(完整版)兽医药理学实验

给家兔灌服时宜用兔固定箱或由两人操作。助手取坐位，用两腿夹住动物腰腹部，左手抓免双耳，右手握持前肢，以固定动物；术者将木制开口器横插入兔口内并压住舌头，将胃管经开口器中央小孔沿上腭壁插入食道约15 cm，将胃管外口置一杯水中，看是否有气泡冒出，检测是否插入气管，确定胃管不在气管后，即可注入药物(图3.4-2)。
将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈，再将直铁杆插入上、下颌之间，再下旋铁杆，使弯形铁条紧压犬的下颌（仰卧固定）或压在鼻梁上（俯卧固定）。再将狗头夹固定在手术台上。
固定好狗头后，取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部，绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时，亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时，绑前肢的绳索可不交叉，直接绑在同侧的固定钩上。
(2)灌服法
灌服法是将动物适当固定，强迫动物摄入药物。这种方法能准确把握给药时间和剂量，及时观察动物的反应，适合于急性和慢性动物实验，但经常强制性操作易引起动物不良生理反应，甚至操作不当引起动物死亡。故应熟练掌握该项技术。强制性给药方法主要有两种：
①固体药物口服
一人操作时用左手从背部抓住动物头部，同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口，右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位，然后让动物闭口吞咽下药物。
兽医药理学实验
1.兽医处方的书写（讲授）2.3.实验动物的种类、捉拿及给药途径（讲授结合实验）
4.
实验材料：小鼠5-10（22人拟分成4-5组）只，1ml注射器20支，12-16#小鼠灌胃针5个，生理盐水
5.实验动物的采血及处死方法（讲授结合实验）
6.
实验材料：小鼠5-10只（22人拟分成4-5组），1ml注射器20支
实验内容：
1.经口投药法
(1)口服法．
口服法是将能溶于水并且在水溶液中较稳定的药物放入动物饮水中，不溶于水的药物混于动物饲料内，由动物自行摄入。该方法技术简单，给药时动物接近自然状态，不会引起动物应激反应，适用于多数动物慢性药物干预实验，如抗高血压药物的药效、药物毒性测试等。其缺点是动物饮水和进食过程中，总有部分药物损失，药物摄入量计算不准确，而且由于动物本身状态、饮水量和摄食不同，药物摄入量不易保证，影响药物作用分析的准确性。
2.猫捉持猫时应戴手套，防止被其抓伤（图3.4-5）。先将猫关入特制的玻璃容器中，投入乙醚棉团对其进行快速麻醉，然后乘其未醒立即固定在猫袋或实验台上。
3.兔捉持家兔时只须实验者和助手将其抓牢或按住即可。正确捉持方法为：一手抓住家兔颈背部皮肤，轻轻提起，另一手托住其臀部，使其呈坐位姿势（图3.4-6）。
4.小鼠、大鼠实验者右手捉住小鼠尾，鼠会本能地向前爬行。左手攥紧鼠颈背部皮肤，使其腹部向上，拉直躯干，并以左手小指和掌部夹住其尾固定在左手上（图3.3-8）。可作腹腔麻醉。亦可用金属筒、有机玻璃筒或铁丝笼式固定器固定，露出尾部，作尾静脉注射。
捉持大鼠的方法基本同小鼠。大鼠在惊恐或激怒时会咬人，捉拿时可戴防护手套，或用厚布盖住鼠身作防护，握住整个身体，并固定头骨，防止被咬伤。动作应轻柔，切忌粗暴。也可用钳子夹持。最后再根据需要，将大鼠置于固定笼内或捆绑四肢。
7.水合氯醛的全身麻醉作用及氯丙嗪的增强麻醉作用（实验）
8.
实验材料：药物——7％水合氯醛、2.5％氯丙嗪；器械——10ml注射器、酒精棉；动物——家兔3只
9.利尿药对兔的利尿作用观察（实验）
10.
实验材料：药物——1％呋塞米注射液，7％水合三氯乙醛；器械——兔固定器，外科刀、剪刀、棉花、丝线、绷带、输尿管导管、烧杯、镊子、血管钳子；动物——家兔1只。
11.盐类泻药机理分析（实验）
12.
实验材料：药物——10%硫酸钠、常水、生理盐水、7%水合氯醛；器械——兔手术台、剪刀、手术刀、缝线、注射器、针头；动物——家兔1只。
13.试管二倍稀释法测定MIC（讲授）
14.
15.药物的配伍禁忌（讲授）
16.
一.实验动物的捉拿和固定方法
实验目的：了解常用实验动物的保定及固定方法，掌握实验小鼠的固定方法
②液体药物灌服
小白鼠与大白鼠一般由一人操作，左手捏持小白鼠头、颈、背部皮肤，或握住大白鼠以固定动物，使动物腹部朝向术者，右手将连接注射器的硬质胃管由口角处插入口腔，用胃管将动物头部稍向背侧压迫，使口腔与食管成一直线，将胃管沿上颚壁轻轻插入食道，小白鼠一般用3 cm，大白鼠一般用5 cm的胃管(图3.4-1)。插管时应注意动物反应，如插入顺利，动物安静，呼吸正常，可注入药物；如动物剧烈挣扎或插入有阻力，应拔出胃管重插，如将药物灌入气管，可致动物立即死亡。
固定头骨，防止被咬伤。动作应轻柔，切忌粗暴。也可用钳子夹持。最后再根据需要，将大鼠置
5.豚鼠 右手横握豚鼠腹前部，左手轻托后肢（图3.4-9）。
6.蛙实验者一手拇指、食指和中指控制蛙两前肢，无名指和小指压住两后肢（图3.3-10）。
实验过程：小鼠的捉拿固定
二．实验动物的给药方法
实验目的：了解常用实验动物的基本给药方法，掌握实验小鼠的皮下、腹腔及静脉给药方法，家兔的肌肉、耳静脉给药方法。
兔可固定在兔盒或兔台上（3.4-7）。在手术台上用兔头夹固定头部(图3.3-3A),把嘴套入铁圈内，调整铁圈至最适位置然后将兔头夹的铁柄固定在手术台上。或用一根较粗棉线绳一端打个活结套住兔的两只上门齿，另一端栓在实验台前端的铁柱上。做颈部手术时,可将一粗注射器筒垫于动物的项下,以抬高颈部,便于操作。兔的四肢固定和狗相同。
实验内容：
1.狗的捆绑与固定至少由2～3人进行。捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结(勿太紧)，再绕回下颌打第二个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图3.3-4）。切记住兜绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，并按倒在地，以限制其头部活动，再按上述方法捆绑其嘴。捆嘴后使其侧卧，一人固定其肢体，另一人注射麻醉药。此时，应注意狗可能出现挣扎，甚至大小便俱下，以及由于这种捆绑动作往往致使狗呼吸急促，甚至屏气等问题。待动物进入到麻醉状态后，立即松捆，以防窒息。