病理组织切片制作技术
病理组织切片制作技术
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(二)固定及目的:
应用化学试剂使组织或细胞中的无机 成分和有机成分液(4%甲 固定液是10%福尔马林溶液(4%甲 醛溶液),固定24小时以上。 醛溶液),固定24小时以上。
固定的目的
1、迅速阻止组织、细胞死后变化,防止 自溶与腐败,使之尽量保持生前的状 态与结构。 2、使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等 成分转变为不溶性物质,以保持其原 有状态。 3、使组织内各种物质成分产生不同的折 光率,以便染色后易于鉴别和观察。 4、使组织块硬化,便于制作薄片。
三、脱蜡和染色
(一)、脱蜡 1、二甲苯Ⅰ5-10min 、二甲苯Ⅰ 2、二甲苯Ⅱ1-2min 、二甲苯Ⅱ 3、1:1二甲苯:乙醇(冬天20min) 二甲苯:乙醇(冬天20min) 5min 4、无水乙醇、 95%、80%、 70、 50% 95%、80%、 70、 梯度乙醇每级1 梯度乙醇每级1-2min 5、蒸馏水1-2min 、蒸馏水1
固定的注意事项
1、组织块不宜大,厚度小于5mm,长宽 、组织块不宜大,厚度小于5mm,长宽 也应小于15×15mm。 也应小于15×15mm。 2、固定液与组织块的比例应大于10:1。 、固定液与组织块的比例应大于10: 3、软组织或较大组织块可先经2-3小时固 、软组织或较大组织块可先经2 定后再修整成小块,重新投入新配制 的固定液中继续固定。 4、肠道可在浆膜面贴上一层厚纸,以防 固定组织变形。
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病理组织切片制作技术
实验内容 掌握组织材料的取材、固 定、脱水、透明、包埋、切片、 烤片、脱蜡、染色及封固的基 本操作。
一、取材及固定
(一)取材注意事项: 1、材料新鲜 2、组织块力求小而薄 3、勿使组织块受挤压 4、尽量保持组织的原有形态 5、熟悉取材部位
皮肤组织病理切片技术
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一、V — G法(胶元纤维染色法) 结缔组织含有三种纤维,即胶原纤维、网 状纤维、弹力纤维。胶原纤维在结缔组织中 含量最多,起支持作用,具有一定的韧性和 坚固性,抗拉力强的特点。胶原纤维染色在 病理诊断上主要用于和肌纤维的鉴别。常用 的胶原纤维染色方法为V—G法。 结果: 细胞核蓝黑色或黑色,胶原纤维红色,肌 纤维、细胞浆、红血球呈黄色。
配法:(PH 7.0~7.2)
甲醛 NaH2PO4· 2H2O 或 无水 Na2HPO4· 12H2O 或 无水 蒸馏水 100ml 5.2g 4.0g 16.4g 6.5g 900ml
三、脱水
组织脱水,就是把组织内的水分彻底 除掉,故亦称无水法。无论任何组织都 含有不同程度的水分。一般组织经过固
皮肤组织病理切片技术
一、取材
1、手术取材。 适用于:( 1 )面部、关节部,易出血部位 等;(2)较大、较深的皮疹;(3)结节 和囊肿性皮疹;( 4 )切除治疗和检查, 主要用于小的肿瘤。 2、钻孔取材。(角膜钻孔器)
适用于一般的皮疹取材。
二、固定
固定的作用和目的:
1、可以防止组织溶解及腐败。
2 、使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶 等各种成分沉淀保存下来,保持它原有
透明
切片 染色
切 片 质 量 标 准(100分)
切片完整 没有刀痕 厚薄均匀 附贴适量 平坦无褶 10分 5分 10分(一层细胞) 5分 10分
树胶适量 染色鲜艳 对比清晰 透明度好 片内无污染 无“人工”现象 玻片整洁 标签端正
5分 10分 10分 10分 10分 5分 5分 5分
常 规 染 色
固定的注意事项:
1、组织块必须小而薄。 2、固定液对组织有收缩及硬化作用,亦有 使组织膨胀的作用。
病理组织切片制作
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实验四病理组织切片制作一、实验目的组织切片技术是病理学中不可缺少的一个组成部分。
通过实验,能够使学生了解和掌握病理组织切片的基本方法之一,即石蜡包埋的组织切片法。
二、实验原理根据病变及检查的要求,合理采集病料,经固定、脱水、透明、浸蜡、包埋后进行切片,在进行染色得到结果。
固定是用化学药品把组织原来的结构保存下来,以便观察。
脱水是除去组织中的水分,以利于透明和浸蜡。
组织的透明是便于透蜡包埋。
包埋的是使石蜡透入组织内部,把软组织变为适当硬度的包埋块,以便切成薄片。
最后使用切片机,将包埋块中组织切成薄片。
三、主要仪器及试材已固定好病料,石蜡,手术刀,手术剪,镊子,脱水框,染色缸,梯度脱水酒精和透明剂一套,烘箱,切片机,毛笔,玻片,蛋白甘油,染色架,酒精灯,三角架,大烧杯,温度计,火柴,切片刀,记号笔或铅笔。
四、实验方法与步骤。
(一)固定采取的病理材料必须立即放入10%福尔马林固定液中。
(二)脱水组织经固定后,尚含有多量水分,而水与透明剂苯、石蜡根本不相融合。
必须先把组织中的水分除去。
但脱水剂必须是与水在任何比率下均能混合的液体,脱水剂常兼有硬化组织的作用。
最常用的脱水剂为酒精、丙酮等。
1.酒精沸点78.4℃,为最常用的脱水剂。
脱水能力强,并能使组织硬化,能较好地与二甲苯透明剂相混合。
最终结果表明,只要脱水环节处理好,都会得到好的切片。
脱水的程序为70%一80%一95%一100%。
各级酒精2—4小时,视材料的大小、厚薄而定。
100%酒精有硬化组织的作用,时间不宜太长,一般不超过3小时。
脑组织、脂肪组织或疏松结缔组织,脱水时间要适当延长。
2.丙酮沸点为56℃。
脱水作用比乙醇强,但对组织块的收缩较大,主要用于快速脱水或固定兼脱水。
脱水时间l一3小时左右。
(三)透明透明对组织有脱酒精及透明两种作用。
当组织中全部为透明剂占有时,光线可以透过,组织可呈现不同程度的透明状态,此种现象称为透明,具有这种作用的试剂称为透明剂。
病理组织切片制作技术
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------------------------------------------ 最新资料推荐------------------------------------病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。
即石蜡切片法,冰冻切片法和火棉胶切片法。
以石蜡切片法为代表,切片的基本制作过程是:组织取材固定冲洗脱水透明浸蜡组织包埋组织切片展片附贴切片脱蜡染色脱水染片透明封固。
以上基本过程是互相联系的,任何一环节出现问题,都将使整个切片制作归于失败。
因此应细致、耐心、认真负责,并事先做好计划安排。
一、取材采取病料,要刀剪锐利,剪切时不可挤压,扯拉病料,以防人为损伤。
切取的工具要清洁。
采取病料越新鲜越好,一般不超过死后24小时。
应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。
特殊病料应根据器官的结构特点切取。
管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。
带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。
切取组织块大小,以1.51.50.3厘米为宜,最厚不宜超过0.5厘米。
组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时辨认。
切取后,放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中,并做好标记。
二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死,使细胞中的蛋白质,糖,脂肪等凝固,从而保持与活组织相似的结构状态。
材料取下后,应迅速固定。
固定液数量应为病理组织块的5到20倍。
由于一般把组织块浸入固定液后数小时,固定液渗入组织液的深度只达2至IJ 3厘米。
因此,可以放置冰箱内固定,使组织内酶失去作用,细菌也能停止滋生。
最常用的固定液是10%的福尔马林溶液:使用时,用40%的甲醛饱和水溶液10毫升,加水90毫升配成。
三、冲洗固定后的组织块,应将固定液洗去。
一般均用流水(自来水)冲洗12到24小时左右。
及时冲洗尚有停止固定的作用,防止固定过度,有利于制片染色。
冲洗时如不方便用流水冲洗,也可用较大容器盛装水浸洗,每隔相当时间换水一次。
病理切片制作过程及注意事项
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病理切片制作过程及注意事项简介病理切片是病理学中非常重要的工具,它能够帮助医生做出准确的诊断。
本文将详细介绍病理切片的制作过程以及需要注意的事项。
制作过程步骤1:组织取材•选择适当的组织进行切片制作;•确保组织样本取材的准确性和代表性。
步骤2:固定组织•使用合适的固定剂固定组织样本,如福尔马林;•确保固定时间和固定剂的浓度符合要求。
步骤3:脱水与清洁•将固定的组织放入酒精溶液中进行脱水处理;•清洁组织以去除固定剂和杂质。
步骤4:组织包埋•将脱水的组织置于熔蜡中进行包埋;•确保组织完全包裹,避免产生气泡。
步骤5:切片制作•使用专用的切片机将包埋的组织切成薄片;•控制切片的厚度和形状,确保质量。
步骤6:染色•使用合适的染色剂对切片进行染色,如血液样本使用血液染色剂;•控制染色时间和染色剂的浓度,确保染色效果。
步骤7:封片•将切片放在载片上,使用专用胶水将其封闭;•确保切片和载片的牢固性。
步骤8:质量控制•检查切片的质量,包括切片厚度、染色效果等;•确保切片符合病理学的要求。
注意事项注意事项1:安全•在病理切片制作过程中,要注意使用个人防护装备,如手套、口罩等;•避免接触有害化学物质,如福尔马林。
注意事项2:操作规范•按照病理切片制作的标准操作流程进行,确保结果的准确性;•遵守操作规范,减少操作失误的风险。
注意事项3:仪器维护•定期对切片机等相关仪器进行维护保养;•确保仪器的正常工作状态,减少故障的风险。
注意事项4:质量控制•对制作的病理切片进行质量控制,如切片的厚度、染色的均匀性等;•确保制作出的病理切片符合质量要求。
注意事项5:记录保存•对制作的病理切片进行记录,包括样本信息、制作过程、染色方法等;•妥善保存记录,方便后续查阅和追溯。
结论病理切片的制作过程需要经过多个步骤,每个步骤都需要严格操作和控制。
同时,要注意安全、遵守操作规范、定期维护仪器,并进行质量控制和记录保存。
只有这样,才能制作出高质量的病理切片,为病理学的研究和诊断提供可靠的依据。
组织病理切片制备
![组织病理切片制备](https://img.taocdn.com/s3/m/973713f0970590c69ec3d5bbfd0a79563c1ed439.png)
组织病理切片制备
组织病理切片的制作,首先医生取下组织病理标本,放在10%的中性福尔马林里进行固定,固定完之后标本送到病理科。
小标本需要固定4-6个小时,大标本需要固定6-12个小时,固定完之后由病理医生进行取材。
所谓的取材指把标本取出放在标本盒里,置于全自动脱水机中脱水16个小时处理标本。
处理过程包括组织进行固定、透明、脱水、浸蜡,处理完16个小时之后,病理技师把标本拿到包埋机上进行包埋,把病变组织放在蜡里,包埋成病理蜡块。
蜡块包埋完之后,病理技师把蜡块放在切片机上进行切片,切片大约需要切3-4μm的切片。
切完片子需要捞在病理玻片上,玻片再进行脱蜡,放在二甲苯中需要透明,之后放在全自动染色机中进行染色,再放在封片机里进行封片,这样才能制成病理切片,这个过程一般需要2-3天的时间。
法医学在法医学病理标本处理中的组织切片制作
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法医学在法医学病理标本处理中的组织切片制作答案:法医学在法医学病理标本处理中的组织切片制作是通过将采集的组织样本固定、包埋、切片、染色等步骤,通过显微镜观察细胞结构,从而帮助法医学鉴定案件中的病理变化和死因。
在法医学病理标本处理中的组织切片制作过程中,首先需要采集病理标本,通常是通过活检或尸检获得。
随后,对标本进行固定处理,以保持组织结构的完整性。
然后,将固定后的组织样本进行包埋,即将组织置于蜡块中,使其易于切割。
接下来,使用组织切片机将标本切割成薄片,通常为几微米至几十微米的厚度。
随后,切片进行染色处理,以突出不同的细胞结构和病变特征,便于观察和分析。
通过法医学在法医学病理标本处理中的组织切片制作,法医学家可以通过观察组织切片的细胞结构、细胞核形态、染色质分布等特征,辅助判断病变类型、病理变化和死亡原因。
这对于破解案件真相、保护公共安全、维护司法公正等具有重要的意义。
深入讨论:在法医学病理标本处理中,组织切片制作是法医学鉴定的重要一环。
通过对组织切片的制作,可以帮助法医学家观察病理变化、病变类型、细胞结构等信息,从而为案件的司法鉴定提供客观依据。
不同的染色方法可以突出组织中不同的结构和物质,使得细胞和细胞器在显微镜下更清晰可见。
在实际操作中,法医学家需要严格遵循标本处理的规范和步骤,确保所得到的组织切片质量符合鉴定需求。
特别是在病理判断和诊断方面,组织切片的质量直接影响到法医学鉴定结果的准确性和可靠性。
因此,精细制备和准确染色是关键步骤,需要具备丰富的经验和专业知识。
总的来说,法医学在法医学病理标本处理中的组织切片制作是一项具有挑战性且重要的工作。
通过对病理组织样本的精细处理和观察,可以为法医学鉴定提供关键支持,促进案件的准确处理和司法公正。
病理学中的组织切片技术
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病理学中的组织切片技术病理学是医学领域中非常重要的一个学科,研究人体各个器官和组织的疾病变化及其发生、发展机制。
而组织切片技术是病理学中的基础操作,是为了观察和诊断疾病而必要的步骤之一。
本文将详细介绍组织切片技术的相关知识和方法。
一、组织切片技术的概述组织切片技术是指将人体组织切割成薄片并染色,以便于病理学家观察。
这项技术已经存在了很长时间,并且随着技术的发展和改进,已经成为了诊断和治疗疾病的重要手段之一。
组织切片技术可以被广泛应用于疾病的研究、诊断和治疗中。
二、组织切片技术的步骤组织切片技术的主要步骤包括取样、固定、脱水、包埋、切片和染色。
下面将对这些步骤进行详细的介绍:1. 取样组织切片的第一步是取样,即从人体组织中取出一小块,以便于后续的操作。
取样的方法根据不同的情况会有所不同,比如在手术中取样,就需要根据病变的部位和特点来选择取样点,而在活检中取样,就需要根据患者的症状和体征来确定取样点。
2. 固定取样后,需要用一种方法把组织中的细胞和结构固定住,以便于后续处理。
目前常用的固定剂是福尔马林,它可以迅速把组织中的蛋白质交联,使其不易变性,从而保持组织形态的完整。
3. 脱水在固定后,需要将组织逐渐从水中转移到酒精、乙醇等脱水剂中,以便于把组织中的水去除,使其硬化。
这是组织切片的关键步骤之一,如果脱水不彻底,切出的组织切片会变形或破损。
4. 包埋将脱水的组织置于熔蜡中,使其被包覆在蜡中。
这么做可以保持组织的形态,并使其更易于切割。
5. 切片蜡包埋后,组织需要被切成薄片。
切片可以使用手工或自动切片机完成,手工切片需要技巧和经验,而自动切片机可以更好地保证切片的厚度和质量。
6. 染色切片完成后,需要对组织进行染色,以便于病理学家对其进行观察。
目前常用的染色剂有血液学染色剂、组织学染色剂以及免疫组化染色剂等。
三、组织切片技术的应用组织切片技术在病理学中有广泛的应用,其中包括:1. 诊断和治疗疾病组织切片技术是病理学家进行诊断和治疗疾病的重要手段之一。
病理标本切片技术
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病理标本切片技术病理学作为现代医学的重要组成部分,着重于通过病理学检查以确定疾病诊断及治疗方案。
而病理标本切片技术作为病理学检查中的关键步骤之一,对疾病的诊断及治疗起着不可替代的作用。
一、病理标本切片技术概述病理标本切片技术是将组织样本切割成非常薄的部分,以便进行显微镜检查的过程。
这一过程通常被称为“制片”,其一般包括如下步骤:1.组织预处理:该步骤包括固定、清洗、脱水、透明化等几个关键步骤,目的是使组织样本保持原有形态并易于切割。
2.切片:该步骤使用病理切片机将组织样本切割成具有一定厚度的切片,通常在3~10μm之间。
3.染色:该步骤是为了使组织样本结构更易于识别,通常使用的染色剂有常规的血液学染色剂、免疫组织化学染色剂等。
二、病理标本切片技术的重要性正确的病理标本切片技术可以帮助病理学家准确判断疾病病变的类型、性质及病变程度等。
其重要性主要表现在以下三个方面:1.诊断:病理标本切片技术可以提供病理学家直接观察、评估组织标本,从而给出准确的疾病诊断。
例如,肿瘤和白血病等疾病需要进行病理学检查并使用病理标本切片技术来确诊。
2.治疗:病理标本切片技术还可以对病人进行治疗方案的定制。
例如,通过病理标本切片技术可以判断某种瘤细胞是否对某种药物敏感,从而在治疗中选用更加有效的药物。
3.预后:病理标本切片技术还可以帮助病人对病程进行预测和评估。
例如,在肿瘤的治疗过程中,通过病理标本切片技术可以评估肿瘤对治疗的响应并进行预测,从而评估病人的预后。
三、病理标本切片技术中存在的挑战与未来发展方向病理标本切片技术虽然在现代医学中发挥了不可替代的作用,但其在实践中仍然存在一些挑战:1.样本收集限制:某些类型的病理标本很难取得,例如甲状腺和胰腺的病理标本。
2.自动化技术发展不足:虽然近年来出现了许多自动化切片仪器,但其切片精度和效率仍然需要进一步提高。
未来病理标本切片技术的发展方向主要包括:1.数字化技术:该技术可以将制片过程中得到的显微镜图像数字化,实现对图像的分析和存储。
组织病理切片制作流程(完整版)
![组织病理切片制作流程(完整版)](https://img.taocdn.com/s3/m/f39e582abb68a98271fefa86.png)
组织病理切片的制作流程1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下:(1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
(2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3 ~0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。
(3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4)规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5)选好组织块的切面:根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。
纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6)保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。
(7)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
2.固定(1)小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体或动物体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4~20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。
故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。
病理组织切片制作技术PPT课件
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• 病理组织切片制作技术概述 • 样本的收集与处理 • 组织切片的制备 • 病理组织切片的观察与诊断 • 病理组织切片制作技术的发展趋势
01
病理组织切片制作技术概述
切片制作的意义和目的
诊断疾病
教学质量
通过对病理组织进行切片制作,可以 观察组织结构和细胞形态,协助医生 诊断疾病。
环境控制
制作切片的实验室应保持清洁、干燥, 防止灰尘、温度等因素对切片质量造 成影响。
02
样本的收集与处理
样本的采集
手术切除
对于需要病理诊断的病例, 医生会进行手术切除病变 组织。
活检
通过穿刺或钳取的方式获 取少量病变组织用于病理 诊断。
尸检
对于死亡病例,通过尸检 获取病变组织。
样本的处理
清洗
利用人工智能技术对病理组织切片进行图像识别和分类,辅助医生 快速诊断。
辅助诊断系统
基于人工智能技术的辅助诊断系统,能够根据病理组织切片的特征, 提供初步诊断结果。
Hale Waihona Puke 预测模型利用人工智能技术构建预测模型,根据病理组织切片的特征预测疾病 发展趋势和预后情况。
THANKS
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切片的染色
染色原理
染色是通过化学或物理方法使组织切 片着色,以突出或显现组织中的不同 结构。
常用染色方法
苏木精-伊红染色(HE染色)是病理 组织切片中最常用的染色方法,能较 好地显示细胞核和细胞质的结构。
切片的封固
封固剂选择
根据不同的染色方法选择合适的封固剂,如中性树胶、香柏 油等。
封固步骤
在染色和脱水完成后,用封固剂将切片固定在载玻片上,以 防止切片在观察和保存过程中发生脱落或损坏。
病理组织切片技术
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切片制作过程
1. 将切片刀安装于刀架上(调整好刀的角度, 一般为20~30°左右) 2. 将蜡块固定在切片组织块夹具上 3. 调整组织块夹具的调节蜡旋,使蜡块切面 与刀口平行。
4. 先粗修( 30~50um ) 5. 细修( 10um )
切片的注意事项
① 切片前蜡块要冷冻,但不能把刚包埋 好的热蜡块冷冻,否则蜡块会产生裂 痕,一夹就碎。 ② 蜡块装机时,应注意组织包埋的方向, 组织的层次、纤维、肌肉等走向应与 切片刀平行。 ③ 蜡块在切片机固定加紧后要修块,组 织块上下留边各2mm
常用的透明剂
۩苯 ۩ 甲苯 ۩ 二甲苯(最常用的透明剂) ۩ 三氯甲烷 ۩ 汽油 ۩ 香柏油 ۩ 冬青油 ۩ 松油醇
常用的透明
方法
• 将脱水后的组织块先用乙醇-二甲苯混合液 处理或直接浸入透明剂中,置换透明剂2~3 次即能达到目的。 • 透明的时间的长短取决于标本的种类和组 织块的厚薄,一般活检标本透明15~20min 即可。
自来水冲洗即可)
② 含乙醇固定液的洗涤方法(用乙醇或乙醇混 合液固定的组织,一般不需要清洗) ③ 特殊固定液的洗涤方法(使用的固定液不同,
洗涤的方法也不一样)
脱水
定义
标本经过固定和冲洗后,组织中含有较多的 水分,必须将组织块内的水分置换出来, 这一过程。
• 无论是用石蜡切片,还是用火棉胶切片, 都必须除去组织中所含水分,因含水组织 与石蜡、火棉胶等包埋材料不相容,常用 的脱水剂为一系列不同浓度的乙醇。
常用的染色方法
苏木素-伊红(Hematoxylin-Eosin)染色法 简称H.E染色法。 这种方法对任何固定液固定的组织和应用各 种包埋法的切片均可使用。
• 苏木素是一种碱性染料,可使组织中的嗜碱 性物质染成蓝色,如细胞核中的染色质等; 伊红是一种酸性染料,可使组织中的嗜酸 性物质染成红色,如多数细胞的胞质、核 仁等在H.E染色的切片中均呈红色。
组织病理切片制作流程(完整版)
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组织病理切片的制作流程1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下:(1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
(2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3 ~0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。
(3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4)规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5)选好组织块的切面:根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。
纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6)保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。
(7)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
2.固定(1)小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体或动物体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4~20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。
故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。
法医病理学-组织切片制作
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(三)水洗
1.用水道流水洗涤,彻底清除组织块中的固定液。
2.水洗时间数小时至24小时。
3.根据材料多少、大小可灵活掌握水洗工具,可用水洗 筐或用纱布包裹,防止水流过大将组织块冲掉或丢失。
(四)脱水
组织块固定后虽然已经硬化,但达不到切薄片的硬度, 必须制成石蜡组织块,脱水是继固定后的重要步骤。
经固定和水洗后的组织含大量水分,在这种情况下首 先必须除去组织内部的水分,这种除水的过程叫做脱水, 脱水使用的药剂称为脱水剂。
固定的目的: 1. 阻止死后变化,防止组织的自溶与腐败。 2.保存组织的结构及成份。 3.媒染作用,使不同的组织成份对染料有不同
亲和力,使细胞各部易于受色。 4.能使组织硬化,为制作薄切片奠定基础。 注意:材料块不能过大,固定器皿不易过小,固
定液量不易过少,应是固定材料体积的20 一30倍。
(二)固定液: 根据检验目的不同选择不同种类固定液,如糖原检查:不含水的固
折,影响效果;如果水温过高,切片入水后可发生溶化。
实习四 法医病理学 组织切片染色
目的要求:掌握切片染色、封片等技术及操作过程。
一、染色前准备工作
1.染色:准备的工具:染色缸或者12个盛各种不同浓度的 酒精染色筐广口瓶,染色缸及脱蜡、透明用的各二个二甲苯 染色缸,盖片,带磨口盖树胶瓶一个,镊子1把。 2.染色需要的试剂及染色液的配制: ① 0.5%~1%盐酸—酒精:用于细胞核染色分色。
胰腺:取胰体部,必要时加取胰头、胰尾,2块。 肝脏:取长方形或三角形,2~3块。 脾脏:取材带被膜,2~3块。
脑:全脑(桥脑、延脑、小脑)、脊髓颈 段及脉络丛,十一块,或根据具体情况决定:
①额极;②前后中央回;③海马;④内囊; ⑤丘脑;⑥枕叶;⑦脉络丛;⑧桥脑;⑨延 髓;⑩中脑; ⑪小脑。取材时要带上软脑 膜、脑室膜或软脊膜因此刀要锋利。需要时 取脊髓。
组织病理切片的制作过程
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组织病理切片的制作过程
1.取材:
器械准备:锋利的手术刀;液氮罐一个或者冰盒;镊子;生理盐水
(1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后30min至1h,防止细胞自溶以保证原有的形态学结构,选取胰腺癌导管型腺癌病人高、中、低分化各至少5例(前期未经过放疗、化疗等肿瘤内科专科治疗)。
(2)组织块的大小:所取癌组织/癌旁组织较理想的体积为
(0.3-0.5)cm×(0.3-0.5)m×0.3cm,厚度不大于0.5cm
(3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4)规范取材部位: 在不影响病理诊断情况下取材,癌旁组织(癌组织旁1-2cm)
(5)保持组织块的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用生理盐水冲洗干净后再放入液氮或者冰盒中。
(6)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
(7)备注好患者的姓名,性别,年龄,籍贯,住院号,ID号,病理类型及分化程度
1。
组织病理切片制作步骤
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组织病理切片制作步骤
本文档将介绍组织病理切片制作的完整步骤。
1. 标本收集和处理
1.1 收集患者的组织标本,并确保其完整性和准确标记。
1.2 将组织标本置于合适的中,用适当的缓冲液或固定剂进行
处理,以保持其形态结构并防止腐败。
2. 标本处理和包埋
2.1 用合适的方法将标本固定在组织处理机中,例如将其浸泡
在缓冲液中或使用组织处理机进行自动处理。
2.2 将处理后的标本转移到合适的包埋中,通常使用蜡或树脂
作为包埋材料。
3. 切片制作
3.1 使用专业的旋转切片机将包埋的组织标本切割成薄片,通
常为4-5微米。
3.2 切割后的切片应浸泡在水中,以去除任何残留的包埋材料。
3.3 将切片转移到玻片上,并确保它们平整地展开。
4. 染色
4.1 选择适当的染色方法,如常规组织染色法(H&E染色),以突出组织的形态结构。
4.2 将切片浸泡在染色液中,按照染色方法的要求进行染色处理。
4.3 染色后,通过洗涤和脱水步骤去除多余的染色剂。
5. 盖片和封口
5.1 在切片干燥后,将一小滴透明胶液滴在切片上。
5.2 轻轻放置盖片在切片上,确保无气泡和皱纹。
5.3 用封口剂封住盖片和玻片的边缘,以保护切片并防止其损坏。
6. 观察和存储
6.1 使用显微镜观察切片,检查组织的结构和病理变化。
6.2 将切片存储在干燥、阴凉和避光的地方,以确保其长期保存和保持质量。
以上是组织病理切片制作的完整步骤。
每个步骤都需要仔细操作和适当的设备来确保切片的质量和准确性。
病理组织切片制作技术
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---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。
即石蜡切片法,冰冻切片法和火棉胶切片法。
以石蜡切片法为代表,切片的基本制作过程是:组织取材固定冲洗脱水透明浸蜡组织包埋组织切片展片附贴切片脱蜡染色脱水染片透明封固。
以上基本过程是互相联系的,任何一环节出现问题,都将使整个切片制作归于失败。
因此应细致、耐心、认真负责,并事先做好计划安排。
一、取材采取病料,要刀剪锐利,剪切时不可挤压,扯拉病料,以防人为损伤。
切取的工具要清洁。
采取病料越新鲜越好,一般不超过死后 24 小时。
应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。
特殊病料应根据器官的结构特点切取。
管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。
带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。
切取组织块大小,以 1.51.50.3 厘米为宜,最厚不宜超过0.5 厘米。
组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时1/ 7辨认。
切取后,放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中,并做好标记。
二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死,使细胞中的蛋白质,糖,脂肪等凝固,从而保持与活组织相似的结构状态。
材料取下后,应迅速固定。
固定液数量应为病理组织块的 5 到 20 倍。
由于一般把组织块浸入固定液后数小时,固定液渗入组织液的深度只达 2 到 3 厘米。
因此,可以放置冰箱内固定,使组织内酶失去作用,细菌也能停止滋生。
最常用的固定液是 10%的福尔马林溶液:使用时,用 40%的甲醛饱和水溶液 10 毫升,加水 90 毫升配成。
三、冲洗固定后的组织块,应将固定液洗去。
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病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。
即石蜡切片法,冰冻切片法和火棉胶切片法。
以石蜡切片法为代表,切片的基本制作过程是:组织取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→组织包埋→组织切片→展片附贴→切片脱蜡→染色→脱水→染片透明→封固。
以上基本过程是互相联系的,任何一环节出现问题,都将使整个切片制作归于失败。
因此应细致、耐心、认真负责,并事先做好计划安排。
一、取材采取病料,要刀剪锐利,剪切时不可挤压,扯拉病料,以防人为损伤。
切取的工具要清洁。
采取病料越新鲜越好,一般不超过死后24小时。
应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。
特殊病料应根据器官的结构特点切取。
管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。
带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。
切取组织块大小,以1.5×1.5×0.3厘米为宜,最厚不宜超过0.5厘米。
组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时辨认。
切取后,放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中,并做好标记。
二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死,使细胞中的蛋白质,糖,脂肪等凝固,从而保持与活组织相似的结构状态。
材料取下后,应迅速固定。
固定液数量应为病理组织块的5到20倍。
由于一般把组织块浸入固定液后数小时,固定液渗入组织液的深度只达2到3厘米。
因此,可以放置冰箱内固定,使组织内酶失去作用,细菌也能停止滋生。
最常用的固定液是10%的福尔马林溶液:使用时,用40%的甲醛饱和水溶液10毫升,加水90毫升配成。
三、冲洗固定后的组织块,应将固定液洗去。
一般均用流水(自来水)冲洗12到24小时左右。
及时冲洗尚有停止固定的作用,防止固定过度,有利于制片染色。
冲洗时如不方便用流水冲洗,也可用较大容器盛装水浸洗,每隔相当时间换水一次。
整个浸洗时间比流水冲洗应稍长一些。
酒精固定的组织材料不需冲洗。
四、脱水经过固定的组织,冲洗后要进行脱水。
脱水的目的在于将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来,为石蜡等其他包埋剂浸入组织创造条件。
常用的脱水剂为酒精。
由于酒精可以任何比例与水结合,对组织穿透力强,又能使组织硬化,因而不能将组织从水中直接移入浓度高的酒精中,应从低浓度逐渐到高浓度。
脱水必须充分,否则给浸蜡造成困难。
除用酒精作脱水剂外,还可以用正丁醇(N—Butyla alcohol)。
正丁醇微溶于水,能与各种浓度酒精混合,也能直接溶解石蜡。
故组织经正丁醇脱水后,不须经二甲苯透明。
用正丁醇作脱水剂,组织块收缩减低,也不会过硬,故比酒精优越。
五、透明透明的目的是将组织内的酒精用矿物油或植物油置换出来,并溶解石蜡,帮助石蜡浸透组织。
由于经过透明剂处理的组织块用肉眼观察呈透明状,故称这一过程为透明。
常用的透明剂为二甲苯(Xylol),因其穿透力较强,因而组织在二甲苯中停留时间不宜过长,一般透明时间在30分钟左右即可。
六、浸蜡浸蜡是指组织经过透明作用以后,放入溶化的石蜡中浸渗,使石蜡浸入组织块中,冷却后,才能进行切片。
通常选择熔点在52~56℃之间的石蜡,并视切片时环境的气温而选择。
室温高则选用熔点稍高的石蜡,反之,则选用熔点较低的石蜡,这样可防止切片时石蜡太软或易碎裂。
浸蜡的过程是:二甲苯石蜡混合液(1:1)1小时二甲苯石蜡混合液(1:2)1小时石蜡(1)1小时30分石蜡(2)1小时30分上述过程可在56℃~58℃恒温箱中进行,含二甲苯的混合液可用磨口小瓶盛装。
七、包埋包埋就是将已浸渗好的组织包埋于浸渗剂中。
根据需要,包埋的方法常有石蜡包埋法和火棉胶包埋法。
石蜡包埋法:(1)先将熔化的石蜡倒入包埋框,用加热的镊子将欲包埋的组织块在蜡液内放置好。
注意各组织块之间的距离和每个组织块的位置和方向。
(2)迅速第二次往平皿内倾倒蜡液,淹没组织块。
待蜡液出现凝固层后,即轻轻放入冷水盆中或冰箱中使其凝固。
石蜡完全凝固后,倒出冷缩的蜡块片,用加热的外科刀,按组织块位置修整蜡片待用。
对于实验动物(狗和兔等)组织,一般的脱水透明和浸蜡时间如下:处理步骤处理时间(min)处理步骤处理时间(min)①75%酒精长短不定二甲苯Ⅰ、Ⅱ⑥30②85%酒精120-300 二甲苯Ⅲ⑦60③95%酒精Ⅰ和Ⅱ120-300 56-58℃石蜡⑧30④无水酒精Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ30 56-58℃石蜡⑨60-120⑤无水酒精Ⅲ60-120 56-58℃石蜡⑩120-180注:摘自病理学技术,人民卫生出版社,王伯,李玉松,黄高,张远强主编。
八、组织切片不同的切片制备方法,其切片方法也有较大差别,组织切片法包括石蜡切片法、冰冻切片法、火棉胶切片法、石蜡包埋半薄切片法、树脂包埋薄切片法和大组织石蜡切片法等。
常用的切片工具包括组织切片机、切片刀和自动磨刀仪器等。
以下分别加以叙述。
(一)石蜡切片法组织经石蜡包埋后制成的蜡块,用切片机制成切片的过程称为石蜡切片法。
为现在病理诊断常用的制作切片的方法。
在切片前应先切去标本周围过多的石蜡(此过程称为修块)但也不能留得太少,否则易造成组织破坏,连续切片时分片困难。
一般切4-6μm的切片,特殊情况可切1-2μm。
要观察病变的连续性,可制作连续切片。
除此之外,石蜡包埋的组织便于长期保存,因此石蜡切片仍是目前各种切片制作方法中最常用,最普遍的一种方法。
1.切片前的准备(1)固定后的标本经脱水、透明、浸蜡和包埋后,制成蜡块。
高质量的蜡块和锋利的切片刀是保证切片质量的关键环节。
检查切片刀是否锋利,简便的方法是用头发在刀锋上碰一下,如一碰即断,说明刀锋锋利。
用显微镜观察可确定刀口是否平整,有无缺口。
(2)准备充足的经过处理的清洁载玻片和恒温烤片装置,大中号优质狼毫毛笔和铅笔(用于在载玻片的粗糙端写号),如用普通载玻片,可用碳素墨水和蛋白甘油按3:1体积混合后书写。
2.切片制作过程(1)将预先修好的组织块先在冰箱中冷却,而后装在切片机固定装置上。
将切片刀装在刀架上,刀刃与蜡块表面呈5℃夹角。
将蜡块固定,调整蜡块与刀至合适位置,并移动刀架或蜡块固定装置,使蜡块与刀刃接触。
(2)切片多使用轮转式切片机,使用时左手执毛笔,右手旋转切片机转轮。
先修出标本,直到组织全部暴露于切面为止,但小标本注意不要修得太多,以免无法切出满意的用于诊断的切片,标本应注意切全。
切出蜡片后,用毛笔轻轻地托起,尔后用眼科镊夹起,正面向上放入展片箱(展片温度根据作用的石蜡熔点进行调整,一般低于蜡熔点10~12℃),待切片展平后,即可进行分片和捞片。
切片经30%的酒精初展后,再用载玻片捞起放入展片箱更易展平。
为减少切片刀与组织块在切片过程中产生的热量,使石蜡保持合适的硬度,切片时可经常用冰块冷却切片刀和组织块,尤其在夏季高温季节更为必要。
(3)轮转式切片机切取组织,是由下向上切,为得到完整的切片,防止组织出现刀纹裂缝,应将组织硬脆难切的部分放在上端(如皮肤组织,应将表皮部分向上。
而胃肠等组织,应将浆膜面朝上)。
(4)捞片时注意位置,要留出贴标签的空间,并注意整齐美观。
捞起切片后,立即写上编号。
(5)切片捞起后,在空气中略微干燥后即可烤片。
一般在60℃左右烤箱内烤30min即可,也可用烤片器烤片。
血凝块和皮肤组织应及时烤片。
但对脑组织待完全晾干后,才能进行烤片。
否则,可能产生气泡影响染色。
3.注意事项(1)组织的取材和固定取材时,组织块的大小厚薄应适当,过大、过厚的组织,固定液不易渗透,易引起固定不良。
过小、过薄的组织,在固定和脱水的过程中易变硬或产生弯曲扭转,同样影响切片质量。
陈旧、腐败和干枯的组织不宜制作切片。
用陈腐组织制成的切片,往往核浆共染,染色模糊,组织结构不清,无法进行观察。
固定不及时和固定不当的组织,染色时常出现核质着色较浅,轮廓不清,出现不同程度的片状发白区。
组织固定时,固定液的量应充足,至少要在4倍以上,同时注意组织块不要与容器粘连。
至于组织固定的时间,根据具体情况加以掌握。
有关固定时应注意的事项,可参见有关章节。
(2)组织脱水、透明和浸蜡组织脱水用的各级酒精,应保证相应浓度,以便组织脱水彻底。
但无水酒精中,组织块放置时间不宜过长,否则组织过硬,切片困难。
遇到此情况,可将组织浸在香柏油中软化,用二甲苯洗去香柏油后,再重新浸蜡和包埋。
脱水酒精,尤其是无水酒精中混有水分,则组织脱水不干净。
经二甲苯时,组织也无法透明,呈现浑浊。
此时应将组织在新的酒精中重新脱水。
二甲苯透明也应充分,否则不利于石蜡的浸透。
但组织在二甲苯内的时间应严格掌握,时间过长组织易碎,也无法切出好的切片。
时间不足,则石蜡不易浸透。
浸蜡的温度也不宜过高,时间长短也应加以控制。
总之,组织脱水、透明和浸蜡对于切片质量都有一定影响,组织脱水、透明和浸蜡过度,组织块变硬变脆,因此对于小块组织或小动物标本应注意时间。
但若时间不够,组织块硬化不够,也不利于切片和染色,因此,应注意各具体环节的操作,并注意保证各种试剂的质量。
(3)切片切片刀要求锋利且无缺口,切片自行卷起多由切片刀不锋利所致,切片刀有缺口时,易造成切片断裂破碎和不完整。
骨组织切片时,用重型刀较好。
全钢刀或单面钨刀也适合石蜡或火棉胶包埋的骨组织。
(4)切片刀和切片机切片刀放置的倾角以20-30℃为好。
倾角过大切片上卷,不能连在一起。
过小则切片皱起。
应注意维护切片机,防止因螺丝松动产生震动,切片时会造成切片厚薄不均。
遇硬化过度的肝、脑、脾等组织时,应轻轻切削,防止由于震动产生空洞现象。
(5)特殊要求切片的制作石蜡切片虽然有很多优点,但制片过程中要经过酒精和二甲苯等有机溶剂处理,因此很易造成组织内抗原性的丧失,在用于免疫组织化学染色时影响结果的准确性。
因而有人采用冷冻干燥包埋法,即将新鲜组织低温速冻,利用冷冻干燥机在真空和低温条件下除去组织内的水分,然后用甲醛蒸汽固定干燥后的组织,而后在进行浸蜡、包埋和切片。
此法可保存组织内的可溶性物质,防止蛋白质变性和酶的失活,减少抗原的丢失。
用于免疫荧光标记、免疫酶标记和放射自显影。
(二)冰冻切片法冰冻切片在组织学技术中应用广泛,对临床快速病理诊断尤其具有重要意义。
另外,因冰冻切片制作时不经各级酒精的脱水,二甲苯的透明等过程,因此对脂肪和类脂的保存较好,在进行脂肪染色和神经组织髓鞘的染色常用。
冰冻切片多用于新鲜组织,甲醛固定的组织和低温冰箱冷藏的组织块等。
组织不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后进行切片。
1.恒冷箱切片将组织块在恒冷箱的切片机上切片。
恒冷箱切片机的种类较多,可根据实际情况加以选用。
一般调节温度为-25℃左右。
箱内温度下降后,打开观察窗,将组织固着器放置到速冻台上,先放少量OCT或羧甲基纤维素,待冻结后将组织块放上,并在其周围加适量包埋剂,将组织块包埋。