实验动物基本操作技术PPT课件
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动物实验技术操作训练课件
①因腹壁与腹腔内脏紧贴，作腹壁切口时一定提起腹壁 ，以免伤及腹腔内脏。
②动作轻柔，以免引起损伤性尿闭。 ③注意膀胱插管不要插入过深。
第二十七页，共31页。
2.输尿管插管术(视频)
(1)输尿管插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打 开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
第二十五页，共31页。
六、腹部手术 1.膀胱插管术(视频)
(1)膀胱插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打
开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
②结扎尿道口。
③膀胱底部剪一小口，插入导管，与切口处的膀胱壁结扎固 定。
第二十六页，共31页。
(2)注意事项
2.药品： 25%氨基甲酸乙酯溶液(乌拉坦)
第五页，共31页。
[实验方法]
一、家兔的捉拿与称重
1.家兔的捉拿
右手抓住家兔颈背部皮肤， 轻轻将家兔提起，迅速以左手 托住其臀部，使家兔体重主要 落左掌心上，以免损伤动物颈 部。
图1 正确捉拿家兔
注意点： 家兔一般不咬人，但脚
爪锐利，在挣扎易抓伤捕捉 者，所以捕捉时要特别注意 其四肢。
①于气管一侧小心分离颈总动脉约3cm穿两线备用。 ②远心端结扎、近心端用动脉夹夹紧。 ③用眼科剪与血管呈45℃的角度从远心端开始在向心一侧 剪开管壁的1/3。 ④插管前导管和压力换能器的肝素化。 ⑤插管后结扎固定。
第二十四页，共31页。
(2)注意事项
①分离动脉时不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。 ②颈总动脉剪口不宜过大或过小，过大易于使颈总动脉插断， 过小导管不易插入。 ③动脉导管的插入端要光滑，不能过尖，以防刺破动脉壁， 引起大出血。 ④未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。
②动作轻柔，以免引起损伤性尿闭。 ③注意膀胱插管不要插入过深。
第二十七页，共31页。
2.输尿管插管术(视频)
(1)输尿管插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打 开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
第二十五页，共31页。
六、腹部手术 1.膀胱插管术(视频)
(1)膀胱插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打
开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
②结扎尿道口。
③膀胱底部剪一小口，插入导管，与切口处的膀胱壁结扎固 定。
第二十六页，共31页。
(2)注意事项
2.药品： 25%氨基甲酸乙酯溶液(乌拉坦)
第五页，共31页。
[实验方法]
一、家兔的捉拿与称重
1.家兔的捉拿
右手抓住家兔颈背部皮肤， 轻轻将家兔提起，迅速以左手 托住其臀部，使家兔体重主要 落左掌心上，以免损伤动物颈 部。
图1 正确捉拿家兔
注意点： 家兔一般不咬人，但脚
爪锐利，在挣扎易抓伤捕捉 者，所以捕捉时要特别注意 其四肢。
①于气管一侧小心分离颈总动脉约3cm穿两线备用。 ②远心端结扎、近心端用动脉夹夹紧。 ③用眼科剪与血管呈45℃的角度从远心端开始在向心一侧 剪开管壁的1/3。 ④插管前导管和压力换能器的肝素化。 ⑤插管后结扎固定。
第二十四页，共31页。
(2)注意事项
①分离动脉时不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。 ②颈总动脉剪口不宜过大或过小，过大易于使颈总动脉插断， 过小导管不易插入。 ③动脉导管的插入端要光滑，不能过尖，以防刺破动脉壁， 引起大出血。 ④未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。
第二章 动物实验的基本操作与技术
第二章动物实验的基本操作与技术动物实验方法是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一些基本方法都是共同性的，如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采尿、急救、处死、尸检等，不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法，因此，动物实验基本方法，已成为医学科技工作者必须掌握的一项基本功。
第一节实验动物的抓取固定方法一、小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤（见图2-1之一），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图2-1之二）。
有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
尾静脉注射时，可用小鼠尾静脉注射架固定（图2-2），先根据动物大小选择好合适的固定架，并打开鼠筒盖，手提鼠尾巴，让动物头对准鼠筒口并送入筒内，调节鼠筒长短合适后，露出尾巴，固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。
图2-1 小鼠的抓取固定方法图2-2 小鼠尾静脉注射方法二、大鼠的抓取固定方法大鼠的抓取方法基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指。
抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。
如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。
也可伸开左手之虎口，敏捷地从后一把抓住。
若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活结缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒）。
小鼠的基本实验操作PPT课件
CHENLI
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小鼠的基本实验操作
CHENLI
1
小鼠的基本实验操作
一、实验目的
通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠 的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻 醉、处死。
二、实验动物
KM小鼠4只（2雌2雄）
CHENLI
2
小鼠的基本实验操作
三、操作
1、抓取和固定
2、性别鉴定
雄性：阴囊；生殖器与肛门之间距离长，毛发密 雌性：生殖器与肛门之间距离短，毛发疏（无毛小沟）
•
致死采血量：50～100ml
CHENLI
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兔的一般实验操作
• 5、处死
• 空气栓色法
•
20～40ml空气，急性循环衰竭
• 6、解剖
腹腔：肝脏、胃、肠道、圆小囊、胰腺、脾脏、肾脏、 肾上腺、输尿管、膀胱；卵巢、输卵管、子宫；睾丸、附 睾、输精管。
胸腔：肺、心脏。胸腔纵隔。
颈部：甲状腺。颈部N：迷走、交感、减压N。
• （2）在肾脏下方找到卵巢和子宫角，游离卵巢并摘除 • （3）消毒，缝合 • （4）按上述方法摘除右侧卵巢
CHENLI
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豚鼠和兔的一般实验操作
CHENLI
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豚鼠的一般实验操作
• 1、豚鼠的抓取和固定
• 2、豚鼠的性别鉴定
• 3、注射给药
• （1）皮下注射
•
皮肤松弛部位（如下腹部两侧）
• （2）肌肉注射
胸腔：肺、心脏。
颈部：甲状腺。
头部：开颅取脑。
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兔的一般实验操作
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
CHENLI
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动物实验的基本技术操作方法幻灯片PPT
一、动物实验的常用方法
6．移植法
一般是将动物的器官、组织或细胞进展相 互移植的一种方法。如骨髓移植时，将小 鼠A〔供体〕的骨髓注入到小鼠B的血液中 〔受体〕，很快可见脾结节化〔脾造血〕。 脾结节的数量反响了造血干细胞的多少， 由此可以观察干细胞的变化。动物各种组 织、器官的移植也是实验研究中常用的方 法。
动
物 编
1
234源自5678
9
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号
随
机 数
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54
82
17
37
93
23
目
归 组
B
B
A
B
A
A
B
A
B
B
A
A
A
A
四、实验动物的随机分组方法
结果列入A组的动物有8只，列入B组的动物 有6只。如要使两组相等，须将A组减少一只， 划入B组。应把哪一只小鼠划入B组，仍可用 随机数字表，在上述抄录的14个数后面再抄 录一个数字为78，此数以8除之，因为归入A 组的小鼠有8只，故以8除，得余数6。于是把 第6个A〔即编写为第12号的小鼠〕划给B组。
一、动物实验的常用方法
动物实验方法是多种多样的，在医学的各 个领域内都有其不同的应用，其中一些根 本方法都是共同性的，如动物的选择、抓 取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采 尿、急救、处死、尸检等，不管是从事何 种课题的医学研究都要用这套根本方法， 因此，动物实验根本方法，已成为医学科 技工作者必须掌握的一项根本功。
经过这样调整，两组小鼠的分配如下：
A组 3 5 6 8 11 13 14 B组 1 2 4 12 7 9 10
动物实验技术PPT课件
不同种系的实验动物对相同因素的刺激反 应既有共同性的一面，也存在一些特殊反应， 同样的刺激对一些动物敏感，但对另外一些动 物可能不敏感。因此在实验研究中选用那些有 特殊反应、对实验研究敏感的动物作为实验对 象，也是保证实验成功的重要因素。
38
（三）标准化原则
标准化原则是指动物实验中选择与课题 研究的目的、内容、水平相匹配的标准化 的实验动物。只有选用经微生物、寄生虫 学、遗传学、环境及营养控制的标准化实 验动物，才能排除生物因素、遗传因素、 环境及营养因素对实验结果的干扰。
50
2、购入动物时，应向供应单位及时索取 动物的遗传背景、微生物背景、质量合格 证、动物的年龄、体重等资料。
51
3、购入动物时，无论运输距离的远近，都 应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及 途中污染和窒息死亡等问题。
52
4、购入清洁级以上的动物，应采用带有空 气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒 运输，严格检查其密封状况。
7
动物实验技术：
研究动物实验所需的各种条件、方法、 技术，以保证取得科学的、完整的、先进的实 验结果。
8
动物实验的要求..
1、科学性 2、经济性 3、伦理性
9
科学性要求
标准化的动物 标准化的实验条件 标准化的操作规程
10
经济性要求
动物的选择 实验方法的选择
11
伦理性要求
动物福利 3R原则
12
22
(二) 常用动物外科手术器械
（三）手术器械的消毒 1、煮沸灭菌法、 2、 高压蒸气灭菌法 3、化学药品灭菌法。
23
（四）敷料、手术巾、手术衣、帽、口 罩的消毒
24
五. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行,手术人
38
（三）标准化原则
标准化原则是指动物实验中选择与课题 研究的目的、内容、水平相匹配的标准化 的实验动物。只有选用经微生物、寄生虫 学、遗传学、环境及营养控制的标准化实 验动物，才能排除生物因素、遗传因素、 环境及营养因素对实验结果的干扰。
50
2、购入动物时，应向供应单位及时索取 动物的遗传背景、微生物背景、质量合格 证、动物的年龄、体重等资料。
51
3、购入动物时，无论运输距离的远近，都 应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及 途中污染和窒息死亡等问题。
52
4、购入清洁级以上的动物，应采用带有空 气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒 运输，严格检查其密封状况。
7
动物实验技术：
研究动物实验所需的各种条件、方法、 技术，以保证取得科学的、完整的、先进的实 验结果。
8
动物实验的要求..
1、科学性 2、经济性 3、伦理性
9
科学性要求
标准化的动物 标准化的实验条件 标准化的操作规程
10
经济性要求
动物的选择 实验方法的选择
11
伦理性要求
动物福利 3R原则
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(二) 常用动物外科手术器械
（三）手术器械的消毒 1、煮沸灭菌法、 2、 高压蒸气灭菌法 3、化学药品灭菌法。
23
（四）敷料、手术巾、手术衣、帽、口 罩的消毒
24
五. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行,手术人
动物实验基本操作技术
动物实验基本操作技术1. 什么是动物实验？动物实验，顾名思义，就是用动物来做实验。
这可是个很有争议的话题，有人觉得这是科学进步的必要步骤，有人则认为这样对小动物太不公平。
其实，动物实验在医学、心理学、毒理学等领域都扮演着重要角色，就像是科学界的小伙伴，帮助我们找到很多问题的答案。
它让我们在研发新药、测试产品之前，先看看这些东西对生命的影响。
嘿，谁会愿意拿自己去试验呢，对吧？2. 动物实验的基本操作2.1 准备工作开始实验前，咱们得做好充分的准备工作。
想象一下，你准备去野外露营，得先把帐篷、食物、睡袋全都备齐，动物实验也是一样。
首先，你得了解实验的目的，确保你知道自己要干嘛。
接着，选好实验动物，常见的有小鼠、大鼠、兔子等。
它们可是咱们的实验小明星哦！要确保动物的健康状况良好，毕竟，咱们可不能让小动物们在实验中受苦。
2.2 操作过程好了，准备工作都做好了，咱们就可以开始操作了。
在实验过程中，保持冷静和专注是关键。
比如说，给小动物打针的时候，手一定要稳，不然就像大厨切菜时不小心切到手一样，得不偿失。
此外，注意观察动物的反应，如果它们表现得很不舒服，那可得立即停止实验。
记住，咱们不是要折磨它们，而是要让它们帮助我们获取知识。
3. 实验后的处理3.1 数据记录实验结束后，别急着松一口气，咱们还有一项重要工作——记录数据。
好比你考试后要整理笔记，数据记录能帮助咱们分析实验结果。
确保每一个细节都被记录下来，包括动物的状态、实验条件等等，这些都是今后研究的重要参考。
没有记录，实验就像是没吃过的榴莲，香味全无，完全没办法享受。
3.2 动物的安置最后，咱们得考虑动物的安置问题。
根据实验的性质，有些动物可能需要被安乐死，而有些则可以继续观察一段时间。
无论怎样，处理动物的时候一定要尊重它们。
动物也有生命，它们的价值不仅仅在于实验数据，更在于它们是这个地球上的一部分。
我们得对它们负责，尽量给它们一个体面的归宿。
4. 总结动物实验虽然重要，但这并不意味着我们可以随意对待小动物。
动物实验PPT课件
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注意点： 抓取小鼠时动作要 迅速，要轻 防止被小鼠转过头 咬，抓其颈后皮肤要 多 如果被பைடு நூலகம்，应立即 挤出血液，清水冲洗
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2、性别的判定
未成熟鼠：生殖器发 育不明显，肛门与生 殖器之间的距离来区 分。远——♂、近— —♀。
成年鼠：雄性卧位可 见睾丸，雌性可见腹 部有5对乳头。
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3、小鼠的给药操作
5
1、抓取和固定： 抓取：习惯用右手者，
首先用右手从笼盒内将 小鼠尾中部或基部抓住 (不可抓尾尖)，并提起或 放在左手上。
6
固定
先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉。 7
在鼠向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳 和颈部皮肤。
8
将小鼠置于左手掌心，无名指和小指夹其背部皮
肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
（1）灌胃
左手固定小鼠使其头部向上，右 手持灌胃器。头后仰使口腔与食 道成一直线，将灌胃针沿一侧口 角进针，紧贴咽后壁慢慢插入食 道滑入动物的胃内，进针2/3后灌 生理盐水0.5ml。
注意事项：
抓取老鼠时应是鼠成竖直线
灌胃成功时，所遇阻力较小。若感到阻 力或动物挣扎时，应立即停止进针或将 针拔出，以免损伤或穿破食道以及误入 气管。
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穿刺前，碘伏消毒眼周皮毛，左手固定小鼠，右手穿刺。固 定小鼠的方式如照片所示：应让眼球凸出，这样才能保证在 穿刺时不会使小鼠致盲，同时达到压迫阻止静脉回流的目的。
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事先准备好毛细玻璃管（用手折断，我个人习惯用4厘米长左右的），玻璃管 平端先沿着鼻侧眼角慢慢滑动至眼球正下方的眼皮内，此时左手微微顺时针旋 转，使小鼠头部相对位置微向右下偏转，即相当于玻璃管刺入时是对着口腔方 向的，这样做可进一步避免小鼠失明。如上操作时，右手及毛细管保持不动。 当小鼠头部位置调整妥当时，毛细玻璃管刺入，这个动作应稳且迅速。一般情 况下，即会有血液流出，此时可快速拧搓毛细管，进一步破坏内眦静脉丛，加 26
动物实验基本操作精品PPT课件
22.01.2020
实验动物中心 12
7．生物电、活性观察法 对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观察记录，如心
电、肌电、脑电等； 对动物组织中各种活动物质用生物化学法测定，如各种酶，
激素等。
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实验动物中心 13
8．病理解剖学、组织学观察法
采用肉眼观察、光镜和电镜检查，来观察、分析动物各 种疾病时病理组织学改变。可从组织学的角度来探讨疾 病防治机理，近年来由于电子显微技术的进展，不仅可 以观察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结构的变化，而 且也可以运用电子扫描方法对动物器官的微小结构进行 完整的表层观察。
实验如需长时间观察，可破坏其脑脊髓（观察神经系统反 应时不应破坏脑脊髓）或麻醉后用大头针固定在蛙板上。 依实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。
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实验动物中心 20
（四）豚鼠的抓取固定方法
豚鼠较为胆小易惊，不宜强烈刺激和受惊，所以在抓取时， 必须稳、准和迅速。一般抓取方法是：先用手掌迅速扣住 鼠背，抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部，另一只 手托住臀部。固定的方式基本同大鼠。
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实验动物中心 33
五、实验动物被毛的去除方法
动物的被毛常能影响实验操作和结果的观察，因此实验中 常需去除或剪短动物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和 脱毛三种。
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实验动物中心 34
剪毛：固定动物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛 时需注意以下几点：
⑴把剪刀贴紧皮肤剪，不可用手提起被毛，以免剪破皮肤； ⑵依次剪毛，不要乱剪； ⑶剪下的毛集中放在一个容器内，勿遗留在手术桌和操作
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实验动物中心 15
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第四节 妊娠检查
雌性动物妊娠后会发生一系列的复杂变化。为
了在配种以后能及时掌握雌性动物是否妊娠、妊
娠的时间及胎儿和生殖器官的异常情况，采用临
床和实验室的方法进行检查，称为妊娠检查，又
称妊娠诊断(pregnancy diagnosis)。通过妊娠检查，
可以及时地对雌性动物加强护理或再次配种，以
分组方法：假设所定的点是随机数字表第40行17 列的08，则从08开始，自左到右抄12个随机数字：
动物编号： 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 随机数字：08 27 01 50 15 29 39 39 43 79 69 10
除 3 余数： 2 0 1 2 0 2 0 0 1 1 0 1
动物实验基本操作技术
本章主要内容
实验动物的抓取与固定
性别鉴定
年龄的大致判断
妊娠检查 分组与编号
处死方法
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第一节 实验动物的抓取与固定
一、大、小鼠的抓取固定
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小 鼠 固 定 盒 固 定
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大鼠固定盒固定
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二、豚鼠的抓取固定法
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三、家兔的抓取固定法
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第二节 性别鉴定
一、大、小鼠的性别鉴定
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二、兔的性别鉴定
Female
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Male
9
三、蟾蜍的性别鉴定
雄蟾
婚垫
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雄蟾
雌蟾
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第三节 年龄的大致判断
一、大、小鼠 1. 根据形态鉴定日龄（大、小情况基本一样）
白色家兔趾小基本呈红色，尖端呈白色。1岁家 兔红色与白色长度相等；1岁以下，红多于白；1 岁以上，白多于红。还可根据趾爪的长度与弯曲 度来区别。青年兔趾爪较短，直平，隐在脚毛中， 随年龄的增长，趾爪露出于脚毛之外，而且爪尖 钩曲。另外，家兔皮薄而紧，眼神明亮，行动活 泼的为青年兔；皮厚而松，眼神颓废，行动迟缓 的为老年兔。
随机数字：78 38 69 57 91 0 37 45 66 82 65 41
组 别：乙 乙 甲 甲 甲 乙 甲 甲 乙 乙 甲 甲
现在以随机数字的奇数代表甲组，偶数代表乙 组，则编号为3、4、5、7、8、11、12号分入甲 组，而1、2、6、9、10号分人乙组。因两组数字 不等，继续用随机方法将甲组多余的一只调整给 乙组，从上面最后一随机数字41，接下去抄一个 数为62，以7除之(因甲组原分配7只)得6，即把原 分配在甲组的第6个甲(即11号大鼠)调入乙组。
组别 鼠的编号
A组 3 9 10 12
B组 l 2 4 6
C组 5 7 8 11
对于将动物随机分为四组或更多组原理基本一致
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二、编号标记方法
实验动物分组后，为了区分、观察并记录每个个 体的反应情况，必须给每只动物进行编号标记。
组 别： B C A B C B C C A A C A
调整组别：B
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以3除各随机数字，若余数为l，即该鼠归A组；余 数为2，归人B组；余数为3，归入C组。结果A组为4 只，B组为3只，C组为5只。C组多一只应调入B组。 方法同上。仍采用随机方法；从10后面接着抄，为 61。除以5，余数为1，则将第一个C，即第2号鼠调 入B组。调整后各组鼠的编号如下：
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如果甲组多两个，则接下去抄两个数。分别 以8，7除之，余数即指要调入乙组的第几个甲， 余此类推。最后各组的鼠数就相等了。调整后 各组鼠的编号为：
组别
鼠的编号
甲组 3 4 5 7 8 12
乙组 1 2 6 9 10 11
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(二)当分为三组时
例：设有雄性的SD大鼠12只，按体重大小依次 编为1，2，3，…，12号，试用完全随机的方法， 分为A、B、C三组。
一、随机分组
（一） 当分为二组时
例：设有雄性Wistar大鼠12只，按体重大小依 次编为1，2，3，…，12号，试用完全随机的方法， 分为甲、乙两组。
分组方法：假设所产生的点是随机数字表上第 21行第31列的78，则从78开始，由上向下抄12个 随机数字，如下：
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动物编号： 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
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⑵ 大鼠日龄与体重的对应
日龄/d 体重/g 日龄/d 体重/g
初生 10 20 30
40
6～7 17～25 35～50 55～90 100～150
50
60
70
80
150～210 170～240 210～270 240～320
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二、豚鼠
老年豚鼠牙齿和趾爪长，被毛稀疏无光泽，眼神 呆滞，行动迟缓。年轻豚鼠牙齿短白，爪短软，眼 睛圆亮，行动敏捷，被毛有光泽，且紧贴身体。同 样，也可根据体重来推断大致年龄。同日龄豚鼠， 雌性体重略高于雄性。与大鼠一样，其体重受多种 因素的制约。实验对年龄要求比较严格时，必须由 卡片记录提供准确年龄。
保护母体和胎儿的正常发育，避免胎儿早期死亡
和流产及减少繁育时间的损失。
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妊娠检查方法有
① 外部检查法 ② 摸胎法 ③ 阴道检查法 ④ 直肠检查法 ⑤ 超声波检查法 ⑥ 孕酮含量测定法08.11.2020源自22第五节 分组与编号
动物实验之前，必须对实验动物进行随机分组 和编号标记，这是做好实验和实验记录的前提。
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2. 根据体重鉴定日龄 ⑴ 小鼠日龄与体重的对应
日龄/d 初生 5 10 15 20 25 30 体重/g 1.8 4.0 6.0 11.0 15.0 21.0 21.0
日龄/d 体重/g 日龄/d 体重/g
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初生 7
20
30
60
60～80 100～120 150～200 170～220 240～300
90
120
180
330～400 400～470 520～600
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三、家兔
门齿和爪随年龄增长而增长，是年龄鉴别的重 要标志。青年兔门齿洁白，短小，排列整齐；老 年兔门齿暗黄，厚而长，排列不整齐，有时破损。