兽医药理学实验指导
兽医药理学实验
兽医药理学实验1.兽医处方的书写（讲授）2.实验动物的种类、捉拿及给药途径（讲授结合实验）实验材料：小鼠5-10（22人拟分成4-5组）只，1ml注射器20支，12-16#小鼠灌胃针5个，生理盐水3.实验动物的采血及处死方法（讲授结合实验）实验材料：小鼠5-10只（22人拟分成4-5组），1ml注射器20支4.水合氯醛的全身麻醉作用及氯丙嗪的增强麻醉作用（实验）实验材料：药物——7％水合氯醛、2.5％氯丙嗪；器械——10ml注射器、酒精棉；动物——家兔3只5.利尿药对兔的利尿作用观察（实验）实验材料：药物——1％呋塞米注射液，7％水合三氯乙醛；器械——兔固定器，外科刀、剪刀、棉花、丝线、绷带、输尿管导管、烧杯、镊子、血管钳子；动物——家兔1只。
6.盐类泻药机理分析（实验）实验材料：药物——10%硫酸钠、常水、生理盐水、7%水合氯醛；器械——兔手术台、剪刀、手术刀、缝线、注射器、针头；动物——家兔1只。
7.试管二倍稀释法测定MIC（讲授）8.药物的配伍禁忌（讲授）一. 实验动物的捉拿和固定方法实验目的：了解常用实验动物的保定及固定方法，掌握实验小鼠的固定方法实验内容：1. 狗的捆绑与固定至少由2～3人进行。
捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结(勿太紧)，再绕回下颌打第二个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图3.3-4）。
切记住兜绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。
如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，并按倒在地，以限制其头部活动，再按上述方法捆绑其嘴。
捆嘴后使其侧卧，一人固定其肢体，另一人注射麻醉药。
此时，应注意狗可能出现挣扎，甚至大小便俱下，以及由于这种捆绑动作往往致使狗呼吸急促，甚至屏气等问题。
待动物进入到麻醉状态后，立即松捆，以防窒息。
将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。
固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。
《兽医药理学实验》课件
对实验数据进行及时记录，并对结果进行分析和解释。
实验总结与报告撰写
对实验结果进行总结，并撰写规范的实验报告。
02
实验一：药物剂量的确定
实验目的
学会根据药物浓度计算给 药体积。
了解不同给药途径对药物 剂量的影响。
掌握根据动物体重计算药 物剂量的方法。
01
03 02
实验原理
01
药物剂量是指给药动物使用的药物数量，是影响药 物作用的重要因素。
观察实验现象
观察混合后的药物溶液是否出 现沉淀、变色、气泡等现象； 记录实验数据。
准备实验材料
选择需要研究的药物A、药物B 和适量的溶剂；准备好实验仪 器和试剂。
混合药物溶液
将药物A和药物B的溶液按一定 比例混合。
分析实验结果
根据观察到的实验现象和记录 的实验数据，分析是否存在药 物配伍禁忌，并得出结论。
药效学原理
药效学原理是本实验的核心原理， 通过药效学实验，可以了解药物对 机体的作用性质、作用方式、作用 强度等。
药代动力学原理
本实验涉及的药代动力学原理主要 涉及药物在体内的吸收、分布、代 谢和排泄过程。
实验步骤
实验准备
包括实验动物、实验试剂和仪器的准备。
实验操作
包括给药方式、给药剂量、实验观察指标等。
实验步骤
步骤一
样品采集与处理。采集动物组织、尿液、血液等样品，进 行匀浆、过滤、离心等处理，以制备待测溶液。
步骤三
测定方法选择与优化。根据药物残留的种类和限量标准， 选择合适的检测方法（色谱法、质谱法或免疫分析法）， 并对实验条件进行优化。
步骤二
样品净化与富集。根据药物残留的性质和检测方法的要求 ，选择合适的净化方法和富集技术，如液-液萃取、固相 萃取、凝胶渗透色谱等。
兽医药理学实验教案
兽医药理学实验教案.兽医药理学实验基本要求明确药理学实验课的目的兽医药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。
其目的为：（）通过实验，使学生掌握药理学实验的基本技能，进一步获得药理学知识和科学的方法；（）验证药理学和中药药理学中某些重要的基本理论，更牢固地掌握药理学的基本概念。
通过实验，培养学生对科学工作的严肃态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风，并训练学生能客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
药理学实验课的要求药理学实验课包括实验操作、整理实验结果、写实验报告等环节。
为了提高实验效果，达到上述目的，要求作到下列事项：（）重视预习实验前应仔细阅读实验指导，了解实验的目的和要求、方法和操作步骤，领会其设计原理，以做到心中有数，避免实验中出现忙乱和差错。
（）加强基本技能训练实验时要在教师指导下，培养独立操作能力，克服依耐性和怕脏、怕动手等不良现象；并认真细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应出现的时间、表现以及最后恢复情况，联系理论进行思考分析。
（）客观地记录和整理实验结果药理学实验结果有记录仪描记的曲线，测量资料（如血压、心率、瞳孔大小、睡眠时间等数据）和记数资料（如动物死活数、阳性或阴性反应等）。
要如实准确地对观察到的数据及时加以记录，决不能凭主观想象或书本理论知识代替实验观察到的客观事实。
实验完毕，对结果分别加以整理，记录的曲线要加以剪裁或复制，并注明动物的种类、体重、性别、日期、实验题目、给药剂量和途径。
测量和记数资料应酌情列表和画图，以便比较，使结果一目了然。
（）认真书写实验报告写实验报告可以培养同学分析和综合概括问题的能力，亦是训练用文字表达的一种重要手段。
每次实验后要求用统一的实验报告本写报告，交负责老师评阅。
在实验报告中要求列出实验题目、实验方法和实验结果。
有时可对实验结果产生的机理或异常的原因加以分析，但不可离开实验去抄书。
最后把实验结果加以概括性总结，并写成结论。
兽医药理学总论实验
第二章兽医药理学总论实验实验一植物药主要有效成分实验目的掌握植物药主要有效成分的检定方法。
一、生物碱定性实验1．如水提取液为酸性时，应加碱调至弱碱性。
2．因脂肪酸盐等也能产生持久性泡沫，故应再做溶血试验或醋酐-浓硫酸试验，以进一步确定之。
（二）皂苷溶血实验实验材料器材——圆底烧瓶、水浴锅、滤纸、试营、试管架、离心管、滴管。
药品——远志粗粉、1.8%氯化钠溶液、生理盐水、哺乳动物静脉血。
实验方法取远志水浸液（依皂苷泡沫实验中提取液即可）10mL，加等量1.8%氯化钠溶液混匀作为待试液。
取试管5支。
一管加蒸馏水1mL，另一管加生理盐水1mL；余者三管分别加待试液0.1、0.5、0.9mL及生理盐水0.9、0.5、0.1mL。
然后5支试管各加入2%红细胞悬浮液lmL，观察有何现象?（若溶液变清并带红色，即表示溶血。
因皂苷有溶血作用。
）此实验亦可用显微镜观察是否溶血。
即可在载玻片上滴一小滴红细胞悬浮液，再加远志水浸液少许，置显微镜下观察，如红细胞破裂、消失，表明含有皂苷成分。
（三）强心苷显色实验实验材料器材——试管、试管架、滴管。
药品——强心苷、冰醋酸、9%三氯化铁溶液、浓硫酸、碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂。
实验方法1．α-去氧糖实验取强心苷2~3mg溶于5mL混合试剂（为100mL冰醋酸中含9%三氯化铁溶液0.5mL）中，缓缓加入浓硫酸5mL，使形成两层。
如两层之间液面呈褐色环带，渐变浅绿、蓝色，最后冰醋酸层呈深兰色，则表明含有α-去氧糖成分。
2．碱性3,5-二硝基苯甲酸实验取强心苷甲醇提取液1mL置小试管中，加入新配制的碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂3~4滴，显红色或紫红色，则表示含有活性亚甲基化合物。
三、挥发油定性实验实验材料器材——试管、滴管、蒸发皿。
药品——乙醚、香荚豆素-浓硫酸试剂（取香荚豆素或称香荚醛0.5g，慢慢加入浓硫酸10mL，也可用浓盐酸）、桉叶蒸馏液。
实验方法取桉叶蒸馏液3~4mL置试管中，加入乙醚2mL，立即用手按住试管振摇片刻，然后用滴管吸取上层乙醚提取液1mL，置蒸发皿中，待乙醚挥发后，残留物滴加香荚豆素-浓硫酸试剂1~2滴，如呈现黄、红、紫、蓝等颜色，则表示有挥发油存在。
(完整版)兽医药理学实验
将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈，再将直铁杆插入上、下颌之间，再下旋铁杆，使弯形铁条紧压犬的下颌（仰卧固定）或压在鼻梁上（俯卧固定）。再将狗头夹固定在手术台上。
固定好狗头后，取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部，绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时，亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时，绑前肢的绳索可不交叉，直接绑在同侧的固定钩上。
(2)灌服法
灌服法是将动物适当固定，强迫动物摄入药物。这种方法能准确把握给药时间和剂量，及时观察动物的反应，适合于急性和慢性动物实验，但经常强制性操作易引起动物不良生理反应，甚至操作不当引起动物死亡。故应熟练掌握该项技术。强制性给药方法主要有两种：
①固体药物口服
一人操作时用左手从背部抓住动物头部，同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口，右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位，然后让动物闭口吞咽下药物。
兽医药理学实验
1.兽医处方的书写（讲授）2.3.实验动物的种类、捉拿及给药途径（讲授结合实验）
4.
实验材料：小鼠5-10（22人拟分成4-5组）只，1ml注射器20支，12-16#小鼠灌胃针5个，生理盐水
5.实验动物的采血及处死方法（讲授结合实验）
《兽医药理学实验》
02
实验动物用药记录
03
动物福利与伦理
详细记录动物的用药情况，包括 药物名称、剂量、给药方式、时 间等，以便分析实验结果。
遵守动物福利和伦理原则，确保 实验动物的权益和福利得到保障。
03 药物作用机制
CHAPTER
药物作用机制介绍
药物作用机制定义
药物作用机制是指药物如何与机 体细胞上的受体结合，通过一系 列的信号转导和代谢过程，最终 发挥药理或毒理作用的原理。
病情况。
对照组设置
设立对照组以评估实验组药物对疾病 的治疗效果，对照组可采用安慰剂或
未处理组。
设计给药方案
根据实验目的和药物性质，制定合理 的给药方案，包括给药剂量、给药途 径和给药周期等。
实验数据收集
记录实验过程中动物的生命体征、症 状变化、生理生化指标等数据，为后 续分析提供依据。
药物疗效评价结果分析
的和药物特性进行选择。
给药方法
02
根据实验要求，选择适当的给药途径和方法，如灌胃、皮下注
射、静脉注射等。
实验指标
03
选择与药物作用机制相关的生理、生化、病理等指标进行观察
和检测，以评估药物的作用效果。
药物作用机制分析
数据处理与分析
对实验数据进行处理和分析，利用统计学方法对实验结果 进行比较和评价。
实验步骤
实验准备
选择合适的实验动物、准备实验药品和器材， 确保实验条件符合要求。
实验操作
按照规定的实验方法和技术，对实验动物进 行给药、观测和记录数据。
数据处理
对实验数据进行整理、分析和统计，得出实 验结论。
实验报告撰写
按照规定的格式和要求，撰写实验报告，总 结实验结果和经验教训。
兽医药理实验报告(3篇)
第1篇实验名称：抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌实验实验目的：1. 了解抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌作用。
2. 掌握平板划线法在微生物实验中的应用。
3. 分析抗生素的抑菌效果，为临床合理使用抗生素提供参考。
实验原理：金黄色葡萄球菌是一种常见的革兰氏阳性球菌，对多种抗生素敏感。
本实验通过平板划线法，将金黄色葡萄球菌接种在含有不同浓度抗生素的琼脂平板上，观察并记录抑菌圈的大小，以评估抗生素的抑菌效果。
实验材料：1. 金黄色葡萄球菌菌种2. 生理盐水3. 不同浓度的青霉素、链霉素、红霉素、庆大霉素药液4. 琼脂平板5. 移菌针6. 酒精灯7. 灭菌棉签实验方法：1. 将金黄色葡萄球菌菌种接种于生理盐水中，制成菌悬液。
2. 将不同浓度的抗生素药液分别加入琼脂平板中，制成含有不同浓度抗生素的琼脂平板。
3. 使用移菌针将金黄色葡萄球菌菌悬液均匀涂布在琼脂平板上。
4. 将琼脂平板倒置，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
5. 观察并记录抑菌圈的大小。
实验结果：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，抑菌圈直径最大。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但抑菌圈直径较青霉素小。
3. 随着抗生素浓度的增加，抑菌圈的大小也随之增大。
实验分析：1. 本实验结果表明，青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可能是由于青霉素能抑制细菌细胞壁的合成，导致细菌死亡。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但其抑菌效果不如青霉素。
这可能是由于这些抗生素的作用机制与青霉素不同，或者是金黄色葡萄球菌对这些抗生素的耐药性较高。
3. 在临床用药过程中，应根据患者的病情和药物敏感性，合理选择抗生素，以充分发挥抗生素的抑菌效果。
实验结论：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可作为临床治疗金黄色葡萄球菌感染的首选药物。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，可根据患者的病情和药物敏感性选择使用。
兽医药理学实验设计
兽医药理学实验设计
兽医药理学实验设计
一、实验题目
鱼类兽医药理学研究
二、实验目的
研究鱼类兽医药理学，探讨鱼类对药物的反应，探究鱼类的药理作用。
三、实验步骤
1. 对不同种类的鱼进行实验前准备，建立实验样本。
2. 将各种药物分别混合在不同的浓度水中，测试鱼类对该药物
的反应。
3. 将鱼类分别浸泡在不同浓度的药物溶液中，记录鱼类的反应
情况，做出实验结论。
4. 分析实验结果，得出结论，提出对鱼类药理作用的解释。
四、实验报告
此实验的目的在于研究鱼类兽医药理学，探讨鱼类对药物的反应，探究鱼类的药理作用。
实验步骤如上所示。
实验中，选用了三种不同种类的鱼，分别是大黄鱼、罗非鱼和鲫鱼，分别将它们浸泡在不同浓度的药物溶液中，观察鱼类的反应。
实验结果发现，罗非鱼对于药物的反应最为敏感，其后为大黄鱼和鲫鱼。
根据实验结果，认为鱼类对于不同的药物种类有着不同的反应，这可能是由于鱼类的身体环境和特定药物的机理而引起的。
另外，不
同种类的鱼也会有不同的反应情况，这可能是由于不同种类鱼的体型、体重等生理状况略有差异而引起的。
本次实验证实了鱼类对于药物的反应是不一致的，这为进一步研究鱼类药理学提供了有价值的情节和实证基础。
《兽医药理学》实验指导
兽医药理学实验的目的和要求药理学实验课是药理学教学的重要组成部分，其目的在于通过实验，不仅仅是验证药理学中的重要基本理论，牢固地掌握药理学的基本概念，以便正确地应用于临床；更重要的是加强智能培养，即了解获得药理学知识的科学途径，使学生掌握进行药理学实验的基本方法和技能，培养与提高自学、独立思考、独立工作、科学思维、实验设计与统计的能力，初步具备对事物进行客观的观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
同时，通过实验培养学生对科学工作的严肃态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：一、实验前1. 仔细预习《药理学实验教程》，了解拟进行实验的目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理。
2. 结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学等方面的理论知识。
3. 预测实验中各步骤可能出现的情况，注意实验中可能发生的问题。
二、实验时1. 实验分小组进行，每次实验前做好明确分工，同时要密切配合，使实验时能各尽其责，有条不紊地完成实验。
2. 先检查仪器、药品、动物是否与实验教程相符合，将实验器材妥善安排、正确装置。
3. 严格按实验讲义上的步骤进行操作，准确计算给药量，注意爱护动物和标本，节约实验材料和药品。
4. 保持实验室肃静和实验台面清洁与整齐，注意遵守实验室规则，当仪器损坏时，应立即报告教师，按规章处理。
5. 细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出现时间、表现及最后转归，联系理论实际，动脑思考，克服对教师的依赖性。
三、实验后1. 认真整理实验结果，必要时对实验结果进行统计学处理，经过分析讨论，作出结论，写出实验报告，按时交指导老师。
2. 整理实验器材，均应主动参加洗净、擦干和妥善安放等收尾工作。
将死动物及其它废物丢入指定场所，做好实验室清洁卫生。
四、对实验指导教师的要求1. 明确实验目的和要求，精通实验内容及各项实验在整个实验课中所处的地位。
2. 指导实验课要认真、耐心指导学生进行实验技术操作，培养学生独立分析问题和解决问题的能力和严肃、严谨的科学作风。
《兽医药理学实验》PPT课件
• 实验设计基本原则
• 随机原则
• 使每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照 组中，除处理因素外其他因素尽可能均衡一致，从 而抵消非实验因素的影响。
• 对照原则
• 组间对照：阴性对照，阳性对照，同因素不同水平 对照；
• 自身前后对照
• 重复原则
医学PPT
6
• 实验动物 •动物的选择
• 小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些 药物的筛选，半数致死量的测定。也较适用于 避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统 药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。 • 大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测 定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性 和慢性毒性实验。
医学PPT
7
• 实验动物 •动物的选择
• 豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于 抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用于离体心 脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感，常用于抗结 核病药的实验。 • 家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对小肠的 作用。由于家兔体温变化敏感，也常用于体温实验，用 于热原检查。 • 狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。还可利用 狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影 响。在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。
动物医学、动植检专业
兽医药理学实验
河南科技大学动物科技学院 主讲：赵振升 白东英 王国永
医学PPT
1
本课程实验内容
实验一 实验二 实验三 实验四 实验五 实验六 实验七 实验八 实验九
药理实验基础知识
药物的剂量与剂型对药物效应的影响
毛果芸香碱与阿托品对瞳孔及对光反射的影响
药物急性半数致死量的测定
斗下，让其尾部露出。用酒精或二甲苯涂擦尾部，或将鼠尾在 50'C热水中浸泡半分钟使血管扩张。左手拉尾端，右手持注射器 将针头刺入尾静脉，推入药液。
兽医药理学实验0928
0.4mL
6号 0.4mL 5 1/2号 0.5mL 6 1/2号 2mL 6 1/2号
2mL
6号 lmL 5 1/2号 4mL 7号 5mL 7号
4mL
5号 0.8mL 4号 5mL 5号 10mL 6号
小鼠
最大给药量 使用针头
豚鼠
最大给药量 使用针头
家兔
最大给药量 使用针头
二、小鼠的捉拿与保定
兽医药理学实验
指导老师：陈 品 戴梦红 华中农业大学动物医学院 2009.09
•实验课程学习要求
实验后
实验中
实验前
1.预习实验指导 ，明确实验目的 和要求，充分了 解实验方法； 2.进入实验室， 必须穿工作服； 3.检查实验器材
1.根据实验内容 进行小组内分工 2.严格、准确地 按照指导中的实 验方法进行实验 操作。 3.仔细、详实的 记录实验结果。
小鼠的给药方法
灌胃给药
1.用左手拇指和食指抓住鼠 两耳和头部皮肤，其他三指 抓住背部皮肤，将鼠抓持在 手掌内，固定好动物，头部 和颈部保持平直,右手取注 射器进行灌胃。 2.灌时针头沿鼠口角通过食 管进入胃内。灌时如很通畅， 则表示针头已进入胃内；如 动物有呕吐动作或强烈挣扎， 必须拔出后按上述方法重新 操作。决不可进针不顺硬向 里插。
例 1 ： 小 白 鼠 体 重 18g ， 腹 腔 注 射 盐 酸 吗 啡 10mg/kg，药浓度为0.1%，应注射多少容量（mL ）？ 例2：给兔静注苯巴比妥钠80mg/kg，注射体积 为1mL/kg，应配制苯巴比妥钠的浓度是多少？
六、小鼠的给药方法
肌内注射法 小鼠固定如上述,将注 射器针头刺入小鼠后肢外侧 肌肉,注入药物。 皮下注射法 注射部位可选背部皮下, 操作时轻轻拉起背部皮肤, 将注射针头刺入皮下,稍稍 摆动针头,若容易摆动则表 明针尖的位置确定在皮下, 此时注射药物。拔针时,轻 捏针刺部位片刻,以防药液 流出。
兽医药理学实验目与要求及基本技术
2、按照实验步骤，以严肃认真的态度循序操作， 不得进行与实验无关的活动。注意保护实验动 物和标本，节省实验器材和药品。
3、仔细、耐心地观察实验过程中出现的现象；要 随时记录并联系讲授内容进行思考。 如：1>.发生了什么现象？ 2>.为什么出现这种现象？
三、实验结束后 1、将实验用具整理就绪，所用器械擦洗干净。
手食指摸到心搏，右手取注射器选择心搏 最强处穿刺。
6、颈静脉 作一般颈外静脉分离手术。颈静脉
暴露楚后，用注射器针头沿静脉平行方 向刺入，抽取所需血量，采用此法取血 ，体重20克的小鼠可取0.6ml左右，体重 300克的大鼠可取血8ml左右。
二、家兔和豚鼠
1、心脏：
将兔仰卧固定在手术台上，把左侧胸部相当 于心脏的部位的被毛剪去，用碘伏、酒精消毒皮 肤。实验者用左手触摸左侧第3-4肋间，选择心 跳最明显处作穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处将 注射针头插入第三肋间隙。穿刺时最好用左手触 诊心跳，在触诊的配合下穿刺。 经6-7天后，可以重复进行心脏穿刺术。家兔一 次可采取全血量的1/6-1/5。
用金属制的牌号固定于实验动物的耳上。
大动物可将号码烙压在圆形或方形金属牌上（最 好用塑料、铝或不锈钢的，它可长期使用不生锈） ，或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带 上，将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大 型动物。
打孔或剪缺口法
可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一 定的号码。如用剪子剪缺口，应在剪后用滑石粉捻 一下，以免愈合后看不出来。该法可以编至1～9999 号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用
2020/6/24
2020/6/24
实验课的要求
一、实验前
1、仔细阅读实验指导，了解实验的目的、要 求、实验步骤和操作程序。 2、结合实验内容，复习有关理论，做到充分 理解。 3、预测该实验各个步骤应得的结果。 4、注意和估计实验中可能发生的误差。
(完整版)兽医药理学实验.doc
至少由2～3人进行。捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使
其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结
(勿太紧)，再绕回下颌打第二
个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图
3.3-4）。切记住兜
绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，
④心脏穿刺取血将家兔仰卧位固定，剪去心前区被毛，用碘酒消毒皮肤。术者用装有
7号针头的注射器，在胸骨左缘第三肋间或在心跳搏动最显著部位刺入心脏，刺入心脏后血
液一般可自动流入注射器，或者边刺入边抽吸，直至抽出血液。抽血后迅速拔出针头。
取血可获得较大量的血样。
心脏
[注]：如需要抗凝血样时，应事先在注射器或毛细管内加入适量抗凝剂，
腹腔时， 术者可有阻力突然减小的感觉， 再回抽针栓， 确定针头未刺入小肠、 膀胱或血管后，缓慢注入药液。
(4)静脉注射
静脉注射将药物直接注入血液，毋需经过吸收阶段，药物作用最快，是急、慢性动物实
验最常用的给药方法。静脉注射给药时，不同种类的动物由于其解剖结构的不同，应选择不
同的静脉血管。
①兔耳缘静脉注射
兔可固定在兔盒或兔台上（3.4-7）。在手术台上用兔头夹固定头部(图3.3-3A),把嘴套入
铁圈内， 调整铁圈至最适位置然后将兔头夹的铁柄固定在手术台上。或用一根较粗棉线绳一
端打个活结套住兔的两只上门齿，另一端栓在实验台前端的铁柱上。做颈部手术时,可将一
粗注射器筒垫于动物的项下,以抬高颈部,便于操作。兔的四肢固定和狗相同。
4.小鼠、大鼠
实验者右手捉住小鼠尾，鼠会本能地向前爬行。左手攥紧鼠颈背部皮
肤，使其腹部向上，拉直躯干，并以左手小指和掌部夹住其尾固定在左手上（图3.3-8）。可作腹腔麻醉。 亦可用金属筒、 有机玻璃筒或铁丝笼式固定器固定， 露出尾部， 作尾静脉注射。捉持大鼠的方法基本同小鼠。 大鼠在惊恐或激怒时会咬人， 捉拿时可戴防护手套， 或用厚布
兽医药理学实验
兽医药理学实验实验报告书写题目目的原理材料：实验动物、器材、药品方法：用自己的语言简单扼要描述出来结果：要求真实清楚讨论，将实验结果比较分析，实验中有哪些不足之处，结果异常或失败的原因结论：将实验结果归纳总结实验一：实验动物的捉拿及给药方法一、小白鼠的捉拿和给药方法1、捉拿法：以右手捉住小鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀爬处，轻轻向后拉鼠尾，趁其不备，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指靠在鼠背上，然后以无名指压住鼠尾，小指压住其左下肢，使小鼠完全固定。
2、给药方法：1）灌胃：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直，右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿上颚壁轻轻进入食管，当推进2～3cm时，灌胃器的前端到达膈肌水平，此时可稍感有抵触。
一般在此位置推注药液即可。
灌胃量为每10g体重0.1～0.3ml 。
2）腹腔注射：将小鼠固定后，使其呈头低臀高位，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔，进针部位不宜太高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。
注射量一般为每10g 体重0.1～0.3ml 。
3）皮下注射：左手固定小鼠，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。
注射量一般为每每10g体重0.05～0.2ml 。
4）肌肉注射：小鼠因肌肉较少，很少采取肌肉注射，若需要，则由两人合作，一人固定小鼠后，另一人持注射器，将针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量每条腿不超过0.1ml。
5）尾静脉注射：将小鼠固定，使鼠尾露出。
用酒精棉球涂搽尾部，使血管扩张。
用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中选择一条扩张最明显的，右手持注射器（选用4号针头），将针头由尾端向心刺入血管，用左手拇指与食指固定针头和血管，推入药液。
注射量为每10g体重0.1～0.2ml二、家兔的捉拿和给药方法：1、捉持法：用左手抓住颈背部皮肤将家兔提起，右手托住其臀部，使家兔呈坐位姿势。
兽医药理学实验报告
实验名称：抗生素的药效学实验实验目的：1. 了解抗生素的药效学特点。
2. 掌握抗生素的药效学实验方法。
3. 分析抗生素在不同动物模型中的药效差异。
实验材料：1. 实验动物：小鼠、豚鼠、兔各10只，体重分别为20g、200g、2kg。
2. 药物：青霉素、链霉素、土霉素。
3. 实验仪器：电子天平、量筒、移液器、显微镜、培养皿、试管等。
实验方法：1. 实验动物分组：将实验动物随机分为四组，分别为青霉素组、链霉素组、土霉素组及对照组。
2. 药物配制：将青霉素、链霉素、土霉素分别配制成不同浓度的溶液。
3. 实验操作：a. 青霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射青霉素溶液，观察动物反应。
b. 链霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射链霉素溶液，观察动物反应。
c. 土霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射土霉素溶液，观察动物反应。
d. 对照组：不给予任何药物，仅观察动物反应。
4. 数据记录：记录每组动物的反应时间、反应程度等数据。
实验结果：1. 青霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射青霉素溶液后，动物出现短暂的颤抖、呼吸加快等症状，但很快恢复。
2. 链霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射链霉素溶液后，动物出现明显的颤抖、呼吸急促、昏迷等症状，部分动物死亡。
3. 土霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射土霉素溶液后，动物出现轻微的颤抖、呼吸加快等症状，但很快恢复。
4. 对照组：动物无任何异常反应。
实验分析：1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效，动物反应轻微，恢复较快。
2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差，动物反应明显，部分动物死亡。
3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间，动物反应轻微，恢复较快。
实验结论：1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效，是治疗相应疾病的理想药物。
2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差，不建议用于治疗相应疾病。
3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间，可根据实际情况选择使用。
实验注意事项：1. 实验过程中应严格遵守操作规程，确保实验数据的准确性。
兽医药理学实验报告
兽医药理学实验报告兽医药理学实验报告引言：兽医药理学是研究动物体内药物的吸收、分布、代谢和排泄等过程的学科。
本次实验旨在探究某种药物在动物体内的作用机理和药代动力学特性。
通过实验结果的分析和讨论，可以为兽医学领域的药物治疗提供科学依据。
实验材料与方法：1. 实验动物：选取健康的小鼠作为实验对象，保证其体重和年龄相近。
2. 药物制备：选择一种已经广泛应用于兽医临床的药物，按照一定比例配制成适合小鼠体内使用的浓度。
3. 实验组设置：将小鼠随机分为实验组和对照组，实验组注射药物，对照组注射生理盐水。
4. 采样与检测：在注射后的不同时间点，采集小鼠血液样本，利用高效液相色谱仪等设备检测药物在血液中的浓度。
实验结果：通过实验数据的统计和分析，我们得到了以下结果：1. 药物在小鼠体内的吸收速度较快，注射后短时间内即可检测到药物在血液中的存在。
2. 药物的分布范围广，不仅在血液中存在，还可以进入组织和器官，如肝脏、肺等。
3. 药物在体内的代谢速度较快，经过一段时间后，血液中的药物浓度逐渐降低。
4. 药物的排泄途径主要通过肾脏，以尿液的形式排出体外。
讨论与分析：1. 药物在小鼠体内的吸收速度较快，这说明该药物具有良好的肠道吸收能力。
这对于兽医临床应用来说非常重要，因为动物在接受治疗时，需要尽快吸收药物以达到治疗效果。
2. 药物的分布范围广，说明该药物具有较好的组织渗透性。
这对于治疗需要药物在特定组织或器官发挥作用的疾病非常重要，如肺部感染等。
3. 药物的代谢速度较快，说明该药物在体内代谢酶的作用下很快被分解。
这对于副作用较大的药物来说有一定的好处，可以减少不良反应的发生。
4. 药物的排泄途径主要通过肾脏，这提示该药物在体内的代谢产物主要以水溶性形式排出。
这对于肾功能正常的动物来说是一个好消息，因为药物代谢产物可以通过尿液迅速排除。
结论：本次实验结果表明，该药物在小鼠体内具有较好的药代动力学特性，包括良好的吸收、分布、代谢和排泄能力。
《兽医药理学实验》01
l 预习实验指导和相关参考书； l 了解实验目的、步骤及方法； l 理解实验设计原理； l 运用理论知识对实验结果进行推测。
2. 规范；
l 检查仪器、药品等是否齐全； l 仔细阅读实验指导，按照实验方法进行操作； l 保持实验室安静，避免影响其他同学。
3.
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二．药理学实验的要求
3. 实验报告格式（用实验报告纸写）： 一．目的； 二．原理； 三．器械、药品、动物； 四．方法步骤；（用文字叙述，不准抄PPT） 五．结果与分析（结果是否正确，分析是否合理）； 六．讨论（完成实验项目后面的讨论题）。
二．药理学实验的要求
《兽医药理学实验》01
2020/9/7
实验内容
实验一 实验动物的捉持和给药方法 实验二 药物的协同作用和拮抗作用； 实验三 不同给药途径对药物作用的影响； 实验四 动物机体机能状态对药物作用的影响； 实验五 传出神经系统药物对犬（或家兔）血压的影响； 实验十一 组胺与抗组胺药对离体肠平滑肌的作用； 实验十三 磺胺药对肾脏的毒性作用； 实验十四 硫酸链霉素的急性毒性反应及解救； 实验十七 抗菌药物最小抑菌浓度（MIC）的测定； 实验十八 两种抗菌药物的体外联合药敏试验。
第一章 兽医药理学实验的目的、要求、基本知识和技术 第一节 兽医药理学实验的目的与要求
一．药理学实验的目的
1. 验证所学的理论，加深对理论知识的理解，体会到 从实验到理论，理论指导实验的认识过程。
2. 掌握有关的药理学实验技术和方法，培养分析问题 和解决问题的能力，从而为培养创新性ห้องสมุดไป่ตู้下基础。
二．药理学实验的要求
4. 课堂纪律注意事项 l 请假，写请假条; l 迟到，无故早退、缺课者要扣分（考勤分）; l 穿白大褂。
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一手抓住青蛙、固定使腹部朝上，
另一手取注射器，并连上5号注 射针头，将针头插入口腔，穿过
下颔肌层进入胸淋巴囊，再向前
伸即可到腹淋巴囊。
• 也可自大腿部进针通过皮下进 入腹淋巴囊，然后注射药液。
蛙的皮下巴囊 1．颔下囊2．胸囊 3．腹囊 4．股囊 5．胫囊 6．侧囊
二、方法
• (二)小白鼠的给药方法(如图) • 1．口服 • 左手捏住小白鼠颈背部皮肤，以同一手的第四指或小指将尾巴紧
兔灌胃法
兔耳静脉注射法
小鼠尾静脉注射
二、方法
• (四)狗静脉注射法：己麻 醉的狗可选用股静脉给药。 未麻醉的狗可选用前肢皮 下头静脉后肢小隐静脉给 药，注射前先将注射部位 毛剪去，在静脉向心处用 橡皮带绑紧(或用手抓住) 使血管充血。针向近心端 刺入。为保证药物确实注 入静脉，应在注入药液之 前。回抽针栓，倘有回血 即可推注药液。
• 二、正式实验：在预试找出的范围内选用几个剂 量(使其相邻剂量之间是1：0.8之比)尽可能使半组 数的死亡率在50％以上，另半组数的死亡率在50 ％以下。再将动物随机分组，再以相应的剂量腹 腔注射4％敌百虫药液(注意：小鼠腹腔注射 0．1～O．2ml／10g为宜)。
数据记录：
组别 1 2 3 4 5
药量 288mg/kg
动物数 0.0072ml/g
360
0.009
450
0.01125
562.5
0.01406
703.125
0.01758
死亡率
二、方法：
• 三、统计试验结果：最后一只动物给药一定时间，清点各组的死亡动 物数，选择一组统计方法计算敌百虫的LD50，包括可信限及可信限 率。 ．
• (附]：LD50的计算方法： • 寇氏法：要求各组实验动物数相等；最小剂量组死亡率为0；最大
• 2.帮助学生掌握常用或代表性药物药效学的基本 内容。
• 3.帮助学生掌握药物对动物体的毒性和毒理学方 面的知识。
• 4.了解药动学的基本内容。 • 5.了解药物片剂制备和药物片剂的质量检测方法。 • 6. 锻炼学生的设计能力和创新思维，掌握临床用
药的筛选方法。
实验教材或指导书
• 实验教材：《兽医药理学实验指导》 云南农业大学自编教材。
小白鼠灌胃法
二、方法
• (三)兔 • 1．液体药物灌胃法：一个人将兔的躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳，固定
其头部，右手抓住前肢。另一人将兔用开口器横放于兔口中，将舌头压在开 口器下面，把开口器固定。将合适的胃管(如导尿管)经开口器中内小孔慢慢沿 上颚壁插入食道约5_-6寸长，为避免错人气管，可将胃管外端放于清水杯中， 若有气泡从胃管逸出，则证明在气管内，应拨出重新插入，若无气泡则注射 人药液，然后再注入小置清水，将胃管内药液冲入胃内，灌洗完毕后先拨出 尿管，后拿出开口器。 • 2．皮下注射：用左手拇指及中指将兔的背颈部皮肤提起成一皱折，并用食指 按压皱折的一端，使成三角体，增大皮下空隙，以利针刺。右手持注射器， 自皱折下刺入，证实针到皮下时，松开皱折，注入药液。 • 3．静脉注射：一般采用耳缘静脉注射(耳外缘的血管为静脉，中央的血管为动 脉，先剪去注射部位的兔毛，用酒精棉球消毒注射部位，以左手食指在耳下 作垫，并以拇指压着耳边缘部分，右手持带有18～20号针间注射器，尽量从 静脉末端处刺入血管(不一定有回血)，一般是注射针先经皮下，后进血管，且 针头入血管内少许。推动针栓，感觉有阻力或发自隆起，表示针在皮下，这 时应将针头稍退回一点，再往前端刺针，如无阻力或发自隆起现象，即可注 药，注射完毕后，压住针眼，拨去针头，继续压迫数分钟，以防流血。
主讲教师：杨林富 云南农业大学动物医学实验教学中心
课程性质和任务
• 动物药理学是兽医专业一门重要专业 基础课，也是兽医相关专业的基础课。 通过动物药理学实验课程的学习，使 学生掌握药理学的实验方法和兽医基 本技能。帮助学生掌握常用或代表性 药物的作用机理、不良反应和临床药 物应用，为疾病预防和治疗打下基础。
• 第一部分 • 取兔一头，固定后，将两耳对光观察血管的粗细，颜色
等情况，然后对一个耳朵涂擦松节油，过2分钟后，对 比两个耳朵的情况。 • 第二部分 • 1．取兔一头，先观察正常活动情况，用镊子轻击四肢 或背部，看有何反应。 • 2．给兔皮下注射0．1％硝酸士的宁注射液，观察动物 反应：每隔数分钟用镊子轻击四肢，观察兔有何反应。 • 3．待兔出现典型的士的宁中毒症状：全身痉挛，角弓 反张，呼吸暂停等，立即套上有麻醉乙醚的口罩，再观 察兔的反应。 • 4．当兔的中毒症状消失时，除去麻醉口罩
实验一 实验动物的给药方法
• 一、目的：
• 练习对实验动物给药方法的操作常规： 实验动物（主要以兔、小白鼠和鸡为 主）的捉拿、保定和常规给药方法， 为以后的实验操作打下基础。
二、方法
（一）青蛙淋巴囊注入法(如图)
• 青蛙(或蟾蜍)之皮下有数个淋 巴囊，注射药物容易吸收，腹淋
巴囊常作为给药途径。注射方法：
• 6.通过病原微生物对药物的敏感性实验，了解临床用药的筛选方 法。
• 教学方法：在教师的讲解、示教和指导下，完成实验任务。要求 学生严格操作、独立完成并掌握。学生在教师示教时仔细观察实 验步骤和方法，认真学习并掌握。
教学目的要求
• 1.通过动物药理学实验课程教学，使学生掌握药 理学的实验方法和一般仪器的调试使用。
剂量组死亡率为100％。 • 如按等比级数设计给药剂量：则 • LgLD50=Xm—d(∑pi一0.5) • Xm：最大剂量的对数 • pi：各组动物死亡率 • d：相邻两组剂量对数之差 • 求：LD50的95％可信限： • (1)计算LD50的标准误
• SLgLD50=d√∑pi(1-pi)/ni-1 • (2)LD50的95％可信限为： ． • Lg-1(LgLD50±1．96SLgLD50)
•讨论
• 记录实验结果，说明哪种作用是局 部作用?哪种作用是吸收作用?
实验三 敌百虫急性LD50的测定
一、目的：
• 通过实验了解测定LD50的方法及计算过 程。
• 材料： • 小白鼠、注射器及针头、小铁丝笼、2％
敌百虫溶液、苦味酸溶液。
二、方法：
• 一、预试：取小白鼠8-12只，以2只为一组分成 4-6组，选择组距较大的一系列剂量分别按组腹腔 注射敌百虫溶液，观察出现症状并记录死亡数， 找出0％～100％死亡率剂量的所在范围。
教学内容和方法
• 教学内容
• 1.用常用或代表性药物、配合用药方面的实验，掌握常用药物的配 伍。
• 3.通过药物对动物毒性的实验，理解药物的毒性和毒理。
• 4.通过药物在动物中的血药浓度测定，了解药物在体内的代谢过 程。
• 5.通过药物片剂的制备和质量检测实验，了解片剂的生产工艺和 质检方法。
实验五 硫酸钠和液体石蜡导泻原理
一、目的：
• 通过实验了解泻药导泻的几种方式和作用 机理。
二、方法：
• 取健康兔1只，称重后以1％硫喷妥钠注射液(1ml ／kg)静脉麻醉背位固定于解剖台上。沿腹正中切 口，取出回肠，在回盲区将肠内容物挤向结肠， 并用粗线在回盲部近端将回肠扎成3段，每段长 3cm。结扎时慎勿损伤肠系膜血管，结扎的3段回 肠应互不相通。然后分别给各结扎段注入下列药 物之一：(1)20％硫酸钠溶液2ml;(2)生理盐水2m1； (3)液体石蜡2ml。注射毕将肠管放回腹腔，并用血 管钳关闭腹腔。
二、方法：
• 蓄积毒性试验 • 有些药物急性毒性较小，但长期应用后，在体内蓄积。逐渐产生毒性反应,而出
现慢性中毒现象。了解药物蓄积作用的大小，可进行蓄积毒性试验，常用的是蓄 积系数测定法，现介绍如下： • 蓄积系数(K)即分次给药所引起某效应的总剂量LD50(n)与一次给药所得相同效应的 剂量LD50(n)之比值。公式如下： • k= LD50(n)/ LD50(1) • 此实验常用大鼠或小鼠，按剂量定期递增法给药，方法如下： • 先测定动物的LD50（灌胃或腹腔注射），再取相同动物20只，每天给药（给药途 径同LD50的测定），以4天为一期。给药剂量：第1-4天为0.1 LD50，以后按等级数 1.5倍每4天递增一次，直至动物死亡半数为止，累计给药总剂量，按下列公式计算 蓄积系数(k) • k= LD50(n)/ LD50(1) • 蓄积系数的评价标准见下表： • 蓄积作用的分级表 • 蓄积系数 蓄积作用分级 • 〈1 高度蓄积 • 1～ 明显蓄积 • 3～ 中度蓄积 • 5～ 轻度蓄积
• 参考书： 《药理学实验方法》
•
《药剂学实验》
•
《兽医药实验室检验技术》
王俊东 主编 中国农业科学技术出版
社
目录
• 实验一 实验动物的给药方法 • 实验二 药物的局部作用与吸收作用试验 • 实验三 敌百虫急性LD50的测定 • 实验四 药物的药理性配伍禁忌 • 实验五 硫酸钠和液体石蜡导泻原理 • 实验六 消沫药的作用观察 • 实验七 氨甲酰胆碱、毛果芸香碱与阿托品对离体肠肌活动的影响 • 实验八 亚硝酸盐的中毒与解救 • 实验九 洋地黄制剂、肾上腺素、咖啡因对离体蛙心的作用观察 • 实验十 片剂的制备 • 实验十一 家兔血和肝中游离磺胺嘧啶浓度的测定 • 实验十二 抗菌素的平板抑菌试验