGE-A3重组腺病毒载体的构建及表达的开题报告
CRTMAGE-A3重组腺病毒载体的构建及表达的开题报告一、选题背景及意义腺病毒(Adenovirus)是一种双链DNA病毒,具有广泛的细胞感染性和高水平的表达能力。
由于其易于构建和高效的转染能力,腺病毒成为广泛应用于基因工程领域的载体。
目前,腺病毒载体已广泛应用于基因治疗、基因转染、疫苗制备等方面,在治疗疾病、研究疾病机制、开发新药等领域具有广阔的应用前景。
CRTMAGE-A3(Cancer-Testis Antigen MAGE-A3)是一种抗原,主要在人类癌症细胞中表达。
研究表明,利用CRTMAGE-A3进行基因治疗或疫苗制备可以有效地诱导人体免疫系统对癌症细胞产生特异性杀伤作用,达到治疗肿瘤的效果。
因此,CRTMAGE-A3成为热门的研究对象,利用腺病毒载体构建CRTMAGE-A3基因表达系统能够为该领域的研究提供有力支持。
本研究将构建CRTMAGE-A3重组腺病毒载体,并系统研究其在体外表达特性,为基因治疗或疫苗制备提供有力支持。
二、研究内容及方法2.1 研究内容本研究将完成以下研究内容:(1)设计合成CRTMAGE-A3基因片段并克隆到腺病毒载体中;(2)验证CRTMAGE-A3基因片段在载体中的稳定性和表达水平;(3)评价CRTMAGE-A3重组腺病毒载体在体外转染细胞的效率和毒性;(4)利用Western blot和免疫荧光等方法分析CRTMAGE-A3蛋白的表达和定位;(5)研究CRTMAGE-A3蛋白的生物学效应。
2.2 研究方法(1)设计、合成并克隆CRTMAGE-A3基因片段设计CRTMAGE-A3基因片段的引物,采用PCR技术扩增片段并纯化PCR产物。
使用限制酶切酶对PCR产物和载体进行双酶切,并通过连接酶将两者连接,构建CRTMAGE-A3基因重组腺病毒载体。
(2)构建CRTMAGE-A3重组腺病毒载体采用转染法将构建好的CRTMAGE-A3载体导入到腺病毒包装细胞中,并进行病毒包装。
hIFN-γ腺病毒表达载体的快速构建及鉴定
wa s t r a n s f e r r e d i n t o B J 5 1 8 3 c o mp e t e n t b a c t e r i a a n d s c r e e n e d b y s t r e p t o my c i n s u l f a t e a n d a mp i c i l l i n r e s i s t a n c e .p Ad Tr a c k — CM V- h I FN一 7 wa s t r a n s f e r r e d i n t o p Ad E a s y - 1 一 B J 5 1 8 3 c o mp e t e n t b a c t e r i a a n d s c r e e n e d b y k a n a my c i n t o o b t a i n t h e p Ad Ea s y - 1 一 B J 5 1 8 3 一
m L)wa s e x t r a c t e d u s i n g Tr i z o l , a n d o l i g o p r i me r wa s u s e d f o r r e v e r s e t r a n s c r i p t i o n .Th e h I F N一 7 c DNA s e q u e n c e wa s a c q u i r e d b y PCR, i n s e r t e d i n t o v e c t o r p Ad Tr a c k - CMV , a n d t h e p Ad Tr a c k — CM 、 h I F N一 7 e x p r e s s i o n v e c t o r wa s o b t a i n e d .Th e n t h e p Ad Ea s y - 1
鸡survivin重组腺病毒载体的构建和体外表达
鸡survivin重组腺病毒载体的构建和体外表达
鸡survivin重组腺病毒载体的构建和体外表达
根据GenBank中鸡survivin cDNA序列,设计引物,从鸡胚组织提取总RNA,利用RT-PCR扩增鸡survivin全长cDNA,经T-A克隆后插入腺病毒穿梭载体、骨架载体,构建腺病毒重组质粒,转染293E4pIX细胞,构建鸡survivin重组腺病毒.T-A克隆的测序结果与GenBank中鸡survivin cDNA完全一致.限制性内切酶分析和PCR表明腺病毒质粒携带survivin基因,Western blot证实重组腺病毒正确表达survivin,survivin基因已被成功重组到腺病毒基因组.
作者:李秋田聆文艳君吴扬罗彦 LI Qiu TIAN Ling WEN Yan-jun WU Yang LUO Yan 作者单位:四川大学华西医院人类疾病生物治疗重点实验室·肿瘤生物治疗科,成都,610041 刊名:四川大学学报(自然科学版) ISTIC PKU英文刊名:JOURNAL OF SICHUAN UNIVERSITY (NATURAL SCIENCE EDITION) 年,卷(期):2006 43(5) 分类号:Q95 关键词:survivin 异种疫苗腺病毒载体。
A型口蹄疫病毒多基因重组腺病毒载体的构建
A型口蹄疫病毒多基因重组腺病毒载体的构建构建基于腺病毒的多基因重组载体是一种常见的遗传工程方法,可以将多个外源基因同时导入宿主细胞中,从而达到多基因的表达。
在A型FMD的研究中,也有人尝试使用腺病毒作为载体来构建疫苗,以提高其蛋白质表达水平。
构建多基因重组腺病毒载体的第一步是选择合适的腺病毒,通常选择腺病毒2型或5型。
然后,将需要表达的外源基因插入到腺病毒基因组中的特定位点。
在这个过程中,需要使用限制性内切酶来切割腺病毒基因组和外源基因的质粒,然后使用DNA连接酶将它们连接在一起。
连接完成后,将构建好的腺病毒基因组导入到宿主细胞中,通过细胞内的复制和转录机制,使外源基因得以表达。
在构建多基因重组腺病毒载体的过程中,还需要一系列的筛选步骤以确保正确的腺病毒基因组被表达。
通常采用PCR技术来筛选转染细胞中是否存在目标基因,并使用DNA测序来验证基因的正确插入。
此外,还需要通过对表达目标基因的细胞进行酶切分析和质谱鉴定等方法来鉴定腺病毒基因组的稳定性和表达水平。
构建多基因重组腺病毒载体的成功,可以大大提高对A型FMD的防控效果。
通过同时表达多个与免疫反应相关的基因,可以增强宿主动物对FMD病毒的免疫力,从而减少感染和传播。
同时,可以通过优化腺病毒载体的表达能力,使其能够持续地表达目标基因,从而增强疫苗的效果。
总之,构建多基因重组腺病毒载体是一种有潜力的方法来提高对A型FMD的防控效果。
该方法可以通过同时表达多个免疫相关基因来增强宿主动物的免疫力,从而减少感染和传播。
在未来的研究中,我们将进一步优化这种方法,以提高其在FMD防控中的应用价值综上所述,构建多基因重组腺病毒载体是一种有潜力的方法来提高对A型FMD的防控效果。
通过使用性内切酶和DNA连接酶,成功将外源基因与腺病毒基因组连接在一起,并导入宿主细胞中进行表达。
筛选步骤包括PCR技术、DNA测序、酶切分析和质谱鉴定等,以确保腺病毒基因组的稳定性和正确插入目标基因。
核糖体蛋白RPS3a腺病毒载体的构建和体外表达
核糖体蛋白RPS3a腺病毒载体的构建和体外表达吴红媛;厉建中;张俊平【期刊名称】《药学实践杂志》【年(卷),期】2013(031)005【摘要】目的构建核糖体蛋白RPS3a的腺病毒表达载体,并进一步验证其在细胞中的表达.方法应用RT-PCR从人胚肾HEK293细胞的总RNA中反转录并扩增出RPS3a基因,并将RPS3a亚克隆到穿梭质粒pAdTrack-CMV中,酶切及测序鉴定后,再将含RPS3a基因的重组穿梭质粒pAdTrack-CMV-RPS3a进行Pme Ⅰ酶线性化处理,转化到含有骨架质粒的BJ5183感受态菌,进行同源重组.鉴定后,经Pac Ⅰ线性化转染HEK293细胞,包装重组腺病毒.病毒感染NIH3T3细胞,Western blot 分析RPS3a蛋白的表达.结果证实pAdTrack-CM V-RPS3a及pAdEas-RPS3a质粒构建正确;Western blot检测病毒感染的NIH3T3细胞总蛋白,与pAd-GFP阴性对照组相比,RPS3a蛋白表达量显著提高.结论成功构建了能表达RPS3a基因的重组腺病毒载体,为进一步研究其生物学功能奠定基础.【总页数】4页(P347-350)【作者】吴红媛;厉建中;张俊平【作者单位】福建中医药大学,福建福州,350122;第二军医大学药学院生化药学教研室,上海200433;第二军医大学药学院生化药学教研室,上海200433;第二军医大学药学院生化药学教研室,上海200433【正文语种】中文【中图分类】R318.5【相关文献】1.钙网织蛋白重组腺病毒载体构建及体外表达 [J], 赵丹;刘新莉;马萍2.大鼠ANT1基因腺病毒载体的构建及体外表达 [J], 李燕;宋耀明;卢巍;任可;李莹3.CRT/MAGE-A3重组腺病毒载体的构建及体外表达的研究 [J], 刘新莉;陈洋;马萍4.核糖体蛋白L8重组腺病毒载体的构建及鉴定 [J], 谈艳芳;杜清波;黄俊琼5.hNET基因重组腺病毒载体构建和体外表达 [J], 贾志云;欧晓红;魏海燕;邓候富;黄蕤;王金蓉;张仕琼因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
快速构建腺病毒载体的新方法
快速构建腺病毒载体的新方法
李文辉
【期刊名称】《国外医学:病毒学分册》
【年(卷),期】1999(006)004
【摘要】近年来,随着腺病毒载体广泛应用于实验性基因治疗等生物学研究领域,构建重组腺病毒的方法也有了很大改进,本文主要介绍两种快速构建入腺病毒载体的新方法:1.用DNA-末端蛋白质复合物构建重组腺病毒。
2.在大肠杆菌细胞内而非真核细胞内完成通过同源重组产生重组腺病毒核酸的过程。
【总页数】3页(P126-128)
【作者】李文辉
【作者单位】中国协和医科大学基础医学院,北京
【正文语种】中文
【中图分类】R394
【相关文献】
1.hIFN-γ腺病毒表达载体的快速构建及鉴定 [J], 陈昌国;刘敏;郭建巍;张建肖;赵强元;李娜;王珍光
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树勇;阮杰;马华谋;林观平;周克元
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宋艳斌
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腺病毒载体的构建
第四章SOCS2腺病毒载体的构建 1腺病毒载体的构建由第三章结果可知,基础状态下SOCS2在脂肪细胞中的表达水平较低,但是GH 可以诱导SOCS2稳定高表达。
SOCS2高表达的同时,GH诱导的脂肪细胞分化因子和脂质代谢基因表达发生了变化。
为了研究SOCS2对GH调控脂肪细胞分化与脂质代谢的影响,需要通过一种途径实现SOCS2在脂肪细胞中持续高表达。
细胞导入外源基因是目前常用的方法,但是保证外源基因的高效表达需要合适的表达系统。
目前常用的有质粒、逆转录病毒、蔓病毒、腺病毒等外源基因表达系统。
质粒载体可以导入外源基因,但是质粒的转染效率很低,如何把目标基因导入靶细胞转录产物是质粒系统的最主要的问题。
逆转录病毒可以把目标基因整合到靶细胞基因组永久表达,但是逆转录病毒只能感染增殖期的细胞。
蔓病毒本身对脂肪细胞的感染率又比较低。
而腺病毒滴度高,适合外源基因大量表达,并且可插入较大的目的片段,对细胞类型限制较小,可感染非分裂期的细胞(V orburger SA and Hunt KK 2002)。
另外腺病毒载体系统中pAdEasy系统操作比较简单(Luo JY et al. 2007)。
本章克隆SOCS2基因,采用pAdEasy系统构建pAd-SOCS2载体,为SOCS2在脂肪细胞中高效表达,研究SOCS2对GH调控脂肪细胞分化与脂质代谢的影响奠定基础。
4.1材料4.1.1 样品、菌株、质粒及细胞株脂肪组织取自6周龄昆白小鼠,小鼠购自第四军医大;E.coli DH5α菌株由本实验室保存;pAdTrack-CMV和pAdEasy-1质粒,E.coli BJ5183菌株由猪脂肪沉积与肌肉发育实验室赠送;人胚肾细胞株HEK293购于中国科学研究院上海细胞资源中心。
4.1.2 主要试剂限制性内切酶BglⅡ、XhoⅠ和蛋白Marker购自Fermentas公司;内切酶PmeI和PacI购自NEB公司;pMD TM18-T克隆载体、碱性磷酸酶CIPA购自Takara公司;穿梭质粒小提试剂盒购自Omega公司;琼脂糖凝胶回收试剂盒购自Bioflux公司;λ/Hin dIII Marker购自天根公司;OptiMem优化培养液购自Gibico公司;脂质体Lipofectamine TM 2000购自Invitrogen公司。
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体外连接法快速高效构建表达β-半乳糖苷酶的重组腺病毒载体作者:王家宁, 王传成郭凌郧, 黄永章[摘要] 目的: 采用体外连接法构建和制备重组腺病毒Adeno-X-LacZ,为构建具有治疗价值的重组腺病毒载体奠定基础。
方法: PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切pShuttle2-LacZ穿梭质粒,回收4.6 kb 的LacZ基因表达盒,与经过相同酶切的Adeno-X病毒DNA连接,连接产物用SwaⅠ酶切,最终产物转化DH5α。
重组质粒用PCR法和PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切鉴定。
pAdeno-X-LacZ用PacⅠ线性化后,用脂质体介导其转染至AD293细胞内包装扩增出重组腺病毒颗粒,采用CsCl 密度梯度离心法纯化重组腺病毒Adeno-X-LacZ。
采用X-gal染色观察Adeno-X-LacZ在AD293细胞内包装和HVSMC表达情况。
结果: PCR扩增可见312 bp特异性条带,PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切重组质粒后释放出4.6 kb LacZ基因表达盒。
X-gal染色证实了在AD293细胞内成功扩增包装出重组腺病毒Adeno-X-LacZ和LacZ基因在HVSMC中得到有效表达。
结论: 体外连接法是一种快速、简便、高效的构建重组腺病毒质粒的方法,本研究为构建具有治疗价值的重组腺病毒奠定了基础,Adeno-X-LacZ为研究腺病毒介导的基因转移提供了一良好的对照载体。
[关键词] 体外连接;腺病毒;β-半乳糖苷酶;PI-SceⅠ;I-CeuⅠAbstract: Objective To construct recombinant adenoviral v ector expressing β-galactosidase by in vitro ligation and provide a basis for construction of recombinant adenovirus vector expressing therapeutic gene of interest.Methods pShuttle2-LacZ was digested with PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰand 4.6 Kb fragment of LacZ gene expression cassette was recovered .This fragment was ligated to predigested Adeno-X viral DNA with PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ. The ligated product was digested with Swa Ⅰ.The resultant DNA was transformed into E. Coli. DH5α.The correct recombinant plasmid, pAdeno-X-LacZ ,was identified by PCR and PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰdigestion. The Pac I-digested, linearized pAdeno-X-LacZ was transfected into AD293 cells by Lipofectamine. Recombinant adenovirus , Adeno-X-LacZ, was purified with CsCl density gradient ultracentrifugation. HVSMC was infected with Adeno-X-LacZ. X-gal staining was performed to monitor the expression of β-galactosidase gene. Results There was a specific band of 312bp when pAdeno-X-LacZ was amplified by PCR. PI-SceⅠ/I-CeuⅠdigestion of pAdeno-X-LacZ released 4.6Kb of LacZ gene fragment. X-gal staining confirmed Adeno-X-LacZ was packaged successfully within AD293 cells and the expression of β-galactosidase gene in HVSMC. Conclusion In vitro ligation is a simple, rapid and efficient method for constructing recombinant adenoviral vector. This study provides a basis for construction of recombinant adenoviral vector carrying therapeutic gene of interest, Adeno-X-LacZ is also a useful control vector for the research of gene transfer mediated by recombinant adenovirus.K ey words: In vitro ligation; Adenovirus; β-galactosidase; PI-Sce Ⅰ; I-Ceu Ⅰ重组腺病毒载体具有转染效率高,感染细胞范围广,病毒滴度高,可感染细胞周期中静止期和分裂期细胞,同时可高效介导基因的体内外转移。
因而腺病毒载体是目前后基因组时代基因功能研究和基因治疗研究普遍运用的载体[1-6]。
但腺病毒载体的构建是一项费时费力具有挑战性的工作。
过去细胞内同源重组方法构建和制备携带目的基因的重组腺病毒,由于同源重组率低和需要对重组体进行多轮费时费力的筛选鉴定,限制了重组腺病毒载体在研究中的应用[7-8]。
细菌内同源重组法构建和制备重组腺病毒,由于操作相对复杂以及需要两种特殊的大肠杆菌(BJ5183, XL10-gold),使得构建重组腺病毒的效率相对低下[9-13]。
本研究介绍体外连接方法构建和制备表达β-半乳糖苷酶的重组腺病毒载体,为构建重组腺病毒载体建立一新的技术平台,为构建携带目的基因的重组腺病毒载体奠定基础。
1 材料和方法1.1 主要材料BD Adeno-X Expression system(购自BD Biosciences Clontech公司)包括Adeno-X Viral DNA(PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ已消化),pShuttle2穿梭质粒(含有多克隆位点及PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切位点),pShuttle2-LacZ,PI-Sce Ⅰ和I-Ceu Ⅰ内切酶,Adeno-X扩增引物(Forward primer:5’-TAGTGTGGCGGAAGTGTGATGTTGC-3’; Reverse primer: 5’-TCGACCATAGGGGATCGGGAGATC-3’)。
X-gal(Sigma公司产品),Lipofectamine 2000(Invitrogen公司产品),λDNA/HindⅢ marker(华美生物工程公司产品),DH5α为本研究所保存,SwaⅠ(New England Biolabs公司产品)。
LigaFast Rapid DNA ligation sysrem(Promega 公司产品)。
AD293细胞(Stratagene公司)。
1.2 主要仪器高速冷冻离心机(Hettich,Universal 32R,德国),超速冷冻离心机(Hitach,CP80MX,日本),紫外/可见光分光光度计(Cecil,CE2041,英国),倒置相差显微镜(Nikon,TE2000-U,日本),二氧化碳培养箱(Binder,德国),超净工作台(苏净集团安泰公司),超低温冰箱(-80 ℃,Sanyo,日本),凝胶图像分析系统(Touching 995 gel document system,天呈科技公司)。
1.3 构建策略见图1。
1.4 携带LacZ基因的重组腺病毒质粒pAdeno-X-LacZ的构建pShuttle2-LacZ用PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切后进行低熔点琼脂糖凝胶电泳,回收4.6 kb含LacZ基因的表达盒。
将回收片段与预先用PI-Sce Ⅰ/I-Ceu酶切的Adeno-X Viral DNA采用快速连接体系连接。
将连接产物用Swa Ⅰ酶切,以去除腺病毒骨架质粒自身环化和酶切不完全所引起不携带LacZ基因片段的质粒。
将Swa Ⅰ酶切后的产物用酚/氯仿抽提,纯化连接产物。
将纯化后的连接产物转化感受态DH5α,将其铺于含氨苄青霉素(100 μg/ml)的LB平板上37 ℃倒置培养24 h。
挑选菌落扩增,采用碱裂解法小量抽提质粒,用PCR方法和PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ酶切鉴定重组质粒是否携带有LacZ基因表达盒。
若携带有LacZ基因表达盒的重组腺病毒质粒采用PCR扩增后则出现一特异性312 bp片段,采用PI-Sce Ⅰ/I-Ceu Ⅰ双酶切后会出现一4.6 kb的片段。
1.5 Lipofectamine 2000介导pAdeno-X-LacZ转染AD293细胞取20 μg pAdeno-X-LacZ用Pac 酶切37 ℃过夜,采用酚/氯仿抽提酶切片段,乙醇沉淀,高压三蒸水溶解,加50 μl Lipofectamine 2000脂质体,室温30 min,置4 ℃保存备用。
AD293细胞培养于25 cm2塑料培养瓶,待60%融合时,进行转染。
弃培养液,用PBS洗1次,加4 ml 10%FCS.DMEM培养液,加入预先准备好的DNA/脂质体复合物至培养瓶中,每3 d换培养液1次,观察细胞病变情况,至AD293细胞80%出现病变时收集细胞,37 ℃/-80 ℃反复冻融3次,12 000 g离心10 min,收集上清。
1.6 重组腺病毒的扩增、纯化及滴度测定[14]取原代重组腺病毒上清,反复感染AD293细胞,37 ℃ 5% CO2培养箱中培养,镜下观察到出现95%~100%病变时,收集细胞,以5 000 g 离心,弃上清,沉淀重悬于适量PBS中,在37 ℃/-80 ℃反复冻融3次,以12 000 g离心收集上清,按照文献方法对重组腺病毒上清进行CsCl密度梯度离心纯化[14],并将纯化后的腺病毒在透析液中(10 mmol/L Tris・HCl,1 mmol/L MgCl2,10%甘油)4 ℃透析2次,每次24 h。