家兔失血性休克流程图(精)
医学课件家兔急性失血性休克
对家兔进行病理学检查，观察 组织器官的病理变化，进一步 了解失血性休克对机体的影响
。
04
家兔急性失血性休克的症 状与体征
症状
精神状态改变
家兔出现精神萎靡、反 应迟钝或兴奋不安等症
状。
呼吸急促
呼吸频率加快，呼吸幅 度变浅，甚至出现张口
呼吸。
心跳加速
心率明显增快，心音微 弱。
体温下降
由于大量失血导致体温 下降，甚至出现寒战。
严重影响。
总结词：心率加快
详细描述：为了维持基本的生理功能， 家兔的心率会加快，以增加心输出量。
总结词：血管收缩
详细描述：在休克状态下，家兔的血 管会发生收缩，以减少血液流失，但 这也可能导致器官缺血。
呼吸系统的变化
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总结词：呼吸急促
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详细描述：为了满足机体对氧的需求，家兔的呼吸频率会 增加，出现呼吸急促的现象。
体征
01
02
03
04
皮肤苍白
由于血液大量流失，皮肤呈现 明显的苍白或发绀。
血压下降
收缩压和舒张压均明显降低， 甚至无法测得。
尿量减少
由于肾脏灌注不足，尿量显著 减少或无尿。
肢体厥冷
四肢厥冷，耳部温度下降。
05
家兔急性失血性休克的实 验结果
循环系统的变化
总结词：血压下降 详细描述：由于大量失血，家兔的血 压迅速下降，导致血液循环系统受到
详细描述：由于循环血量减少 ，肾脏的灌注不足，导致尿量
明显减少。
总结词：尿液浓缩
详细描述：在休克状态下，家 兔的肾脏会加强尿液的浓缩， 以减少尿量，从而减少水分的
流失。
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1. 选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2. 分离颈动脉，穿线以备插管。
3. 分离股动脉，穿线以备插管。
4. 从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5. 插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6. 结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7. 从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT8. 观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT9. 继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10. 10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT11. 将①②4000转离心五分钟，记录HCT勺数据。
12. 静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml【实验讨论】1. 机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2. 机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
失血休克使得循环血量减少，中心静脉压降低，心排出量降低，平均动脉压降低，弓I起心血管反射，迷走神经抑制，交感神经兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用于心脏B1受体，兴奋心脏，使心肌收缩力增强，心率加快；作用于血管a 1受体使血管平滑肌收缩。
实验四 家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1.选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2.分离颈动脉，穿线以备插管。
3.分离股动脉，穿线以备插管。
4.从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5.插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6.结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7.从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT。
8.观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT。
9.继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10.10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT。
11.将①②4000转离心五分钟，记录HCT的数据。
12.静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml观察指标放血前（正常）放血后输血输液后（理论结果）角膜反射（+/-） + + +球结膜血管充盈度充盈充盈充盈心率（次/分）115 57 110呼吸正常加深加快逐渐恢复正常血压（详情见图）正常先下降后有所回升缓慢上升至正常HCT 44 32 43【实验讨论】1.机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2.机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
实验四-家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化;探讨失血性休克的发病机制. 【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克.【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2％的普鲁卡因，生理盐水,肝素,动脉插管，BL—410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1.选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上,剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2.分离颈动脉，穿线以备插管。
3.分离股动脉,穿线以备插管。
4.从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5.插管生理盐水排气，选择通道,进行电脑调零。
6.结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管.7.从股动脉取5ml血液,标记为①，以待测HCT。
8.观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度,HCT.9.继续从股动脉放血（约30-40ml,加入混有生理盐水和肝素的杯子中）,直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10.10-15min之后,观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT。
11.将①②4000转离心五分钟,记录HCT的数据。
12.静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果.【实验结果】放血量:30ml【实验讨论】1.机体一般失血多少可以引起休克?答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30％,超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2.机体失血后为何导致相关生理指标的变化?答：①失血性休克时，刚开始血压降低,失血休克代偿期，血压有所恢复，心率加快。
失血休克使得循环血量减少，中心静脉压降低,心排出量降低，平均动脉压降低，引起心血管反射,迷走神经抑制，交感神经兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用于心脏β1受体，兴奋心脏，使心肌收缩力增强,心率加快；作用于血管α1受体使血管平滑肌收缩.血管收缩，恢复循环血量,一是肌性微静脉和小静脉收缩,肝脾储血库紧缩可迅速而短暂的减少血管床容积，增加回心血量，引起“自身输血”作用;二是微动脉、后微动脉和毛细血管前括约肌比微静脉对儿茶酚胺更为敏感，导致毛细血管前阻力大于后阻力，毛细血管中流体静压降低，促使组织液回流入血管，起“自身输液"作用。
失血性休克
南京大学医学院机能综合实验报告实验二题目失血性休克及抢救一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机理。
3.分析失血性休克的抢救措施。
二、实验材料及药品材料：家兔，动物手术器械（包括手术刀、粗剪、组织剪、眼科剪、止血钳），动脉夹，动脉插管，血压换能器，HX200型呼吸流量换能器，气管插管，铁支架，玻璃分针，结扎线，注射器，烧杯，生物信号采集处理系统。
药品：生理盐水，20%乌拉坦，1%利多卡因，125U/ml肝素，地塞米松，7.5%氯化钠，低分子右旋糖酐。
三、实验方法及现象1.打开电脑实验软件，调节仪器参数。
2.将血压换能器固定于铁架台，并连接生物信号采集处理系统。
3.从动物房取家兔一只，称重。
本实验家兔体重为1.982kg。
4.用20%乌拉坦对家兔于耳缘静脉注射麻醉。
观察动物结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等。
5.将家兔固定于手术台，颈前正中切开皮肤6—8cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉。
暴露气管、颈总动脉、颈静脉和迷走神经。
过程中，有轻微出血，可用棉球擦净。
分离两侧颈总动脉、颈静脉，气管。
各穿一线备用。
6.腹侧剪毛，观察肠系膜血管。
做气管插管、颈动脉插管、静脉插管。
7.记录一段正常血压、呼吸心电图波动曲线。
从颈总动脉放血（约40ml），直至血压降低并维持在40mmHg，观察并记录上述指标的变化。
8.做血气检查。
9.抢救药品及顺序如下：药品剂量（ml）高渗液 6全血 15右旋糖酐 15地塞米松 1四、实验结果（一）血压分析图1，为实验过程中记录下来的所有血压变化图图1由图1，我们可以大体看出家兔血压变化。
给家兔放血后，家兔血压快速下降，在抢救前，家兔血压有一定代偿性升高。
注射高渗液后，家兔血压明显上升。
注入全血、右旋糖酐、地塞米松后，家兔血液维持在正常水平。
以上是从图中直接反应出来的，下面进行统计分析通道收缩压舒张压平均压脉压差心率号(mmHg) (mmHg) (mmHg) (mmHg) (次/分)正常114.25 86.82 98.63 27.42 321抽血后65.33 34.76 47.01 30.57 282高渗后102.02 71.61 83.09 30.41 236全血111.68 80.36 94.61 31.31 275 右旋糖酐109.53 78.07 91.84 31.46 282地塞米松114 80.12 95.74 31.88 290表1动脉血压图2由统计分析可以看出，家兔失血后，血压降低。
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
家兔的失血性休克与抢救
家兔失血性休克及抢救实验目的：1.学习哺乳类动物动脉血压的直接描述方法，观察神经和某些体液因素对微循环机能的影响。
2.复制几种类型休克的动物模型，并通过电视录像，观察休克发生发展过程中血压和微循环血流等的变化，加深对于”休克发病的关键不在于血压，而在于血流“的理论认识。
3.设计抢救方案，加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解，培养独立分析问题，解决问题的能力。
实验原理：1. 动脉血压是动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。
影响动脉血压的因素有心脏每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉与大动脉的顺应性以及循环血量和血管系统的比例。
2. 动脉血压是心血管系统活动的的反映，影响心血管系统的神经与体液因素有交感神经、迷走神经、交感缩血管神经、肾上腺素与去甲肾上腺素。
减压反射是神经调节主要方式，减压反射的构成为感受器：颈动脉窦与主动脉弓传入神经：减压神经与迷走神经神经中枢：延髓传出神经：交感神经与迷走神经效应器：心肌细胞膜上的受体。
而血管舒缩功能及神经体液调节异常将导致循环系统功能紊乱，引起血压改变，甚至导致休克的发生。
4.休克：各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍，由此引起的全身危重的病理过程。
5.休克的分期：一期:缺血性缺氧期二期:淤血性缺氧期三期:微循环衰竭期6.休克的防治原则：快速输血并且大量补液，快速扩充血容量。
在快速扩充血容量的基础上，选择性的运用血管活性药物。
实验对象：家兔（1.15kg）实验步骤：1.动物称重，麻醉，仰卧固定。
2.颈部手术操作：切开皮肤→分离组织与肌肉→分离一侧颈总动脉→全身肝素化→动脉插管→描记动脉血压3.分离颈外静脉，向颈外静脉输入生理盐水。
4.分离股动脉向心方向插管。
5.少量放血开放股动脉上动脉夹，自股动脉少量放血，当放血量达全身血量10%时夹闭股动脉，观察各指标15分钟。
6.大量放血放血量约为全身血量的25%，观察各指标15分钟。
机能实验学课件 家兔失血性休克
心率、脉压差。
3. Indexes of respiratory system (呼
吸系统观察指标): Respiratory rate,
3. 呼吸系统观察指标：呼吸频率
depth and rhythm
、深度、节律。
4. Indexes of mesentery
microcirculation (肠系膜微循环观察
of skin and mucous membrane,
general conditions
1. 一般指标：皮肤粘膜颜色、一 般状态、尿量。
2. Hemodynamics indexes (血流动力 学指标): Blood pressure, central
2. 血流动力学指标：e, heart rate, pulse pressure.
家兔下额至胸骨(sternum)上缘处范 围内, 剪毛 甲状软骨下(thyroid cartilage )正中剪 开皮肤4－5cm 钝性分离(blunt dissection)皮下筋膜
(superficial fascia )
注意:分离右侧颈外静脉
( right external jugular vein)
1 3
2
4
6
麻醉指标：四肢肌肉松弛；
疼痛反射、
5
角膜反射消失
固定Fasten
麻醉效应趋于平稳后 将家兔仰卧位固定
(rabbit fixed in the supine position )
1
2
3
4
5
6
1
23
剪毛备皮
Hair removal
1
23
颈静脉插管
Jugular vein catheterization
家兔失血性休克及抢救
烦躁 不安
实验内容
一、术前准备 称重，麻醉，固定 手术野备皮：颈部，腹部，左侧腹股沟，剑突处 二、颈部手术 颈部正中切口，钝性分离皮下组织，分离气管（可以不插） 左侧颈总动脉插管记录血压，右侧颈外静脉插管建立输液通道 剑突处连张力换能器记录呼吸曲线 三、股部手术：股动脉插管 四、腹部手术：膀胱插管
休克分期
1. 休克早期：缺血性缺氧期 2. 休克进展期：淤血性缺氧期 3. 休克晚期：休克难治期
机制 交感-肾上腺髓质系统兴奋
儿茶酚胺↑
心率↑
腹腔内脏、皮 汗腺
心肌收缩力↑ 肤小血管收缩 分泌↑
外周阻力↑ 肾缺血 皮肤缺血
中枢神 经系统
兴奋
BP (–) 脉搏细速 脉压差↓
少尿 面色苍白 出冷汗 四肢冰冷
新实验操作1：
记录尿滴：膀胱插管
新实验操作2：
颈外静脉插管：建立输液通道
[观察指标] 实验结果
平均动脉压
（mmHg）
心率 呼吸 尿量 耳朵口唇 体温
(次/分) (次/分) （滴/分） 颜色
实验前 少量失血 大量失血 输血 输血后5分钟 输血后15分钟
少量失血(少于10%, 约10ml) 快速大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)，维持20分钟
பைடு நூலகம்
[实验注意]：
1. 动静脉插管是必须掌握的基本技术，是本 次实验的关键。插管不要堵塞，不能滑脱！ 固定要结实！
2. 耳缘静脉要保护好，多次注射
[思考]：
1. 休克模型是否复制成功？根据是什么？ 2.少量失血家兔是否发生休克？ 3.判断本实验组家兔处于哪一个期。为什么？
家兔失血性休克及抢救
[实验目的]：
1.复制家兔失血性休克的动物模型 2. 观察分析休克发生发展过程中家兔主要体 征和血压的变化
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救
安徽医科大学 病理生理学教研室
一.实验目的
•复制失血性休克的动物模， 分析休克发生机制。
烦躁
皮肤苍白 或花纹
少尿或 无尿
神态淡漠 或昏迷
脉压↓ 血压↓
四肢 湿冷
• 4.失血性休克的抢救 血液回输
三.实验材料
• 实验动物：家兔 • 实验材料：20%乌拉坦，肝素（500μ/ ml），
生理盐水，哺乳动物手术器材一套，BL-420 生物机能实验系统，输血输液装置，动、静脉 套管，1 m1、10 ml及50 ml注射器各1只，去 甲肾上腺素，654-2。
• 6. 休克模型复制： 打开连接颈动脉的三通开关，一次快速放血 于50 ml注射器内，边放血边观察血压的变 化，待血压降到40mmHg水平，并维持15-30 分钟，停止放血（记录失血量）。
• 7. 休克的抢救：
•对照组： 将放出的血自颈静脉全部快速输回，观察各指标变化。
•去甲肾上腺素组： (1)自颈静脉缓慢滴入去甲肾上腺素生理盐水25.0 ml
（含去甲肾上腺素1.0mg），20分钟内滴完， (2)将放出的血快速自颈静脉输回，观察各项指标。
•654-2组： (1)自颈静脉缓慢滴入654-2生理盐水25.0 ml
（含654-2 2.0mg），30分钟内滴完， (2) 将放出的血自颈静脉快速输回,观察各项指标。
五.实验结果
表1 放血及输血前后各项指标的变化
二.实验原理及相关知识
1.失血性休克(hemorrhagic shock) 由于大量失血失液所引起.见于外伤、溃
家兔失血性休克
•注意事项： （1）避免手术出血、及凝血 （2）传感器及输液装置避免气泡 （2）严密监测血压，降至40 mmHg即开始抢救
规范操作
• • • • • 使用正确工具进行血管的分离 双线（生理盐水浸润） 使用正确工具进行血管下及输尿管下穿线 腹部切口不要过大，并适当保护 防止体液的丢失
（一）生理指标的观测 1. 失血性休克
家兔失血性休克
李娜
•实验目的 •实验动物： 家兔2.5 Kg •实验药品： 1% 盐酸普鲁卡因 1 ml… •实验方法：
1. 颈部手术： 局麻下，颈正中切开，分离出颈总动脉，右侧颈外静脉，穿线备用。 2.腹部手术： 局麻下，下腹正中切口，分离结扎膀胱颈（避开输尿管 避开输尿管），荷包缝合，插入膀 避开输尿管 胱漏斗导管，连接记尿装置，收紧。 3. 失血休克模型复制与解救 （1） 耳缘静脉 iv 5 ml 0.4% 肝素 （2）左颈总动脉插管，接(4%)肝素化 肝素化的三通管：置压、测压，联肝素化 肝素化的50ml 注射器。 肝素化 肝素化 （3）记录心电图、及各项生理指标。 （4）放血15分钟一次，10ml/次，共40-50ml，至血压40mmHg。（缓慢放血 缓慢放血） 缓慢放血 （5）右侧颈外静脉插入导管，ivgtt肝素生理盐水，保持静脉通畅。 （6） 60分钟后停止放血，快速（5分钟）输回原血及等量生理盐水。 分钟
生理指标
放血 时间（分钟）
实验记录
血压 肛温 呼吸 心率 尿量
皮肤粘膜 颜色
0 15 30 45 60
2. 失血性休克的解救 （5分钟内静脉输回原血？？ml + ？？ml 生理盐水）
生理指标
解救后 时间（分钟）Βιβλιοθήκη 皮肤粘膜 颜色血压
肛温
呼吸
家兔失血性休克流程图
肠系膜微循环观10-30分钟后 再次观察指标 回输血（补液）抢救
观察抢救后指标
再次放血至死亡
死亡前指标
注意事项
01、麻醉 (缓慢、观察麻醉程度，不要随意追加麻药）。 02、手术创伤程度的控制（手术技巧、钝性分离、 输尿管易痉挛） 03、血管、输尿管在插管前充满肝素,排尽空气。 04、插管 (牢固、稳妥、畅通）,防止脱落(观察微循环时)。 05、插管后,描记血压前必须进行零点设置 (调零)。 06、药品试剂在固定位置上索取,不得转移。 07、显微镜和观察盒属共用设备,用后清理干净放回原位置。 08、肠系膜保温保湿，勿过分牵拉。 09、防止漏电、触电 (显微镜、恒温水箱)。 10、分工与配合。 11、器械清点、签名(损坏、丢失物品要赔偿)。 12、打扫卫生。
失血性休克 实验步骤 流程框图
捉 拿 、 称 重 、 麻 醉 、 固 定
分离右侧颈外 静脉、排空气 插管、补液
分离左侧颈动脉 排空气、插管、 调零、观察血压
分离一侧输尿管 排空气、插管
上 述 过 程 中 同 时 进 行 耳 缘 静 脉 注 射 、 信 号 采 集 系 统 练 习
分 离 另 一 侧 颈 动 静 脉 、 输 尿 管 、 两 侧 股 动 脉
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观察抢救后指标
再次放血至死亡
死亡前指标
注意事项
01、麻醉 (缓慢、观察麻醉程度，不要随意追加麻药）。 02、手术创伤程度的控制（手术技巧、钝性分离、 输尿管易痉挛） 03、血管、输尿管在插管前充满肝素,排尽空气。 04、插管 (牢固、稳妥、畅通）,防止脱落(观察微循环时)。 05、插管后,描记血压前必须进行零点设置 (调零)。 06、药品试剂在固定位置上索取,不得转移。 07、显微镜和观察盒属共用设备,用后清理干净放回原位置。 08、肠系膜保温保湿，勿过分牵拉。 09、防止漏电、触电 (显微镜、恒温水箱)。 10、分工与配合。 11、器械清点、签名(损坏、丢失物品要赔偿)。 12、打扫卫生。
失血性休克 实验步骤 流程框图
捉 拿 、 称 重 、 麻 醉 、 固 定
分离右侧颈外 静脉、排空气 插管、补液
分离左侧颈动脉 排空气、插管、 调零、观察血压
分离一侧输尿管 排空气、插管
上 述 过 程 中 同 时 进 行 耳 缘 静 脉 注 射 、 信 号 采 集 系 统 练 习
肠系膜微循环观察 分 离 另 一 侧 颈 动 静 脉 、 输 尿 管 、 两 侧 股 动 脉