无菌检查操作规程2015
无菌检查操作规程
无菌检查操作规程文件编号:版本:编制/日期:审核/日期:批准/日期:受控状态:批准实施1 目的为了规范产品无菌检查操作,编制本规程。
2 适用范围本规程适用于产品无菌检查。
3 职责3.1 检验室负责对产品无菌检查的取样和化验,并填写报告;3.2 品管部经理负责签发检查报告。
4 工作程序(见《中国药典》2015年版)4.1 无菌检查法系用于检查药典要求无菌的药品、生物制品、医疗器具、原料、辅料、及其他品种是否无菌的一种方法。
若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品在该检验条件下未发现微生物污染。
无菌检查应在环境洁净度B 级背景下的局部A 级洁净度的单向流空气区域内或隔离系统中进行,其全过程应严格遵守无菌操作,防止微生物污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度确认。
隔离系统应定期按相关的要求进行验证,其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。
日常检验还需对试验环境进行监控。
4.2 无菌检查人员必须具备微生物专业知识,并经过无菌技术的培训。
4.3 培养基及其制备方法硫乙醇酸盐流体培养基主要用于厌氧菌的培养,也可用于需气菌培养;胰酪大豆胨液体培养基适用于真菌和需气菌的培养。
培养基的制备及培养条件培养基可按以下处方制备,亦可使用按该处方生产的符合规定的脱水培养基。
配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。
制备好的培养基应保存在2~25℃、避光的环境,若保存于非密闭容器中,一般在3 周内使用;若保存于密闭容器中,一般可在一年内使用。
4.3.1 硫乙醇酸盐流体培养基(用于培养好氧菌、厌氧菌)酪胨(胰酶水解) 15.0g 氯化钠 2.5g葡萄糖 5.0g 新配制的0.1%刃天青溶液 1.0mlL-胱氨酸 0.5g 硫乙醇酸钠(或硫乙醇酸0.3ml) 0.5g琼脂 0.75g 酵母浸出粉 5.0g水 1000ml除葡萄糖和刃天青溶液外,取上述成分混合,微温溶解,调节 pH 为弱碱性,煮沸,滤清,加入葡萄糖和刃天青溶液,摇匀,调节pH 值使灭菌后为7.1±0.2。
GMP-无菌检查操作规程
1.目的:建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。
2.范围:适用于本厂质监科化验室对本厂生产的注射剂进行无菌检查。
3.责任:化验员有责任按本操作规程操作,并对检验结果负责。
4.定义:无菌检查法系指检查药品是否无菌的一种方法。
5.内容:5.1无菌操作设备:无菌操作室或超净工作台,无菌衣、口罩、帽子、消毒鞋、酒精灯等。
5.1.1无菌室分无菌操作室和缓冲间。
在缓冲间内应有洗手盆、干手器、无菌衣放置架及挂钩、拖鞋等。
无菌操作室应具有空气除菌过滤的层流装置,局部洁净度100级超净工作台。
缓冲间及操作室内均设置能达到空气消毒的紫外光灯和照明灯,操作室或工作台应保持空气正压。
5.1.2无菌室应每周和每次操作前用0.1%新洁尔灭或2%甲酚液擦拭操作台及可能污染的死角,开动无菌空气过滤器及紫外光灯杀菌1小时。
在每次操作完毕,同样用2%甲酚或0.1%新洁尔灭溶液擦拭工作台面,用紫外光灯杀菌半小时。
5.1.3无菌室的无菌程度检查:无菌室在消毒处理后,无菌试验前及操作过程中需检查空气中菌落数。
取直径90mm双碟,在接种室内点燃酒精灯,在酒精灯旁,以无菌操作,将双碟半开注入溶化的营养琼脂培养基约20ml,制成平板:在35-37℃预培养48小时,证明无菌后将3个平板以无菌方式带入无菌操作间的洁净区域左、中、右各放1个;打开碟盖扣置,平板在空气中暴露30分钟后将盖盖好,置35-37℃培养48小时,取出检查,3个平板上生长的菌落数相加总数不得超过10个。
无菌操作台面或超净工作台应定期请有关部门检测其洁净度,应达到100 级(一般用尘埃粒子计数仪),检测尘埃粒径≤5μm的粒数不得超过3.5个/升;空气流量应控制在0.75-1.0m3/s;细菌菌落数平均<1个,可根据无菌状况定期置换过滤器。
5.1.4无菌室内应准备好盛有消毒用5%甲酚的玻璃缸、酒精灯、火柴、镊子、75%酒精棉及拖鞋等。
5.2仪器、用具:5.2.1真空泵、恒温培养箱、生物显微镜、托盘天平(精度0.1g)、抽滤瓶(500ml)、三角瓶(100、500 ml)、移液管(1、10ml)、注射器(要求规格)、试管、双碟(9cm)、注射针、镊子、剪刀、白金耳、橡皮管、纱布、棉花(原棉)、不锈钢吸管筒、接种环、微孔滤膜(直径约5cm),孔径应在0.45±0.02μm )载玻片、洒精灯、取样勺、吸耳球、喷雾瓶。
无菌检查操作规程
无菌检查操作规程无菌检查操作规程无菌检查是医疗卫生机构的重要工作之一,是确保手术操作和医疗器械的安全有效性的必要操作。
本文将详细介绍无菌检查的操作规程。
一、无菌检查前准备1.收集必要的无菌检查器具,如指套、无菌钳、口罩等。
2.穿戴严密的无菌工作服和手术帽,要求紧贴身体,无污染。
3.清洁工作台面和清理无菌区的地面,准确地摆放器具,以使工作区面积最大化。
4.设定无菌检测计时器和偏光镜。
5.检查仪器是否器具过期,并做好记录。
二、无菌检查程序1.无菌检查前要先洗手,并在手部戴上0级无菌手套,以保证手部不会对无菌操作产生污染。
2.按照有关技术操作要求,用户在操作过程中应遵循严格的操作程序,按规定时间和密闭条件完成无菌操作。
3.使用特制口罩,以减少口腔的细菌排放。
4.无菌操作过程中,必须避免与外界发生接触。
如果需要进行人员进出等活动,必须在无菌状态下进行。
5.在完成无菌操作后,对已安装的无菌器具进行检查。
如发现污染或异常,必须及时更换或处理。
6.对于发现无法执行无菌操作原则的器具需要及时进行处理、保留记录,不得进入无菌资料保存范围内。
7.无菌操作完成后,器具必须储存在有关的储存库中,做好记号,并严格实行发放原则。
三、无菌检查后处理1.除去手套并脱穿手术服之后都要再次手洗。
2.检查各种登记单、记录表格的更新,并原样归档。
3.及时整理无菌工作区,对无菌区域内的物品进行清洗和整理。
4.定时地进行系统、设备、器具的清理和维护,并进行记录以便复查。
4.做好无菌器具、设备的外观和功能的检查,有问题及时报告或处置。
5.在每次结束无菌检查操作之后,要对检查器具和环境进行检查,检查是否符合无微量、无孔度和微生物数量的要求,确保工作质量。
结论无菌检查是医学工作中重要的环节之一,必须严格按照规定程序执行,保障手术操作和医疗器械的安全有效性。
同时,也需前后准备工作、归档整理和对设备的维护以做好应急处理。
操作人员必须具有清洁消毒、设备保障、清洁管理等基本知识,以确保医疗卫生的质量和安全。
无菌检查标准操作规程
无菌检查标准操作规程无菌检查法是检查要求无菌的药品、医疗器具、原料、辅料及要求无菌的其他物品是否染有活菌的一种方法。
事实上,若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品在该检验条件下未发现细菌和真菌污染。
无菌检查法有薄膜过滤法、直接接种法两种方式。
细菌培养温度32.5℃±2.5℃,真菌培养温度25.5℃±2.5℃。
1 无菌检查的环境无菌检查的所有操作均需在严格控制微生物污染的环境下进行,操作环境的无菌保证程度将直接影响无菌检查用洁净室(区)环境的稳定性,确保检查结果的可考性,对洁净室(区)的环境质量采取合理的控制措施和评价方法是必要的。
无菌检查应在环境洁净度10000级和局部洁净度100级的单向留空气区域内或隔离系统中进行,其全过程笔削严格遵守无菌操作,防止微生物污染。
单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。
隔离系统按相关的要求进行验证,其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。
无菌室应采光良好、避免潮湿、远离厕所及污染区。
面积一般不超过10m2,不小于5m2;高度不超过2.4m。
由1~2个缓冲间、操作间组成(操作间和缓冲间的门不应直对),操作间与缓冲间之间应具备灭菌功能的样品传递箱。
在缓冲间内应有洗手盆、毛巾、无菌衣裤放置架及挂钩、拖鞋等,不应放置培养箱和其他杂物;无菌室内应六面光滑平整,能耐受清洗消毒。
墙壁与地面、天花板连接处应呈凹弧形,无缝隙,不留死角。
操作间内不应安装下水道。
无菌操作室应具有空气除菌过滤的单向流空气装置,操作区洁净度100级或放置同等级别的超净工作台,室内温度控制18~26℃,相对湿度45%~65%。
缓冲间及操作室内均应设置能达到空气消毒效果的紫外灯或其他适宜的消毒装置,空气洁净级别不同的相邻房间之间的静压差应大于5Pa,洁净室(区)与室外大气的静压差大于10Pa。
无菌室内的照明灯应嵌装在天花板内,室内光照应分布均匀,光照度不低于300lx。
无菌检查操作规程
无菌检验操作规程文件编号:BR3-SR0版本:01制定:______________ 日期:______________审核:______________日期:______________批准:______________日期:______________广州保瑞医疗技术有限公司修订记录序修订内容摘要版本变更日期号《无菌检验操作规程》2016-02-22 1生效时间2016.02.22 页次4-1 1.目的建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。
2.范围本规程适用于本公司一次性使用体腔热灌注治疗管道组件的无菌检测3.职责负责对一次性使用体腔热灌注治疗管道组件的无菌检测4.内容4.1检验依据《中华人民共和国药典2015年版》1101 无菌检查法4.2仪器、设备超净工作台、电热干燥箱、恒温培养箱、压力蒸汽灭菌器、集菌仪、电子天平、PH计、冰箱、恒温水浴锅、酒精灯、三角烧瓶,接种环、镊子,试管架,大试管若干等。
4.3.培养基4.3.1需气菌、厌气菌培养基(硫乙醇酸盐流体培养基)4.3.2 霉菌培养基(胰酪大豆胨琼脂培养基)4.3.3 培养基的无菌性检查每批配制的培养基均应进行无菌性检查(可与产品无菌检验同步进行)。
检查时,每批培养基随机取不少于5支(瓶)培养14天,应无菌生长。
4.4.无菌检验室的环境要求4.4.1无菌检验应在环境洁净度10000级下的局部百级的单向流空气区域内进行。
4.4.2 缓冲区与外界环境、无菌检验室与缓冲区之间空气应保持正压,阳性对照室与缓冲区之间空气应保持负压。
无菌检验室与室外大气之间静压差应大于10Pa。
无菌检验室的室温应保持18~26℃,相对湿度:45~65%。
4.4.3 无菌检验室的单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子》和《医药工业洁净室(区)沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行悬浮粒子每月检测一次,沉降菌的监测每周检测一次。
6.4 无菌检验过程中应同时检查超净工作台单向流空气中的菌落数:每次操作时在层流空气所及台面的左中右置3个营养琼脂平板,暴露30min,于30~35℃培养48小时,菌落数平均应不超过1CFU/平板。
无菌检验标准操作规程(最全)
无菌检验标准操作规程一、目的无菌检验是指检查经灭菌方法处理后的医疗器械(具)、植入物品、敷料等是否达到无菌标准的一种方法。
临床部门不应常规进行无菌检验,如有需要,可联系当地疾病预防控制中心派专人来采样检测。
二、试验前准备1.无菌检验应在洁净度为100级以上的洁净实验室内实施,并证实该实验室各项指标符合GB50073—2001《洁净厂房设计规范》、GB/T16292~16294—1996《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》等相关要求,且在有效期范围之内。
2.按卫生部《消毒技术规范》(2002年版)制备无菌检验用洗脱液、需氧一厌氧培养基与真菌培养基(见附)。
3.在无菌检验前三日,分别在需氧一厌氧培养基与真菌培养基内各接种1ml洗脱液,分别置30~35℃与20~25℃:培养72h,应无菌生长。
4.阳性对照管菌液制备:(1)在检验前一天取金黄色葡萄球菌[CMCC(B)26003]的普通琼脂斜面新鲜培养物,接种一环至需氧一厌氧培养基内,在30~35℃培养16~18h 后,用0.9%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml(可通过比浊法或稀释后用1m1接种平板来确认)。
(2)取生孢梭菌[CMCC(B)64941]的需氧菌、厌氧菌培养基新鲜培养物一接种环种于相同培养基内,于30~35℃培养18~24h后,用0.85%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml。
(3)取白念珠菌[CMCC(F)98001]真菌琼脂培养基斜面新鲜培养物一接种环种于相同培养基内,于20~25℃培养24h后,用0.85%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml。
三、样本制备根据检样的类型与大小,以及带孔(腔)与否,可以按照以下不同的方法进行制备。
1.敷料类等非管道类样品:取2个包装内的样本,剪成约10mm×30mm 大小的样片21片,接种需氧一厌氧菌培养管5管与真菌培养管2管。
每培养管含培养基40m1,各接种3片样片。
无菌检查标准操作规程
无菌检查标准操作规程无菌检查法是检查要求无菌的药品、医疗器具、原料、辅料及要求无菌的其他物品是否染有活菌的一种方法。
事实上,若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品在该检验条件下未发现细菌和真菌污染。
无菌检查法有薄膜过滤法、直接接种法两种方式。
细菌培养温度32.5℃±2.5℃,真菌培养温度25.5℃±2.5℃。
1 无菌检查的环境无菌检查的所有操作均需在严格控制微生物污染的环境下进行,操作环境的无菌保证程度将直接影响无菌检查用洁净室(区)环境的稳定性,确保检查结果的可考性,对洁净室(区)的环境质量采取合理的控制措施和评价方法是必要的。
无菌检查应在环境洁净度10000级和局部洁净度100级的单向留空气区域内或隔离系统中进行,其全过程笔削严格遵守无菌操作,防止微生物污染。
单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。
隔离系统按相关的要求进行验证,其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。
无菌室应采光良好、避免潮湿、远离厕所及污染区。
面积一般不超过10m2,不小于5m2;高度不超过2.4m。
由1~2个缓冲间、操作间组成(操作间和缓冲间的门不应直对),操作间与缓冲间之间应具备灭菌功能的样品传递箱。
在缓冲间内应有洗手盆、毛巾、无菌衣裤放置架及挂钩、拖鞋等,不应放置培养箱和其他杂物;无菌室内应六面光滑平整,能耐受清洗消毒。
墙壁与地面、天花板连接处应呈凹弧形,无缝隙,不留死角。
操作间内不应安装下水道。
无菌操作室应具有空气除菌过滤的单向流空气装置,操作区洁净度100级或放置同等级别的超净工作台,室内温度控制18~26℃,相对湿度45%~65%。
缓冲间及操作室内均应设置能达到空气消毒效果的紫外灯或其他适宜的消毒装置,空气洁净级别不同的相邻房间之间的静压差应大于5Pa,洁净室(区)与室外大气的静压差大于10Pa。
无菌室内的照明灯应嵌装在天花板内,室内光照应分布均匀,光照度不低于300lx。
医疗器械无菌检查操作规程
医疗器械无菌检查操作规程1.目的建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。
2。
适用范围本规程适用于本公司质管部对本厂生产的一次性微波消融针的无菌检测。
3.职责质量部负责实施。
4.内容4。
1检验依据4。
1.1产品注册标准4。
1.2《中华人民共和国药典2015年版》无菌检查法4.2仪器、设备超净工作台、电热干燥箱、恒温培养箱、压力蒸汽灭菌器、集菌仪、电子天平、PH计、冰箱、恒温水浴锅、酒精灯、三角烧瓶,接种环、镊子,试管架,大试管若干等。
4。
3培养基及稀释液4.3。
1需气菌、厌气菌培养基:硫乙醇酸盐流体培养基;4。
3.2 霉菌培养基:大豆酪蛋白肉汤培养基;4。
3.3 培养基的无菌性检查每批配制的培养基均应进行无菌性检查(可与产品无菌检验同步进行)。
检查时,每批培养基随机取不少于5支(瓶)培养14天,应无菌生长;4.3。
4稀释液pH7。
0 氯化钠—蛋白胨缓冲液,9g/L无菌氯化钠溶液;4.4无菌检验室的环境要求(1)无菌检验应在环境洁净度10000级下的局部百级的单向流空气区域内进行。
(2)缓冲区与外界环境、无菌检验室与缓冲区之间空气应保持正压,阳性对照室与缓冲区之间空气应保持负压.无菌检验室与室外大气之间静压差应大于10Pa.无菌检验室的室温应保持18~26℃,相对湿度:45~65%。
(3) 无菌检验室的单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的监测.(4)无菌检验过程中应同时检查超净工作台单向流空气中的菌落数:每次操作时在层流空气所及台面的左中右置3个TSA琼脂平板,暴露30min,于30~35℃培养48小时,菌落数平均应不超过1CFU/平板。
4.5无菌检验前的准备4。
5.1 器具灭菌、消毒可经压力蒸汽灭菌器内121℃蒸汽灭菌30分钟后使用。
4。
5。
2 人员、物料进入无菌检验室开启紫外线灯或臭氧发生器进行空间灭菌处理,消毒时间不得少于30min。
医疗器械无菌检查操作规程
医疗器械无菌检查操作规程1.目的建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。
2.适用范围本规程适用于本公司质管部对本厂生产的一次性微波消融针的无菌检测。
3.职责质量部负责实施。
4.内容检验依据产品注册标准《中华人民共和国药典2015年版》无菌检查法仪器、设备超净工作台、电热干燥箱、恒温培养箱、压力蒸汽灭菌器、集菌仪、电子天平、PH计、冰箱、恒温水浴锅、酒精灯、三角烧瓶,接种环、镊子,试管架,大试管若干等。
培养基及稀释液需气菌、厌气菌培养基:硫乙醇酸盐流体培养基;霉菌培养基:大豆酪蛋白肉汤培养基;培养基的无菌性检查每批配制的培养基均应进行无菌性检查(可与产品无菌检验同步进行)。
检查时,每批培养基随机取不少于5支(瓶)培养14天,应无菌生长;稀释液氯化钠-蛋白胨缓冲液,9g/L无菌氯化钠溶液;无菌检验室的环境要求(1)无菌检验应在环境洁净度10000级下的局部百级的单向流空气区域内进行。
(2)缓冲区与外界环境、无菌检验室与缓冲区之间空气应保持正压,阳性对照室与缓冲区之间空气应保持负压。
无菌检验室与室外大气之间静压差应大于10Pa。
无菌检验室的室温应保持18~26℃,相对湿度:45~65%。
(3)无菌检验室的单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的监测。
(4)无菌检验过程中应同时检查超净工作台单向流空气中的菌落数:每次操作时在层流空气所及台面的左中右置3个TSA琼脂平板,暴露30min,于30~35℃培养48小时,菌落数平均应不超过1CFU/平板。
无菌检验前的准备器具灭菌、消毒可经压力蒸汽灭菌器内121℃蒸汽灭菌30分钟后使用。
人员、物料进入无菌检验室开启紫外线灯或臭氧发生器进行空间灭菌处理,消毒时间不得少于30min。
物料进入无菌检验室流程进入无菌操作室的所有培养基、供试品等的外表都应采用适用的方法进行消毒处理,以避免将外包装污染的微生物带入无菌检验室。
ZZ-38 无菌检查操作规程
1.每批供试液分别接种于需气菌、厌气菌培养基5管,其中1管接种金黄色葡萄球菌1ml,供作阳性对照,另接种霉菌培养基2管,供试液的每管接种量与培养基的分装量按表1规定。
表1
供试液总量
每管接种量
培养基分装量
≤2ml
0.5
15
>2~20ml
1.0
15
>20ml
5.0
40
2.接种后需气菌、厌气菌培养基在30~35℃培养5天,霉菌培养基在20~25℃培养7天,培养期间,应每日检查有无杂菌、霉菌生长,阳性对照管需在24小时内长菌。
3.如在加入供试液后,培养基出现混浊或沉淀,经培养不能从外观上判断时,可取该培养液转种入另一支相同的培养基中或斜面培养基上,培养48~72小时后,观察是否再出现混浊或在斜面上有无菌生长,并在转种的同时,取少量培养液涂片制成染色标本,用显微镜观察是否有菌生长。
生物指示剂的检测
一、菌后由专职检验员收集原放置的生物指示剂送往生化室。
2.培养基的要求
(1).在使用前,细菌培养基经30~35℃培养48小时,霉菌培养基经20~25℃培养72小时,证明无菌方可使用。
(2).制备好的需气菌、厌气菌培养基在4℃左右保存,15天内用完,管内厌气区小于液面高度的三分之一不得使用,其它培养在30天内用完。
3.培养基质量检查
(1).需气菌、厌气菌培养基经接种每1ml含100个以下的籐黄八叠球菌(28001)菌液1ml,置30~35℃培养24小时后,应生长良好。
5.无菌、无热原的接受瓶的准备
用500ml的具塞三角烧瓶用水、肥皂洗涤后,再浸入洗液中浸泡24小
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日期
无菌检验操作规程
生效日期
产品无菌检查操作规程(含表格)
产品无菌检查操作规程(ISO13485-2016/YYT0287-2017)1.0目的规范产品无菌检查过程,使无菌检查操作、控制等符合ChP2015规定。
2.0适用范围适用于产品的无菌检查操作和控制。
3.0引用/参考文件ChP2015实用药品微生物检验检测技术指南《微生物实验室管理规程》《菌种管理规程》《培养基管理规程》《工作环境控制程序》4.0职责微生物QC负责根据本规程执行产品无菌检查,QA负责实施监督并参与OOS调查。
5.0程序5.1术语和定义无菌检查系用于检查药品药典要求的医疗器具、原料、辅料及其他品种是否无菌的一种方法。
若供试品符合无菌检查的的规定,仅表明供试品在该检验条件下未发现微生物污染。
5.2环境无菌检查区域应该符合B+A的要求,环境应该定期进行监测,监测的频率及要求参照《微生物实验室管理规程》和《工作环境控制程序》执行。
5.3仪器与设备电子天平、高压蒸汽灭菌锅、生化培养箱、霉菌培养箱、试管、镊子、酒精灯等。
5.4培养基硫乙醇酸盐流体培养基、胰酪大豆胨液体培养基、pH7.0NaCl-蛋白胨缓冲液或无菌生理盐水。
5.5菌种因产品无抑菌作用,选择以金黄色葡萄球菌作为阳性对照菌。
5.6无菌检查操作5.6.1方法选择因产品为胶原黏膜,不溶于冲洗液,无法进行过滤,选择直接接种法进行无菌检查。
5.6.3抽样量与检验量5.6.3.1抽样量每个灭菌批应该对其中的不同生产批单独抽样检测。
产品批量抽样数量≤100 10%或4件(取较多者)100<N≤200 10件>500 2%或20件(取较少者)5.6.3.2检验量供试品采用无菌操作均分为两份。
2015年版微生物限度检验操作规程.
青岛**有限公司文件目的建立微生物限度检查操作规程,规范操作,保证结果的准确性。
范围成品、辅料、内包装袋及纯化水的检验。
责任品管部微生物限度检验人员内容概述:本检验操作规程依据中国药典2015年版四部《通则1105 非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法》和《通则1106 非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法》进行检查。
微生物计数法一、计数方法1.微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
2、计数方法本法包括平皿法、薄膜过滤法。
3、计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性检查供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验,以确定采用的方法适合于该产品的微生物计数。
4、菌种及菌液的制备4.1试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0袋),并采用适宜的菌种保藏技术进行保藏。
计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验见表1。
4.2菌液制备按表1规定培养各试验菌株。
取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物,用PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液;取黑曲霉的新鲜培养物加入3-5ml含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱。
采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管中,用含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。
菌液制备后若在室温下放置,应在2小时内使用;若保存在2-8℃,可在24小时内使用。
黑曲霉孢子悬液可保存在2-8℃,在验证过的贮存期内使用。
表1 试验菌液的制备和使用4.3阴性对照为确认试验条件是否符合要求,应进行对照试验,阴性对照试验应无菌生长。
4.4培养基适用性检查按照表1规定,接种不大于100cfu的菌液至胰酪大豆胨液体培养基或胰酪大豆胨琼脂培养基平板或沙氏葡萄糖琼脂培养基平板,置规定的条件下培养。
无菌检查.操作规程
无菌检查.操作规程无菌检查是指对无菌状态的物品、器械、培养基等进行检查,以确定其是否具有无菌性的一种操作。
无菌检查主要是为了保证医疗器械和药品的质量,防止传播致病菌和交叉感染。
下面是无菌检查的操作规程,共1200字。
一、仪器与试剂准备1. 玻璃器皿:无菌检查中常使用的玻璃器皿应先清洗,然后用高压蒸汽高温灭菌。
确保玻璃器皿表面没有任何污物和细菌。
2. 培养基:根据需要选择适当的培养基,如营养琼脂、肉膏琼脂等。
使用前应检查培养基包装是否完好,是否过期,如有问题应废弃,以免影响检测结果。
3. 培养皿:无菌培养皿应提前准备好,如果有无细菌培养基的培养皿,最好优先选择使用。
4. 培养皿贴壁:无菌贴壁是为了避免液体滴入培养皿内引起细菌污染,使用前应检查贴壁是否完好。
5. 双口试管:用于无菌培养物的传递,提前准备好。
二、人员准备工作1. 手部卫生:进行无菌检查前,操作人员应进行手部卫生,包括洗手和消毒。
先用流动水清洗手部,然后使用75%酒精进行消毒。
2. 穿戴无菌操作服:无菌检查需要穿戴无菌操作服,操作服要求干净、整洁,且经过高温蒸汽灭菌。
穿戴手套前,应先检查手套是否完整、无损。
3. 工作台表面消毒:将工作台表面用70%酒精进行擦拭消毒,确保无菌操作环境。
三、操作步骤1. 取一份待检物品:如医疗器械或药品,然后进行外观检查。
确保物品包装完好,无明显损伤和破损。
2. 打开培养皿:将培养皿的盖子拉开一些,方便后续操作。
3. 将待检物品放入培养皿:用镊子或无菌力ps,将待检物品放入培养皿内,尽量避免让待检物品直接接触培养皿的边缘。
4. 培养皿倒置:将培养皿倒置放于工作台上,检查物品是否有菌落生成。
5. 灭菌培养皿口:用长火柴将培养皿上的边缘逐一燃烧,防止细菌飞溅和传播。
6. 检查结果:观察培养皿上是否有菌落生成。
如果有菌落,则证明待检物品不符合无菌要求;如果无菌皿上没有菌落生成,则证明待检物品具有无菌性。
7. 结果记录:将无菌检查结果记录在检验记录表格上,包括待检物品的名称、批号、检查日期等信息。
无菌检查操作规程
无菌【2 】检讨操作规程1.目标树立无菌检讨标准操作规程,确保检讨成果精确.靠得住.2.应用规模本公司无菌产品的无菌检讨3.职责质量部QC4.根据2015版《中国药典》公则1101GB/T 19973.2-2005(ISO11737-2:1998)《疗器械的灭菌微生物学办法第2部分:确认灭菌进程的无菌实验》GB/T 14233.2-2005 《医用输液.输血.打针器具磨练办法第 2部分:生物学实验办法》5.内容5.1.无菌检讨情形保障5.1.1.无菌检査的所有操作均需在严厉掌握微生物污染的情形下进行,即无菌检査应在情形干净度10000级下的局部干净度100级的单向流空气区域内或隔离体系中进行.5.1.2.操作情形的无菌保障程度将直接影响无菌检讨成果,为了保证无菌检讨用干净室(区)情形的稳固性,确保检讨成果的靠得住性,对干净室(区)的情形按期监测并采取合理的措施保证干净情形相符请求.5.1.3.无菌检讨全进程必须严厉遵照无菌操作,防止微生物污染.5.1.4.干净区的温度.湿度等参数必须相符响应干净级别的请求.5.1.5.无菌检讨操作还须要对检讨情形进行监控,5.2.造就基.稀释液.缓冲液5.2.1.硫乙醇酸盐流体造就基,市售造就基干粉.除尚有划定,接种后应置30~35℃造就.5.2.2.胰酪大豆胨液体造就基,市售造就基干粉.接种后应置20~35℃造就.5.2.3.中和或灭活用造就基,按上述硫乙醇酸盐流体造就基或胰酪大豆胨液体造就基的处方及制法,在造就基灭菌或应用前参加合适的中和剂.灭活剂或表面活性剂,其用量同办法实用性实验.5.2.4.胰酪大豆胨琼脂造就基,市售造就基干粉.5.2.5.沙氏葡萄糖液体造就基,市售造就基干粉.5.2.6.沙式葡萄糖琼脂造就基,市售造就基干粉.5.2.7.PH7.0氯化钠蛋白胨缓冲液,市售造就基干粉.5.2.8.0.9%无菌氯化钠溶液.5.2.9.造就基应用性检讨无菌检査用的硫乙醇酸盐流体造就基和胰酪大豆胨液体造就基等应符造就基的无菌性检査及敏锐度检査的请求.本检讨可在供试品的无菌检査或与供试品的无菌检査同时进行.5.2.9.1.无菌性检讨:每批造就基随机取5支(瓶),按各造就基划定的温度下造就14天,应无菌发展.5.2.9.2.敏锐度检讨5.2.9.2.1.菌种:造就基敏锐度检讨所用的菌株传代数不得超过5代(从菌种存中间获得的干菌种第0代),并采用合适的菌种保藏技巧进行保存,以证实验菌株的生物学特征 .金黄色葡萄球菌[CMCC(B)26 003]铜绿假单胞菌[CMCC(B)10 104]枯草芽孢杆菌[CMCC(B)63 501]生孢梭菌[CMCC(B)64 941]白色念珠菌[CMCC(F)98 001]黑曲霉[CMCC(F)98 003]5.2.9.2.2.菌液制备:接种金色葡萄球菌.铜绿假胞菌.枯草芽孢杆菌的造就物至胰酪大豆胨液体造就基中或胰酪大豆胨琼脂造就基上,接种生孢梭菌的造就物至硫乙醇酸盐流体造就基中,30〜35℃造就18〜24小时;接种白色念珠菌的造就物至沙氏葡萄糖液体造就基中或沙氏葡萄糖琼脂造就基上,20〜25℃造就24〜48小时,上述造就后的新颖造就物用PH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌化钠溶液制成每lml菌数小于100cfu(菌落形成)的菌悬液.接种黑曲霉的造就物至沙氏葡萄糖琼脂面造就基上,20〜25℃造就5〜7天,加人3〜5 ml 0.05%(ml/ml) 聚山梨酯80的pH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱.然后,采用合适的办法吸出孢子悬液至无菌试管内,用0.05%(ml/ml)聚山梨醋80的pH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成每lml孢子数目小于100cfu的孢子悬液.菌悬液若在室温下放置,应在2小时内应用;若保消失2〜8 ℃在24h 内应用.黑曲霉孢子悬液消失2〜8℃,在验证过的贮存期内用.5.2.9.2.3.造就基接种:取每管装量为12ml的硫乙醇酸盐流体造就基7支,分离接种小于100cfu的色葡萄球菌.铜绿假单胞菌.生孢梭菌各2支,另1支不接种作为空白对比,造就3天;取每管装量为9ml的胰酪大豆胨液体造就基7支,分离接种小于100cfu的草芽孢杆菌.白色念珠菌.黑曲霉各2支,另1支不接种作为空白对比,造就5天.每日不雅察结.5.2.9.2.4.成果剖断:空白管应无菌发展,加菌的管发展优越,解释该造就基敏锐度相符划定.5.3.办法试用性实验进行产品无菌检讨时,应进行办法实用性实验,以确认所采用的办法合适于产品的无菌检讨.若磨练程序或产品产生化可能影响磨练成果时,应从新进行办法实用性实验.办法实用性实验按“5.4供试品的无菌检讨”的划定及下列请求进行操作.对每一实验菌应一一进行办法.5.3.1.菌种及菌液的制备:大肠埃希菌[CMCC(B)44 102]外,金黄色葡萄球菌.枯草芽孢杆菌.生孢梭菌.白色念珠菌.黑曲霉的菌株及菌液制同“5.2.9.2造就基敏锐度检讨”.大肠埃希菌的菌液制同金黄色葡萄球菌.5.3.2.薄膜过滤法:每种造就基划定接种的供试品总量按薄膜过滤法过滤,冲洗,在最后一次的冲洗液中参加小于100cfu实验菌,过滤.加硫乙醇酸盐流体造就基或胰酪大豆胨液体造就基至滤筒内.另取一装有同体积造就基的容器,参加等量实验菌,作为对比.置划定温度下造就,造就时光不得超过5天,各实验菌同法作.5.3.3.直接接种法:取符直接接种法造就基用量请求的硫乙醇酸盐流体造就基6管,分离接入小于100cfu的金黄色葡萄球菌.大肠埃希菌.生孢梭菌各2管,取符直接接种法造就基用量请求的胰酪大豆胨液体造就基6管,分离接入小于100cfu的枯草芽孢杆菌 .白色念珠菌.黑曲霉各2管.个中1管接入每支造就基划定的供试品接种量,另1管尴尬刁难比,置划定的温度造就,造就时光不得超过5天.5.3.4.成果断定:与对比管比较,如供试品各容器中的实验菌均发展优越,则解释供试品的磨练量在磨练前提下无抑菌感化或其抑菌感化可以疏忽不计,照此检査办法和检讨前提进行供试品的无菌检讨.如供试品的任一容器中的实验菌发展微弱.迟缓或不发展,则解释供试品的磨练量在磨练前提下有抑菌感化,应采用增长冲洗量.增长造就基的用量.用中和剂或灭活剂.改换滤膜品种等办法,清除供试品的抑菌感化,并从新进行办法实用性实验.办法实用性实验与供试品的无菌检讨同时进行.5.4.供试品无菌检讨无菌检査法括薄膜过滤法和直接接种法.只要供试品性质许可,应采用薄膜过滤法.供试品无菌检讨所采用的检讨办法和磨练前提应与办法实用性实验确认的办法雷同.无菌实验进程中,若需用面活性剂.灭活剂.中和剂等试剂,应证实其有用性,且对微生物无毒性.5.4.1.磨练数目:除尚有划定外,按表1划定.5.4.2.磨练量:即接种量,除尚有划定外,按表2划定.5.4.3.阳性对比:应根据供试品特征选择阳性对比菌:无抑菌感化及抗革兰氏阳性菌为主的供试品,以金色葡萄球菌为对比菌;抗革兰氏阴性菌为主的供试品,以大肠埃希菌为对比菌;抗厌氧菌的供试品,以生孢梭菌为对比菌;抗真菌的供试品,以白色珠菌为对比菌.阳性对比实验的菌液制同“5.2.9.2造就基敏锐度检讨”,加菌量小于100cfu,供试品用量同供试品无菌检讨时每份造就基接种的样品量.阳性对比管造就72小时内应发展优越.5.4.4.阴性对比:供试品无菌检讨时,应取响应溶剂和稀释液.冲洗液同法操作,作为阴性对比.阴性对比不得有菌发展.5.4.5.供试品的处理及接种造就基操作时,用合适的消毒液对供试品容器面进行彻消毒,如供试品容器内有必定的真空度,可用合适的无菌器材(如带有除菌过滤的针头向容器内导入无菌空气,再按无菌操作启开容器掏出内物.5.4.5.1.薄膜过滤法:薄膜过滤法一般应采用关闭式薄膜过滤.无菌检査用的滤膜孔径应不大于0.45um,直径约50mm.根据供试品及其溶剂的特征选择滤膜材质.应用时,应保证滤膜在过滤前后的完全性.5.4.5.1.1.水溶性供试品:水溶性供试液过滤前应先将少量的冲洗液过滤,以润湿滤膜.取划定量,直接过滤,或混至含不少于100ml合适的稀释液的无菌容器中,混匀,立刻过滤.如供试品有抑菌感化,须用冲洗液冲洗滤膜,冲洗数一般不少于3次(每滤膜每次冲洗量一般为100ml,且冲洗量不得超过1000ml,以避免滤膜上的微生物受毁伤),所用的冲洗量.冲洗办法同办法实用性实验中肯定的.除生物成品外,一般样品冲洗后,1份滤器中加人100ml硫乙醇酸盐流体造就基,1份滤器中参加100ml胰酪大豆胨液体造就基.5.4.5.1.2.非水溶性供试品:取划定量,直接过滤;或混杂溶于适量含聚山梨酯80或其他合适乳化剂的稀释液中,充分混杂,立刻过滤.用含0.1%〜1 %聚山梨酯80的冲洗液冲洗滤膜至少3次.参加含或不含聚山梨酯80的造就基.接种造就基照水溶液供试品项下的办法作.5.4.5.1.3.具有导管的医疗器具(输血.输液袋等)供试品:取划定量,每个最小装用50〜100ml冲洗液分离冲洗内壁,收集冲洗液于无菌容器中,然后照水溶液供试品项下办法作.同时应采用直接接种法进行装中所配带的针头.针管的无菌检査.5.4.5.2.直接接种法:直接接种法实用于无法用薄膜过滤法进行无菌检査的供试品,即取划定量供试品分离等量接种至硫乙醇酸盐流体造就基和胰酪大豆胨液体造就基中.除生物成品外,一般样品无菌检讨时两种造就基接种的瓶或支数雷同.除尚有划定外,每个容器中造就基的用量不得大于接种到该容器中的供试品体积的10倍,同时,硫乙醇酸流体造就基每管装量不少于15ml,胰大豆胨液体造就基每管装量不少于10ml.供试品检査时,造就基的用量和髙度同办法实用性实验中肯定的.5.4.5.2.1.灭菌医用器具供试品:取划定量,必要时应将其拆散或切成小碎段,等量接种于各管以浸没供试品的适量造就基中.5.4.6.造就及不雅察:将上述接种供试品后的造就基容器分离按各造就基划定的温度造就14天;造就时代应每日不雅察并记载是有菌发展.如在参加供试品后或在造就进程中,造就基消失污浊,造就14天后,不能从外不雅上断定有无微生物发展,可取该造就液适量转种至同种新颖造就基中,造就3天,不雅察接种的同种新颖造就基是否再消失污浊;或取造就液涂片,染色,镜检,断定是否有菌.5.4.7.成果断定5.4.7.1.阳性对比管应发展优越 ,阴性对比管无菌发展,供试品管都无菌发展,则供试品相符划定.5.4.7.2.阳性对比管应发展优越,阴性对比管无菌发展,供试品管中有随意率性一管有菌发展,则供试品不相符划定.5.4.7.3.阳性对比管应发展优越 ,阴性对比管无菌发展,供试品管污浊,经确实无菌发展,则供试品相符划定;经确证有菌发展,则供试品不相符划定.5.4.7.4.有以下情形的,判实验无效.5.4.7.4.1.无菌检讨实验所用的装备及情形的微生物监控成果不相符无菌检讨法的请求.5.4.7.4.2.回想无菌实验进程,发明有可能引起微生物污染的身分,并且已经确证.5.4.7.4.3.供试品管中发展的微生物经剖断后,确证是因无菌实验中所用的物品和(或)无菌操作技巧不当引起的.5.4.7.5.实验若经确认无效,则应重试.重试时,从新取同量供试品,依法检讨,若无菌发展,判供试品符划定;如有菌发展,判供试品不符划定.6.相干文件《干净区尘埃粒子监测操作规程》《干净区沉降菌监测操作规程》《实验室干净区干净.消毒操作规程》《干净区情形监测治理规程》《ZW型集菌仪应用.保护操作规程》《SPX-150型生化造就箱应用.保护操作规程》《MJK-150型霉菌造就箱应用.保护操作规程》《SW-CJ系列干净工作台应用.保护规程》《阳性菌种治理规程》7.记载《无菌检讨原始记载》附表:表1:批出厂产品的起码磨练数目注:表中起码磨练数目不包括阳性对比用的供试品数目表2:供试品的起码磨练量注:假如医疗器械体积过大,造就基用量可再2000ml以上,将其全部完全浸没.无菌检讨原始记载(薄膜过滤法)磨练编号:磨练人/日期:复核人/日期:无菌检讨原始记载(直接接种法)磨练编号:无菌检讨原始记载(直接接种法)磨练编号:磨练人/日期:复核人/日期:。
无菌实验室操作规程
无菌实验室操作规程标题:无菌实验室操作规程引言概述:无菌实验室是进行微生物实验和培养的重要场所,严格的操作规程能够确保实验结果的准确性和可靠性。
本文将详细介绍无菌实验室操作规程,帮助实验人员正确操作,避免污染和误操作。
一、实验室准备1.1 确保实验室环境无菌:实验室内应经常进行消毒,保持空气清洁,避免微生物污染。
1.2 准备实验材料:提前准备好所需的培养基、试剂和器具,确保其无菌。
1.3 检查设备状态:检查培养箱、平台振荡器等设备是否正常运转,确保实验顺利进行。
二、个人操作规范2.1 穿戴实验服和手套:进入实验室前需穿戴干净的实验服和手套,避免外部微生物污染。
2.2 洗手消毒:进入实验室后,及时洗手并进行消毒,避免手部细菌污染实验物品。
2.3 避免交叉污染:每次操作前应更换手套,避免不同实验之间的交叉污染。
三、培养基制备3.1 精确称量:按照配方准确称量培养基成分,确保培养基质量准确。
3.2 消毒处理:将配制好的培养基装入试管或培养皿中,进行高温高压消毒处理,杀灭其中的微生物。
3.3 冷却保存:待培养基冷却后,放置在无菌条件下保存,避免污染。
四、微生物接种4.1 操作迅速:在无菌条件下,迅速将微生物接种到培养基上,避免空气中的细菌污染。
4.2 合理布局:将接种好的培养皿放置在培养箱中,合理布局,避免交叉污染。
4.3 注意观察:定期观察培养皿内微生物的生长情况,及时调整培养条件。
五、实验室清洁5.1 定期消毒:实验室设备和台面等应定期进行消毒,避免细菌滋生。
5.2 清洁整理:实验结束后,及时清洁实验台面和设备,保持整洁。
5.3 废弃物处理:实验后的培养皿、试管等废弃物应按规定进行处理,避免细菌外泄。
结论:无菌实验室操作规程对实验结果的准确性和可靠性起着至关重要的作用,实验人员应严格按照规程操作,确保实验过程的无菌性和准确性。
中国药典2015年版药品无菌检查操作规程
Table of Contents目录1.PURPOSE 目的 (2)2.SCOPE 范围 (2)3.REFERENCE 参考资料 (2)4.DEFINITIONS 定义 (2)5.AUTHORITY/RESPONSIBILITY 权责 (2)6.PROCEDURE 程序 (2)7.REVISON RECORDS 修订记录: (4)8.ATTACHMENT 附件: (4)1. PURPOSE目的本规程规定了实验室无菌检测程序。
2. SCOPE范围适用于xxx公司产品的无菌检验。
3. REFERENCE参考资料3.1 《中国药典》2015年版四部 1101 无菌检查法4. DEFINITIONS定义4.1 无菌检查法系用于检查药典要求无菌的药品、医疗器具、原料、辅料及其他品种是否无菌的一种方法。
若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品在该检验条件下未发现微生物污染。
5. AUTHORITY/RESPONSIBILITY权责5.1 QE人员负责取回具有代表性的样品并送至实验室。
5.2 经培训合格的微生物人员按规定进行检验。
6. PROCEDURE程序6.1 透析器的无菌检查图16.1.1 见图1,将三支样品用无菌管路串联,两头分别连接盐水瓶和集菌培养器。
6.1.2 集菌仪设定在220R。
用1500ml无菌含0.1%聚山梨酯80的PH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液冲洗。
6.1.3 冲洗液流到滤筒并浸没滤膜后,可以开始过滤。
一边冲洗样品,一边过滤,使液面维持在一定的高度(保持滤膜的浸没状态,如有必要,可以加、拔滤筒上方的塞子),直到所有冲洗液冲洗完毕。
6.1.4 待所有冲洗液过滤完毕,塞住滤筒底部。
6.1.5 往其中一个滤筒注入约100ml TSB,另外两个滤筒各注入约100ml FTM。
用夹子夹住各滤筒顶部的软管,然后剪断软管。
将软管的断口插入滤筒顶部呼吸器的接口。
6.1.6 将其中一管FTM从滤筒顶部的软管处用1ml的无菌注射器注入0.1ml的金黄色葡萄球菌悬液(<100cfu)作为阳性对照。
无菌检查标准操作规程
范围:无菌检查法包括直接接种法和薄膜过滤法。
前者适用于非抗菌作用的供试品,后者适用于有抗菌作用的或大容量的供试品。
职责:检验室对本规程的实施负责正文:1.操作前准备1.1试验设备、仪器用具1.1.1开放式滤器、真空泵、抽滤瓶1.1.2恒温培养箱(30℃~35℃)、生化培养箱(20℃~25℃)恒温水浴1.1.3高压蒸汽灭菌器、电热恒温干燥箱(250℃)1.1.4显微镜1.1.5玻璃器皿:试管、锥形瓶、量筒、培养皿(φ90mm)、刻度吸管(1、5、10ml)、注射器(5、10、20、30ml)、针头——洗净、晾干,用牛皮纸包扎严密,121℃蒸汽灭菌30分钟。
1.1.6手术镊、剪——160℃~180℃干烤2h。
1.2供试品等的处理供试品试验用盘、试管架等进入无菌室之前用消毒剂擦试。
1.3按无菌衣服的着装程序穿戴好无菌衣、帽、鞋。
2.检查2.1直接接种法2.1.1供试品的制备,按规定量取供试品混合。
2.1.2接种——取备妥的供试品,以无菌操作将该供试品分别接种于需、厌气菌培养基6管,其中1管接种金黄色葡萄球菌对照用菌液1ml作阳性对照,另接种于真菌培养基与5管,轻轻摇动,使供试品与培养基混合。
2.1.3培养——需、厌气菌培养基管置30-35℃培养箱中培养7日、真菌培养基管置20-25℃培养箱中培养7日,在培养期间应观察并记录是否有菌生长,阳性对照管在24小时内应有菌生长,如在加入供试品后,培养基出现浑浊,培养7天后,不能从外观上判断有无微生物生长,可取该培养液适量转种至同种新鲜培养基中或斜面培养基上继续培养,细菌培养2日真菌培养3日,观察是否再出现浑浊或斜面有无菌生长,或用接种环取培养液涂片、染色,用显微镜观察是否有菌。
——有轻微抑菌性的供试品可加入扩大量的每种培养基中,使供试品稀释至不含抑菌活性的。
2.2薄膜过滤法2.2.1抽滤——按该药品项下规定的方法处理后,加入0.9%无菌氯化钠溶液或其他适宜的溶液至少100ml的适当容积的容器中混合后,通过装有孔径不大于0.45μm的薄膜过滤器,然后用0.9%无菌氯化钠溶液或其他适宜的溶液冲洗滤膜至阳性对照菌正常生长为度。
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无菌检查操作规程1.目的建立无菌检查标准操作规程,确保检查结果准确、可靠。
2.使用范围本公司无菌产品的无菌检查3.职责质量部QC4.依据2015版《中国药典》通则1101GB/T 19973.2-2005(ISO11737-2:1998)《疗器械的灭菌微生物学方法第2部分:确认灭菌过程的无菌试验》GB/T 14233.2-2005《医用输液、输血、注射器具检验方法第2部分:生物学试验方法》5.内容5.1.无菌检查环境保障5.1.1.无菌检査的所有操作均需在严格控制微生物污染的环境下进行,即无菌检査应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内或隔离系统中进行。
5.1.2.操作环境的无菌保障程度将直接影响无菌检查结果,为了保证无菌检查用洁净室(区)环境的稳定性,确保检查结果的可靠性,对洁净室(区)的环境定期监测并采取合理的措施保证洁净环境符合要求。
5.1.3.无菌检查全过程必须严格遵守无菌操作,防止微生物污染。
5.1.4.洁净区的温度、湿度等参数必须符合相应洁净级别的要求。
5.1.5.无菌检查操作还需要对检查环境进行监控,5.2.培养基、稀释液、缓冲液5.2.1.硫乙醇酸盐流体培养基,市售培养基干粉。
除另有规定,接种后应置30~35℃培养。
5.2.2.胰酪大豆胨液体培养基,市售培养基干粉。
接种后应置20~35℃培养。
5.2.3.中和或灭活用培养基,按上述硫乙醇酸盐流体培养基或胰酪大豆胨液体培养基的处方及制法,在培养基灭菌或使用前加入适宜的中和剂、灭活剂或表面活性剂,其用量同方法适用性试验。
5.2.4.胰酪大豆胨琼脂培养基,市售培养基干粉。
5.2.5.沙氏葡萄糖液体培养基,市售培养基干粉。
5.2.6.沙式葡萄糖琼脂培养基,市售培养基干粉。
5.2.7.PH7.0氯化钠蛋白胨缓冲液,市售培养基干粉。
5.2.8.0.9%无菌氯化钠溶液。
5.2.9.培养基使用性检查无菌检査用的硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基等应符培养基的无菌性检査及灵敏度检査的要求。
本检查可在供试品的无菌检査或与供试品的无菌检査同时进行。
5.2.9.1.无菌性检查:每批培养基随机取5支(瓶),按各培养基规定的温度下培养14天,应无菌生长。
5.2.9.2.灵敏度检查5.2.9.2.1.菌种:培养基灵敏度检查所用的菌株传代数不得超过5代(从菌种存中心获得的干菌种第0代),并采用适宜的菌种保藏技术进行保存,以证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌[CMCC(B)26 003]铜绿假单胞菌[CMCC(B)10 104]枯草芽孢杆菌[CMCC(B)63 501]生孢梭菌[CMCC(B)64 941]白色念珠菌[CMCC(F)98 001]黑曲霉[CMCC(F)98 003]5.2.9.2.2.菌液制备:接种金色葡萄球菌、铜绿假胞菌、枯草芽孢杆菌的培养物至胰酪大豆胨液体培养基中或胰酪大豆胨琼脂培养基上,接种生孢梭菌的培养物至硫乙醇酸盐流体培养基中,30〜35℃培养18〜24小时;接种白色念珠菌的培养物至沙氏葡萄糖液体培养基中或沙氏葡萄糖琼脂培养基上,20〜25℃培养24〜48小时,上述培养后的新鲜培养物用PH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌化钠溶液制成每lml菌数小于100cfu(菌落形成)的菌悬液。
接种黑曲霉的培养物至沙氏葡萄糖琼脂面培养基上,20〜25℃培养5〜7天,加人3〜5 ml 0.05%(ml/ml) 聚山梨酯80的pH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱。
然后,采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内,用0.05% (ml/ml)聚山梨醋80的pH7.0无菌化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成每lml孢子数量小于100cfu的孢子悬液。
菌悬液若在室温下放置,应在2小时内使用;若保存在2〜8 ℃在24h 内使用。
黑曲霉孢子悬液存在2〜8℃,在验证过的贮存期内用。
5.2.9.2.3.培养基接种:取每管装量为12ml的硫乙醇酸盐流体培养基7支,分别接种小于100cfu的色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、生孢梭菌各2支,另1支不接种作为空白对照,培养3天;取每管装量为9ml的胰酪大豆胨液体培养基7支,分别接种小于100cfu的草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉各2支,另1支不接种作为空白对照,培养5天。
逐日观察结。
5.2.9.2.4.结果判定:空白管应无菌生长,加菌的管生长良好,说明该培养基灵敏度符合规定。
5.3.方法试用性试验进行产品无菌检查时,应进行方法适用性试验,以确认所采用的方法适合于产品的无菌检查。
若检验程序或产品发生化可能影响检验结果时,应重新进行方法适用性试验。
方法适用性试验按“5.4供试品的无菌检查”的规定及下列要求进行操作。
对每一试验菌应逐一进行方法。
5.3.1.菌种及菌液的制备:大肠埃希菌[CMCC(B)44 102]外,金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌、白色念珠菌、黑曲霉的菌株及菌液制同“5.2.9.2培养基灵敏度检查”。
大肠埃希菌的菌液制同金黄色葡萄球菌。
5.3.2.薄膜过滤法:每种培养基规定接种的供试品总量按薄膜过滤法过滤,冲洗,在最后一次的冲洗液中加入小于100cfu试验菌,过滤。
加硫乙醇酸盐流体培养基或胰酪大豆胨液体培养基至滤筒内。
另取一装有同体积培养基的容器,加入等量试验菌,作为对照。
置规定温度下培养,培养时间不得超过5天,各试验菌同法作。
5.3.3.直接接种法:取符直接接种法培养基用量要求的硫乙醇酸盐流体培养基6管,分别接入小于100cfu的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、生孢梭菌各2管,取符直接接种法培养基用量要求的胰酪大豆胨液体培养基6管,分别接入小于100cfu的枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉各2管。
其中1管接入每支培养基规定的供试品接种量,另1管作对照,置规定的温度培养,培养时间不得超过5天。
5.3.4.结果判断:与对照管比较,如供试品各容器中的试验菌均生长良好,则说明供试品的检验量在检验条件下无抑菌作用或其抑菌作用可以忽略不计,照此检査方法和检查条件进行供试品的无菌检查。
如供试品的任一容器中的试验菌生长微弱、缓慢或不生长,则说明供试品的检验量在检验条件下有抑菌作用,应采用增加冲洗量、增加培养基的用量、用中和剂或灭活剂、更换滤膜品种等方法,消除供试品的抑菌作用,并重新进行方法适用性试验。
方法适用性试验与供试品的无菌检查同时进行。
5.4.供试品无菌检查无菌检査法括薄膜过滤法和直接接种法。
只要供试品性质允许,应采用薄膜过滤法。
供试品无菌检查所采用的检查方法和检验条件应与方法适用性试验确认的方法相同。
无菌试验过程中,若需用面活性剂、灭活剂、中和剂等试剂,应证明其有效性,且对微生物无毒性。
5.4.1.检验数量:除另有规定外,按表1规定。
5.4.2.检验量:即接种量,除另有规定外,按表2规定。
5.4.3.阳性对照:应根据供试品特性选择阳性对照菌:无抑菌作用及抗革兰氏阳性菌为主的供试品,以金色葡萄球菌为对照菌;抗革兰氏阴性菌为主的供试品,以大肠埃希菌为对照菌;抗厌氧菌的供试品,以生孢梭菌为对照菌;抗真菌的供试品,以白色珠菌为对照菌。
阳性对照试验的菌液制同“5.2.9.2培养基灵敏度检查”,加菌量小于100cfu,供试品用量同供试品无菌检查时每份培养基接种的样品量。
阳性对照管培养72小时内应生长良好。
5.4.4.阴性对照:供试品无菌检查时,应取相应溶剂和稀释液、冲洗液同法操作,作为阴性对照。
阴性对照不得有菌生长。
5.4.5.供试品的处理及接种培养基操作时,用适宜的消毒液对供试品容器面进行彻消毒,如供试品容器内有一定的真空度,可用适宜的无菌器材(如带有除菌过滤的针头向容器内导入无菌空气,再按无菌操作启开容器取出内物。
5.4.5.1.薄膜过滤法:薄膜过滤法一般应采用封闭式薄膜过滤。
无菌检査用的滤膜孔径应不大于0.45um,直径约50mm。
根据供试品及其溶剂的特性选择滤膜材质。
使用时,应保证滤膜在过滤前后的完整性。
5.4.5.1.1.水溶性供试品:水溶性供试液过滤前应先将少量的冲洗液过滤,以润湿滤膜。
取规定量,直接过滤,或混至含不少于100ml适宜的稀释液的无菌容器中,混匀,立即过滤。
如供试品有抑菌作用,须用冲洗液冲洗滤膜,冲洗数一般不少于3次(每滤膜每次冲洗量一般为100ml,且冲洗量不得超过1000ml,以避免滤膜上的微生物受损伤),所用的冲洗量、冲洗方法同方法适用性试验中确定的。
除生物制品外,一般样品冲洗后,1份滤器中加人100ml硫乙醇酸盐流体培养基,1份滤器中加入100ml胰酪大豆胨液体培养基。
5.4.5.1.2.非水溶性供试品:取规定量,直接过滤;或混合溶于适量含聚山梨酯80或其他适宜乳化剂的稀释液中,充分混合,立即过滤。
用含0.1%〜1 %聚山梨酯80的冲洗液冲洗滤膜至少3次。
加入含或不含聚山梨酯80的培养基。
接种培养基照水溶液供试品项下的方法作。
5.4.5.1.3.具有导管的医疗器具(输血、输液袋等)供试品:取规定量,每个最小装用50〜100ml冲洗液分别冲洗内壁,收集冲洗液于无菌容器中,然后照水溶液供试品项下方法作。
同时应采用直接接种法进行装中所配带的针头、针管的无菌检査。
5.4.5.2.直接接种法:直接接种法适用于无法用薄膜过滤法进行无菌检査的供试品,即取规定量供试品分别等量接种至硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基中。
除生物制品外,一般样品无菌检查时两种培养基接种的瓶或支数相同。
除另有规定外,每个容器中培养基的用量不得大于接种到该容器中的供试品体积的10倍,同时,硫乙醇酸流体培养基每管装量不少于15ml,胰大豆胨液体培养基每管装量不少于10ml。
供试品检査时,培养基的用量和髙度同方法适用性试验中确定的。
5.4.5.2.1.灭菌医用器具供试品:取规定量,必要时应将其拆散或切成小碎段,等量接种于各管以浸没供试品的适量培养基中。
5.4.6.培养及观察:将上述接种供试品后的培养基容器分别按各培养基规定的温度培养14天;培养期间应逐日观察并记录是有菌生长。
如在加入供试品后或在培养过程中,培养基出现浑浊,培养14天后,不能从外观上判断有无微生物生长,可取该培养液适量转种至同种新鲜培养基中,培养3天,观察接种的同种新鲜培养基是否再出现浑浊;或取培养液涂片,染色,镜检,判断是否有菌。
5.4.7.结果判断5.4.7.1.阳性对照管应生长良好,阴性对照管无菌生长,供试品管都无菌生长,则供试品符合规定。
5.4.7.2.阳性对照管应生长良好,阴性对照管无菌生长,供试品管中有任意一管有菌生长,则供试品不符合规定。
5.4.7.3.阳性对照管应生长良好,阴性对照管无菌生长,供试品管浑浊,经确凿无菌生长,则供试品符合规定;经确证有菌生长,则供试品不符合规定。