拟南芥SSCD1基因启动子与GUS重组载体的构 建与转化

合集下载

紫花苜蓿MsCOL1基因植物表达载体的构建及拟南芥转化

紫花苜蓿MsCOL1基因植物表达载体的构建及拟南芥转化

紫花苜蓿MsCOL1基因植物表达载体的构建及拟南芥转化苏志芳;包阿东;李亚珍【摘要】[目的]构建紫花苜蓿MsCOL1基因植物的表达栽体.[方法]根据紫花苜蓿CONSTANS类似基因MsCOL1基因(登录号:DQ661682)序列,设计含有酶切位点的一对特异性引物,以紫花苜蓿cDNA为模板,获得MsCOL1基因完整编码区DNA 序列,并将目的片段插入表达载体pBll21的相应位置,构建植物表达载体35S∶∶MsCOL1,再利用农杆菌介导方法将35S∶∶MsCOL1转化到拟南芥中.[结果]分析测序结果显示,所获得克隆为插入目的片段的阳性克隆.经RT-PCR检测,证明转基因植株中MsCOL1基因能够顺利表达.[结论]该方法成功构建植物表达载体35S∶∶ MsCOL1,并获得了转基因拟南芥植株.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2014(000)006【总页数】3页(P1610-1611,1668)【关键词】紫花苜蓿;拟南芥;转基因;MsCOL1【作者】苏志芳;包阿东;李亚珍【作者单位】河套学院农学系,内蒙古临河015000;河套学院农学系,内蒙古临河015000;河套学院农学系,内蒙古临河015000【正文语种】中文【中图分类】S541+.1有关植物开花时间的分子生物学研究,在模式植物拟南芥上已经进行得相对全面、深入。

在调控拟南芥开花时间的光周期途径中,CONSTANS(CO)基因的表达控制拟南芥感知日照时间的长短,在连接光信号与生物信号过程中起关键性作用,该基因编码一个含有锌指结构的核蛋白[1]。

当植物受到长时间光照时,CO基因的mRNA表达量增加[2]。

CO基因是FT基因[1]和SOC1基因[3]的上游基因,其转录因子能促进植物开花。

在拟南芥开花时间有关基因调控研究中,CO基因突变体能使开花时间延迟,通过调节增加CO基因的表达,可以使FT基因的表达量提高,使植物开花行为提前发生[1]。

但是在CO基因的同源基因COL的表达模式中,功能有所差异。

拟南芥CGP1基因启动子克隆及其GUS转基因植株的构建

拟南芥CGP1基因启动子克隆及其GUS转基因植株的构建

拟南芥CGP1基因启动子克隆及其GUS转基因植株的构建朱香豫;吴席;陶曼芝;王婷婷;贾亚峰;曹树青【期刊名称】《合肥工业大学学报:自然科学版》【年(卷),期】2022(45)10【摘要】前期研究发现一个功能未知基因响应植物镉胁迫,将之命名为CGP1。

文章为探究植物基因CGP1的表达模式及其在响应镉胁迫中的表达变化情况,以野生型拟南芥为实验材料构建CGP1基因启动子接pART7-GUS载体及其转基因植株。

通过提取野生型拟南芥的DNA,并以DNA为模板利用聚合酶链式反应(polymerase chain reaction, PCR)技术克隆得到CGP1基因启动子序列,将启动子序列和GUS载体双酶切后进行连接,并转化到大肠杆菌感受态细胞中,通过测序获得构建成功的ProCGP1-GUS载体。

利用浸染花序法将ProCGP1-GUS载体转入野生型拟南芥中,并通过抗性筛选获得ProCGP1-GUS转基因阳性植株,为研究镉胁迫下CGP1基因的功能奠定了基础。

【总页数】5页(P1395-1399)【作者】朱香豫;吴席;陶曼芝;王婷婷;贾亚峰;曹树青【作者单位】合肥工业大学食品与生物工程学院【正文语种】中文【中图分类】Q943.2【相关文献】1.拟南芥 CWINV1启动子 GUS 表达载体构建及转基因植株的鉴定2.拟南芥MYB4基因GUS载体构建及其转基因植株的筛选3.拟南芥CTSP3基因GUS载体构建及转基因植株的筛选鉴定4.拟南芥Pro:RFE6-GUS载体的构建及其转基因植株的筛选5.拟南芥ProWRKY12-GUS转基因植株的构建及其染色分析因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

拟南芥防御素基因PDF1.2启动子与GUS重组载体的构建与转化

拟南芥防御素基因PDF1.2启动子与GUS重组载体的构建与转化

拟南芥防御素基因PDF1.2启动子与GUS重组载体的构建与转化刘志霞;周舟;蔡薇;程姣;任春梅【摘要】PDF1.2基因在植物的防御系统中扮演着重要的角色,其编码产生的植物防御素参与了植物对真菌入侵、病毒感染、不良环境等逆境胁迫的防御反应.试验利用从拟南芥中通过PCR扩增和克隆的该基因启动子构建GUS报告基因的表达载体,通过根癌农杆菌浸渍转化法将表达报告基因转入拟南芥中,筛选获得了转化植株.获得以下主要结果:(1)成功克隆了拟南芥PDF1.2基因的启动子并将其与带GUS 标记基因的载体进行了融合,得到了重组的融合载体;(2)成功的将带GUS标记基因的拟南芥PDF1.2基因启动子融合载体转入到拟南芥植株中并利用其自带抗性标记筛选到了抗性植株;(3)利用GUS染色技术检测了转基因植株中PDF1.2基因启动子的表达情况.%PDF1.2 gene plays an important role in plant defense systems,the plant defensins encoded by PDF1.2 gene participates in plant defensive response against to adversity stress such as fungal invasion,viral infection and adverse environment conditions.The promoter of PDF1.2 gene that amplified and cloned by PCR from Arabidopsis was used to construct the expression vector of GUS reporter gene in this experiment,then the expression reporter gene was transformed into Arabidopsis through agrobacterium tumefaciens transformation method and the transformed plants was obtained by screening.The main results were showed as follows:1.The promoter of Arabidopsis PDF1.2 gene was successfully cloned and fused with the vector carrying GUS report gene to obtain a recombinant fusion vector;2.The reconstructive vector wastransferred into Arabidopsis thaliana and the transgenic plants were screened successfully;3.The expression of the promoter of PDF1.2 gene in transgenic plants was detected by GUS staining.【期刊名称】《作物研究》【年(卷),期】2018(032)002【总页数】4页(P131-134)【关键词】载体构建;PDF1.2基因;克隆;转化【作者】刘志霞;周舟;蔡薇;程姣;任春梅【作者单位】湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;作物基因工程湖南省重点实验室,长沙410128【正文语种】中文【中图分类】Q785PDF1.2基因是一个广泛存在于植物中与抗逆相关的基因[1~4]。

拟南芥PJAZ1:JAZ1-GUS表达载体的构建与鉴定

拟南芥PJAZ1:JAZ1-GUS表达载体的构建与鉴定

华大基因公司测序。

DNA marker;A,pMD19-KpnI-P JAZ1-BamHI-NcoI pMD19-KpnI-P JAZ1-BamHI-NcoI鉴定M,DNA marker;A,pMD19-BamHI-JAZ1-BamHIpMD19-BamHI-JAZ1-BamHI转化子的KpnI和NcoI对测序证实无突KpnI-P JAZ1-BamHI-NcoI和pCAMBIA1305.切,前者割胶回收约2.3kb的JAZ1具有相应酶切位点的线性化载体化大肠杆菌,经菌落PCR筛选获pCAMBIA1305.1-KpnI-PJAZ1-BamHI-NcoI 定(图3)。

注:M,DNA marker;A,P JAZ1;B,JAZ1cds;C,KpnI和NcoI双酶切;D,BamHI单酶切图3P JAZ1:JAZ1-GUS的PCR鉴定3讨论拟南芥IQM1是由AT4G33050编码的含有1个IQ 基序的钙调素结合蛋白[1]。

基因芯片分析表明,IQM1突变后,其成熟植株叶片中有4个JAZ家族基因(JAZ1、JAZ5、JAZ7与JAZ8)表达上调[3]。

前人已构建P35S:JAZ1-GUS,并构建双突变体iqm1-1×P35S:JAZ1-GUS,通过GUS染色实验得出IQM1突变使JAZ1蛋白水平降低。

为了排除35S启动子对表达模式的影响,有必要构建P JAZ1:JAZ1-GUS植物表达载体。

本研究成功了构建了该载体,在转化IQM1突变体植株,筛选获得转基因纯合子植株后,可进一步验证IQM1突变对JAZ 蛋白的影响,为IQM家族蛋白的研究提供更全面的科学证据。

【参考文献】[1]Zhou YP,Fujibe T,Wang XL,Cheng HZ,Yamamoto KT, Tian CE.Initial characterization of Arabidopsis T-DNA insertion mutants of the IQM1gene that encodes an IQ motif-containing。

拟南芥防御相关基因THI2.1启动子与GUS重组载体的构建与转化

拟南芥防御相关基因THI2.1启动子与GUS重组载体的构建与转化

Botanical Research 植物学研究, 2017, 6(2), 25-30Published Online March 2017 in Hans. /journal/br https:///10.12677/br.2017.62005文章引用: 荣楠, 蔡薇, 周舟, 任春梅. 拟南芥防御相关基因THI 2.1启动子与GUS 重组载体的构建与转化[J]. 植物学Construction of Recombinant Plasmid of Defense-Related Gene THI 2.1 Promoter and GUS Gene in Arabidopsis thalianaNan Rong 1*, Wei Cai 1*, Zhou Zhou 1, Chunmei Ren 1,2#1College of Bioscience and Biotechnology, Hunan Agricultural University, Changsha Hunan 2Crop Gene Engineering Key Laboratory of Hunan Province, Changsha HunanReceived: Feb. 25th , 2017; accepted: Mar. 14th , 2017; published: Mar. 17th, 2017AbstractTHI 2.1 gene is an important gene in plant defense systems; the thionins encoded can effectively enhance plants disease resistance and help plants resist the spread of external pathogens. Analy-sis of the expression pattern of this gene in plants will help us to further understand the regula-tion of this gene. In our study, a fusion expression vector of THI 2.1 gene promoter and GUS marker gene was constructed and transformed into Arabidopsis thaliana . Our results provide the material basis for further study on the expression pattern of THI 2.1 gene in Arabidopsis thaliana . The result as follows: 1) The fusion vector of THI 2.1 gene promoter and GUS marker gene was constructed successfully. 2) The reconstructive vector was transferred into Arabidopsis thaliana and the trans- genic plants were screened successfully.KeywordsVector Construction, THI 2.1 Gene, Promoter拟南芥防御相关基因THI 2.1启动子与GUS 重组载体的构建与转化荣 楠1*,蔡 薇1*,周 舟1,任春梅1,2#1湖南农业大学生物科学技术学院,湖南 长沙 2作物基因工程湖南省重点实验室,湖南 长沙*并列第一作者。

拟南芥CTSP3基因GUS载体构建及转基因植株的筛选鉴定

拟南芥CTSP3基因GUS载体构建及转基因植株的筛选鉴定

拟南芥CTSP3基因GUS载体构建及转基因植株的筛选鉴定作者:孟云陶曼芝吴席曹树青樊婷婷来源:《安徽农业科学》2019年第03期摘要[目的]深入研究植物基因CTSP3的基因表达模式及其对重金属镉胁迫的响应机制,以野生型拟南芥为材料构建CTSP3-GUS重组质粒及GUS转基因植株。

[方法]通过提取野生型拟南芥的DNA,克隆其启动区基因片段,将基因片段和pART27-GUS质粒双酶切后连接,转化到大肠杆菌感受态细胞中,菌落PCR和测序获得阳性单克隆。

然后将CTSP3-GUS重组质粒转入农杆菌感受态GV3101,获得阳性单菌落。

接着采用浸花法侵染野生型拟南芥,最后通过抗性筛选和PCR鉴定获取CTSP3-GUS转基因植株。

[结果]成功克隆CTSP3启动区基因片段,构建出重组质粒,获得了CTSP3-GUS转基因植株。

[结论]获得CTSP3-GUS转基因植株,为接下来进一步研究该基因在植物响应镉胁迫机制中的功能奠定了基础。

关键词拟南芥;CTSP3;载体;转基因植株中图分类号Q939.9文献标识码A文章编号0517-6611(2019)03-0084-03doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2019.03.027重金属污染已经成为世界性重大环境问题之一,其中重金属镉污染尤为严重。

过多的镉会对动植物细胞组织造成不可逆的损伤[1-3]。

在重金属镉逆境中,植物通过控制金属流入、促进金属泵出、重金属螯合等途径来应激[4]。

运用植物转基因技术对植物品种进行优化改良是解决重金属污染的最佳方式[5]。

研究发现CTSP3功能缺失突变体对重金属镉胁迫表现出耐受的表型,所以笔者拟通过克隆CTSP3启动区基因,获得CTSP3-GUS植株,以进一步研究植物基因CTSP3的基因表达模式及其对重金属镉胁迫的响应机制。

1材料与方法1.1材料1.1.1材料。

植物材料是哥伦比亚(Columbia, col)遗传背景的拟南芥(Arabidopsis thaliana),从美国拟南芥种质资源中心获得,由合肥工业大学植物分子生物学实验室繁殖所得。

拟南芥钙调素结合蛋白基因启动子的克隆及表达

拟南芥钙调素结合蛋白基因启动子的克隆及表达

拟南芥钙调素结合蛋白基因启动子的克隆及表达万东莉;李瑞丽;邹博;高阳;万永青;王瑞刚;李国婧【摘要】采用PCR技术从拟南芥中克隆了SCBP60g基因的启动子,并与GUS报告基因融合构建重组表达载体,转化野生型拟南芥,对获得的转基因株系进行GUS 组织染色,从基因调控水平上探讨其在功能方面的差异.结果显示:SCBP60g基因的启动子能指导GUS报告基因在拟南芥的根、茎、叶和花中表达,并且在这些部位的维管束表达较强.这种表达方式与LCBP60g基因的启动子指导的GUS基因组织化学染色有差异,表明这个启动子的表达调控具有一定的特异性.%In this study,a promoter fragment of the SCBP60g gene was amplified by PCR from Arabidopsis, and fused with the GUS reporter gene. The recombination construct was then transformed into wild type Arabidopsis. Histochemical staining of GUS activity showed that; the promoter could drive the GUS expression in root,stem,leaf and flower,and relatively high expression levels were found in vascular tissue. However,this expression pattern is different from the promoter of LCBP60g that drives the same GUS gene expression,indicating the specific regulation of this promoter.【期刊名称】《西北植物学报》【年(卷),期】2012(032)001【总页数】6页(P17-22)【关键词】拟南芥;启动子;钙调素结合蛋白;CBP60g;GUS报告基因【作者】万东莉;李瑞丽;邹博;高阳;万永青;王瑞刚;李国婧【作者单位】内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;兰州大学生命科学学院,兰州730000;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018;内蒙古农业大学生命科学学院,呼和浩特010018【正文语种】中文【中图分类】Q786高等植物基因的表达调控是分子生物学研究领域的热点之一。

gus载体构建原理

gus载体构建原理

gus载体构建原理基因编辑技术是一种革命性的方法,在许多疾病和人类遗传学方面都有很好的应用。

GUS基因是一种广泛使用的转化分析标记,可以用于分子生物学应用和基因编辑中。

在这篇文章中,我们将探讨“gus载体构建原理”。

第一步:载体设计一个gus载体通常由以下几个部分组成:启动子,gus基因,选殖标记和终止子。

启动子控制着gus基因被转录的时间和位置,而选殖标记可以用来筛选带有gus基因的细胞。

终止子让gus基因的转录在正确的位置终止。

第二步:标记gus基因的载体在很多基因编辑任务中,gus基因可以用来标记细胞是否已经被编辑。

gus基因被整合到生物体本身的基因组中时,可以通过水杨酸β葡糖苷酶染色来检测它的存在和表达。

因此,载体中的gus基因应该带有水杨酸β葡糖苷酶的附加序列,以便将其标记。

第三步:将gus载体转化入细胞将gus载体导入到受体细胞中的方式有多种方法,包括电穿孔,微注射,病毒转染等。

在这一步中的最关键的问题是确定gus载体已经被成功导入到细胞中。

为了验证这一点,我们可以使用PCR,南方blotting,western blotting等技术来检测gus基因在细胞中的存在。

第四步:筛选gus载体转化后的细胞这一步是gus载体构建过程中最关键的一步。

gus基因控制细胞株中β-葡萄糖苷酶的表达,并且能够将其转化为蓝色产物。

因此,如果我们将含有gus基因的gus载体导入到细胞中,经过营养选择和筛选之后,只有表达gus基因的单元才会变成蓝色。

因此,我们可以通过观察细胞的颜色来确定这个细胞具有gus基因。

总体来说,gus载体构建的过程是一个需要多个步骤的复杂过程。

对于初学者来说,研究这个过程可能会比较困难,需要学习许多分子生物学的基础知识和技术。

但是,对于那些有经验的科学家来说,这个过程可能是比较简单和直接的。

(生物化学与分子生物学专业优秀论文)拟南芥SLO基因启动子区重要顺式调..

(生物化学与分子生物学专业优秀论文)拟南芥SLO基因启动子区重要顺式调..

识水坝为您倾心整理(小店)如需格式转换服务请发豆丁站内信或联系QQ@2218108识水坝为您倾心整理(小店)如需格式转换服务请发豆丁站内信或联系QQ@2218108中戮农业科学院硕士掌能论文第一章引言——■—■——■■—■■一IIII——■■●■■■—■———■——●●■■■■■■—■■————■■■——■2.1乙烯信号传繇途径的模型在分离投游芥突变俸过程中获褥的两类乙烯突变体,既乙烯不敏感型和乙烯诱导的组成袭迭型,它们都对植物生禽周期中大范隧的乙烯作用其霄影响。

裘鞠,这些己爝接震拥有一个典嚣瓣秘始信号传导途径。

在这条逸径中有证据表明,ETRl基因编码一个乙烯受体,作为己烯信号传导途径中的最初受体。

速夸受俸是一个媵结合蛋自,与绷莲熬两缀分调节因子His激酶具有阍源性。

另外,ETRl基因位点的突变体对乙烯完全不敏感。

毅突变体分析表明,ETRl的一个下游基因是d豫j。

CTRl编褥一个与Raf激酶霹添豹溅彝霞,e7炎?佼点煞突变导致乙烯调节的途径组成型激活,CTRI是乙烯储号传导途径的负调节因子,其下游基隧髓EIN2。

尉№蕊因位点戆突变俸夯对己燎完全不敏感。

最近,乙烯信号传导谂径中的一些灏成员也已经发现,基于上述这些发现,Ecker等(2004)提出了如下乙烯信号传导途径的耨模型f圈1--2):2.2乙烯信号感威和传导的可能机制2.2。

l艺爆与ETRl器蠡的相互{乍粥图1--2赫因表达调控中的乙烯鹰簪途径模型Fig1-2Amodelfortheethyleneresponsepathwaylntheregulation时ganeexpression。

(Ecker,ef4,,+2004CurrantOpiniontnPlantBtology)已有充分的证据说明ETRl魁植物中的一个己烯受体。

遗传分析提供的谜据表明,ETRl作用予对乙烯信号传爵有影响的其它熬因位点的上游。

Bleeeker等发现,errl.,突变体植株的饱年珏结念己爝麴悲力只裙黔生整麴1/5。

拟南芥AtEXP1基因启动子的克隆及转录调控元件分析

拟南芥AtEXP1基因启动子的克隆及转录调控元件分析

农业生物技术学报 Journal of Agricultural Biotechnology2008,16(3):543~544*基金项目: 国家重点基础研究规划 (973) 项目(No.G1999011704)资助。

**通讯作者。

Author for correspondence.Email:<xcwang@>收稿日期: 2007­03­09接受日期: 2007­04­17·研究简报·拟南芥 基因启动子的克隆及转录调控元件分析 *李 宏, 魏鹏程, 龚喜明, 王学臣 **(中国农业大学生物学院植物生理生化国家重点实验室, 北京 100094)关键词:拟南芥 启动子; 顺式作用元件; 转录调控中图分类号:S188 文献标识码: A 文章编号: 1006­1304(2008)03­0543­02Cloning and Analysis of Transcriptional Regulatory Module of PromoterLI Hong, WEI Peng­cheng, GONG Xi­ming, WANGXue­chen**promoter;cis­elements;transcriptional regulatory扩张蛋白 (expansin) 是一类特异定位在细胞壁上具有酸 生长活性的蛋白 (Lee and Kende,2001;Chen and Bradford, 2000), 调控很多重要的生理过程(Cho and Cosgrove,2000), 在时间和空间上的表达受到严格调控。

本研究克隆了一个拟 南芥 基因 的启动子,通过数种逆境胁迫 诱导表达, 对可能的活性响应部位进行了分析。

1材料和方法1.1 启动子的克隆和活性检测以拟南芥( )基因组 cDNA为模板, 设 计上下游引物, 扩增 897bp长的片段, 插入已连接 基因 的质粒中, 构建重组质粒 pUC19­P12。

拟南芥SSP1基因GFP载体构建及GFP植株筛选

拟南芥SSP1基因GFP载体构建及GFP植株筛选

拟南芥SSP1基因GFP载体构建及GFP植株筛选吴席;樊婷婷;方雪;徐洁娜;曹树青【摘要】[目的]以野生型拟南芥为材料构建SSP1基因GFP载体及GFP转基因植株.[方法]通过提取野生型拟南芥的RNA,反转录成为cDNA,并以cDNA为模板,利用高保真酶,进行SSP1基因的克隆,将克隆所获得SSP1基因和pXB94-GFP质粒进行双酶切,利用T4-DNA ligase进行连接,并转化进大肠杆菌DH5α感受态细胞中,通过菌落PCR和测序获得阳性单克隆.通过质粒抽提试剂盒提出构建好的重组质粒,并将其转入农杆菌GV3101中,通过菌落PCR鉴定出阳性单菌落.将获得的阳性菌通过花序浸染法转入野生型拟南芥中,并通过抗性筛选获得阳性植株.[结果]克隆SSP1基因成功,菌落PCR显示SSP1基因成功连接到pXB94-GFP质粒上并成功转入农杆菌中,抗性筛选获得了SSPl-GFP转基因植株.[结论]成功获得SSPl-GFP转基因植株,为接下来进一步研究SSP1基因功能奠定了基础.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2018(046)021【总页数】3页(P119-121)【关键词】拟南芥;SSP1;载体;GFP转基因植株【作者】吴席;樊婷婷;方雪;徐洁娜;曹树青【作者单位】合肥工业大学食品科学与工程学院,安徽合肥230009;合肥工业大学食品科学与工程学院,安徽合肥230009;合肥工业大学食品科学与工程学院,安徽合肥230009;合肥工业大学食品科学与工程学院,安徽合肥230009;合肥工业大学食品科学与工程学院,安徽合肥230009【正文语种】中文【中图分类】Q939.9土壤盐碱化是世界范围内限制农业发展和作物生产的重要因素之一,探索盐胁迫的作用机理以及提高植物抗盐性的途径具有重要的理论和实际意义[1-3]。

寻找提高植物抗盐性的关键基因并利用转基因技术对植物品种进行优化改良是解决上述问题的一种行之有效的方法 [4-7]。

拟南芥rbs1基因rnai载体构建及遗传转化子的筛选

拟南芥rbs1基因rnai载体构建及遗传转化子的筛选

㊀收稿日期:2019-09-10基金项目:河南省自然科学基金项目(162300410008)作者简介:孟飒飒(1989-)ꎬ女ꎬ河南开封人ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向:植物逆境生理学.㊀∗通讯作者:刘凌云(1973-)ꎬ副教授ꎬE ̄mail:lingyunl@henu.edu.cn.㊀㊀辽宁大学学报㊀㊀㊀自然科学版第47卷㊀第1期㊀2020年JOURNALOFLIAONINGUNIVERSITYNaturalSciencesEditionVol.47㊀No.1㊀2020拟南芥RBS1基因RNAi载体构建及遗传转化子的筛选孟飒飒ꎬ王胜楠ꎬ刘凌云∗(河南大学生命科学学院植物逆境生物学重点实验室ꎬ河南开封475004)摘㊀要:植物通过多个基因协同作用响应活性氧的氧化胁迫.鸟苷酸解离抑制因子RBS1作为小G蛋白活性调节分子ꎬ参与了活性氧响应的生理过程ꎬ但其详细机制尚不清楚.利用RNAi技术ꎬ分别构建了以RBS1基因的特异区和保守区为靶序列的RNAi双元载体ꎬ并进行了拟南芥的遗传转化ꎬ通过除草剂抗性筛选分别获得125株及90株遗传转化株系ꎬ为运用反向遗传学的方法深入研究RBS1基因的生物学功能提供基础.关键词:活性氧ꎻRNAiꎻRBS1中图分类号:Q782㊀㊀㊀文献标志码:A㊀㊀㊀文章编号:1000 ̄5846(2020)01 ̄0020 ̄06ConstructionandGeneticTransformationofRNAiVectorsforRBS1GeneinArabidopsisMENGSa ̄saꎬWANGSheng ̄nanꎬLIULing ̄yun∗(CollegeofLifeScienceꎬKeyLaboratoryofPlantStressBiologyꎬHenanUniversityꎬKaifeng475004ꎬChina)Abstract:㊀Physiologicalresponsesofplantstooxidativestressrequirethecoordinatedactivationofmanygenes.AsaregulatorofsmallGproteinꎬGuaninenucleotidedissociationinhibitorRBS1isinvolvedinresponsetoReactiveOxygenSpecies(ROS)stressinplants.Howeverꎬitsmechanismremainedunclear.TheRNAivectorsforspecificandconservativesequenceofRBS1genewereconstructedandtransformedintoArabidopsisꎬrespectively.125and90transgeniclineswereidentifiedbyBastaresistancescreening.ThesetransgeniclineswillbeusedtostudythefunctionsoftheRBS1genefamilybythereversegeneticmethod.Keywords:㊀reactiveoxygenspeciesꎻRNAiꎻRBS10㊀引言高等植物中ꎬ活性氧(ROS)作为重要的信号分子参与调节多种生物和非生物胁迫引起的防御性㊀㊀反应ꎬ包括干旱㊁高温㊁高盐㊁高光㊁重金属毒害及病菌入侵等[1].由这些胁迫诱导产生的活性氧包括超氧阴离子O-2ꎬ羟基自由基HO-㊁过氧化氢H2O2及单线态氧O∗2等[2].产生的活性氧通过脂质和蛋白质氧化及核酸的降解造成细胞损伤.但植物细胞是怎样感知活性氧?特定的活性氧受体还没有得到鉴定.与传统方法如反义核酸(antisenseDNA/RNA)相比ꎬRNAi技术在特异地沉默目的基因的表达上ꎬ更为高效和可靠.在最近发展的生物技术中ꎬRNAi技术在植物辅助育种中作为遗传材料创建的精确而有力的工具被广泛使用[3].科学家们已经将RNAi技术应用于植物营养品质及特定性状的改良ꎬ包括高产㊁抗病㊁抗虫及花形㊁花色等方面的研究[4ꎬ5].孟加拉红(RoseBengalꎬRB)能够与蛋白质结合产生单线态氧O∗2[6ꎬ7]ꎬ本研究在前期研究基础上筛选到一株RB敏感突变体ꎬ命名为rbs1.RBS1编码一个鸟苷酸解离抑制因子ꎬ为更好地研究RBS1基因功能ꎬ本文拟通过RNAi技术ꎬ利用双元载体pFGC5941形成目的基因片段的反向重复结构ꎬ通过农杆菌介导的拟南芥转化ꎬ产生拟南芥RBS1基因沉默突变体ꎬ从而为研究RBS1基因功能及相关信号转导途径提供遗传材料.1㊀材料和方法1.1㊀实验材料拟南芥(ArabidopsisthalianaL.)野生型(Col-0生态型).菌株及质粒载体:E.coli菌株DH5αꎬ农杆菌菌株GV3101ꎬ双元质粒载体pFGC5941由美国Arizona大学ThePlantChromatinDatabase构建并提供.主要试剂:利福平㊁卡那霉素㊁除草剂Basta购自Sigma公司ꎬ限制性内切酶XmaI㊁XbaI㊁XhoI㊁NcoI购自NEB公司ꎬDNA凝胶回收试剂盒㊁质粒提取试剂盒㊁DNA连接试剂盒购自TAKARA公司ꎬKOD高保真酶购自TOYOBO公司ꎬ其他生化试剂盒药品使用国产分析纯或进口分装.实验所用引物由北京金维智公司合成.1.2㊀试验方法1.2.1㊀拟南芥的种植取适量干燥饱满的拟南芥种子ꎬ加入0.1%升汞ꎬ表面消毒5minꎬ用无菌水反复洗涤5~6次ꎬ将种子点播于0.6%MS培养基中ꎬ4ħ处理2~3dꎬ将种子置于培养间培养(光/暗周期为8/16hꎬ温度18~22ħꎬ光照强度120μmol/(m2 s)ꎬ相对湿度80%)ꎬ生长约2周后ꎬ移植至土中(营养土ʒ蛭石=1ʒ1)进行培养ꎬ10~12周即可收获种子.1.2.2㊀拟南芥总RNA的提取及cDNA的合成拟南芥幼苗总RNA的提取及cDNA的合成参考文献[8]的方法进行.1.2.3㊀PCR产物的检测和载体的构建按照标准的分子生物学方法[9]进行ꎬ以野生型拟南芥cDNA为模板ꎬ分别利用引物SF:5ᶄ ̄CCCCTCGAGCCCGGGTGTTCAAACCCTAATCCA ̄3ᶄ(方框和划线部分分别为限制性内切酶XhoI㊁XmaI的识别位点)ꎬSR:5ᶄ ̄CCCCCATGGTCTAGACCAAGTAGTCATCATCGT ̄3ᶄ(方框和划线部分分别为限制性内切酶NcoI㊁XbaI的识别位点)及引物CF:5ᶄ ̄CCCCTCGAG12㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀孟飒飒ꎬ等:拟南芥RBS1基因RNAi载体构建及遗传转化子的筛选㊀㊀CCCGGGGCTCGATTCCAAGGAGGA ̄3ᶄ(方框和划线部分表示同上)和CR:5ᶄ ̄CCCCCATGGTCTAGAGAGCGTATGAGCAACAGAACAA ̄3ᶄ(方框和划线部分表示同上)通过PCR克隆AtRBS1基因编码特异序列(367bp)及保守序列(411bp).其中特异序列片段PCR产物经凝胶回收后ꎬ用XmaI和XbaI双酶切ꎬ酶切产物纯化后与XmaI和XbaI双酶切的载体pFGC5941连接ꎬ连接产物转化E.coliDH5α感受态细胞ꎬ通过菌落PCR挑选阳性克隆ꎬ测序验证所获得的载体pFGC5941-RBS1ꎬ此重组载体中RBS1的特异片段S反向连入载体中ꎻ再用上述SF及SR引物重新扩增特异片段Sꎬ此次经凝胶回收后的S片段用XhoI和NcoI双酶切ꎬ酶切产物纯化后与XhoI和NcoI双酶切的重组载体pFGC5941-RBS1连接ꎬ连接产物转化E.coliDH5α感受态细胞ꎬ通过XhoI和NcoI双酶切获取阳性克隆ꎬ测序验证所获得的重组载体pFGC5941-RBS1Sꎬ此重组载体中RBS1基因的特异片段S分别以正向和反向重复连入pFGC5941载体中.以同样方法构建RBS1基因的保守片段C分别以正向和反向重复连入重组载体pFGC5941-RBS1C.1.2.4㊀农杆菌介导的拟南芥遗传转化及转基因苗的筛选采用热激法将重组质粒pFGC5941-RBS1S及pFGC5941-RBS1C分别导入农杆菌GV3101感受态细胞ꎬ涂板筛选ꎬ挑选单菌落摇菌ꎬ用菌液PCR检测目的基因的存在.拟南芥农杆菌转化采用花序侵染法[10].将农杆菌侵染后收获的种子通过Basta除草剂抗性筛选获取转基因阳性苗.2㊀结果与分析2.1㊀RBS1蛋白质氨基酸序列保守性分析为了构建RBS1基因的敲除突变体ꎬ首先利用ClustalW软件对RBS1蛋白的氨基酸序列保守性进行分析.发现RBS1蛋白具有非常保守的基序GEXXQGFXRXXAXXG(图1)ꎬ同时RBS1与同家族RBS2及RBS3蛋白的同源性比较近ꎬ分别达到76.85%和77.75%ꎬ而和RBS4的同源关系比较远ꎬ同源性仅为19.18%.根据生物信息学分析的结果ꎬ确定RBS1特异序列为一段从59~200的氨基酸的序列ꎬ所对应的基因编码序列长度为367bpꎻ同时发现RBS1保守序列为从210~370的氨基酸序列ꎬ且该保守序列中包含高度保守的GEXXQGFXRXXAXXG基序ꎬ其对应的基因编码序列长度为411bp.分析得到的特异序列及保守序列分别作为构建RBS1基因敲除突变体的参考序列.图1㊀RBS1蛋白质氨基酸序列保守性分析2.2㊀RBS1基因序列特异区RNAi载体pFGC5941-RBS1S的构建为获得RBS1基因敲除同时又不影响同家族其他基因表达的RNAi转基因植株ꎬ本实验首先以野生型拟南芥cDNA为模板ꎬ以引物SF和SR扩增RBS1特异片段SꎬPCR产物用1.0%琼脂糖凝胶电泳检测ꎬ在接近367bp处有明显亮带ꎬ其大小与预期的RBS1特异区片段一致(图2A)ꎬ切胶回收.将回收的目的片段和pFGC5941空载体分别用XmaI和XbaI限制性内切酶双酶切ꎬ双酶切产物跑胶㊁回收ꎬT4DNA连接酶16ħ过夜连接ꎬ热激转化E.coliDH5αꎬ涂卡那抗生素平板ꎬ37ħ过夜培22㊀㊀㊀辽宁大学学报㊀㊀自然科学版2020年㊀㊀㊀㊀A.RBS1基因特异序列(S)片段的克隆ꎬ1代表克隆的S片段ꎻB.pFGC5941-RBS1载体的双酶切验证ꎬ泳道1代表重组载体的质粒PCRꎬ泳道2代表重组载体的双酶切ꎻC.pFGC5941-RBS1S载体的双酶切验证ꎻD.构建成功RNAi载体转入农杆菌的鉴定ꎬ1代表菌落PCR结果.M代表Marker2000.下同.图2㊀RBS1基因特异序列RNAi载体的构建养ꎬ取边缘整齐透亮的菌落ꎬ扩菌落PCRꎬ取阳性菌落摇菌ꎬ提取重组质粒ꎬ质粒PCRꎬ双酶切验证ꎬ发现插入基因片段S与重组质粒PCR扩增片段大小一致(图2B)ꎬ此时S片段反向连入pFGC5941载体ꎬ命名为pFGC5941-RBS1.之后再次用SF及SR引物重新扩增RBS1特异片段Sꎬ将PCR产物跑胶回收后ꎬ和以上构建的重组质粒pFGC5941-RBS1分别用XhoI和NcoI限制性内切酶双酶切ꎬ跑胶ꎬ切胶回收ꎬT4DNA连接酶16ħ过夜酶连ꎬ涂平板培养ꎬ挑选单菌落摇菌提质粒ꎬ质粒双酶切验证证实S片段正向S片段正向连入载体pFGC5941-RBS1中(图2C)ꎬ此重组载体命名为pFGC5941-RBS1S(由于是第二次酶切ꎬ该重组载体本身含有目的片段ꎬ质粒PCR检测不能说明问题ꎬ因此仅用双酶切检验).经两次双酶切及连接将RBS1特异片段Sꎬ正反向重复连进载体pFGC5941.将测序正确的pFGC5941-RBS1S-RNAi重组载体转化农杆菌ꎬ农杆菌菌落PCR(图2D)ꎬ选阳性菌落摇菌按照1.2.2的方法转化野生型拟南芥植株.图3㊀RBS1基因保守序列RNAi载体的构建2.3㊀RBS1氨基酸序列保守区RNAi载体pFGC5941-RBS1C的构建虽然前期生物信息学分析结果显示RBS1与该家族其他基因同源性比较高ꎬ且保守区域可能为RBS1的功能区ꎬ为尽可能获取RBS1功能缺失突变体ꎬ本实验又构建了以RBS1保守区为靶序列的RNAi重组载体pFGC5941-RBS1C.构建具体过程与以RBS1特异区为靶序列的RNAi重组载体pFGC5941-RBS1S的构建过程类似(图3).同样将双酶切验证及测序均正确㊁确认RBS1保守区序列正反向重复插入的pFGC5941-RBS1C-RNAi重组载体转化农杆菌ꎬ农杆菌菌落PCRꎬ选阳性菌落摇菌按照1.2.2的方法转化野生型拟南芥植株.A.pFGC5941-RBS1S-RNAi转基因植株的筛选ꎻB.筛选出转基因阳性植株的特写图4㊀pFGC5941-RBS1S-RNAi转基因植株的筛选2.4㊀pFGC5941-RBS1-RNAi转基因植株的筛选将上述农杆菌介导的RNAi转基因植株T1代种子收获ꎬ干燥后撒播于营养土中ꎬ春化3天后ꎬ移至培养间培养.待幼苗长出两片子叶后即用35mg/L的Basta进行喷洒筛选ꎬ非抗性苗经Basta喷洒后叶子变黄枯死ꎬ而筛选出的转基因阳性植株依然能够正常生长(图4).经过多次筛选初步得到以RBS1保守区为沉默靶序列的转基因植株125个株系ꎬ以RBS1特异区为沉默靶序列32㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀孟飒飒ꎬ等:拟南芥RBS1基因RNAi载体构建及遗传转化子的筛选㊀㊀的转基因植株90个株系.将阳性转基因株系移植ꎬ单株收种子繁殖ꎬ为随后的RBS1基因功能检测打下基础.3㊀讨论基因过表达已经被用于分析基因功能ꎬ但这种方法不是对所有蛋白质都可行ꎬ而且结果难以解释.T-DNA插入或者EMS诱变导致的基因缺失可以阐释蛋白质的功能ꎬ但这些方法耗时㊁昂贵ꎬ而且可能导致胚胎致死表型ꎬ所以相比其他方法ꎬRNAi技术提供了一种非常高效并且能阻止某个特异性基因表达的方法ꎬ具有更大的优势与潜力[11ꎬ12].RNAi技术在研究植物基因功能时应用广泛[13-16].一般在基因沉默实验中ꎬ为了能特异沉默目的基因ꎬ往往选择蛋白特异序列作为沉默的靶序列.但很多时候ꎬ蛋白保守序列也往往是蛋白的功能域结构ꎬ因此试验中仅仅沉默基因特异序列未必能达到基因沉默的目的.本实验中ꎬ在拟南芥网站中未能查到RBS1基因的T-DNA插入突变体ꎬ生物信息学分析显示该基因主要在花药中表达[17]ꎬ这些结果暗示ꎬ该基因与植物育性有关ꎬ并且其功能缺失突变体可能致死ꎬ因此构建RNAi转基因株系以获取低水平表达突变体就成为研究该基因功能的理想工具.本实验中分别成功构建了旨在敲除RBS1特异序列和敲除RBS1保守序列的两个RNAi双元载体ꎬ确保达到敲低RBS1基因的目的.活性氧不仅调节植物生长和发育过程ꎬ而且也介导生物与非生物胁迫响应过程[18-20].本研究前期筛到rbs1是活性氧敏感突变体ꎬ因此ꎬ获得RNAi转基因植株后的下一步工作是评估所筛选阳性RNAi转基因植株的沉默效率ꎬ选择基因敲除植株检测活性氧相关表型ꎬ为以后深入研究RBS1的生物学功能和作用机制奠定基础.参考文献:[1]㊀PerezIꎬBrownPJ.TheroleofROSsignalingincross ̄tolerance:frommodeltocrop[J].FrontPlantSciꎬ2014ꎬ5(754):1-6.[2]㊀ApelKꎬHirtH.Reactiveoxygenspecies:metabolismꎬoxidativestressꎬandsignaltransduction[J].Annu.RevPlantBiolꎬ2004ꎬ55:373-399.[3]㊀MatJalaluddinNSꎬOthmanRYꎬHarikrishnaJA.GlobaltrendsinresearchandcommercializationofexogenousandendogenousRNAitechnologiesforcrops[J].CritRevBiotechnolꎬ2019ꎬ39(1):67-78.[4]㊀GuoQꎬLiuQꎬSmithNAꎬetal.RNAsilencinginplants:mechanismsꎬtechnologiesandapplicationsinhorticulturalcrops[J].CurrGenomicsꎬ2016ꎬ17:476-489.[5]㊀SaurabhSꎬVidyarthiAꎬPrasadD.RNAinterference:concepttorealityincropimprovement[J].Plantaꎬ2014ꎬ239:543-564.[6]㊀PospíšilPꎬPrasadA.FormationofsingletoxygenandprotectionagainstitsoxidativedamageinPhotosystemIIunderabioticstress[J].JPhotochemPhotobiolBꎬ2014ꎬ137:39-48.[7]㊀TurbayMBꎬReyVꎬArgañarazNMꎬetal.Effectofdyelocalizationandself ̄interactionsonthephotosensitized42㊀㊀㊀辽宁大学学报㊀㊀自然科学版2020年㊀㊀㊀㊀generationofsingletoxygenbyrosebengalboundtobovineserumalbumin[J].JPhotochemPhotobiolBꎬ2014ꎬ141:275-282.[8]㊀刘凌云ꎬ孟飒飒.拟南芥活性氧响应基因GDI功能初步分析[J].河南大学学报(自然科学版)ꎬ2013ꎬ43:672-676.[9]㊀JosephSꎬDavidWR.MolecularCloning:ALaboratoryManual[M].NewYork:ColdSpringHarborLaboratoryPressꎬ2001.[10]㊀CloughSJꎬBentAF.Floraldip:AsimplifiedmethodforAgrobacterium ̄mediatedtransformationofArabidopsisthaliana[J].PlantJꎬ1998ꎬ16:735-743.[11]㊀CoveySꎬAl ̄KaffNꎬLangaraAꎬetal.Plantcombatinfectionbygenesilencing[J].Natureꎬ1997ꎬ385(6619):781-782.[12]㊀RatcliffFꎬHarrisonBꎬBaulcombeD.Asimilaritybetweenviraldefenseandgenesilencinginplants[J].Scienceꎬ1997ꎬ276(5318):1558-1560.[13]㊀ChengHꎬLiHꎬDengYꎬetal.TheWRKY45 ̄2 ̄WRKY13 ̄WRKY42TranscriptionalRegulatoryCascadeIsRequiredforRiceResistancetoFungalPathogen[J].PlantPhysiologyꎬ2015ꎬ167(3):1087-1099.[14]㊀WeibergAꎬBellingerMꎬJinH.Conversationsbetweenkingdoms:smallRNAs[J].CurrentOpinioninBiotechnologyꎬ2015ꎬ32:207-215.[15]㊀WuJXꎬLiJꎬLiuZꎬetal.TheArabidopsisceramidaseAtACERfunctionsindiseaseresistanceandsalttolerance[J].PlantJꎬ2015ꎬ81(5):767-780.[16]㊀YounisAꎬSiddiqueMIꎬKimCKꎬetal.RNAInterference(RNAi)InducedGeneSilencing:APromisingApproachofHi ̄TechPlantBreeding[J].IntJBiolSciꎬ2014ꎬ10(10):1150-1158.[17]㊀WinterDꎬVinegarBꎬNahalHꎬetal.An ElectronicFluorescentPictograph browserforexploringandanalyzinglarge ̄scalebiologicaldatasets[J].PLOSOneꎬ2007ꎬ2(8):e718.[18]㊀LiuYꎬHeC.Regulationofplantreactiveoxygenspecies(ROS)instressresponses:learningfromAtRBOHD[J].PlantCellReportsꎬ2016ꎬ35(5):995-1007.[19]㊀ChapmanJMꎬMuhlemannJKꎬGayombaSRꎬetal.RBOH ̄DependentROSSynthesisandROSScavengingbyPlantSpecializedMetabolitesToModulatePlantDevelopmentandStressResponses[J].ChemResToxicolꎬ2019ꎬ32(3):370-396.[20]㊀WangJꎬZhangLꎬWangXꎬetal.PvNAC1increasesbiomassandenhancessalttolerancebydecreasingNa+accumulationandpromotingROSscavenginginswitchgrass(PanicumvirgatumL.)[J].PlantSciꎬ2019ꎬ280:66-76.(责任编辑㊀李㊀超)52㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀孟飒飒ꎬ等:拟南芥RBS1基因RNAi载体构建及遗传转化子的筛选。

拟南芥 CWINV1启动子 GUS 表达载体构建及转基因植株的鉴定

拟南芥 CWINV1启动子 GUS 表达载体构建及转基因植株的鉴定

拟南芥 CWINV1启动子 GUS 表达载体构建及转基因植株的鉴定程姣;黄弈;任春梅【摘要】CWINV 是编码细胞壁蔗糖转化酶的基因。

为深入探讨 CWINV 基因的表达调控机理,构建了拟南芥 CW-INV1基因启动子的 GUS 融合表达载体并转入拟南芥,获得了转基因植株。

GUS 染色的结果进一步验证了重组表达载体的正确性和实用性。

%CWINV gene encoding the cell wall invertase.CWINV play an important role in plant growth and development, especially blooming,fruit setting,seed formation and other reproductive development period.But its function has not been e-lucidated in detail.In order to further exploring the mechanism of CWINV gene expression and regulation,the plant expres-sion vectors of CWINV1 gene promoter was constructed with GUS fused report genes,and then transformed into Arabidopsis, transgenic plants were obtained.GUS staining results further verifies the correctness and practicability of the recombinant expression vector.【期刊名称】《作物研究》【年(卷),期】2016(030)003【总页数】4页(P237-240)【关键词】拟南芥;CWINV1;载体构建;GUS 染色【作者】程姣;黄弈;任春梅【作者单位】湖南农业大学生物科学技术学院,长沙 410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙 410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙 410128; 作物基因工程湖南省重点实验室,长沙 410128【正文语种】中文【中图分类】Q78蔗糖转化酶是一种最常见的酶,存在于酵母、细菌和植物中,在植物中能够不可逆地催化蔗糖的水解反应,生成葡萄糖和果糖,因此,蔗糖转化酶在高等植物蔗糖代谢中起着关键的作用。

拟南芥HGO基因启动子与GUS融合表达载体的构建及转化鉴定

拟南芥HGO基因启动子与GUS融合表达载体的构建及转化鉴定

拟南芥"G O基因启动子与G U S融合表达载体的构建及转化鉴定蔡薇支添添任春梅^(1湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128; 2作物基因工程湖南省重点实验室,长沙410128)摘要:i/GO基因编码的尿黑酸1,2双加氧酶催化酪氨酸降解途径中的倒数第三步。

本研究构建了拟南芥i/GO 基因启动子与GUS的融合表达载体,采用农杆菌介导法转化拟南芥获得转基因株系。

经GUS组织化学染色鉴 定,证明拟南芥ffGO基因启动子与GUS的融合表达载体成功构建且能正常启动GUS基因的表达,为深人研究拟 南芥//GO基因的表达特征创建了有价值的材料。

关键词:拟南芥;ffGO;启动子;同源重组;基因克隆中图分类号:Q784 文献标识码:A文章编号:1〇〇1-5280(2017)03~0256~04 DOI :10. 16848/j. cnki. issn. 1001-5280. 2017. 03. 09Cloning and Transformation of the HGO Promoterfrom Arabidopsis thalianaCAI Wei^ZHI Tiantian'REN Chunmei1’2*(1 College of Bioscience and Biotechnology,Hunan Agricultural University, Changsha, Hunan 410128 , China;2 Crop Gene Engineering Key Laboratory of Hunan Province, Changsha, Hunan 410128 , China)A bstract:The HGO gene encodes the 1,2- homogentisate dioxygenase,which catalyzes the last third step in the Tyr degra­dation pathway. In this study, a fusion expression vector of Arabidopsis thaliana HGO gene promoter and GUS gene was con­structed and transformed into Arabidopsis thaliana by Agrobacterium - mediated transformation. Results from histochemical GUS assay suggested that fusion expression vector of HGO gene promoter and GUS gene was successfully constructed and it drives the expression of GUS gene successfully. Our results create valuable materials for studying the expression character­istics of HGO gene in Arabidopsis thaliana.K.eyw〇Tds-.Arabidopsis thaliana;HGO;promoter;homologous recombination;gene cloning酪氨酸降解途径在动物体内是必不可少的一条 代谢途径[1],尿黑酸1,2双加氧酶(homogentisatedioxygenase,HGO)是酪氨酸降解途径中倒数第三步,可将尿黑酸氧化分解成马来酰乙酰乙酸,再经马 来酰乙酰乙酸异构酶作用形成延胡索酰乙酰乙酸,最后在延胡索酰乙酰乙酸酶(fumarylacetoacetate hydrolase,FAH)的作用下形成乙酰乙酸和延胡索酸进入三羧酸循环彻底分解[2]。

拟南芥转化流程

拟南芥转化流程

拟南芥转化流程拟南芥(Arabidopsis thaliana)是一种常用的模式植物,被广泛用于植物生物学研究。

拟南芥转化是指将外源基因导入拟南芥的过程,通过转化技术,可以使拟南芥表达特定的基因,从而研究基因功能、调控机制以及植物生长发育等方面的问题。

下面将详细介绍拟南芥转化的流程。

一、前期准备工作在进行拟南芥转化之前,首先需要准备一些实验材料和试剂。

这些包括拟南芥种子、培养基、细菌菌株、质粒载体等。

同时还需要准备一些实验器材,如离心管、琼脂糖凝胶、PCR仪等。

二、质粒构建在进行拟南芥转化之前,需要构建含有目标基因的质粒。

质粒通常由多个部分组成,包括启动子、目标基因、选择标记等。

在构建质粒时,需要使用PCR技术扩增目标基因,并经过酶切、连接、转化等步骤,最终得到完整的质粒。

三、细菌转化和筛选构建好的质粒需要通过细菌转化来扩增。

将质粒导入适当的细菌菌株中,利用培养基和培养条件培养细菌,使其扩增质粒。

之后,通过筛选等手段,得到含有目标质粒的细菌菌落。

四、DNA提取和验证从筛选出的细菌菌落中提取质粒DNA,可以使用商业化的DNA提取试剂盒进行提取。

提取得到的DNA需要进行酶切鉴定,通过PCR扩增目标基因进行验证。

同时,还可以使用限制性片段长度多态性(RFLP)等技术对质粒进行进一步的验证。

五、拟南芥转化得到验证合格的质粒后,就可以进行拟南芥转化了。

常用的转化方法有农杆菌介导法和冷冻法。

在农杆菌介导法中,将构建好的质粒导入农杆菌中,然后将农杆菌与拟南芥叶片进行共培养,利用农杆菌的侵染能力将质粒导入拟南芥细胞中。

而冷冻法则是将拟南芥种子与农杆菌共同处理,通过冷冻和解冻的过程,使质粒导入拟南芥种子中。

六、筛选和培养转化完成后,需要对转化成功的拟南芥进行筛选和培养。

通常会在培养基中添加适当的选择标记,如抗生素等,以筛选出含有目标基因的拟南芥植株。

筛选出的植株可以继续培养,在适当的生长条件下进行生长发育观察和功能验证。

几个拟南芥器官特异性启动子的克隆和功能验证

几个拟南芥器官特异性启动子的克隆和功能验证
②方向性。启动子是一种有方向性的顺式调控元件,有单向启动子和双向启动子两 类。

③位置特异性。启动子一般位于所启动转录基因的上游或基因内的前端。处于基因 的下游或在基因的上游但离所要启动的基因太远的启动子,~般都不会起作用。
④种属特异性。原核生物的不同种、属,真核生物的不同组织都具有不同类型的启 动子,但一般来说,亲缘关系越近的两种物种,其启动子通用的可能性越大llJ。
植物启动子的顺式元件除了上述共有的保守碱基序列外,不同来源的启动子还通常 具有种属特异的或者仅局限于某种基因家族特有的调节基序。如高度保守的G框:其共 通序列为5 CACGTG 3,它需要与另一个顺式作用元件结合,在细胞接受外界信号时对 转录起始的频度起调节作用。醇溶谷蛋白框:保守序列为5 ACATGTGTAAAGGTGAAT 3位于.300区,但醇溶谷蛋白基因只有在内胚乳表达【51。豆球蛋白框:其保守序列为5 TCCATAGCCATGCATGCTGAAGAATATC 3,该序列指导成熟种子的特异表达,具有 一种数量调节的特性16J。
genes,play a crucial role in flowering transition and activation of flower organ identity genes. In this study,three different 5’一lfy’S promoter deletion fragments are cloned from arabidopsis,
论文作者签名: 豸p易勿
日期:
08年5月 30日
学位论文使用授权说明
本学位论文作者完全了解学校有关保留、使用学位论文的规定,即:
按照学校要求提交学位论文的印刷本和电子版本;学校有权保存并向国家有关 部门或机构送交论文的复印件和电子版,并提供目录检索与阅览服务;学校可以允 许采用影印、缩印、数字化或其它复制手段保存学位论文;在不以赢利为目的的前 提下,学校可以公开学位论文的部分或全部内容。(保密论文在解密后遵守此规定)

拟南芥PR-1基因启动子的克隆与植物表达载体的构建

拟南芥PR-1基因启动子的克隆与植物表达载体的构建

拟南芥PR-1基因启动子的克隆与植物表达载体的构建薛淑媛;李群;李冠【期刊名称】《生物技术》【年(卷),期】2008(18)3【摘要】根据已报道的拟南芥(Arabidopsis thaliana L.)病程相关蛋白基因(PR-1)序列设计引物,通过PCR技术从拟南芥中扩增得到水杨酸诱导表达的PR-l基因启动子片段,序列分析表明,该启动子含910bp核苷酸,与已报道的序列比较,核苷酸的同源性为99.7%。

将该启动子构建到植物表达载体pBI121上,获得病程相关蛋白基因(PR-1)启动子驱动的GUS报告基因的植物表达载体pBI-pr1p,将其转入根癌农杆菌GV3101,通过农杆菌介导转化拟南芥,获得转基因拟南芥植株,为深入研究寄主-病原物相互作用的分子机理奠定基础。

【总页数】4页(P6-9)【关键词】拟南芥;病程相关蛋白基因启动子;载体pBI-121;根癌农杆菌GV3101【作者】薛淑媛;李群;李冠【作者单位】新疆大学生命科学与技术学院生物工程研究所【正文语种】中文【中图分类】Q782【相关文献】1.小拟南芥 HDG12基因的克隆、生物信息学分析及植物表达载体的构建 [J], 梁志强;孔德真;李辉玲;裴娟;祝建波;王爱英2.拟南芥干旱胁迫诱导型启动子RD29B驱动AtCKX1基因植物表达载体的构建[J], 高喜乐;吴国江;李美茹3.拟南芥rd29A启动子的克隆及植物表达载体构建 [J], 申丽婕;于月华;刘娜;梁承娟;汪晓东;谷月好;崔雪;张振清;倪志勇4.Col生态型拟南芥AP3基因启动子克隆及植物表达载体构建 [J], 范丙友;高水平;侯小改;胥华伟;史国安;孔祥生5.拟南芥ACOS5基因启动子的克隆和表达载体构建 [J], 李亚琴;陈燕;郑帮;孙虎林;周树敏;张卫因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

芥菜AGL24基因的启动子克隆与其互作因子SOC1遗传转化研究

芥菜AGL24基因的启动子克隆与其互作因子SOC1遗传转化研究

芥菜AGL24基因的启动子克隆与其互作因子SOC1遗传转化研究芥菜(Brassica juncea Coss.)是一种著名的十字花科芸薹属蔬菜作物。

研究芥菜的抽薹开花及其调控机理,对于芥菜栽培生产和品种选育等研究有着重要的指导意义。

近年来,在模式植物拟南芥的研究中发现了180多种与开花调控相关的基因,它们被归类于6条开花调控途径,分别为:光周期途径、春化途径、温敏途径、年龄途径、自主途径和赤霉素途径。

开花整合子(floral integrator)能够整合不同途径中的开花信号,形成网络通路,最终调控抽薹与开花时间。

其中,SUPPRESSOR OF OVEREXPRESSION OF CONSTANS1(SOC1)和AGAMOUS-LIKE24(AGL24)就是两个重要的开花信号整合子。

在拟南芥中发现SOC1和AGL24能形成正反馈调节环,彼此正向调控对方的mRNA水平,促进二者共同高水平表达,以调节开花。

在芥菜作物中,SOC1和AGL24之间是否也有这种调节机制,它们之间的调控模式如何,目前尚不清楚。

为了阐明芥菜SOC1蛋白与AGL24基因相互作用机制,本研究重点检测了SOC1蛋白是否能作为转录因子与AGL24启动子相互作用,并参与启动AGL24的表达。

首先,根据已知的芥菜AGL24基因序列,通过染色体步移法克隆得到AGL24启动子序列。

其次,构建AGL24启动子截短体与SOC1酵母单杂交重组表达载体,通过酵母单杂检测了相互作用及其作用区域。

最后,还获得了SOC1正反义转基因芥菜体系。

意在为以后深入研究SOC1蛋白对AGL24基因的表达调控奠定基础。

试验结果详述如下:1、芥菜AGL24启动子的克隆与生物信息学分析提取芥菜基因组DNA,根据已知的AGL24基因序列,设计染色体步移法中3个特异性引物,巢式PCR扩增得到AGL24的5’端启动子区域3020bp,经NCBI序列比对发现为芥菜AGL24基因5’端启动子序列。

拟南芥HGO基因启动子与GUS融合表达载体的构建及转化鉴定

拟南芥HGO基因启动子与GUS融合表达载体的构建及转化鉴定

拟南芥HGO基因启动子与GUS融合表达载体的构建及转化鉴定蔡薇;支添添;任春梅【期刊名称】《作物研究》【年(卷),期】2017(31)3【摘要】HGO基因编码的尿黑酸1,2双加氧酶催化酪氨酸降解途径中的倒数第三步.本研究构建了拟南芥HGO基因启动子与GUS的融合表达载体,采用农杆菌介导法转化拟南芥获得转基因株系.经GUS组织化学染色鉴定,证明拟南芥HGO基因启动子与GUS的融合表达载体成功构建且能正常启动GUS基因的表达,为深入研究拟南芥HGO基因的表达特征创建了有价值的材料.%The HGO gene encodes the 1,2-homogentisate dioxygenase,which catalyzes the last third step in the Tyr degradation pathway.In this study,a fusion expression vector of Arabidopsis thaliana HGO gene promoter and GUS gene was constructed and transformed into Arabidopsis thaliana by Agrobacterium-mediated transformation.Results from histochemical GUS assay suggested that fusion expression vector of HGO gene promoter and GUS gene was successfully constructed and it drives the expression of GUS gene successfully.Our results create valuable materials for studying the expression characteristics of HGO gene in Arabidopsis thaliana.【总页数】4页(P256-259)【作者】蔡薇;支添添;任春梅【作者单位】湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128;作物基因工程湖南省重点实验室,长沙410128【正文语种】中文【中图分类】Q784【相关文献】1.拟南芥 CWINV1启动子 GUS 表达载体构建及转基因植株的鉴定 [J], 程姣;黄弈;任春梅2.拟南芥PJAZ1:JAZ1-GUS表达载体的构建与鉴定 [J], 黄潇;吕天晓;范甜;谢楚萍;周玉萍;田长恩3.拟南芥<i>SSCD</i>1基因启动子与GUS重组载体的构建与转化 [J], 刘佩琳;支添添;任春梅4.拟南芥AtGSTZ1基因启动子与GUS重组载体的构建及转化 [J], 蒋嘉彦;董文;黄崇瑞;彭怡;黄丽华;胡超;5.荠菜TPD1基因启动子与GUS基因表达载体的构建及拟南芥遗传转化 [J], 何金花; 杨正修; 姜路华; 方磊; 赵燕因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

Botanical Research 植物学研究, 2018, 7(3), 287-293Published Online May 2018 in Hans. /journal/brhttps:///10.12677/br.2018.73037Construction and Transformationof Recombinant Plasmid of GeneSSCD1 Promoter and GUS Genein Arabidopsis thalianaPeilin Liu1, Tiantian Zhi1, Chunmei Ren1,2*1College of Bioscience and Biotechnology, Hunan Agricultural University, Changsha Hunan2Crop Gene Engineering Key Laboratory of Hunan Province, Changsha HunanReceived: Apr. 22nd, 2018; accepted: May 16th, 2018; published: May 23rd, 2018AbstractThe tyrosine degradation pathway is an important metabolic pathway in animals, but in plants, less is known about this pathway. Our previous study found that: in Arabidopsis thaliana, the SSCD1 gene encodes the final enzyme of the tyrosine degradation pathway, fumarate lace to ace-tate hydrolase (FAH), and mutation of this gene results in cell death in Arabidopsis under short day. To investigate the tissue expression characteristics of the SSCD1gene, a fusion expression vector of Arabidopsis thaliana SSCD1 gene promoter and GUS gene was constructed and trans-formed into Arabidopsis thaliana, and the transgenic plant was obtained and identified by GUS histochemical staining. The GUS histochemical staining showed that the GUS gene driven by the SSCD1 gene promoter was strongly expressed in the hypocotyls, but weakly in the cotyledons and roots. However, the expression was almost absent in the true leaves. The results of this study in-dicate that the SSCD1 gene plays a more important role in hypocotyls, which is very important for deeply exploring tyrosine degradation pathway in plants.KeywordsArabidopsis, SSCD1 Mutant, Tyrosine Degradation Pathway, GUS拟南芥SSCD1基因启动子与GUS重组载体的构建与转化刘佩琳1,支添添1,任春梅1,2**通讯作者。

刘佩琳等1湖南农业大学生物科学技术学院,湖南长沙2作物基因工程湖南省重点实验室,湖南长沙收稿日期:2018年4月22日;录用日期:2018年5月16日;发布日期:2018年5月23日摘要酪氨酸降解途径是动物中一条重要的代谢途径,而在植物中对该途径了解较少。

我们前期研究发现:在模式植物拟南芥中,SSCD1基因编码酪氨酸降解途径最后一个酶——延胡索酰乙酰乙酸酶(fumaryl acetoacetate hydrolase),该基因突变后导致拟南芥在短日照下出现细胞死亡。

为了探讨SSCD1基因的组织表达特征,本研究构建了拟南芥SSCD1基因启动子与GUS的融合表达载体并转入拟南芥,得到其转基因植株,经GUS组织化学染色,发现SSCD1基因启动子驱动的GUS基因在下胚轴中表达较强,子叶和根中表达较弱,而在真叶中几乎没有表达。

该研究结果表明SSCD1基因在下胚轴中发挥着更重要的作用,对深入探讨植物中酪氨酸降解途径具有重要的作用。

关键词拟南芥,SSCD1突变体,酪氨酸降解途径,GUSCopyright © 2018 by authors and Hans Publishers Inc.This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC BY)./licenses/by/4.0/1. 引言酪氨酸降解途径在动物体内发挥着重要作用,在人类和动物中若被阻断将会造成很严重的损伤,甚至死亡[1]。

延胡索酰乙酰乙酸酶(FAH)参与酪氨酸降解的最终途径,其主要作用是将延胡索酰乙酰乙酸水解成乙酰乙酸和延胡索酸进入三羧酸循环彻底分解[2]。

在动物中,FAH合成中断会导致动物患上酪氨酸血症并引起死亡[3]。

而在植物体内,编码FAH酶的SSCD1基因突变会导致拟南芥在短日照条件下发生细胞死亡,而长日照下表型正常[4],因此利用基因工程技术来研究SSCD1基因的表达模式有助于了解酪氨酸降解途径在植物体内的作用机制。

启动子处于基因转录起始位点的上游,其作为重要顺式元件参与了一系列基因的表达和调控,并能被RNA聚合酶识别与结合[5]。

将启动子与GUS基因融合,通过转基因实验验证基因的表达活性和组织特异性表达是研究基因表达模式的一种常用方法[6] [7]。

本试验以拟南芥为研究材料,通过构建SSCD1基因启动子以及GUS的融合表达载体,随后将其导入拟南芥植株内,通过抗性筛选得到稳定可遗传的转基因植株,进一步采用GUS组织化学染色,检测SSCD1基因的启动子是否成功转入和正常激活GUS基因。

本实验的完成为后续该基因的研究提供一定借鉴与帮助。

2. 试验材料与方法2.1. 试验材料2.1.1. 植物材料及培养条件拟南芥(Arabidopsis thaliana)野生型Col-0由湖南农业大学作物基因工程湖南省重点实验室植物信号刘佩琳等传导课题组提供。

使用消毒液(20% bleach + 0.1% Triton100)将拟南芥种子浸泡10 min,用无菌水于超净工作台上清洗3~4次,适当密度接种在MS固体培养基上。

4℃黑暗春化3 d后,转入人工气候箱生长,培养温度为(22 ± 2)℃,光周期为长日照(16 h光照/8 h黑暗) [8]。

2.1.2. 表达载体本试验采用的载体为pCAMBIA1301,该载体的启动子为35S启动子,标记基因为GUS 基因,抗性基因为卡那霉素抗性基因,植物筛选标记基因为潮霉素抗性基因。

2.1.3. 菌株本试验所用到大肠杆菌E. coli DH5α和根癌农杆菌GV3101均由湖南农业大学作物基因工程湖南省重点实验室植物信号传导课题组提供。

2.1.4. 试剂DNA提取试剂盒购自北京天根生化科技有限公司,PCR所用的反应体系以及卡那霉素和氨苄青霉素均购自于北京TaKaRa公司,质粒提取试剂盒和切胶回收试剂盒购自于AXYGEN公司,酶切连接用到的试剂以及PstI酶和NcoI酶均购自北京宝生物工程有限公司,其他试剂购自于国药集团化学试剂有限公司。

2.1.5. 培养基LB培养基配方为胰蛋白胨10 g/L,酵母粉5 g/L,NaCl 10 g/L,琼脂粉15 g/L (固体培养基需要加),调pH = 7.0;YEB培养基配方为胰蛋白胨10 g/L,酵母粉10 g/L,NaCl 5 g/L,琼脂粉15 g/L (固体培养基需要加),调pH = 7.0。

2.2. 试验方法2.2.1. 拟南芥总DNA的提取根据DNA提取试剂盒中的说明书进行提取。

2.2.2. PCR引物的设计及SSCD1基因启动子的扩增通过TAIR网站获取拟南芥SSCD1的基因启动子序列,经软件plantcare分析后选取ATG前2000 bp 序列(启动子区域),利用Primer Premier 5软件设计其特异性引物SSCD1-F/SSCD1-R,在5’端分别加上PstI和NcoI酶切位点,引物序列为:SSCD1-F,5’-AACTGCAGCTCTCCAACGACAACT-3’(下划线处为酶切位点PstI)SSCD1-R,5’- CATGCCATGGTGACGATACAGATAC-3’(下划线处为酶切位点NcoI)使用高保真酶对试剂盒提取的拟南芥野生型Col-0基因组DNA进行PCR扩增。

退火温度根据引物合成时的预测温度生成(退火温度为60℃)。

将扩增得到的PCR产物经琼脂糖(1.0%)凝胶电泳检测,然后回收目的条带并纯化。

2.2.3. SSCD1启动子基因与GUS融合载体重组将pCAMBIA1301质粒载体(参照质粒提取试剂盒说明书获得载体)和扩增得到的SSCD1启动子片段用PstI和NcoI限制性内切酶在37℃下双酶切过夜,得到的线性载体与启动子片段分别回收后在T4连接酶作用下连接至预期位点,载体构建如图1。

体系为10 × T4 Buffer 2 μL,线性化载体6 μL,插入片段扩增产物1 μL,T4 ligase 0.5 μL,ddH2O 10.5 μL。

将配置好的体系16℃过夜。

从−80℃冰箱里取出大肠杆菌感受态细胞,置于冰上融化,加入20 μL连接产物混匀,在冰上放置30 min;42℃热击90 s,然后迅速转至冰浴,放置1~2 min,加入700 μL LB液体培养基,37℃摇床下振荡培养45 min,6000 g室温下离刘佩琳等Figure 1. Construction of vector p SSCD1::pC1301图1. p SSCD1::pC1301载体构建心2 min,去部分上清(剩100 μL),然后混匀浓缩菌液,取50 μL菌液均匀涂布于含50 mg/L Kan的LB 固体培养基上,于37℃恒温培养箱倒置,培养过夜[9] [10]。

相关文档
最新文档