MDA 多重置换扩增技术ppt课件

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中图版高中生物选修一6.2《DNA片段的扩增——PCR技术》PPT课件

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4.再将离心管转置于 72℃ 的环境中,在 DNA聚合 酶的催化下,游离 的脱氧核苷酸从引物的一端进行顺次连接,从而形成两条新的子链。这样 高温变性、 低温复性 和 中温延伸 三个步骤便构成了 PCR 过程的一个循环。
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三、实验操作
1.准备 (1)为了避免 外源DNA 等因素的污染,PCR 实验中使用的 离心管 、吸 头、 缓冲液 以及蒸馏水等在使用前必须进行高压灭菌 。 (2)如果没有 PCR 仪,可以设置 3 个 恒温水浴锅,温度分别为 95℃ 、55℃ 和 72℃ ,然后按要求在 3 个水浴锅中来回转移 PCR 的微量离心管 即可。
当 PCR 反应体系的温度由变性后快速冷却到 50 ℃左右时,引物与模板结合, 一般不考虑解开的两个 DNA 模板链的重新结合,原因:a.模板 DNA 比引物长得 多而且复杂的多,不易重新结合;b.引物与模板间的碰撞机会远远多于模板互补链 间的碰撞;c.加入的引物量足够大而模板链数量少。
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二、PCR 技术的过程 1.把 PCR 缓冲液、 DNA模板 、一对引物、四种脱氧核苷酸、DNA聚合酶 、 Mg2+等成分加入到 微量离心管 中。 2.把离心管置于 95℃ 的高温中,使 DNA 碱基对之间的 氢键 断裂,DNA
双链拆开成为两条单链。
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3.将离心管置于 55℃ 的环境中,使 一对引物 分别结合到两条分开的 模板链上。
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2.扩增 3.检测 利用 DNA 在 260nm 的紫外线波段的 吸收值 曲线来测定相应含量。即: DNA 的浓度(μg/mL)=A02.6002nm×稀释倍数。
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多重不对称扩增介绍-PPT资料19页

多重不对称扩增介绍-PPT资料19页
2、LATE-PCR(Linear-After-The-Exponential PCR)
多重不对称PCR重要影响因素
引物二聚体 引物特异性
主要是导致不对称PCR限制性引物和非限制性引 物比例的改变,或者限制性引物绝对量的改变, 从而导致扩增差异化或者扩增失败。
多重不对称PCR设计软件
PrimerPlex(付费)——一款设计特征寡核苷酸 片断、用于同时分析100种核酸序列的工具。
将所有引物并 入一贯体系进 行实验验证
每对引物进行 单扩并验证不 对称扩增引物
最佳比例
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病原体检测需要更详尽
的PCR设计和优化。
不对称PCR设计
设计不对称PCR引物时,限制性引物的Tm值较非限 制性引物Tm值高4~6°,扩增效果更佳。
不对称PCR设计在于控制限制性引物(低浓度引物) 的绝对量,限制性引物过多或过少,均不利于 SSDNA的制备。限制性引物量可以考虑设置在0.81.5P之间。
不对称PCR
用不等量的一对引物进行模板的扩增,PCR扩增后产生 大量的单链DNA。这对引物分别称为非限制性引物和限 制性引物。
在扩增过程前10-20个循环,其扩增产物主要是双链DNA, 但当限制性引物(低浓度引物)消耗殆尽,不再引导扩增, 而非限制性引物(高浓度引物)引导的PCR会继续进行,从 而就会产生大量的单链DNA。
经济简便性:多种病原体在同一反应管内同时 检出,将大大的节省时间,节省试剂,节约经 费开支,为临床提供更多更准确的诊断信息。
多重PCR技术难点
反应原理,反应试剂和操作过程与一般PCR相 同.

多重PCR技术 ppt课件

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域 ❖ 转基因检测则选择转入的动植物基因座 ❖ 性别鉴定一般挑选X或Y性染色体上特有的基因座
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❖ 第二、引物的设计(关键步骤) ❖ 1、引物位置的确定:首先需要知道所选择的基因
引物位点的详细DNA序列信息。 ❖ 引物的DNA序列应该有很强的特异性,否则引物会
结合在其他位点上发生非特异性扩增。 ❖ 2、引物序列的测定:引物的设计是多重PCR成功
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一、多重PCR技术原理
❖ PCR是什么:聚合酶链式反应。是一种体外快速扩增特定基 因或DNA片段的分子生物学技术。
❖ 其基本原理是:以一对寡核苷酸为引物,在模板DNA、
dNTP(脱氧核苷三磷酸) 、适当缓冲液Mg2+的混合体系中,
在DNA聚合酶的催化下,根据碱基互补配对原则,对引物所 界定的DNA片段进行扩增。这种扩增通过模板DNA与引物之 间的变性、退火和延伸三个步骤为一循环,每次循环产生的 DNA片段作为下次 循环的模板,所以PCR扩增产物呈指数 增加。多重PCR是在传统PCR原理的基础上进行改进,即在 同一体系中加入多对特异性引物,对多个DNA模板或同一模 板的不同区域扩增出多个目的DNA片段。
❖ 2、在使用相同的PCR程序和反应条件的单个 PCR中对每对引物的量进行优化,以达到最 大的扩增效率;
❖ 3、平衡多重PCR中每对引物的量,使之对每 个靶点都能获得足够的扩增量。
课件
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2、引物设计(关键优化)
❖ 多重PCR中的每对引物必须满足单引物PCR体系的 引物设计原则。这些原则包括:引物与模板的序列 紧密互补,长度一般为15—30bp,GC含量一般为 40—60%;引物与引物之间避免形成稳定的二聚体 或发夹结构;引物不能在模板的非目的位点引发 DNA聚合反应(即错配)。由于多重PCR体系中同时 存在多对引物,在引物设计时还应注意:各引物对 必须保持高度的特异性,避免非特异扩增;尽可能 避免所有引物间的相互作用,各引物对应保持相对 一致的扩增效率,且不同引物对扩增出来的产物能 通过电泳或其他方法区分开。

转化与扩增PPT课件

转化与扩增PPT课件
分子克隆用宿主应具备的条件 各种基因工程受体(宿主)的特性 实验室常用的基因工程受体
1、分子克隆用宿主应具备的条件
野生型细菌一般不能作为受体细胞,需要进行改造
限制性缺陷型
外切酶和内切酶活性缺陷(hsdR-)
重组整合缺陷型
用于基因扩增或高效表达的受体细胞(recA- , recB-,recC- )
具有较高的转化效率 具有与载体选择标记互补的表型 感染寄生缺陷型
大肠杆菌感受态细胞的制备:
100 ml 菌体培养至OD600 = 0.5,离心收集菌体 用10 ml 冰冷的10 mM CaCl2溶液悬浮菌体,离心
收集菌体 用1 ml 冰冷的75 mM CaCl2溶液悬浮菌体 冰浴放置12 - 24小时,备用
大肠杆菌感受态细胞的质粒转化:
取100 ml 感受态细胞,加入相当于50 ng 载体的重 组DNA连接液,混匀 冰浴放置半小时 在42℃保温 90秒(热脉冲) 快速将转化细胞转移至冰浴中放置1 - 2分钟 加入1 ml 新鲜培养基,于37℃培养 1 小时(扩增 )涂在合适的固体培养基平板上进行筛选
细胞培养条件苛刻,生长 缓慢 适用于哺乳类动物和人的基因表达调控研究、基因 药物的生产,是DNA重组实验和基因工程的主要哺乳动物受 体
各种基因工程受体的特性
7)植物细胞(拟南芥菜、烟叶)
农作物的经济意义重大,转基因植物细胞易于分化,细 胞培养简单且成本低廉,具有光合作用
遗传操作繁

适用于高等植物基因表达调控的研究、基因药物的生
第二章 分子克隆单元操作
2.1 克隆载体 2.2 DNA的体外重组(切与接) 2.3 转化与扩增(转与增) 2.4 转化子的筛选与重组子的鉴定(检) 2.5 目的基因的克隆

通过MDA进行单细胞的DNA扩增和基因组测序微生物的发现单细胞

通过MDA进行单细胞的DNA扩增和基因组测序微生物的发现单细胞
目前,一个混合的策略可以通过16S rRNA基因的 PCR提取环境总DNA,基于观测种群的16S rRNA FISH 探针来分离细胞,通过单细胞测序并结合宏 基因组的鸟枪测序来合并基因组。
FISH探针被用来通过细胞流式细胞仪分离候选细 胞。
细胞通过微流控芯片分离,并在1个60 nl的体系内 进行MDA。此方法使用微流控渠道以达到细胞分 选,以及MDA的小体积反应能达到单拷贝DNA模 板的更好目标。
FISH技术是一种重要的非放射性原位杂交技术。它的基本 原理是:如果被检测的染色体或DNA纤维切片上的靶DNA与 所用的核酸探针是同源互补的,二者经变性-退火-复性,即 可形成靶DNA与核酸探针的杂交体。将核酸探针的某一种 核苷酸标记上报告分子如生物素、地高辛,可利用该报告
分子与荧光素标记的特异亲和素之间的免疫化学反应,经 荧光检测体系在镜下对待测DNA进行定性、定量或相对定 位分析。
MDA反应示意图
通过利用扩增DNA为模板使对单个细胞的DNA进行测序 成为可能。多重置换扩增( MDA )可以将一个细菌中很少 的几飞克的DNA放大到可用于测序的微克的DNA。
MDA作为环境研究方法的一个巨大突破,能够用来引 导并可能成为微生物遗传学、生态学及传染性疾病研究的一 种新的研究策略。先前的新发现的微生物只能通过培养菌株 成长到足够的数量,以提供足够的DNA 模板才能测序。然 而,只有不到1%的微生物已被成功培养。对自然环境的深 入研究将出现大量新的不能培养的生物体,它们成为通过传 统的基因组研究方法研究的重大障碍。在这项工作中,单细 胞测序的出现开辟了一个新的领域,可以直接从单个细胞获 取DNA模板而不需要培养方法的改进。
应用:
通过MDA进行单细胞的DNA扩增和基因组 测序

临床基因扩增实验ppt课件

临床基因扩增实验ppt课件

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试剂管理制度
• 实验室应根据工作需要定期提交试剂申请单,做
到及时盘存清点。
• 所有试剂做到来源渠道正规,质量保证。 • 实验室应对试剂库存定期检查,不得用过期变质
的试剂。
• 试剂保存应严格按照规定存放,确保有效期内能
有效地使用,杜绝浪费。
• 试剂外借一律须经实验室负责人同意,剧毒试剂
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第三节:临床基因扩增实验室 操作指导书(SOP)
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• 各种仪器设备的标准操作维护程序
(PCR扩增仪、离心机、干式恒温器、生物安全柜、移液器、 冰箱、可移动紫外线消毒车等。)
• 各种仪器设备标准校准程序 • (温度计、移液器、PCR扩增仪等) • PCR标本唯一标识编号规则(120525B05) • 临床标本的采集及处理的标准操作程序 • 各种病原体扩增荧光检测标准操作程序 • 室内质量控制、室间质评标准操作程序
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空白管对照的种类
• 反应液空白管对照 • 试剂空白管(在整个实验过程中开口放置
于核酸提取的操作台面区域内30—60分钟, 然后进行扩增在反应液空白管为阴性的情 况下如果出现阳性提示可能出现实验室污 染。)
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扩增产物分析
• 通过标准曲线对未知模板进行定量分析 • 1。根据试剂盒的要求先确定基本的基线和域值。 • 2.初步分析未知模板的定量结果,根据当时曲线
• 人员的培训 • 规范操作
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分析中的质量控制
• 核酸提取 • 1.标本制备最好在生物安全柜内进行,可防止标本气溶胶
的扩散。
• 2.在实验操作过程中要经常更换手套,因为手套的污染很

MDA 多重置换扩增技术

MDA 多重置换扩增技术

• 截至2007年,第二代基因测序方法已经普遍推广应用,极 大地降低了测序的成本和时间,实现了高通量测序。 • 2008年又提出了更快更好的第三代测序方法---单分子测序 (SMS)
基因测序技术
• 基因测序需要一定量的DNA模板,所以测序前需对微生 物进行分离和培养,但是环境中大多数的微生物是不可 培养或对培养条件要求很高的,这无疑给测序增添了难
MDA的应用
• SNPs和STRs基因型检测 • 基因拷贝数改变的检测 • DNA测序
总的来说,MDA 由于其基因型的可靠性、高敏感性、高基因组覆盖
率以及较低的扩增偏向性等优点,使得该方法成为目前最有优势的 WGA方法。MDA 已经广泛的应用于包括定量PCR、SNP基因型分
析、Southern印迹分析、染色体图谱中。
MDA 反应的产量 受起始DNA浓度的 影响较小,Dean等 通过对不同量的模 板DNA进行MDA 反应,发现终产量 较一致。这对于大 范围的遗传学应 用十分有利,因为 不需要测量或平衡 DNA浓度而直接进 行扩增,而能产生 同样量的DNA。
初始模板量分别为:0.1ng,1ng,10ng,100ng,产量均为40μg左右。
电化学和化学等多种检测系统以及与质谱等分析手段结合的很多检测手段已
经被用在微流控芯片中,对样品进行快速、准确和高通量分析。
微流控芯片的最大特点是在一个芯片上可以形成多功能集成体系和数目众多的复 合体系的微全分析系统。微型反应器是芯片实验室中常用的用于生物化学反 应的结构,如毛细管电泳、聚合酶链反应、酶反应和DNA 杂交反应的微型反应 器等。
方法可以高效地分离到单细胞,如跟FISH结合从环境样本中筛
选出特异的种类用于MDA扩增单细胞DNA实验。
细胞分选

基因扩增技术-课件

基因扩增技术-课件
PCR反应中模板加入量一般为102-105个拷贝 的靶序列。
人工合成的寡核苷酸-引物
PCR扩增产物的特异性和扩增片段的大 小是由引物限定的,因此,引物的设 计对PCR的成功与否有决定性的意义。
引物设计原则:软件+经验
引物长度以15-30个碱基为宜; 引物碱基尽可能随机分布,G+C含量宜在45~55%
PCR的定义
Polymerase chain reaction又称无细胞分 子克隆系统或特异性DNA序列体外引物 定 向 酶 促 扩 增 法 , 在 模 板 DNA , 引 物 (模板两端的已知序列)和四种脱氧核 苷酸存在的情况下,DNA聚合酶依赖的 酶促合成反应。
1993年获诺贝尔化学奖
PCR 技 术 是 由 Cetus 公 司 和 加 利 福 利 亚 大 学1985年联合创造的,主要贡献者为Kary B mulis和HeneryA、Erlich。可将极微量 的靶DNA特异地扩增上百万倍,能检测 每10万个细胞中仅含一个靶DNA分子的 样品。因而发明人Kary B、mulis获1993 年诺贝尔化学奖。
三磷酸脱氧核苷(dNTPs)
四 种 三 磷 酸 脱 氧 核 苷 ( dATP 、 dCTP 、 dGTP 、 dTTP)是DNA合成的基本原料,工作浓度应为 20~200mmol/L。所用的四种dNTP的浓度应相 等,以使错误掺入率降至最低。dNTPs浓度过低 则反应速度下降,dNTPs浓度过高则扩增特异性 降低,而且当dNTP浓度高于50mM时也会抑制 Taq DNA聚合酶的活性。
合适的缓冲体系
目 前 最 常 见 的 缓 冲 体 系 为 10~50mmol/L TrisHCl(pH 8.3-8.8, 20℃)。Tris是一种双极性离子缓 冲液,其主要作用是维持碱性的Taq酶作用环境。 在缓冲液中加入明胶或无核酸酶的BSA,对酶有 一 定 的 保 护 作 用 , Tween-20(0.05%-0.1%) 及 5mmol/L的二硫苏糖醇(DTT)也有类似作用。尤 其在扩增长片段(延伸时间长)时,加入这些酶 保护剂对PCR反应是有利的。

多重置换扩增应用于肿瘤研究及临床的新进展

多重置换扩增应用于肿瘤研究及临床的新进展

多重置换扩增应用于肿瘤研究及临床的新进展【摘要】多重置换扩增(multiple displacement amplification,MDA)作为一种新近的全基因组扩增(whole genome amplification,WGA)技术,能高效地获得均衡、稳定的大量DNA产物,从而满足多种研究对大量DNA的需求。

因此MDA可用于处理有限的临床样本的基因组DNA,在肿瘤学的标志基因定位、杂合性缺失及临床诊断等方面得到应用。

【关键词】全基因组扩增;多重置换扩增;肿瘤1 多重置换扩增原理及特点多重置换扩增已被证明既可应用于环状DNA模板扩增[4]也可被用于线性DNA模板[1]。

多重转换扩增是一种非PCR,等温不需要经过热循环的基因扩增技术。

使用独特的Phi 29 DNA聚合酶,对于模板有很强的模板结合能力,能连续扩增100 kb的DNA模板而不从模板上解离,平均片段长度>10 kb[2]。

多重置换扩增具有能直接分离样本和纯化样本均适用[3]、产量高且有长度保证[4]和无位点扩增误差等特点[5],保证了扩增产物的质量。

2 多重置换扩增应用于肿瘤研究及临床应用多重置换扩增最先被应用于人类全基因组扩增[6],此后被更多地应用于真核细胞的研究,包括基因组测序和人类及灵长类的基因分型[7]、法医学中对低拷贝数DNA检验和混合斑中精子DNA扩增进行STR分型[8]等。

以下将对多重置换扩增的肿瘤研究及临床的最新应用进展作详细说明。

2.1 肿瘤基因组学研究MDA对于基因组或基因片段的均衡高效扩增用于癌症基因组学研究非常合适。

因为为克服癌症细胞异质性,使实验结果准确可靠,常利用显微切割技术特异地选择靶细胞,所以获得的细胞数量有限。

利用MDA对其进行扩增,即可得到足量DNA产物,从而满足基因组学高能量分析折需要。

目前应用激光捕获显微切割(laser capture Microdissection,LCM)、MDA和微阵列比较基因组杂交(array-comparative genomic hybridization,aCGH)三项技术联合应用于癌症基因组学的研究。

MDA 多重置换扩增技术ppt课件

MDA 多重置换扩增技术ppt课件
技术论文: • Single-Cell Exome Sequencing and Monoclonal Evolution of a JAK2-Negative Myeloproliferative
Neoplasm • Single-Cell Exome Sequencing Reveals Single-Nucleotide Mutation Characteristics of a Kidney
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• SNPs和STRs基因型检测 • 基因拷贝数改变的检测 • DNA测序
总的来说,MDA 由于其基因型的可靠性、高敏感性、高基因组覆盖 率以及较低的扩增偏向性等优点,使得该方法成为目前最有优势的 WGA方法。MDA 已经广泛的应用于包括定量PCR、SNP基因型分 析、Southern印迹分析、染色体图谱中。
• 对嵌合体形成酶路径的了解目前正被用来减少嵌合体的发生。
• 近日, Nature出版集团旗下刊物Scientific Reports刊发南方科技大学副教授贺 建奎课题组最新研究成果《单细胞基因组扩增法的定量评估及其在检测单个海 马神经元基因拷贝数变异的应用》,从多个角度评估了三种最常用的单细胞基 因组扩增方法。经过细致比较发现,MALBAC和GenomePlex WGA4的方法在 拷贝数变异检测方面明显优于MDA方法。
多重置换扩增(MDA)技术对单 细胞基因组测序技术研究进展
基因测序技术
• 目前应用的快速序列测定技术可以总的概括为两 种:合成法和降解法。基于Sanger等(1977)提出 的酶法及Maxam和Gilbert(1977)提出的化学降解法 这两种基本思想。
• 传统用于DNA测序的方法有毛细管微阵列电泳测序和焦磷酸测序等,这些方法往往技术要求高、 成本贵,而且容易出错。

DNA体外重组技术PPT课件

DNA体外重组技术PPT课件
变型lac –E. coli可表达该酶的ω片段(C端),两
片段单独存在无活性
*两端同时存在时有活性-----蓝色化合物 α互补( α complementation)
*在Lac Z 基因内无外源DNA的插入,在含X-gal 的培养基上生长时会出现蓝色菌落---阴性克隆。 *在Lac Z 基因内插入外源DNA,在含X-gal的培 养基上生长时会出现白色菌落---阳性克隆。
• 氨苄青霉素抗性基因(ampr):编码β内酰胺酶,水解amp β-内酰胺环使amp 失效
• 四环素抗性基因(tetr):编码转膜泵 将tet从细胞移出
• 大肠杆菌LacZ基因:编码半乳糖苷酶, 分解X-gal,使菌落变为蓝色。
DNA体外重组技术
*lac Z N端146 aa残基编码基因 *lac Z编码产物为β半乳糖苷酶α片段(N端),突
N端
DNA-pol Ⅰ
C端
枯草杆菌蛋白酶
小片段
大片段/Klenow 片段
323个氨基酸
604个氨基酸
5 核酸外切酶活性 5核酸外切酶活性
DNA聚合酶活性
Klenow片段是实验室合成DNA,进行分子 生物学研究中常用的D工NA体具外重组酶技术。
二、DNA聚合酶
3. Taq DNA聚合酶(65kD)
MCS
LacZ: 蓝白斑筛选阳性DN克A体隆外重组技术
LacZ
pUC18/pUC19
P(BLA) Apa LI (2367)
Ampr
Apa LI (178)
Lac Z
EcoRI (397)
Ava I (413)
Xma I (413)
Sma I (415)
pUC19
2686 bp
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• SNPs和STRs基因型检测 • 基因拷贝数改变的检测 • DNA测序
总的来说,MDA 由于其基因型的可靠性、高敏感性、高基因组覆盖 率以及较低的扩增偏向性等优点,使得该方法成为目前最有优势的 WGA方法。MDA 已经广泛的应用于包括定量PCR、SNP基因型分 析、Southern印迹分析、染色体图谱中。
多重置换扩增(MDA)技术对单 细胞基因组测序技术研究进展
基因测序技术
• 目前应用的快速序列测定技术可以总的概括为两 种:合成法和降解法。基于Sanger等(1977)提出 的酶法及Maxam和Gilbert(1977)提出的化学降解法 这两种基本思想。
• 传统用于DNA测序的方法有毛细管微阵列电泳测 序和焦磷酸测序等,这些方法往往技术要求高、 成本贵,而且容易出错。
• 基于MDA的单细胞测序 • 主要研发人:深圳华大基因研究院 • 技术看点:将多重置换扩增(MDA)和测序技术相结合。 • 技术简介: • 本技术基于多重置换扩增(MDA),并对该方法的扩增均一性、灵敏度、特异性等方面进行了全面
评估。这种将多重置换扩增和测序技术相结合的单细胞测序方法不仅具有更高的分辨率和基因组 覆盖度,而且具有更好的敏感性和特异性。该方法从单核苷酸水平上为各种复杂疾病和生物学过 程的研究开辟了新思路。
• 截至2007年,第二代基因测序方法已经普遍推广应用,极 大地降低了测序的成本和时间,实现了高通量测序。
• 2008年又提出了更快更好的第三代测序方法---单分子测序 (SMS)
• 多重置换扩增(Multiple dilacement amplification,MDA)是1998年 由耶鲁大学Lizardi博士首次提出。这种恒温扩增的方法依赖于链 置换扩增原理,利用噬菌体Φ29DNA聚合酶,高度扩增DNA。 该酶对于模板有很强的模板结合能力,能连续扩增100Kb 的 DNA模板而不从模板上解离。同时这种酶具有3’ -5’外切酶活性, 错误率仅为5 x 10-6,大约比Taq DNA聚合酶低100倍,因此可以 保证扩增的高保真性。
的互补链又成为新的模板来进行扩增,因此最终我们可以

物 获得大量高分子量的DNA.
引 物
模板
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细胞分选
• 全基因组扩增(WGA)是一组对全部基因组序列进行非选择性扩增的技 术,其目的是在没有序列倾向性的前提下大幅度增加DNA 的总量。该 技术通过对微量组织样本,甚至单个细胞的整个基因组DNA扩增,再 将其扩增产物作为模板,进行后续分析,进而完成多位点、多基因以 及全基因组DNA 组成的研究。
• WGA技术发展至今主要IRS-PCR(interspersed repeat sequence PCR )、 LA-PCR(1inker adaptor PCR)、Alu PCR、T-PCR (tagged random primer PCR.T-PCR)、扩增前引物延伸(primer extension preamplification,PEP) 和简并寡核苷酸引物PCR (degenerate oligonucleotide primer-PCR,DOPPCR)。但是,由于发生非特异性扩增,位点覆盖不完全,DNA 产物片 段小于1 kb等缺点,限制了这些方法的应用。
• 对嵌合体形成酶路径的了解目前正被用来减少嵌合体的发生。
• 近日, Nature出版集团旗下刊物Scientific Reports刊发南方科技大学副教授贺 建奎课题组最新研究成果《单细胞基因组扩增法的定量评估及其在检测单个海 马神经元基因拷贝数变异的应用》,从多个角度评估了三种最常用的单细胞基 因组扩增方法。经过细致比较发现,MALBAC和GenomePlex WGA4的方法在 拷贝数变异检测方面明显优于MDA方法。
• Φ29DNA聚合酶强大的向前延伸活性和高保真度,使得通过 MDA可从极少量的DNA样本获取大量高质量的DNA,是到目前 为止对整个基因组覆盖最广、各位点扩增偏倚最小的WGA方法。
• 目前单细胞微生物可以通过对多重置换扩增反应( MDA)得到的扩增 DNA进行测序。
• 在细菌中几个飞克 (10-15g)的DNA能扩增得到微克(10-6g)的高分子DNA也可直接作为模板供焦磷酸测序。
技术论文: • Single-Cell Exome Sequencing and Monoclonal Evolution of a JAK2-Negative Myeloproliferative
Neoplasm • Single-Cell Exome Sequencing Reveals Single-Nucleotide Mutation Characteristics of a Kidney
Tumor
近来对MDA 方法的改进:
• 减少MDA的反应体积:通过减少污染的扩增DNA和非特异性的合成,如引 物二聚体,本质上就是通过消除不必要的反应体积增强特异性的扩增。
• 通过使用60 nl微流控反应可提高扩增的特异性。
• 在MDA中,分支的DNA 中间体的形成可导致在一些对初始模板DNA链的 延长,然后被置换并对一个不同的模板延长,其结果是形成嵌合体。完整 的MDA反应物和S1核酸酶处理后可以消除DNA的单链形式,这可使使嵌合 体达到80%的减少。
• 单个细胞间基因序列的联系也是一个功能强大的工具,它可用于对从 环境DNA的提取物(宏基因组序列)得到的多重有机体通过鸟枪法测 序来指导构建基因芯片。
多重置换扩增(MDA)的示意图:
首先随机六碱基引物在多个位点与模板DNA退火,接
下来Phi 29 DNA 聚合酶在DNA的多个位点同时起始复制,

它沿着DNA模板合成DNA,同时取代模板的互补链。被置换
MDA 反应的产量 受起始DNA浓度的 影响较小,Dean等 通过对不同量的模 板DNA进行MDA 反应,发现终产量 较一致。这对于大 范围的遗传学应 用十分有利,因为 不需要测量或平衡 DNA浓度而直接进 行扩增,而能产生 同样量的DNA。
初始模板量分别为:0.1ng,1ng,10ng,100ng,产量均为40μg左右。
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