第一节实验动物的抓取固定方法
第八章动物实验基本操作方法
常用实验动物全身麻醉药用法及剂量
药品 戊巴比妥钠
动物
给药
途径
犬、猫、兔 iv
ip
豚鼠
ip
大鼠、小鼠 Ip
剂量 浓度
(mg/kg) (%)
30
3
40~50 3
40~50 2
45
2
用药量
(mL/kg)
1.0 1.4~1.7 2.0~2.5 2.3
麻醉时间
2~4h
犬、猫、兔 ip、iv 750~1000 25
2.耳缘剪孔 法
3.烙印法
4.挂牌法
第八章动物实醉
第八章动物实验基本操作方法
一、全身麻醉方法
(一)麻醉前的准备
在实施全身麻醉时,应注意以下几个问题: ①猫、犬、猪或非人灵长类大动物禁食10~12h,不能少于 8h。家兔或啮齿类动物无呕吐反射,术前无须禁食。被手术 的动物在麻醉前可给予一定量饮水。 ②麻醉前不能使用泻剂。因为泻剂可导致血液的碱储降低, 从而增加血液和组织的酸度,在麻醉和失血情况下,易发生 酸中毒,并能降低损伤组织的抗感染能力。 ③麻醉后的动物必须保持气道的通畅和组织(眼球、舌、肠等 器官)的营养。 ④犬做长时间实验前1h应灌肠排除积粪。 ⑤应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求,麻醉固定器具是 否有破损(漏气或堵塞),有关麻醉中毒急救品和器材是否准备 齐妥,以应急需。
氨基甲酸乙酯 (乌拉坦)
豚鼠 大鼠、小鼠
Im im
1350 1350
20 20
硫喷妥钠
氯仿 乙醚
犬、猫、兔 iv、ip 25~50
2
大鼠
iv、ip 50~100 1
各种动物
吸入
第八章动物实验基本操作方法
实验动物讲义
5还要考虑用药途径: 如当口服为100时,灌肠应为100-200,皮下应30-50 ,静脉应25。
(二)计算方法: 例1 计算给体重1.8kg的兔静脉注射20%乌拉坦,按每
kg体重1g的剂量注射,应注射多少ml? • 1kg 1g • 1.8kg 1.8g • 20g 100ml • 1.8g x ml • x=100*1.8/20=9ml
五 实验动物采血方法
注意事项: 1光线充足 室温应保持:冬 15—20度;夏 25—28度 2采血部位消毒 3注射器、试管应清洁干燥:吹风机 4抗凝剂:血清(不加抗凝剂);血浆(加
抗凝剂)离心
(—)小鼠、大鼠采血法
1割(剪)尾采血:温水泡,消毒,剪刀剪 一下尾尖,血滴下,试管接血即可。
2鼠尾刺血法:用7号、8号针头刺入尾静 脉,流出,10—50mm3/次,使用方 向:从尾尖开始往上用。
实验1 基本技能操作
一 实验动物的抓取固定方法
1小鼠的抓取固定方法 抓取:不要激惹,可单手、双手 固定:鼠板(蜡板)和固定器两种
2 大鼠的抓取固定方法
抓取:戴防护手套:帆布或硬皮质的(否则狂犬 疫苗)
方法一同小鼠 方法二:腋下,拇指抵下颌骨,掌心握身体中段 固定同小鼠
3 豚鼠的抓取固定方法
豚鼠性情温和,胆小易惊,一般不易伤人。 1拇指和食指环扣其颈部,另一手托臀部; 2另外可用布袋固定。
,最好一次给足量。
3中药麻醉剂:
•
洋金花 氢溴酸东莨菪碱(提纯)
•
作用不够稳定,有时需要加佐剂麻醉
(二) 动物的麻醉方法
1全身麻醉:包括吸入法、非吸入如腹腔和静脉给药法 ▲吸入麻醉:乙醚
实验1实验动物的捉持法和给药法
实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1.蛙和蟾蜍通常以左手握持,用食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢,右手将下肢拉直,左手用无名指及小指夹住(图1)。
图1 蟾蜍捉持法2.小鼠(1)双手法:右手提鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉鼠尾,使小鼠前肢固定在粗糙面上。
迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤,无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部,便可将小鼠牢固捉持(图2)。
图2 小鼠双手捉持法(2)单手法:小鼠置于笼盖上,先用左手食指和拇指抓住鼠尾,后手掌尺侧和小指夹住鼠尾,然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤(图3)。
图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人,捉持时应戴防护手套。
先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与掌部握住背部和腹部。
注意不要捏其颈部,以防用力过大、过久,窒息死亡。
4.家兔一只手抓住兔颈背部皮肤,将兔轻轻提起,另一只手托住臀部,使兔呈蹲坐姿势(图4)。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图4 家兔捉持法5.豚鼠豚鼠性情温和,不咬人,用手轻轻握住身体即可抓起。
6. 猫应戴好防护手套。
轻声呼唤,慢慢将手伸入猫笼,轻抚猫头、颈和背部,一只手抓住颈背部皮肤,另一只手抓住腰背部。
性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持,操作中应防其利爪和牙齿伤人。
7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套,用绳带固定于耳后颈部;凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部,然后套上嘴套。
狗嘴也可用绳带固定,操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结,再绕到颈后部打结,以防绳带滑落。
狗麻醉后四肢固定于手术台上,取下嘴套或绳带,将一金属棒经两侧嘴角,穿过口腔压于舌上,再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴,并固定于手术台上。
应将狗舌拉出口腔,以防窒息。
二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。
适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。
若为保证剂量准确,可应用灌胃法。
第二章 动物实验的基本操作与技术
第二章动物实验的基本操作与技术动物实验方法是多种多样的,在医学的各个领域内都有其不同的应用,其中一些基本方法都是共同性的,如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采尿、急救、处死、尸检等,不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法,因此,动物实验基本方法,已成为医学科技工作者必须掌握的一项基本功。
第一节实验动物的抓取固定方法一、小鼠抓取固定方法小鼠温顺,一般不会咬人,抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤(见图2-1之一),将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可(图2-1之二)。
有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾,迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时,则需将小鼠作一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位(必要时先行麻醉),再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固定(图2-2),先根据动物大小选择好合适的固定架,并打开鼠筒盖,手提鼠尾巴,让动物头对准鼠筒口并送入筒内,调节鼠筒长短合适后,露出尾巴,固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。
图2-1 小鼠的抓取固定方法图2-2 小鼠尾静脉注射方法二、大鼠的抓取固定方法大鼠的抓取方法基本同小鼠,只不过大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,否则会被咬伤手指。
抓取时为避免咬伤,可带上帆布手套。
如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时,同样可采用左手固定法,只是用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指紧捏鼠背皮肤,置于左掌心中,这样右手即可进行各种实验操作。
也可伸开左手之虎口,敏捷地从后一把抓住。
若做手术或解剖等,则需事先麻醉或处死,然后用细棉线绳活结缚腿,背卧位绑在大鼠固定板上;尾静脉注射时的固定同小鼠(只需将固定架改为大鼠固定盒)。
实验动物基本操作技术
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(二)急救措施 1 .迅速排查、中断、排除诱因。如应用棉签清 除干净气管、气管插管内的分泌物及血凝块。必要 时拔出气管插管冲洗后再行气管插管术。 2.根据下列不同情况采取相应的急救措施: (1)呼吸极慢、不规则,但心跳正常时:给予人 工呼吸-压胸法,适当给予苏醒剂。 (2)呼吸停止仍有心跳时:①实施人工呼吸,必 要时可使用人工呼吸机或吸氧(吸入气中 O2 占 95% , CO2占5%);②注射50%葡萄糖液5~10ml;③给肾 上腺素及苏醒剂。 ( 3 )呼吸、心跳均停止时:用 l : 10000 肾上腺素 溶液心内注射,其余同(2)。
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一、呼吸、心跳(血压)的改变 动物实验过程中,需密切观察实验动物的呼吸、 心跳及血压的变化,一者它们是实验反应的数据指 标,二者是实验动物状态的主要指征。尤其对呼吸 的观察,因为动物的死亡首先是呼吸的停止。 (一)诱发原因 1 .麻醉给药速度过快或过量:实施静脉给药麻 醉,可因给药速度过快或过量导致呼吸停止。因此, 为防止麻醉剂过量,注射速度一定不要过快,严密 观察动物状况,若需追加麻醉剂,一次不宜超过总 量的1/5。
e.腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f.冠、脚蹼皮下静脉 鸡、鸭、鹅
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2.取中量血
部位 a.后肢外侧皮下小隐静脉 b.前肢内侧皮下头静脉 动物种类 狗、猴、猫 狗、猴、猫
c.耳中央动脉
d.颈静脉
兔
狗、猫、兔
e.心脏
f.断头 g.翼下静脉
豚鼠、大鼠、小鼠
大鼠、小鼠 鸡、鸭、鸽、鹅
h.颈动脉
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采血方法的选择,决定于实验目的所需血量以及 动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、 血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法 等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时 可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自 远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。 而研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐 代谢紊乱,需要比较动、静脉血氧分压、二氧化碳 分压和血液pH值以及 K+、Na+、Cl-离子浓度,必须 采取动脉血液。
动物实验常用技术—实验动物的抓取与固定
实验动物学
大鼠的抓取固定
不损害动物健康 不影响指标观察 不被动物咬伤 保证实验能够顺利进行 小心仔细,大胆敏捷
实验动物学
大鼠的抓取固定
大鼠徒手固定
实验动物学
大鼠的抓取固定
大鼠固定盒固定
实验动物学
实验动物的抓取与固定—— 猴的抓取固定
实验动物学
猴的抓取固定
兔固定盒固定
兔徒手固定
实验动物学
家兔的抓取固定
家兔台式固定法
实验动物学
实验动物的抓取与固定—— 犬的抓取固定
实验动物学
犬的抓取固定
犬 扎 口 保 定
犬 横 卧 保 定
实验动物学
实验动物的抓取与固定—Hale Waihona Puke 小鼠的抓取固定实验动物学
小鼠的抓取固定
小鼠的捉拿与保定 ——徒手保定法
1
2
3
5
避免被咬伤
• 捕猴网捕捉后,紧压住猴 头或抓住颈后部以防回头 咬人。将其双前肢反背于 身后紧紧抓住,另一双手 抓住其后肢的踝关节处, 把腿拉直。
实验动物学
实验动物的抓取与固定—— 家兔的抓取固定
实验动物学
家兔的抓取固定
一般用右手抓住家兔颈部的皮肤提起,然后用左 手托其臀部。不可抓取双耳提腹。可放于兔盒内 固定或置于手术台上固定。
实验动物学
图3 网架
图4 移动式网架
实验动物学
猪的抓取固定
二、器械保定 3.保定架保定 将猪放于特制的活动保定架上,或使 其成仰卧姿势,在大小适宜的木槽行背位保定(如图 5)。此法可用于前腔静脉注射及腹部手术等。
图5 保定架保定
实验动物学
猪的抓取固定
动物实验基本操作
动物实验基本操作一、实验动物的抓取与固定。
(一)小鼠。
1. 抓取。
- 用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将其提起,放在鼠笼盖或其他粗糙表面上。
当小鼠向前挣扎时,用左手的拇指和食指迅速捏住小鼠两耳后颈背部皮肤,无名指和小指夹住小鼠尾巴根部,将小鼠固定成头部略向上的姿势。
- 原因:捏住尾巴提起小鼠可以避免小鼠咬伤操作人员,将其放在粗糙表面上是利用小鼠的本能反应(向前挣扎),便于后续准确抓取其颈背部皮肤。
而固定成头部略向上的姿势有利于进行诸如灌胃、注射等操作,并且能防止小鼠咬伤操作人员脸部等部位。
2. 固定。
- 如需进一步固定,可将小鼠放在特制的小鼠固定器内,将其身体和四肢固定好。
也可以将小鼠固定在泡沫板上,用大头针固定其四肢(这种方法常用于解剖实验)。
- 原因:使用固定器可以确保小鼠在实验过程中保持稳定,减少因挣扎而影响实验操作的准确性,同时也能保障操作人员的安全。
对于解剖实验,在泡沫板上用大头针固定四肢可以充分暴露小鼠的身体结构,便于进行精细的解剖操作。
(二)大鼠。
1. 抓取。
- 先用右手抓住大鼠尾巴中部,将大鼠提起,放在粗糙平面上。
然后用左手戴防护手套(大鼠体型较大且可能会激烈挣扎,容易咬伤操作人员),从大鼠背部绕到其胸前,拇指和食指捏住大鼠两耳后颈背部皮肤,其余手指握住大鼠身体,将其提起固定。
- 原因:与小鼠抓取类似,先抓住尾巴提起是为了初步控制大鼠,放在粗糙平面上利用其向前挣扎的本能便于后续抓取。
戴防护手套是因为大鼠的咬合力较强,为了防止操作人员受伤。
2. 固定。
- 可将大鼠放入大鼠固定器中固定。
对于需要进行手术等操作的大鼠,也可将其麻醉后固定在手术台上,用绑带固定其四肢。
- 原因:固定器和手术台固定都能保证大鼠在实验过程中保持稳定,使实验操作能够顺利进行,尤其是在进行需要精细操作的手术时,稳定的固定是确保手术成功的关键因素之一。
二、实验动物的给药操作。
(一)口服给药。
1. 灌胃法(以小鼠为例)- 准备好灌胃针(一般为特制的金属针具)和相应的药物溶液。
试验动物的抓取固定方法
小鼠温顺,一般不会咬人,抓取时先用右 手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉, 在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠 的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把 后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿 即可。
1
2
(二)大鼠(Rat )的抓取固定方法 大鼠的抓取基本同小鼠
常用于神经、循环和呼吸方面的实验。
11
猪(Pig)
常应用于皮肤烧伤、肿瘤 学、免疫学、心血管及糖 尿病、遗传性和营养性疾 病、移植、外科手术等方 面的研究
12
13
二、实验动物编号标记方法 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方 法。 1)染色法:给大、小鼠、豚鼠标记常用80~90%苦 味酸酒精饱和溶液或3.5~5%苦味酸溶液,其次为 0.5%中性红或碱性品红溶液;编号原则:先左后右, 从前到后。给兔、猫、狗标记常用2%硝酸银溶液, 其次为苦味酸溶液。
14
2)烙印法:大、中型动物
3)针刺法:兔
4)挂牌法
5)穿耳孔法
6)断趾编号:小鼠 7)被毛剪号:大动物 8)笼子编号
4
1
7
2
5
8
3
9 6
40Leabharlann 107020 50 80
30
60 90
图3-2-8小鼠背部的编号方法
15
三、动物(性二别)的动辨物别性及别年的龄辨判别断 (一)大、小鼠的性别鉴定
雄
雌
图3-2-7 小鼠性别的特征
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(二)兔的性别鉴定
Female slit:切开,缝
vulva:外阴
Flanked:两侧
Male Genital:生殖器
实验动物抓取固定方法
实验动物抓取固定方法一、小鼠的抓取固定1、小鼠性情较温顺,挣扎力小,比较容易抓取和固定。
抓取时,用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部放在格板或铁笼上。
2、趁着小鼠试图挣脱的瞬间,迅速用另外三个手指压住小鼠的尾巴根部握入手掌。
3、放松拇指和食指,用另外三个手指控制小鼠,然后用食指和拇指捏住小鼠头部两边疏松的皮肤提起小鼠,完成抓取固定。
4、小鼠性情较温顺,一般不咬人,比较容易固定。
通常是用右手提起小鼠的尾部,将其放在鼠盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前爬行时,迅速用左手拇指和食指捏住其双耳及颈后部皮肤,将小鼠置于左手掌心上,再以右手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。
注意事项:抓小鼠尾巴应抓住尾巴中部或根部,不能仅捏住小鼠尾巴的尾端,因为这时小鼠的重量全部集中到尾端,如果小鼠挣扎,有可能弄破尾端。
在进行解剖、手术、心脏采血、尾静脉注射时,可将小鼠用线绳捆绑在木版上,或固定在尾静脉注射架及粗试管中。
二、大鼠的抓取固定抓取大鼠前最好戴上防护手套,右手轻轻抓住大鼠尾巴的中部并提起,迅速放在笼盖上或其他粗糙面上,左手顺势按、卡在大鼠躯干背部,稍加压力向头颈部滑行,以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤,其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤,完成抓取固定。
三、豚鼠的抓取固定捉拿时,实验人员可先用手轻轻扣、按住豚鼠背部,顺势抓紧其肩胛上方皮肤,拇指和食指环其颈部,用另一只手轻轻托住其臀部,即可将豚鼠抓取固定。
四、兔的抓取固定抓取固定方法是用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤,提起家兔,然后用左手托住臀部。
另一种方法是使用家兔固定栏,打开固定栏的前盖,抓取家兔放进栏内,右手抓住家兔耳朵将头部拉过固定栏的开孔,迅速关上栏门。
五、犬的抓取固定犬性情凶猛、咬人,但通人性。
如果犬在动物实验前曾与实验人员有接触,受过驯养调教,抓取固定就比较容易。
受过驯养的犬或哔格犬的抓取固定,实验人员应弯下膝盖,一只胳膊绕着它的胸部,另一只胳膊绕着后肢的大腿,两只胳膊一起绕着将犬抱起。
第一节实验动物的抓取固定方法
第一节实验动物的抓取固定方法实验动物的抓取和固定方法是实验前的重要步骤,为了保证实验结果的准确性和可靠性,合理的抓取和固定方法非常重要。
以下是一些常用的实验动物的抓取和固定方法,供参考。
一、小鼠的抓取和固定方法小鼠是常用的实验动物之一,其抓取和固定方法可以通过以下步骤完成:1.抓取方法:(1)轻轻拿起小鼠的尾部,将其抓起,使小鼠的前腿和后腿都可以在手指间自由移动。
(2)用食指和中指握住小鼠的脖子,使其头部静止,防止其乱动。
2.固定方法:(1)局部固定:可以使用一只手持住小鼠的尾部,另一只手用拇指和食指轻轻夹住小鼠的后脚,使小鼠无法移动。
(2)整体固定:将小鼠放置在适当大小的实验架上,使用尼龙绳或胶带固定小鼠的四肢,保持其整体静止。
二、大鼠的抓取和固定方法大鼠是较大的实验动物,其抓取和固定方法稍有不同,具体步骤如下:1.抓取方法:(1)用一只手握住大鼠的尾部部分,提起整个大鼠的身体。
(2)用另一只手支撑大鼠的胸部和腹部,使大鼠整体稳定。
2.固定方法:(1)局部固定:可以使用一只手持住大鼠的尾部,以及另一只手用拇指和食指夹住大鼠的后脚,使其无法移动。
(2)整体固定:将大鼠放置在适当大小的实验架上,使用尼龙绳或胶带固定大鼠的四肢和躯干,确保大鼠整体静止。
三、禽类的抓取和固定方法禽类实验动物包括鸡和鸽等,其抓取和固定方法可以通过以下步骤完成:1.抓取方法:(1)握住禽类动物的脚部,向上提起其整个身体。
(2)用另一只手握住禽类动物的颈部,使其头部静止。
2.固定方法:(1)局部固定:将禽类动物的脚部绑在实验台上,使其无法移动。
(2)整体固定:将禽类动物放置在适当大小的实验架上,使用尼龙绳或胶带固定禽类动物的四肢和躯干,确保整体静止。
以上是常见实验动物的抓取和固定方法,需要根据具体情况进行操作。
在进行实验前,一定要确保动物的舒适和安全,注意不要过度固定或受伤动物。
此外,实验过程中还需要定期观察动物的状态,并注意合理的康复和保健措施,以确保实验的准确性和动物的福利。
实验动物采血技术给药技术(一)
(2)腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射 麻醉,操作简便,是实验室最常采用的方法之一。 腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠,较大的动物如 兔、狗等则多用静脉给药进行麻醉。由于各麻醉剂 的作用长短以及毒性的差别。所以在腹腔和静脉麻 醉时,一定要控制药物的浓度和注射量 。
2.局部麻醉 ⑴ 猫的局部麻醉一般应用 0.5~1.0% 盐酸普鲁卡 因 注 射 。 粘 膜 表 面 麻 醉 宜 用 2% 盐 酸 可 卡 因 。 ⑵ 兔在眼球手术时,可于结膜囊滴入0.02%盐酸 可卡因溶液,数秒钟即可出现麻醉。 ⑶ 狗的局部麻醉用0.5~1%盐酸普鲁卡因注射。 眼鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。
二、兔的性别鉴定
Female
Male
第三节 年龄的大致判断
一、大、小鼠 1. 根据形态鉴定日龄(大、小情况基本一样)
日龄/d 1 3 4 5 8 外观形态特征 仔鼠裸体鲜红 耳壳露出表皮 脐带瘢痕脱落 能翻身 能爬行
日龄/d 10 9~11
外观形态特征 能听到声音 全身被白毛,门齿长出
13~15
采血时要注意
采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在 25~28℃,冬季,15~20℃为宜; ② 采血用具有采用部位一般需要进行消毒; ③ 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥; ④ 若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入 抗凝剂。
①
1.取少量血 部位 a.尾静脉 b.耳静脉 c.眼底静脉丛 d.舌下静脉 动物种类 大鼠、小鼠 兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 兔、大鼠、小鼠 兔
尾 部 采 血
心脏采血
二、豚鼠的采血方法 1.耳缘剪口采血 2.心脏采血方法同大、小鼠。 3.股动脉采血方法同大、小鼠。 4.后肢背中足静脉采血
实验动物基本操作
2、固定板固定:方法与小鼠固定板固定相同, 只是需选择更大一些的固定板。
3、固定器(盒)固定:方法与小鼠固定器(盒) 固定相同,只是固定器较小鼠的大。同样适用 于大鼠尾静脉注射。
• 动物实验时,当使用的动物数或实验分组数大于1 时,需要对动物个体间或组间区别开来,就需进 行编号与标记。因此编号与标记的目的就是动物 个体与组别的识别。
• 标记的方法很多,良好的标记方法应满足:号码 清楚、持久、简便易认和适用,不影响实验结果 ,对动物的刺激小,标记物对动物无毒性。编号 方法无定法,原则是使实验者能够识别动物个体 和组别。
兔子固定板固定
五、实验犬
(一)抓取 对未经驯服和调教的外购犬抓取时,可用特制的 长柄铁钳夹住犬的颈部,由另一人用布带或粗绳 缚其嘴,并将布带、绳固定在狗耳后颈部,防止 脱落 。
(二)固定
实验台固定:用特制的长柄铁钳夹住犬的颈 部后,麻醉动物。将麻醉的犬放在实验台上, 再用粗棉带(绳)固定四肢于实验台上。并将 犬舌拉出。此固定方法仰卧位适用于口腔、颈、 胸、腹、四肢等部位的实验,俯卧位适用于脑、 背部位的实验。
(二)固定
1、徒手固定:用一只手抓住兔的颈背部皮肤,另 一只手抓住兔的两后肢,固定在实验台上。
也可以坐在椅子上用一手抓住兔颈背皮肤和两耳, 大腿挟住兔的后半身,用另一只手抓住两前肢将 兔固定。此固定方法适用于腹腔、肌肉注射,及 经口给药。
2、固定盒固定 :此固定方法适用于头、耳部位实 验。
3、固定板(台)固定:此固定方法可使兔俯卧、 仰卧或侧卧固定,适宜于兔头、颈、躯干手术 及其它实验操作。
第八章动物实验基本操作
• 家兔5~10ml
犬5~15ml
(五)静脉注射
大小鼠的尾静脉注射
耳外缘静脉
耳中央动脉
家兔耳部血管
家兔的耳缘静脉注射
静脉注射给药剂量
小鼠
大鼠
0.2~0.5ml 1~2ml
豚鼠
1~5ml
家兔
犬
3~10ml 5~15ml
(六)经口给药
各种动物一次灌胃 能耐受的最大容积: ml, 大鼠为4~7ml, 豚鼠为4~7ml, 家兔为80~150ml, 犬为200~500ml。
第八章动物实验基本操作
第一节 实验动物的抓取与固定
• 一、大鼠小鼠 • 二、豚鼠 • 三、家兔 • 四、犬
小鼠的手法捉拿
大鼠的手法捉拿
大、小鼠的固定
二、豚鼠的捉拿和固定
兔的捉拿和固定
家兔的捉拿
家兔的手法固定
• 四、犬的捉拿
家兔手术台固定
第二节 实验动物的麻醉
(二)局部麻醉
• 1. 猫的局部麻醉一般应用0.5~1.0%盐酸普鲁卡 因注射。粘膜表面麻醉宜用2%盐酸可卡因。
• 2. 兔在眼球手术时,可于结膜囊滴入0.02%盐 酸可卡因溶液,数秒钟即可出现麻醉。
• 3. 犬的局部麻醉用0.5~1%盐酸普鲁卡因注射。 眼鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。
三、 麻醉注意事项
(二)非挥发性麻醉剂
• 包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠 等巴比妥类的衍生物,氨基甲酸乙脂和水合氯 醛等。
• 优点:使用方便,一次给药可维持较长的麻醉
•
时间,麻醉过程较平衡,动物无明显挣
•
扎现象。
• 缺点:苏醒较慢。
氨基甲酸乙酯
特点:药性温和安全度大多数动物均可使用。 有致癌作用不能用于肿瘤有关的实验;有时可降低血压。
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第一节实验动物的抓取固定方法
一、小鼠抓取固定方法
小鼠温顺,一般不会咬人,抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤(见图2-1之一),将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可(图2-1之二)。
有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾,迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时,则需将小鼠作一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位(必要时先行麻醉),再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固定(图2-2),先根据动物大小选择好合适的固定架,并打开鼠筒盖,手提鼠尾巴,让动物头对准鼠筒口并送入筒内,调节鼠筒长短合适后,露出尾巴,固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。
图2-1 小鼠的抓取固定方法
图2-2 小鼠尾静脉注射方法
二、大鼠的抓取固定方法
大鼠的抓取方法基本同小鼠,只不过大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,否则会被咬伤手指。
抓取时为避免咬伤,可带上帆布手套。
如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时,同样可采用左手固定法,只是用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指紧捏鼠背皮肤,置于左掌心中,这样右手即可进行各种实验操作。
也可伸开左手之虎口,敏捷地从后一把抓住。
若做手术或解剖等,则需事先麻醉或处死,然后用细棉线绳活结缚腿,背卧位绑在大鼠固定板上;尾静脉注射时的固定同小鼠(只需将固定架改为大鼠固定盒)。
三、蛙类的抓取固定方法
蛙类抓取方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定,以中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢,拇指和食指分别压住左、右前肢、右手进行操作(见图2-3)。
图2-3 蛙、蟾蜍抓取固定方法
在抓取蟾蜍时,注意勿挤压其两则耳部突起之毒腺,以免毒液射进眼中。
实验如需长时间观察,可破坏其脑脊髓(观察神经系统反应时不应破坏脑脊髓)或麻醉后用大头针固定在蛙板上。
依实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。
四、兔的抓取固定方法
(一)抓取实验家兔多数饲养在笼内,所以抓取较为方便。
一般以右手抓住兔颈部的毛皮提起,然后左手托其臀部或腹部,让其体重重量的大部分集中在左手上(图2-4),这样就避免了抓取过程中的动物损伤。
不能采用抓双耳或抓提背部。
(二)固定一般将家兔的固定分为盒式、台式和马蹄形三种。
盒式固定,适用于兔耳采血、耳血管注射等情况;若做血压测量、呼吸等实验和手术时,则需将兔固定在兔台上,四肢用粗棉绳活结绑住,拉直四肢,将绳绑在兔台四周的固定木块上,头以固定夹固定或用一根粗棉绳挑过兔门齿绑在兔台铁柱上;马蹄形固定多用于腰背部,尤其是颅脑部位的实验,固定时先剪去两侧眼眶下部的毛皮,暴露颧骨突起,调节固定器两端钉形金属棒。
使其正好嵌在突起下方的凹处,然后在适当的高度固定金属榛。
用马蹄形固定器可使兔取用背卧位和腹卧位,所以是研究中常采用的固定方法。
图2-4 家兔抓取方法。