实验一蛙坐骨神经
蟾蜍坐骨神经干
注意事项
1.破坏脑脊髓要彻底，防止蟾酥射入操作者眼 中或污染实验标本。 2.操作时避免压挤、损伤和用力牵拉标本，不 可用金属器械触碰神经干。 3.操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液， 防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。 4.标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使 标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
实验原理（三） 神经动作电位传导速度的测定
动作电位在神经干上传导具有一定的 速度蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由许多 粗细不等的有髓和无髓神经纤维构成，其 中以Aɑ类纤维为主，传导速度约为35— 40m/s。
神经冲动的传导速度 （v）是指动作 电位在单位时间（t）内传导的距离（s）
仪器与器械（一）
（1）引导双相神经动作电位
点击“神经干 动作电位的引 导”，引导出 一个双相动作 电位。
（2）观察和测定双相动作电位
① 自动调节刺激强度，观
察动作电位波形的变化。读 出波宽为某一数值时的阈刺 激和最大刺激。
②仔细观察双相动作电位的
波形。读出最大刺激时双相 动作电位上下相的振幅和整 个动作电位持续时间数值。
注意事项
1.制备标本时，神经干应尽可能分离长一些，上自 脊柱附近的主干，下至踝关节附近。分离过程中 勿损伤神经组织，以免影响其兴奋性。
2.将神经干搭在引导电极上时，神经干不能与标本 盒壁相接触，尽量将其拉成水平线，不要下垂或 斜向放置。
3.刺激强度在开始时不要过强，先由弱强度开始， 逐步加大强度，以免剌激伤害神经标本。
4.经常滴加任氏液，保持神经标本湿润。 5.实验完毕神经糟应仔细清洗，擦干，以免残留的
盐液. 神经干动作电位与刺激强度有何关系？ 神经干动作电位符合“全或无”定律吗 ？ 为什么?
感谢聆
蛙坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 了解蛙坐骨神经的解剖结构，掌握坐骨神经的分离方法。
2. 观察坐骨神经的生理特性，了解神经兴奋传导的原理。
3. 掌握电刺激神经的方法，观察神经兴奋传导时的生物电现象。
二、实验原理蛙坐骨神经是人体重要的神经之一，负责下肢的感觉和运动。
坐骨神经兴奋传导过程中，会产生生物电现象，通过电刺激可以观察到神经兴奋传导的特点。
本实验通过分离蛙坐骨神经，观察神经兴奋传导过程，了解神经兴奋传导的原理。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、剪刀、镊子、手术刀、电刺激器、任氏液、培养皿、生理盐水等。
2. 实验仪器：显微镜、放大镜、示波器、刺激器控制台、电极等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将青蛙解剖，取出坐骨神经，用任氏液清洗，备用。
2. 分离坐骨神经：用剪刀和镊子小心分离坐骨神经，注意保护神经纤维的完整性。
3. 制作神经标本：将分离好的坐骨神经固定在培养皿中，用生理盐水浸泡。
4. 观察神经兴奋传导：将电极连接到示波器，调整电极位置，观察神经兴奋传导时的生物电现象。
5. 电刺激神经：调整电刺激器，给予坐骨神经一定强度的电刺激，观察神经兴奋传导情况。
6. 记录实验数据：观察并记录神经兴奋传导的速度、幅度等参数。
五、实验结果与分析1. 观察到坐骨神经在电刺激下，兴奋传导速度快，传导过程中出现明显的生物电现象。
2. 实验结果显示，神经兴奋传导速度与电刺激强度呈正相关，即电刺激强度越大，神经兴奋传导速度越快。
3. 实验结果还显示，神经兴奋传导过程中，生物电幅度随距离的增加而逐渐减小。
六、实验结论1. 本实验成功分离了蛙坐骨神经，观察到了神经兴奋传导的生物电现象。
2. 通过电刺激神经，验证了神经兴奋传导的速度与电刺激强度呈正相关。
3. 本实验有助于加深对神经兴奋传导原理的理解，为生理学研究和临床应用提供实验依据。
七、实验讨论1. 本实验中，神经兴奋传导速度受多种因素影响，如温度、神经纤维的完整性等。
2. 在实验过程中，应注意保护神经纤维的完整性，避免损伤神经。
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备一、目的和原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似，但其离体组织所需的生活条件比较简单，且易于控制，因此在生理学实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。
例如：蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本，可用来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-肌接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象，所以，制备坐骨神经-腓肠肌标本，是生理学实验的一项基本操作技术。
本实验的目的是：学习并掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法，为以后的神经肌肉实验打下基础。
二、实验对象蛙或蟾蜍三、器材和用品蛙板、蛙针、蛙钉、剪刀（2把）、镊子（2把）、玻璃针、锌铜弓、培养皿、滴管、棉线、棉球、尸体盘（以上用品合称蛙类解剖器械一套）及任氏液。
四、方法与步骤1．破坏脑脊髓选一活泼健壮的蛙或蟾蜍，用清水冲洗干净。
左手握蛙，用食指下压吻端，拇指按压背部，使头前俯；右手持蛙针由吻端沿正中线向尾端触划，所触到的凹陷处即是枕骨大孔所在部位。
将蛙针由此垂直刺入皮下，再将针尖折向前方，经枕骨大孔进入颅腔，左右搅动捣毁脑组织（图1-1）。
然后将蛙针退出至刺入点皮下，再将针尖向后插入椎管捣毁脊髓。
图1-12．剪除前部躯干及内脏在骶髂关节以上1厘米处用粗剪刀剪断脊柱，并将前部躯干及所有内脏一并剪去，仅保留一段腰骶部脊柱和后肢。
在所留脊柱的腹侧两旁可看到坐骨神经丛。
剪下的部分置于尸体盘内。
3．剥皮左手捏住脊柱断端，右手捏住断端边缘的皮肤，向下剥掉后肢的全部皮肤，标本置于盛有任氏液的培养皿中待用，皮肤弃去。
洗净双手和器械，以免蛙或蟾蜍皮肤的分泌物损害神经和肌肉。
4．分离两后肢将下肢标本腹侧向上用蛙钉固定于蛙板上，用玻璃针沿脊柱两侧分离两条坐骨神经；在两条坐骨神经下各穿一线，于靠近脊柱处将其分别结扎，并在扎线与脊柱之间剪断神经；左手用结扎线提起坐骨神经，右手持剪刀或玻璃针向下游离，直至坐骨神经出盆腔处；将游离的两条坐骨神经分别置于两侧大腿的肌肉上。
蛙坐骨神经干动作电位实验报告
蛙坐骨神经干动作电位实验报告实验目的：了解蛙坐骨神经干的解剖结构及生理特性，掌握神经肌肉接头的测定方法和技巧，学习蛙坐骨神经干动作电位的记录和分析方法，深入了解神经传导的基本机理。
实验原理：蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织，由大量神经纤维构成，是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
神经冲动引起神经肌肉接头产生动作电位，反映神经冲动的传递情况。
动作电位的测量是研究神经传导机制的重要方法之一。
实验器材：蛙、麻醉器，放大器，隔离器，逆止器，刺激极，探针极，银线，电极膏，实验记录纸等。
实验步骤：1、用适量麻醉剂将蛙麻醉。
2、用剪刀剪去蛙的一部分肌肉，找到大约5毫米左右的坐骨神经干，用银线轻轻固定。
3、将刺激极粘在蛙的大腿部肌肉上，将探针极插入神经干上。
4、将放大器、隔离器、逆止器与刺激极、探针极连接。
5、调整隔离器、逆止器、放大器的参数，使所测波形在记录纸上清晰可见且无噪音干扰。
6、改变刺激极输入电量的大小，记录神经肌肉接头的相应电位。
反复测量并记录数据。
7、根据神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小，计算神经冲动传导的速度。
实验结果：通过实验记录，测量了神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小，计算了神经冲动传导的速度。
根据实验结果，可以得到蛙坐骨神经干的生理特性和传导速度，深入了解神经传导机制的基本机理。
实验总结：通过本次实验，我了解了神经冲动传导的基本机理，掌握了神经肌肉接头测定方法和技巧，学习了神经冲动传导速度的计算方法。
同时，还深刻认识到实验操作的安全性和重要性，要时刻保持实验室的安全和高效运作。
高中生物《蛙的坐骨神经、腓肠肌标本制备及骨骼肌收缩实验》PPT课件
2.观察并记录刺激强度不变时，改变刺激频率引起 肌肉持续收缩的形式—不完全强直或完全强直。
二、实验原理
坐骨神经是由多条神经纤维组成的神经干，神经干中各组成纤维的 兴奋性有所不同。
刚刚引起肌肉收缩所需的刺激强度称为阈刺激强度。 随着刺激强度的增加，坐骨神经干中发生兴奋的纤维数目随之增多，
肌肉收缩的幅度也随之增大。 当神经干中的全部纤维都发生兴奋时，所需的最低刺激强度称为最
大刺激强度。 阈刺激强度至最大刺激强度之间的刺激称为阈上刺激强度。 超过最大强度的刺激，神经所支配肌肉的收缩幅度不再增强。
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激发生一次迅速的收缩 反应，称为单收缩。
两个同等强度的阈上刺激，相继作用于神经肌肉标本， 如果刺激间隔小于单收缩的时程，则出现两个收缩反应 的重叠，称为收缩的总和。
！玻璃针钝性分离 ！忌用金属器械触、夹神经，防止过
度牵拉神经。 ！用任氏液保持神经湿润。
图1-4分离坐骨神经
6 标本的活性检验：
完整的标本应包括四部分：一段脊柱骨、 坐骨神经、 腓肠肌、 一段股骨头。
7.仪器标本连接
1. 将张力换能器固定在铁支架上，肌 肉标本的股骨固定于支架下端，腓 肠肌跟腱的结扎线连于张力换能器 的受力片上，连线应松紧适宜，并 与桌面垂直，张力换能器的输入端 接Medlab系统的1通道插座。
刺激器参数
模式
自动调幅
显示方式
采样参数
记录仪
主周期
2s
采样间隔
1ms
波宽 初幅度 增量
2ms 0V 0.1-0.2V
X轴显示比例 通道
蛙的生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 学习蛙的解剖结构，掌握青蛙坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2. 了解神经和肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征。
3. 掌握蛙心灌流实验方法，观察心脏活动的影响因素。
二、实验原理1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备：蛙的坐骨神经和腓肠肌在生理条件下具有兴奋性和传导性，通过制备坐骨神经-腓肠肌标本，可以观察神经和肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征。
2. 蛙心灌流实验：离体心脏灌流实验是研究心脏生理功能的重要方法，通过改变灌流液的成分，可以观察其对心脏活动的影响，了解心脏的正常节律性活动。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、任氏液、生理盐水、剪刀、手术剪、眼科镊、金属探针、玻璃分针、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、套管夹、65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸。
2. 实验仪器：蛙类解剖台、显微镜、电生理实验系统、刺激器、数据采集系统、蛙心灌流装置。
四、实验方法与步骤1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备：（1）取青蛙一只，用生理盐水冲洗干净，左手握住蛙，使其背部向上。
（2）用眼科镊和剪刀在青蛙的坐骨神经和腓肠肌处剪开，分离出坐骨神经和腓肠肌。
（3）将坐骨神经和腓肠肌置于任氏液中，用玻璃分针轻轻拨动腓肠肌，观察肌肉收缩情况。
2. 蛙心灌流实验：（1）将青蛙的左心耳和左肺静脉用细线结扎，然后剪断，使心脏与体循环分离。
（2）将心脏置于蛙心灌流装置中，连接计算机采集系统和刺激器。
（3）将灌流液（任氏液）通过灌流装置注入心脏，观察心脏搏动情况。
（4）改变灌流液的成分，如加入肾上腺素、乙酰胆碱、乳酸等，观察心脏活动的影响。
五、实验结果与分析1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备成功，腓肠肌在刺激下产生明显的收缩反应。
2. 蛙心灌流实验成功，心脏在灌流液的作用下保持节律性搏动。
蛙的坐骨神经实验报告
蛙的坐骨神经实验报告蛙的坐骨神经实验报告一、引言在生物学研究中，动物模型的使用对于理解生物体结构和功能起着重要的作用。
蛙作为一种常见的实验动物，其神经系统的研究对于人类疾病的治疗和神经科学的发展具有重要意义。
本实验旨在通过研究蛙的坐骨神经，探究其功能和特性。
二、材料与方法1. 实验动物：成年蛙（学名：Rana temporaria）2. 实验器材：手术刀、显微镜、注射器、生理盐水等3. 实验步骤：a. 麻醉蛙：将蛙置于麻醉盒中，使用适量的麻醉剂使其进入麻醉状态。
b. 手术准备：在麻醉后，将蛙固定在实验台上，清洁手术区域。
c. 手术操作：使用手术刀小心地切开蛙的皮肤和肌肉，暴露出坐骨神经。
d. 神经刺激：使用注射器中的生理盐水，以适当的电流刺激坐骨神经，观察蛙的反应。
e. 数据记录：记录不同电流强度下蛙的反应情况，包括肌肉收缩、蛙腿的运动等。
f. 结束实验：将蛙的伤口缝合，放回饲养箱中恢复。
三、结果与讨论1. 坐骨神经的位置和特点：通过手术操作，我们成功地暴露出了蛙的坐骨神经。
坐骨神经位于蛙的后肢内侧，与股骨平行且相对较深。
它是一条粗大的神经，负责传递感觉和运动信号。
2. 坐骨神经的刺激效果：在实验中，我们使用不同强度的电流刺激坐骨神经，并观察蛙的反应。
随着电流强度的增加，蛙的肌肉逐渐收缩，蛙腿也会出现运动。
这表明坐骨神经对于蛙的运动功能起着重要作用。
3. 坐骨神经的功能：坐骨神经是蛙的主要运动神经之一，它与蛙的肌肉直接相连，并负责传递运动指令。
通过刺激坐骨神经，我们可以观察到蛙的肌肉收缩和蛙腿的运动，这进一步证实了坐骨神经在蛙的运动中的重要性。
4. 坐骨神经的临床意义：蛙的神经系统与人类的神经系统在结构和功能上有许多相似之处。
通过研究蛙的坐骨神经，我们可以更好地理解人类神经系统的运作机制。
此外，坐骨神经的研究还有助于揭示一些神经系统疾病的发病机制，并为相关疾病的治疗提供新的思路和方法。
四、结论通过本实验，我们成功地研究了蛙的坐骨神经，并观察到了其在蛙的运动中的重要作用。
牛蛙坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 观察牛蛙坐骨神经干的结构特点。
2. 学习神经传导的基本原理和实验方法。
3. 了解神经兴奋传导过程中动作电位的变化规律。
4. 掌握神经生理学实验的基本操作技术。
二、实验原理牛蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织，由大量神经纤维构成，是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
在实验中，通过观察牛蛙坐骨神经干在兴奋传导过程中的动作电位变化，可以了解神经传导的基本原理和规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：牛蛙一只，任氏液，生理盐水，细线，剪刀，手术刀，眼科镊，玻璃分针，蛙板，蛙钉，培养皿，滴管，电子刺激器。
2. 实验仪器：生物显微镜，神经生理实验装置，记录仪，示波器。
四、实验步骤1. 准备工作：将牛蛙处死，置于生理盐水中浸泡，使其肌肉松弛。
将牛蛙背部朝上，用剪刀剪开皮肤，暴露坐骨神经干。
2. 制备标本：用眼科剪和眼科镊小心地分离坐骨神经干，将其固定在蛙板上。
用生理盐水清洗坐骨神经干，去除杂质。
3. 连接仪器：将牛蛙坐骨神经干与神经生理实验装置连接，确保连接牢固。
将记录仪和示波器连接到实验装置上。
4. 观察动作电位：调整刺激器的参数，对坐骨神经干进行电刺激。
观察示波器上动作电位的变化，记录动作电位波形。
5. 重复实验：改变刺激强度和频率，重复实验，观察动作电位的变化规律。
6. 数据处理：将实验数据记录在表格中，分析动作电位的变化规律。
五、实验结果与分析1. 观察到牛蛙坐骨神经干的结构特点，包括神经纤维、神经膜和神经髓鞘等。
2. 在实验过程中，随着刺激强度的增加，动作电位幅度逐渐增大；随着刺激频率的增加，动作电位潜伏期逐渐缩短。
3. 当刺激强度达到一定值时，动作电位幅度达到最大，此时称为阈刺激强度。
在此强度以下，动作电位幅度逐渐增大；在此强度以上，动作电位幅度保持不变。
4. 随着刺激频率的增加，动作电位潜伏期逐渐缩短，说明神经传导速度与刺激频率有关。
蛙体神经实验报告
一、实验目的1. 熟悉蛙类神经系统的基本结构。
2. 学习蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制作方法。
3. 观察神经兴奋传导现象，测量神经传导速度。
4. 探讨神经兴奋传导的生理机制。
二、实验原理蛙类神经系统主要由中枢神经系统和周围神经系统组成。
中枢神经系统包括大脑和脊髓，周围神经系统包括脑神经和脊神经。
坐骨神经是脊神经的一部分，负责下肢的运动和感觉。
在实验中，通过刺激坐骨神经，观察腓肠肌的收缩反应，可以了解神经兴奋传导的过程。
神经兴奋传导速度是衡量神经传导功能的重要指标。
三、实验材料1. 实验动物：健康青蛙一只。
2. 实验器材：蛙板、蛙钉、手术剪、组织剪、眼科剪、镊子、探针、玻璃分针、细线、培养皿、滴管、电子刺激器、生理盐水、任氏液。
3. 实验药品：生理盐水、任氏液。
四、实验步骤1. 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制作- 将青蛙用蛙钉固定在蛙板上。
- 用手术剪剪开青蛙的皮肤，暴露坐骨神经。
- 在坐骨神经上方用组织剪剪一小段，并使用细线结扎。
- 在结扎线以下用眼科剪剪断坐骨神经，并使用细线结扎。
- 在腓肠肌上做一个切口，暴露肌肉组织。
- 将坐骨神经和腓肠肌用任氏液浸泡，保持湿润。
2. 神经兴奋传导实验- 将电子刺激器连接到坐骨神经上。
- 设置刺激参数，进行刺激。
- 观察腓肠肌的收缩反应。
- 记录刺激频率和腓肠肌收缩时间。
3. 神经传导速度测量- 在坐骨神经上设置刺激点A和B。
- 在腓肠肌上设置收缩反应点C。
- 使用电子刺激器分别刺激A点和B点。
- 记录A点和B点刺激时间以及C点收缩反应时间。
- 根据A、B、C三点间的距离和刺激时间，计算神经传导速度。
五、实验结果1. 观察到在刺激坐骨神经后，腓肠肌发生收缩反应。
2. 记录到的刺激频率和腓肠肌收缩时间如下：| 刺激频率（Hz） | 收缩时间（s） || -------------- | ------------ || 1 | 0.1 || 5 | 0.05 || 10 | 0.02 |3. 根据实验数据，计算神经传导速度如下：| 刺激频率（Hz） | 传导速度（m/s） || -------------- | -------------- || 1 | 0.1 || 5 | 0.5 || 10 | 1.0 |六、实验分析1. 观察到在刺激坐骨神经后，腓肠肌发生收缩反应，说明神经兴奋传导是有效的。
蛙坐骨神经腓肠肌标本制备、生物电现象的观察
实验一蛙坐骨神经腓肠肌标本制备[目的] 熟悉蛙(或蟾蜍) 的坐骨神经腓肠肌标本的制备方法，初步掌握几项基本实验操作。
[原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相类似，而其组织在离体状态下，易于控制和掌握，所以蛙类的神经一肌肉标本常用以研究兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律和特性。
[实验动物] 蛙(或蟾蜍)[器材及药品] 解剖器械，锌铜弓，培养皿，烧杯，任氏液，棉花，线。
[方法及步骤]1．破坏脑脊髓：取蛙或蟾蜍一只，用蛙针从枕骨大孔垂直插入，向前伸人颅腔，捣毁脑髓；向后插入椎管，捣毁脊髓。
如果蛙处于瘫痪状态，表示脑和脊髓完全破坏。
然后沿两侧腹部将蛙横断为上下两半。
并将前半段弃去，保留后半段备用。
2．剥离皮肤：先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤，然后从脊柱的断端撕下皮肤，将其全部剥去，直至趾端。
除去内脏，将标本放在滴有任氏液的蛙玻璃板上。
将手及使用过的解剖器械洗净。
3．分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本匀称地剪成左右两半，一半浸入盛有任氏液的烧杯中备用，另一半作进一步剥制。
4．分离坐骨神经：在大腿背侧的半膜肌与股二头肌之间用玻璃分针分离出坐骨神经。
注意：分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支，向上分离至基部，向下分离到腘窝。
保留与坐骨神经相连的一小块脊柱，将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上；去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉，刮净股骨上附着的肌肉，保留的部分就是坐骨神经及股骨。
5．分离腓肠肌：在跟键上扎一线，提起结线，剪断结线后的跟腱，腓肠肌即可分离出来。
此时在膝关节下方将其他所有组织全部剪去，到此为止，带有股骨的坐骨神经腓肠肌标本制备完成。
6.标本的检验：将坐骨神经腓肠肌标本放置在蛙玻璃板上，用锌铜弓刺激坐骨神经，若腓肠肌迅速发生收缩反应，说明标本机能良好，制备成功。
应及时移放入盛有任氏液的培养皿中，供实验之用。
[注意事项]1．剥制标本时，切忌用金属器械牵拉或触碰神经干。
2. 分离肌肉时应按层次剪切。
蛙的实验
实验一坐骨神经腓肠肌标本制备目的学习坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
原理两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，而其离体组织所需要的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的神经肌肉标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及骨骼肌收缩的特点等。
实验对象蟾蜍实验用品蛙类手术器械、烧杯、培养皿、棉球、纱布、细丝线、任氏液、粗剪刀、蛙板等。
实验步骤1.破坏脑和脊髓左手持蛙，用食指压其头部前端，使头前俯。
右手持探针由头端沿正中线向后划，触到凹陷即为枕骨大孔，将探针由此垂直刺入。
再将探针折向前方，插入颅腔内并左右搅动捣毁脑组织。
再将探针退回至进针处，针尖转向后方，刺入椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢瘫软，表明脑脊髓已完全破坏。
2.剪除躯干上部及内脏用粗剪刀在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱。
左手握住后肢，右手持剪刀沿脊柱的断口向下剪开两侧的皮肤及肌肉，再剪除已下垂的躯干上部及内脏。
3.剥皮剪掉肛门周围的皮肤，左手捏脊柱断端（勿触碰神经），右手捏住断端边缘的皮肤，向下剥掉两后肢皮肤。
将标本背位放于表面有少许任氏液的蛙板上，洗净双手及用过的器械。
4.游离坐骨神经沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经，用线在坐骨神经靠近脊柱处结扎并剪断。
左手捏住脊柱，右手持剪刀从背面剪去向上突出的尾骨。
然后从腹面沿中线将脊柱剪成两半。
捏住两侧下肢带骨用力向两侧掰，使耻骨联合处脱臼，再从耻骨联合中央剪开两后肢，一后肢放入盛有任氏液的平皿中备用，一后肢用玻璃分针划开梨状肌及其附近的结缔组织，循坐骨神经沟（股二头肌与半膜肌之间的裂隙处）找出坐骨神经的大腿部分，用玻璃分针将腹部的坐骨神经小心勾出来，手执结扎神经的线，剪断坐骨神经的所有分支，一直游离至膝关节。
5.完成坐骨神经腓肠肌标本的制备将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上，在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉，并用普通剪刀将股骨刮干净，在股骨中部剪去`上段股骨。
再在跟腱处以线结扎，剪断并游离腓肠肌至膝关节处，在膝关节以下将小腿其余部分剪掉。
蛙类坐骨神经实验报告
蛙类坐骨神经实验报告蛙类坐骨神经实验报告蛙类是生物学研究中常用的实验动物之一，其神经系统结构与人类相似，因此被广泛用于神经学研究。
本次实验旨在通过刺激蛙类的坐骨神经，观察和分析其对肌肉运动的控制作用。
实验材料和方法：本次实验使用的是雄性蛙，选择雄性蛙是因为其坐骨神经较雌性蛙更为发达，更容易进行观察和分析。
实验所需的材料包括蛙类、电极、电刺激器等。
首先，将蛙类放置在实验台上，确保其处于安静和舒适的状态。
然后，使用无菌的针头将蛙类的皮肤切开，暴露出坐骨神经。
接下来，将电极插入到坐骨神经中，确保电极与神经的接触良好。
最后，通过电刺激器对坐骨神经进行刺激，观察蛙类的肌肉反应。
实验结果：在实验过程中，我们发现当坐骨神经受到电刺激时，蛙类的肌肉会出现明显的收缩和运动。
这一现象表明坐骨神经对蛙类的肌肉运动起着重要的调控作用。
进一步观察发现，不同电刺激强度和频率对蛙类肌肉运动产生不同的影响。
当电刺激强度较低时，蛙类的肌肉出现轻微的收缩；而当电刺激强度较高时，蛙类的肌肉则出现明显的强烈收缩。
此外，电刺激的频率也对肌肉运动产生影响，较低的频率下，肌肉收缩的幅度较小，而较高的频率下，肌肉收缩的幅度明显增加。
讨论和结论：通过本次实验，我们可以得出结论：蛙类的坐骨神经对其肌肉运动起着重要的调控作用。
电刺激坐骨神经可以引起蛙类肌肉的收缩和运动，而电刺激的强度和频率对肌肉运动产生不同的影响。
这一实验结果对于进一步研究神经系统的功能和调控机制具有重要意义。
通过深入了解坐骨神经的作用和调控机制，我们可以更好地理解神经系统的功能和疾病发生的机理，为神经疾病的治疗和预防提供理论基础。
然而，需要注意的是，本实验只是初步探索了蛙类坐骨神经的功能，还需要进一步的研究来深入了解其机制。
此外，由于蛙类与人类的神经系统存在一定的差异，因此在将实验结果应用于人类研究时需要谨慎。
总之，本次实验通过刺激蛙类的坐骨神经，观察和分析了其对肌肉运动的调控作用。
实验1坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑
实验1 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑脊髓的方法，掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术、获得兴奋性良好的标本。
【实验原理】蟾蜍及蛙类的一些基本生命活动与哺乳动物相似，又因其离体组织在短时间内所需的生活条件简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观察兴奋和兴奋性、刺激与反应及肌肉收缩等基本生理现象。
因而制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验中必须掌握的一项基本技能。
【实验对象】蟾蜍或青蛙。
【实验用品】蛙类手术器械一套，（普通剪刀、手术剪刀、眼科剪、组织镊子、眼科镊子、探针、锌铜弓、玻璃分针、蛙板、玻璃板、蛙钉）任氏液、方瓷盘、培养皿、棉线、纱布、滴管等。
【实验步骤】1.破坏脑和脊髓取蟾蜍一只，用左手握住蟾蜍，食指按压头部前端，拇指按压背部，使头部前俯；右手持金属探针由头端沿中线向尾方划触、触及凹陷处即枕骨大孔的所在。
将探针由凹陷处垂直刺入2~3mm，刺破皮肤即入枕骨大孔，这时将探针尖端水平转向头方，向前探入颅腔内，然后向各方搅动探针，以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后，将探针退出；再由枕骨大孔刺入，并水平转向尾方，与脊髓平行刺入椎管，来回抽动探针以彻底破坏脊髓。
当动物四肢肌肉的紧张性完全消失时，提示脑和脊髓完全破坏（见图2-1）。
2.剪除躯干上部及内脏在骶髂关节水平以上1～1.5cm处剪断脊柱。
左手握止蟾蜍后肢、用拇指压止骶骨，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持普通剪刀（严禁用手术剪剪骨骼），沿脊柱两侧剪除一切内脏及头胸部，留下后肢、骶骨、脊柱以及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经。
剪除过程中注意勿损伤坐骨神经。
3.剥皮左手握紧脊柱断端（注意不要握住或压迫神经），右手捏住其上的皮肤边缘、用力向下剥掉全部后肢的皮肤（图2-2 ）4.清洗把剥皮后的标本放在盛有任氏液的培养皿中。
将手及用过的剪刀、镊子等全部手术器械洗净，再继续下面步骤。
注意剥皮后的标本不能用自来水冲洗。
5.分离两腿用镊子夹住脊柱标本背面朝上，剪去向上突起的尾骨（注意勿损伤坐骨神经）。
生理学实验1--蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备
本制备
2021/6/71来自【实验目的】1.学习生理学实验基本的组织分离技术；
2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经---腓肠肌标 本的方法；
2021/6/7
2
【实验原理】
蛙类的一些基本生理活动规律与恒温动
物相似，而维持其离体组织正常活动所需的
理化条件比较简单，易于建立和控制。因此，
2021/6/7
图1-410
（2） 完成坐骨神经小腿标本 将游离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上，在膝
关节周围剪掉全部大腿肌肉，并用普通剪刀 将股骨刮干净，然后在股骨中部剪去上段股 骨（保留足够的股骨断端，用于固定） ，保 留的部分就是坐骨神经小腿标本。
2021/6/7
11
（3） 完成坐骨神经腓肠肌标本 将上述坐骨神经小腿标本在跟腱处穿线结扎
2021/6/7
4
【实验方法】
1.破坏脑和脊髓
取蟾蜍一只，用自来水冲洗干净。左手握住
蟾蜍，用食指按压其头部前端，拇指按压背 部，右手持探针由枕骨大孔垂直刺入椎管。 然后探针改向前刺入颅腔，左右搅动充分捣 毁脑组织。然后将探针抽回至进针处，再向 后刺入脊椎管，反复抽插捣毁脊髓（图1-1）。 此时如蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表明脑和 脊髓已完全破坏，否则应按上法反复进行。
在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标
本来观察兴奋与兴奋性、刺激与肌肉收缩等
基本生理现象和过程。故制备坐骨神经腓肠
肌标本是生理实验中必须掌握的一项基本技
能。
2021/6/7
3
【实验对象】
蟾蜍或蛙
【实验器材和药品】
蛙板、普通剪刀、手术剪、镊子、探针、 玻璃分针、蛙钉、滴管、培养皿、锌铜 弓、任氏液。
观察蛙的坐骨神经实训报告
一、实验目的1. 了解蛙的坐骨神经的解剖结构和生理功能。
2. 掌握坐骨神经标本的制备方法。
3. 观察坐骨神经的兴奋传导过程和肌肉收缩现象。
4. 理解神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的生理机制。
二、实验原理坐骨神经是人体最粗大的神经，起源于脊髓腰骶段的神经根，负责下肢的感觉和运动。
在实验中，通过电刺激坐骨神经，可以观察到神经纤维的兴奋传导和肌肉的收缩反应，从而了解神经-肌肉兴奋传导的生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蛙或蟾蜍、任氏液、剪刀、镊子、手术刀、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、双凹夹、滤纸片等。
2. 实验仪器：坐骨神经-腓肠肌标本屏蔽盒、带电极的接线和用棉花做成的引导电极、计算机生物信号采集处理系统、普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、双凹夹、培养皿、滤纸片。
四、实验步骤1. 坐骨神经-腓肠肌标本的制备- 将蛙或蟾蜍放入装有任氏液的培养皿中，使其适应环境。
- 在蛙板上固定蛙，用剪刀剪开皮肤，暴露坐骨神经和腓肠肌。
- 用镊子分离坐骨神经和腓肠肌，注意保护神经和肌肉的完整性。
- 将坐骨神经和腓肠肌放入标本屏蔽盒中，用任氏液浸泡。
2. 观察坐骨神经的兴奋传导- 将引导电极插入坐骨神经，另一电极置于腓肠肌上。
- 打开计算机生物信号采集处理系统，观察坐骨神经的兴奋传导过程。
- 通过改变刺激强度和频率，观察坐骨神经兴奋传导的特性。
3. 观察肌肉收缩现象- 在腓肠肌上施加电刺激，观察肌肉的收缩反应。
- 通过改变刺激强度和频率，观察肌肉收缩的特性。
4. 观察神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的相互关系- 在坐骨神经上施加电刺激，观察腓肠肌的收缩反应。
- 通过改变刺激强度和频率，观察神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的相互关系。
五、实验结果与分析1. 坐骨神经的兴奋传导- 观察到坐骨神经的兴奋传导具有双向传导性，即电刺激从一端传入，另一端也能观察到兴奋传导。
蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备实验
知识回顾 Knowledge Review
祝您成功！
三、实验步骤： 1.破坏脑脊髓：左手握蟾蜍，食指下压吻端，拇指按压背 部，其余三指紧贴腹部。找到枕骨大孔刺入1-2mm，分别 捣损脑组织和脊髓（脑和脊髓完全破坏的标志是：呼吸停 止，四肢松软并处于对称位置）
2.减除躯干上部及内脏：在骶髂关节水平上2cm 处剪断脊柱，去除头、前肢和内脏，保留部分脊 柱和下肢。用任氏液小心冲洗坐骨神经及其周围 组织上的血液。
腓肠肌向上将标本固定于蛙板上由脊柱仔细将坐骨神经分离至膝关节处并在脊柱旁结扎
设计性试验：
蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备
一、实验目的： 1. 学习蛙类动物单毁髓与双毁髓方法，并掌握坐 骨神经-腓肠肌标本的制备方法。 2、学习并掌握蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备方 法
二、实验材料： 实验动物：牛蛙 实验器材：常用手术器械，蜡盘，蛙板，固定针， 锌铜弓，培养皿，滴管，粗棉线，任氏液，纱布
3.剥皮：剪去尾骨，剥去余下组织的皮肤，沿脊 柱正中到耻骨联合将标本剪开，标本放到盛有任 氏液的烧杯中。
4.有利坐骨神经：腓肠肌向上将标本固定于 蛙板上，由脊柱仔细将坐骨神经分离至膝关 节处，并在脊柱旁结扎。
5.制作成坐骨神经-腓肠肌标本：剪断膝关节 周围所有大腿肌肉，剪断股骨（保留约1cm）， 在跟腱处结扎并剪断腓肠肌，将膝关节以下 小腿部分全部剪除，剩下即为坐骨神经—腓 肠肌标本。
蛙的坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 了解蛙的坐骨神经结构及其在生理学实验中的应用。
2. 掌握蛙坐骨神经标本的制备方法。
3. 观察坐骨神经的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点。
二、实验原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，而其离体组织生活条件易于掌握，在任氏液的浸润下，神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。
因此，在生理学实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经腓肠肌离体标本来观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点等。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：牛蛙2. 实验器材：手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙板、固定针、滴管、培养皿、玻璃分针、锌铜弓、污物缸、粗棉线、任氏液四、实验步骤1. 准备蛙坐骨神经标本：取牛蛙一只，用自来水冲洗干净。
左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯。
右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管，然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针捣毁脑组织。
接着将探针退到枕骨大孔，不拔出而是将其尖转向后插入脊柱管中捣毁脊髓。
2. 剪除上肢和内脏：在骶髂关节上0.5～1.0cm处用粗剪刀剪断脊柱。
用镊子夹住后端脊柱，以剪刀沿脊柱两侧剪除所有内脏及头胸部，留下后肢、骶骨、后端脊柱及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经。
3. 剥皮：左手用镊子或直接用手捏住脊柱断端（注意不要压迫神经），右手用手术剪剪除脊柱两侧的皮肤和肌肉，露出坐骨神经。
4. 制备坐骨神经标本：将坐骨神经从脊柱上剥离，用手术剪剪成约1cm长的标本。
5. 观察坐骨神经的兴奋性：用玻璃分针轻轻触碰坐骨神经标本，观察是否有肌肉收缩现象。
6. 观察兴奋过程：用玻璃分针轻轻触碰坐骨神经标本，观察肌肉收缩的持续时间。
7. 观察骨骼肌收缩特点：用玻璃分针轻轻触碰坐骨神经标本，观察肌肉收缩的幅度和速度。
五、实验结果与分析1. 观察到坐骨神经标本在触碰后会出现肌肉收缩现象，说明坐骨神经具有兴奋性。
2. 观察到肌肉收缩的持续时间较长，说明坐骨神经的兴奋过程较为持久。
实验1 蛙坐骨神经–腓肠肌标本制备、1
实验1 蛙坐骨神经–腓肠肌标本制备、刺激频率对肌肉收缩的影响【目的要求】1.学习坐骨神经–腓肠肌标本的制备方法。
2.分析探讨刺激频率对肌肉收缩的影响。
【原理】刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。
在其他条件不变情况下，不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。
若刺激频率较小，两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间（即单收缩）时，肌肉收缩表现为一连串的单收缩；若增大刺激频率，使两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩的收缩期时间，而小于单收缩时，肌肉呈现不完全强直收缩；若继续增加刺激频率，使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间，肌肉则表现出完全强直收缩。
【器材】蟾蜍或蛙；任氏液；二道生理记录仪、双脉冲刺激器、肌槽、常规手术器械、玻璃分针、毁髓针、锌铜弓、解剖盘、烧杯、滴灌、任氏液等。
【步骤】1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 了解坐骨神经的解剖结构，掌握坐骨神经的走行路径。
2. 观察坐骨神经的生理特性，学习神经传导的基本原理。
3. 掌握坐骨神经的实验操作方法，提高实验技能。
二、实验原理坐骨神经是人体最长的一对神经，起始于骶丛，向下延伸至下肢，支配下肢的肌肉运动和皮肤感觉。
本实验通过解剖坐骨神经，观察其结构，了解其走行路径；通过电生理实验，观察坐骨神经的生理特性，学习神经传导的基本原理。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、解剖器械、生理盐水、任氏液、电生理刺激器等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、电极等。
四、实验步骤1. 解剖坐骨神经（1）将青蛙置于解剖盘中，用解剖显微镜观察坐骨神经的走行路径。
（2）沿坐骨神经走行方向，用手术刀在青蛙背部切开皮肤，暴露坐骨神经。
（3）用剪刀和镊子分离坐骨神经，观察其颜色、质地和分支情况。
2. 电生理实验（1）将青蛙的坐骨神经与电极连接，确保连接牢固。
（2）设置电生理刺激器，调节刺激参数。
（3）观察坐骨神经的生理特性，包括动作电位的产生、传导速度等。
（4）分析实验结果，总结坐骨神经的生理特性。
五、实验结果与分析1. 坐骨神经解剖本实验成功解剖出青蛙的坐骨神经，观察其走行路径、颜色、质地和分支情况。
坐骨神经起始于骶丛，向下延伸至下肢，支配下肢的肌肉运动和皮肤感觉。
2. 电生理实验（1）动作电位：在电生理实验中，当给予坐骨神经一定强度的刺激时，可以观察到动作电位的产生。
动作电位是神经传导的基本单位，其产生与神经细胞膜电位的变化有关。
（2）传导速度：本实验测得坐骨神经的传导速度为（数值）m/s。
传导速度是神经传导的一个重要指标，与神经纤维的类型、直径、髓鞘厚度等因素有关。
六、实验结论1. 本实验成功解剖出青蛙的坐骨神经，观察其走行路径、颜色、质地和分支情况。
2. 通过电生理实验，观察了坐骨神经的生理特性，包括动作电位的产生和传导速度。
3. 本实验验证了坐骨神经的解剖结构和生理特性，为神经生物学研究提供了实验依据。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
9
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 观察（observations) 观察（ • 检查标本的兴奋性 用经任氏液润湿的锌铜弓迅速接触坐骨神经，如腓肠肌 用经任氏液润湿的锌铜弓迅速接触坐骨神经， 发生明显而灵敏的收缩，则表示标本的兴奋性良好， 发生明显而灵敏的收缩，则表示标本的兴奋性良好，即 可将标本放在盛有任氏液的培养皿中备用。 可将标本放在盛有任氏液的培养皿中备用。若无铜锌 弓，可用中等强度单个电脉冲剌激检查标本的兴奋性
2010-12-15
10
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
注意事项 （regard of proceeding）: proceeding）
1.制备神经肌肉标本时，不要过度前拉神经， 1.制备神经肌肉标本时，不要过度前拉神经，在分离神经时只 制备神经肌肉标本时 能用玻璃分针 2.制备标本时应随时滴加任氏液保持神经和肌肉的湿润 2.制备标本时应随时滴加任氏液保持神经和肌肉的湿润 3.在进行股骨处理时 要将股骨留长一些， 在进行股骨处理时， 3.在进行股骨处理时，要将股骨留长一些，以保后续实验顺利进行
2010-12-15
11
蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
基础医学实验教学中心 机能学实验模块制作 制作人：张业
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 实验目的（Objective of experiment） ： 实验目的（
1.掌握离体组织、器官标本制备的基本操作过程，训练学生 掌握离体组织、器官标本制备的基本操作过程， 掌握离体组织 从事实验的基本技能 2.掌握不同的组织、器官离体标本的制备方法 掌握不同的组织、 掌握不同的组织 3.熟悉手术器械准确的使用方法 熟悉手术器械准确的使用方法
• 实验步骤（process of experiment） ： 实验步骤（ experiment） 3．去皮 ． 4．清洗器械 ． 5．分离两腿 ．
2010-12-15
7
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 实验步骤（process of experiment） ： 实验步骤（ experiment） 6．游离坐骨神经 ．
任氏液(Ringer`s solution) 由无机盐和蒸馏水配置而成， 由无机盐和蒸馏水配置而成，每升溶液 6.5g、 0.14g、 0.12g,、 含NaCl 6.5g、KCl 0.14g、CaCl2 0.12g,、 0.20g、 0.01g。 NaHCO3 0.20g、NaH2PO4 0.01g。任氏液的理 化特性与蛙的组织液近似。 化特性与蛙的组织液近似。可用于蛙的组 织、器官润湿和营养
2010-12-15
5
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 实验步骤（process of experiment） ： 实验步骤（ ） 1．破坏脑脊髓 ．
2. 剪除躯干上部及内脏
2010-12-15
6
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
2010-12-15
3
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 材料和方法(materials and methods) ： 材料和方法(
1.实验对象： 实验对象： 实验对象 蟾蜍（ 蟾蜍（toad）或蛙（frog） ）或蛙（ ）
雄蟾
婚垫
2010-12-15
雄蟾
2010-12-15
8
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 实验步骤（process of experiment） ： 实验步骤（ experiment） 7．完成坐骨神经－小腿标本 ．完成坐骨神经－ 8．制备坐骨神经－腓肠肌标本 ．制备坐骨神经－
2010-12-15
2010-12-15
2Байду номын сангаас
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
• 实验原理（principle of experiment）: 实验原理（
• 在教学和科研工作中，常常利用离体组织和器官来研究其生 在教学和科研工作中， 命活动的基本规律以及影响因素。两栖类动物来源丰富， 命活动的基本规律以及影响因素。两栖类动物来源丰富，它 的某些基本生命活动和生理功能与哺乳类动物有相似之处。 的某些基本生命活动和生理功能与哺乳类动物有相似之处。 如将某一组织或器官从动物机体中游离出来， 如将某一组织或器官从动物机体中游离出来，放置于人工环 境中，仍能保持旺盛的生命力。 境中，仍能保持旺盛的生命力。可见两栖类动物的组织或器 官在离体的情况下，其生命活动要求的条件比较低， 官在离体的情况下，其生命活动要求的条件比较低，易于控 制和掌握。因此，组织、 制和掌握。因此，组织、器官离体标本的制备被广泛应用于 机能学实验和部分科学研究中
雌蟾
4
厦门大学医学院基础医学实验教学中心
蛙坐骨神经－ 蛙坐骨神经－腓肠肌标本制备
2.实验药品与器材 实验药品与器材 任氏液，蛙类手术器械一套，培养皿，锌铜弓， 任氏液，蛙类手术器械一套，培养皿，锌铜弓， 玻璃蛙心插管，铁支架，双凹夹，蛙心夹， 玻璃蛙心插管，铁支架，双凹夹，蛙心夹，木 夹，手术线等