Western blot原理和技术

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便
Western Blotting 方法二: 间接法
优点:
1. 免疫特异性不受标记影响 2. 信号放大灵敏度高(多个二抗结合
位点) 3. 多种标记的二抗可供选择 4. 可选择不同的Marker
缺点:
1. 交叉反应引起的非特异性条带 2. 额外的二抗孵育以及条件优化
间接Western Blotting操作流程:
c. 后继实验有其他要求,比如要做蛋白测序或者质谱分析, 还要根据不同目的来挑选不同的转移膜
膜的特点
抗体的选择
作为western来讲,理论上单抗比多抗的特异性要好,但单抗种类较 少一般价格偏高,所以一般来说多抗足够了。用于western的抗体和 用于ELISA的抗体,一般来说用于western的抗体识别的是氨基酸序 列特异性;而可用于ELISA的抗体则要看抗原种类,有些是识别氨基 酸序列特异性,有些是识别构像特异性。所以一般根据抗体说明书来 确定。 做免疫印迹时选择抗体主要应考虑两个问题,一是所选抗体是否能识 别凝胶电泳后转印至膜上的变性蛋白,另一个是所选抗体是否会引起 交叉反应条带。
Western Blot基本原理
在电场的作用下将电泳分离的多肽从凝胶转移至一种 固相支持体,然后用这种多肽的特异抗体来检测。
Western Blotting 方法一: 直接法
优点:
1.快速(一种抗体) 2.没有二抗交叉反应引起的非
特异性条带
缺点:
1.免疫反应性降低 2.无信号二级放大 3.抗体标记费时昂贵,使用不方
Towbin, H., et al. (1979). Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76, 4350-4354.
预染分子量标准
单色预染 多色预染
修饰分子量标准
预混分子量标准
高分子量标准 低分子量标准 宽分子量标准
预染分子量标准
单色预染 多色预染
修饰分子量标准
糖基化 磷酸化 荧光标记
不可不加--内参的选择
原因:校正蛋白质定量、上 样过程中存在的实验误差
种类:GAPDH、beta-actin、 beta-tubulin
1975年,Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜(NC膜)上,并利 用DNA-RNA杂交检测特定的DNA片段的方法,称为Southern印迹法。
而后人们用类似的方法,对RNA和蛋白质进行印迹分析,对RNA的印迹 分析称为Northern印迹法,对单向电泳后的蛋白质分子的印迹分析称为 Western印迹法,对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析称为Eastern印迹法
用法:
二抗孵育时加入HRP标记内参 抗体
分子量相差不大 分子量大小相差比较明显
原料是基础--膜
选择种类
NC PVDF 尼龙膜
选择标准
a.膜与目的蛋白分子的结合能力(也就是单位面积的膜能结 合蛋白的载量),以及膜的孔径(也就是拦截蛋白的大小);
b.不影响后续的显色检测(也就是适和用于所选的显色方法, 信噪比好);
八仙过海,各“显”神通--显色方 法
化学显色法 : 方便、便宜、有毒、灵敏度较低、费抗体、 反应慢、线性窄、不易保存、不能重新剥离检测
化学发光法 : 灵敏、快速、节省抗体、反应快、线性宽、 无害、特异性高、可重新剥离检测
同位素法 : 灵敏度高、不安全、环境污染、不方便和半衰 期短
荧光底物法: Krypton ™荧光底物
Western Blot一般流程
蛋白样品的制备 SDS聚丙烯酰胺
凝பைடு நூலகம்电泳
转膜 封闭 一抗杂交 二抗杂交 底物显色
Western Blotting 设计选择
分子量标准 内参 膜 转膜和封闭 抗体 显色
不可小看“蛋白标准”--分子量标准的选择
预混分子量标准
高分子量标准 低分子量标准 宽分子量标准
Western blotting
为什么要作蛋白质印迹实验?
研究一些体外的蛋白质分子,寻找目的蛋白是否存 在样品当中
蛋白质的表达情况,上调或下调表达,在不同的样 品中,如疾病和正常的样品之间的表达差异性。
定义:
印迹法(blotting)是指将样品转移到固相载体上,而后利用相应的探测 反应来检测样品的一种方法。
两种常用检测酶系统的比较
掌握
Western blotting的原理和主要步骤。
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