气道分泌物标本的采集
痰和呼吸道分泌物标本采集规范
痰和呼吸道分泌物标本采集规范一、微生物学【概述】痰标本采集方便，无创伤性，临床应用广泛，对病原学诊断具有重要价值。
痰标本的正确采集、处理是临床细菌检验成功的关键，标本采集与处理的规范化是准确、及时向临床提供重要的感染信息的基础。
目前咳痰标本仍是最常用、最简单的采样方法，必须指导或辅助患者深咳痰，及时送检，并通过镜检筛选合格标本。
损伤性采样技术仅在选择病例(抗生素治疗反应不佳；可疑特殊病原体感染，如寄生虫、痰菌阴性肺结核、混合感染或二重感染等)使用。
【操作方法】1、咳痰标本采集要求患者在清晨用药前留取，因为晨痰量多，且含菌量也多。
留取前刷牙，用清水漱口3次，以除去口腔内大部分杂菌，之后用力咳痰。
咳痰较困难者可用3％～5％氯化钠溶液雾化蒸气吸入进行导痰；对咳嗽乏力或昏迷患者，可用普通吸痰管经鼻腔或口腔吸引下呼吸道分泌物；对不能咳痰的婴幼儿或病重患者，如须采集痰标本做结核杆菌培养，可插胃管抽吸胃液标本送检，也可留取12～24h痰液，经漂浮浓集后检查，以提高结核杆菌检出率。
若做细菌或真菌培养，痰液必须盛于无菌容器内送检。
观察痰量应留取24h痰液，必要时在容器内加入少许防腐剂。
2、咽拭子采样上呼吸道感染可通过咽拭子获取标本。
标本采集前数小时内不得用消毒药物漱口或涂抹病灶局部。
用咽拭子采集标本时应小心、认真、准确，避免触及舌、口腔黏膜和唾液，以防污染。
如咽拭子标本发现致病菌，如肺炎链球菌、流感杆菌、金黄色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌等，且数量较多时，提示有该菌所致感染存在。
3、纤维支气管镜抽吸采样以利多卡因做咽喉部局部麻醉后，插入纤维支气管镜(纤支镜)，达到肺炎病灶引流支气管内，纤支镜吸引口依次连接标本采集瓶或试管及负压吸引装置，用负压将下呼吸道分泌物经纤支镜吸人标本采集瓶内送检。
气管切开或气管插管患者也可用普通无菌吸痰管直接经人工气道插至大约叶支气管水平，接负压装置将痰液经吸痰管吸入标本采集瓶内。
纤支镜直视下可准确采集病灶部位的分泌物，但插入时纤支镜顶端和内孔常受咽喉部正常菌群污染，所以纤支镜吸引物常规培养结果不能完全代表肺部感染的病原体。
痰液及下呼吸道分泌物培养简易操作规程
、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25 为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25 为合格痰标本。
2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养18-24 小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验---- 报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌一待冷却后一取粪便一接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养。
4培养18-24 小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验--- 报告结果。
尿培养标准操作流程1收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌一待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul（大约一接种环）一接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
下呼吸道分泌物标本采集规程
新型冠状病毒感染的肺炎患者下呼吸道标本采集操作规程
下呼吸道标本分为三种：痰液、支气管细胞灌洗液、支气管分泌物，主要以痰液为主。
采集方法包括：自行咳痰法、吸引器经口鼻吸痰法、支气管镜下留取标本法。
一、目的：
取患者下呼吸道分泌物做病毒分离，以帮助诊断。
二、评估：
1、评估患者：
（1）双人核对医嘱，打印标签，准备无菌痰杯或一次性痰液收集器。
（2）核对患者，了解患者病情、咳嗽咳痰情况。
（3）向患者解释，取得配合。
2、评估环境：
安静整洁、宽敞明亮、室温适宜、光线充足。
三、操作前准备：
（1）人员准备：防护级别：三级防护（医用防护口罩、一次性帽子、防护服、护目镜、防护面屏、乳胶手套2双、防护靴套）。
（2）物品准备：治疗车上层：无菌痰杯或一次性痰液收集器、温开水、漱口杯、负压吸引装置一套（检查处于备用状态）、一次性吸引器连接管、密封袋2个、75%酒精、纱布数块、快速手消液、必要时备口咽通气道。
气道分泌物培养的临床意义
培养时间
根据不同病原体生长周期 确定培养时间，一般为2448小时。
解读结果
阳性结果
耐药性检测
培养出特定病原体，如细菌、真菌、 支原体等。
对培养出的病原体进行耐药性检测， 为临床用药提供依据。
阴性结果
未培养出任何病原体，但仍需结合临 床判断。
03
气道分泌物培养在临床诊断中的应用
诊断感染性疾病
诊断细菌性肺炎
指导用药
培养结果可以为医生提供药敏试验数据，帮助医生选择敏 感抗生素，避免盲目用药和滥用抗生素，提高治疗效果并 减少耐药性的产生。
控制传播
对于某些呼吸道传染病，如肺结核、流感等，气道分泌物 培养可以协助诊断和追溯传染源，有助于控制疾病的传播 。
02
气道分泌物培养的方法
采集方法
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采集时间
诊断呼吸道 感染
评估治疗效 果
对于重症患者或反复发作的呼吸道感染，气道分泌物 培养的结果可以预测病情的发展趋势，有助于采取针
对性的干预措施。
预测病情发 展
在治疗过程中，定期进行气道分泌物培养可以监测病 情变化和评估治疗效果，有助于及时调整治疗方案。
研究展望
提高检测准确性
深入研究耐药机制
探索新型培养技术
疗方案。
鉴别病毒种类
培养气道分泌物中的病毒，有助于 鉴别病毒种类，为抗病毒治疗提供 依据。
鉴别真菌种类
培养气道分泌物中的真菌，有助于 鉴别真菌种类，为抗真菌治疗提供 依据。
监测治疗效果
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监测抗菌药物治疗效果
通过气道分泌物培养，可以监测抗菌药物治疗效 果，为临床医生调整治疗方案提供依据。
监测抗病毒治疗效果
气道分泌物标本的采集
采集气道分泌物标本主要用于诊 断呼吸道疾病，如肺炎、支气管 炎等，以及监测呼吸道的微生物 感染情况。
采集方法
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自然咳痰法
让患者自行咳嗽，将痰液 咳出后收集到容器中。
吸痰法
使用吸痰器将气道深部的 痰液吸出，然后收集到容 器中。
支气管镜采集法
通过支气管镜直接进入呼 吸道，采集气道深部的分 泌物。
THANKS
感谢观看
采集注意事项
采集前应告知患者注 意事项，如避免进食 过饱、避免剧烈运动 等。
采集后应尽快送检， 以免影响检验结果。
采集时应确保容器清 洁、干燥，避免交叉 感染。
02
气道分泌物标本采集前的准备
患者准备
患者教育
向患者解释采集目的、过 程和注意事项，消除其紧 张情绪。
患者体位
根据采集需求选择合适的 体位，如仰卧位、侧卧位 或坐位。
插管
将吸痰管插入气道， 深度根据患者具体情 况而定，一般插入深 度为10-20厘米。
吸引分泌物
开启吸痰器，缓慢吸 引气道分泌物，注意 吸引压力适中，避免 损伤气道黏膜。
收集标本
将吸出的分泌物收集 到无菌容器中，标记 好患者信息、采集时 间和日期等。
采集技巧
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轻柔操作
在插管和吸引过程中，动作要 轻柔，避免损伤气道黏膜。
温度和湿度
确保采集环境温度和湿度适宜，避 免过冷或过热影响采集效果。
防护措施
根据需要采取适当的防护措施，如 戴口罩、手套等，确保采集人员的 安全。
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气道分泌物标本采集的操作流程
采集步骤
准备工具
准备无菌吸痰管、吸 痰器、容器等工具， 确保工具清洁、消毒 并处于良好状态。
呼吸道标本采集
IATA对感染性物质的运输分类 IATA对感染性物质的运输分类
类指人感染后发病的可能性大，传染性强， A类指人感染后发病的可能性大，传染性强， 对人群危害性大的烈性感染性物质。 对人群危害性大的烈性感染性物质 。 高度怀 疑具有严重危害性的感染性物质也属于A 疑具有严重危害性的感染性物质也属于A类。 A类感染性物质感染性物质[联合国编号 UN2814 UN2900 2900( UN2814 和 UN2900( 只 导 致 动 物 致 病 )] 采 用 PI602包装要求。 602包装要求 PI602包装要求。 类之外，仅具有一般危险性， A类之外，仅具有一般危险性，引起感染的机 会较少的感染性物质为B类(联合国编号 UN3373),采用PI650包装要求。 3373),采用PI650包装要求 UN3373),采用PI650包装要求。
谢谢! 谢谢!
干采 用2根聚丙烯纤维头的 塑料杆拭子同时擦拭 双侧咽扁桃体及咽后 壁，将拭子头浸入含 3ml采样液的螺口管 3ml采样液的螺口管 尾部弃去， 中，尾部弃去，旋紧 管盖。 管盖。
例子
correct
wrong
标本采集方法—鼻拭子
将1根聚丙烯纤维头的 塑料杆拭子轻轻插入 塑料杆拭子轻轻插入 鼻道内鼻腭处， 鼻道内鼻腭处，停留 片刻后缓慢转动退出 后缓慢转动退出。 片刻后缓慢转动退出。 取另一根聚丙烯纤维 头的塑料杆拭子以同 样的方法采集另一侧 鼻孔。 鼻孔。上述两根拭子 浸入同一含3ml 3ml采样 浸入同一含3ml采样 液的管中，尾部弃去， 液的管中，尾部弃去， 旋紧管盖。 旋紧管盖。
标本的采集时限
症状出现后尽早采集 尽量在抗病毒药物使用前采集 即使症状出现1周后也要采集 即使症状出现 周后也要采集 可能的情况下多天多次采集
呼吸科常见标本的采集方法
涂片找常见细菌真菌
细菌培养+药敏
• 流程规范 • 对策 • 组织学习，提高护士对痰标本采集的质量意识 • 各级护士各司其职，保证痰标本采集流程的落实
咽拭子
• 咽拭子样本培养的诊断价值在于通常于诊断A组链球菌感染，也有助于确认 会厌炎的病原体（流感嗜血菌b型）。流感嗜血菌b型是儿童社区获得性肺 炎和化脓性脑膜炎的常见病因。
Hale Waihona Puke 痰标本采集中常见的问题• 患者因素 • 医护人员未重视 • 标本污染 • 宣传指导不够 • 护士未掌握深部吸痰的方法
痰液的常规标本留取法
1、自然咳痰法 2、雾化诱导排痰法 3、拍背排痰法 4、吸引器吸痰法留取痰标本 5、纤维支气管镜吸痰法留取痰标本
呼吸科常规痰检 • 痰查结核菌； • 痰查脱落细胞； • 痰培养加药敏。
呼吸科常见标本的采 集方法
• 标本采集是临床标本检验工作的第一道程序， 也是检验质量控制的关键环节。标本采集过 程是否正确，直接影响到检验结果的准确性。
常见标本
• 痰标本 • 血标本 • 胸水 • 小便标本 • 大便标本
痰标本的概念
• 痰液是支气管肺泡所产生的分泌物，正常情况下此种分泌物很少，病理情 况下如肺部感染、肺癌时，痰量增加，并有颜色、性状和成分的改变。
• 唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内，但并非痰的组成部分
痰标本采集容器
无力咳痰者采 用，需要记帐
纤支镜专 用
普通用
采集痰标本的重要性
• 痰液检查是呼吸系统疾病诊断的重要方法之一，痰标本的留取是影响痰培 养结果准确性的重要因素，而痰标本的采集是护理工作的一项重要任务， 也是呼吸科护士的日常工作，能否及时采集合格的痰标本，这不仅是评价 呼吸科护士操作技能的指标之一，还关系到检验结果的准确性，更对临床 疾病的诊断、用药有着重要的意义。
上呼吸道标本的采集和处理
上呼吸道标本的采集和处理
上呼吸道标本的采集和处理
上呼吸道标本的'细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
下面是yjbys店铺为大家带来的关于上呼吸道标本的采集和处理的知识，欢迎阅读。
一、检验项目
上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1.病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。
2.细菌性咽-扁桃体炎：明显咽痛、畏寒、发热，体温可达39℃以上。
3.上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管-支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。
【标本采集容器】
咽拭子或鼻咽拭子。
【标本的采集方法】
嘱患者用清水反复漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，拭子要避免接触口腔和舌粘膜。
【标本采集注意事项】
1.采集时间：应于抗生素应用之前。
时间上可无严格限制，但咽部是呼吸和食物的通路，也应晨起后采集为佳。
2.送检：应立即送检。
*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
呼吸道标本采集ppt课件
在无菌的带螺旋塑料管分装2-3ml VTM。最好储存在:–20℃,4℃可放 48–96h,室温1–2天。
个人防护设备（PPE）
▪ 口罩 (N-95 or N/P/R-100) ▪ 手套 ▪ 帽子 ▪ 鞋套 ▪ 防护服 (gown or apron)
疑似人感染甲型H1N1流感感染病例列为A类， 用UN2814包装运输
—《甲型H1N1流感监测方案》附录3 《甲型H1N1流感病毒实验室检测技术方案》 2009年5月11日
IATA对感染性物质的运输分类
▪ A类指人感染后发病的可能性大，传染性强， 对人群危害性大的烈性感染性物质。高度怀 疑具有严重危害性的感染性物质也属于A类。 A类感染性物质感染性物质[联合国编号 UN2814 和 UN2900( 只 导 致 动 物 致 病 )] 采 用 PI602包装要求。
▪ A类之外，仅具有一般危险性，引起感染的机 会较少的感染性物质为B类(联合国编号 UN3373),采用PI650包装要求。
感染性物质运输的包装系统
三层包装系统： 内层容器， 中层包装 外层包装。
基本包装
▪ 内层容器(装有 样本)
▪ 中层包装(含吸 水性材料)
▪ 外层包装
内层容器
▪ 标记 ▪ 合适的材料 ▪ 封口 ▪ 防漏防渗 ▪ 裹以软垫或分隔多
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correct
例子
wrong
标本采集方法—鼻拭子
▪ 将1根聚丙烯纤维头的 塑料杆拭子轻轻插入 鼻道内鼻腭处，停留 片刻后缓慢转动退出。 取另一根聚丙烯纤维 头的塑料杆拭子以同 样的方法采集另一侧 鼻孔。上述两根拭子 浸入同一含3ml采样 液的管中，尾部弃去， 旋紧管盖。
呼吸道标本采集、运送及保存
呼吸道标本采集、运送及保存
北京市CDC传地所
标本采集
个内层容器，防止 碰撞破碎
中层包装
包含 裹有软垫的内层
容器 吸水性材料防漏防渗Fra bibliotek外层包装
放入中层容器 内容物名细单 封箱
标识
Category A
INFECTIOUS SUBSTANCE
In case of damage or leakage Immediately notify Public Health authority
采样管中
标记样品
被采样者的信息 样品采集的日期 样品采集的部位 样本编号 采集单位
如何保存样品
VTM中保存的样品 尽快运到实验室
48小时内可以检测的可以保存在4℃，超过 48小时-70℃冻存。流感病毒在-20℃～40℃时不稳定，故长期保存应在-70℃温 度以下，不要冻存于-20℃，会降低流感 病毒的检出率。
A类之外，仅具有一般危险性，引起感染的机 会较少的感染性物质为B类(联合国编号 UN3373),采用PI650包装要求。
感染性物质运输的包装系统
三层包装系统： 内层容器， 中层包装 外层包装。
基本包装
内层容器(装有 样本)
中层包装(含吸 水性材料)
外层包装
内层容器
标记 合适的材料 封口 防漏防渗 裹以软垫或分隔多
采集时间----何时采 采集种类----采什么 采集方法----怎么采
呼吸道标本采集流程
自行咳痰采集法 取患者晨痰
留置于无菌容器
用冷开水漱口
深呼吸后用力咳出
呼吸道深部痰液
立即送检 立即送检 吸取痰液采集法 气管镜采集法 咽拭子采集法 24h 痰标本采集法 标本量不少于1ml
清水漱口 取出无菌拭子 用压舌板轻压舌部 蘸取少量生理盐水 迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体分泌物 迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧 立即送检 叩击患者背部 患者取适当卧位 将集痰器与吸引器连接 抽吸痰液2～5ml 于集痰器内 记录痰标本总
量外观和性状 广口集痰瓶内 加少量清水 患者晨起进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨起进食漱口后最后一口痰结束 全部痰液留入集痰瓶内 立即送检 采集标本 气管镜引导下 置于无菌容器。
痰及下呼吸道标本的采集指征、采集方法、注意事项、标本运送及临床情况沟通
痰及下呼吸道标本的采集指征、采集方法、注意事项、标本运送及临床情况沟通采集指征有下列体征之一，应进行痰培养：①咳嗽、咳痰，痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨阳痰。
②咯血，包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等。
③呼吸困难，呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛。
④发热伴白细a胞增高尤其是中性粒细胞或CRP、PCT明显增高。
⑤胸部影像学检查提示有感染可能。
肺部感染的患者有25-50%可能发生菌血症，应同时作血培养。
采集方法1、自然咳痰法以晨痰为佳，咳痰前先用冷开水、纯净水反复漱口三次，然后用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰杯中，1h 内送检。
尽可能在用抗菌药物之前采集标本。
标本量应＞1ml。
痰量少或无痰者可采用雾化吸入加温至45℃的10%Nacl水溶液，使痰液易于排出。
对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管）抽取气管深部分泌物。
2、对昏迷、重症、难治，或伴免疫抑制，或疑是厌氧菌引起的院内感染者，可采用纤维支气管镜采集法、防污染毛刷采集法（PSB）、支气管肺泡灌洗法（BAL）、环甲膜穿刺经气管吸引法（TTA）、经胸壁针穿刺吸引法（TNA）采集标本，均由临床医生按相应操作规程采集，但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。
3、小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将棉拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
注意事项痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。
室温下延搁数小时定植于口咽部的非致病菌呈过度生长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显下降。
标本运送标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保持＜2h,4℃冰箱保存＜12h。
一般每天只需做一次。
痰及下呼吸道标本验收与拒收见下：1、送检目的不合适者，如咽拭子、咳痰、吸出的分泌物做厌氧菌培养无意义，应拒收。
2、申请单应填写完整无误。
标本标识必须唯一，未标采集时间、部位或检验要求等拒收。
3、标本容器必须符合规定，溢漏、无盖者拒收。
122呼吸道标本采集
涂片白细胞和鳞状上皮细胞计数：白细胞＜10／低倍镜或鳞状上皮细胞＞25／低倍镜，表示该标本已污染正常菌群，建议重送标本。
送检时间超过2h拒收。
同时同部位或同一天两份相同检测的标本，应与申请医生协商处理。
6
6.1临床微生物学和微生物检验，第4版，
6.2《全国临床检验操作规程》第3版
4
4.1 自然咳痰法 以晨痰为佳，采集标本前应用清水、冷开水漱口或用牙刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙。尽可能在用抗菌药物之前采集标本。用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰盒中，标本量应≥1ml。咳痰困难者可用雾化吸入加温至45°C的10%NaCl水溶液，使痰液易于排出。对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。
5
5.1 标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。规定每日1次。
5.2 下呼吸道细菌学检验标本验收与拒收见下：
呼吸道有大量的正常菌群存在，咽拭子、咳痰、吸出的分泌物厌氧菌培养无意义。
申请单填写应完整无误。标本标识必须唯一，并与申请单相符，未标采集时间、部位或检验要求等拒收。
4.2支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、环甲膜穿刺经气管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法和支气管肺泡灌洗法，均由临床医生按相应操作规程采集，但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。其中气管穿刺法仅用于昏迷患者。
4.3 小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳痰时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
痰及下呼吸道标本采集操作规程
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临床通常将正常人喉以上部位称之为上呼吸道，上呼吸道定植有大量的正常菌群，而气管以下包括气管、支气管和肺泡称下呼吸道，通常无菌。下呼吸道分泌物经过上呼吸道排出时常受该处的正常菌群的污染。下呼吸道感染包括急性气管-支气管炎、慢性支气管炎急性发作、支气管扩张继发感染及肺实质感染（肺炎、肺脓肿）等。病原体有细菌、病毒、衣原体、支原体、真菌、立克次体和原虫等。上呼吸道感染临床诊断一般不难。细菌学检验能明确感染病原及药敏结果，有助于疾病治疗、流行病学调查和医院感染的监测。
呼吸科常见标本的采集
呼吸科常见标本的采集方法标本采集是临床标本检验工作的第一道程序，也是检验质量控制的关键环节。
标本采集过程是否正确，直接影响到检验结果的准确性。
一、常见标本1、痰标本2、血标本3、胸水4、小便标本5、大便标本二、痰标本的概念痰液是支气管肺泡所产生的分泌物，正常情况下此种分泌物很少，病理情况下如肺部感染、肺癌时，痰量增加，并有颜色、性状和成分的改变。
唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内，但并非痰的组成部分三、采集痰标本的重要性痰液检查是呼吸系统疾病诊断的重要方法之一，痰标本的留取是影响痰培养结果准确性的重要因素，而痰标本的采集是护理工作的一项重要任务，也是呼吸科护士的日常工作，能否及时采集合格的痰标本，这不仅是评价呼吸科护士操作技能的指标之一，还关系到检验结果的准确性，更对临床疾病的诊断、用药有着重要的意义。
满足漱口痰、晨起痰、深咳痰、1小时送检的痰标本的合格率及阳性率检出率最高。
四、痰标本采集中常见的问题1、患者因素呼吸科收治的病人大多数是反复住院的病人，其中不乏老年患者以及来自各地地级县市或农村文化程度不高的病人，对护士的指导留痰标本方法不理解；又或者认为疾病诊断已经明确，没有必要再次住院时留取痰标本，往往忘记留取痰标本，将标本盒随处扔放造成容器污染；部分病人没有掌握正确的留取痰标本的方法，只是随意留取痰标本，又或者是因病人接受能力欠缺或因年老耳聋，对留取痰标本的方法后马上忘记或者未听清楚，因此无法采集到符合要求的痰标本。
有些病人咳痰前不漱口，由于口腔不清洁从而使痰标本污染影响质量，有相当一部分患者留取的痰标本为上呼吸道分泌物或唾；长期患病、病情较重、体质极度虚弱的患者由于干咳无痰或者咳痰无力，另外，昏迷、气管切开等患者不能自主咳痰而未能留取痰标本。
2、医护人员未重视主要表现在低年资护士，对留取痰标本的意义掌握不够，未引起足够重视，未认真按照规定进行留取痰标本；部分医护人员责任心不强，解释工作不到位，宣教督导不够，不能及时把留痰的意义、方法、目的及注意事项告知患者，造成留取的痰标本质量不高，从而影响检验结果。
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董玉梅 中华医院感染学杂志 2012年第22卷第14 期
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G+球菌 G-杆菌
真菌
10m 1h 2h 3h 4h in
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↓ ↓↓
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↓ ↓↓
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↑ ↑↑
董玉梅 中华医院感染学杂志 2012年第22卷第14期
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标本的留取 标本的储存 标本的运送 检验环节……
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经过规范培训的采集者 +
PlayDoh® consistency, hard to get at, even
harder to get out, never ending gunk that we spend a large part of our careers
battling.”
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痰液是气管、支气管和肺泡所产生的分泌物。
全程执行规范的标本采集操作程序 =
提供生物典型样品
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缺点：容易被上气道定植菌污染而影响结果， 容易受漱口液的影响
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下呼吸道感染患者有10-30%的患者干咳无痰或咳 痰无力，通过自主咳嗽无法获取痰标本。
人体口咽部寄居大量正常菌群，咳出的痰液在口腔 中停留易被污染，从而影响检查结果。
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实验组：漱口后饮水、翻身、叩背、咳痰 对照组：漱口后直接咳痰
耐药菌株的产生
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HAP/VAP发生前的微生物学检查 HAP/VAP治疗 – 革兰染色结果 机械通气患者下呼吸道的细菌定植 下呼吸道念珠菌的检出
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下呼吸道分泌物的生物学检查对病原学诊断起着重 要作用
目前存在的严重的问题 —标本的质量问题
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痰标本必须是从肺部咳出 不要混入唾液、鼻咽分泌物、食物、漱口水等 痰液必须十分新鲜，送检标本<1小时
俞云 东南大学附属中大医院重症医学科
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即呼吸道黏液，衬在呼吸道上皮表面形成一层 连续的滤过膜，在气道内起水合、滑润、防水和绝 缘的作用，并有转运及机械性和化学性屏障功能， 保护上皮不受微生物及有害物质的侵袭和损伤。
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被那些每日接触它们的人定义为: “That nasty, thick, Elmer’s Glue® like
呼吸机相关性肺炎预防、诊断和治疗指南2013
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保护性毛刷采样被认为是痰细菌培养的“金标准”
敏感性 = 50% (38 - 62%)
特异性 = 90% (79 - 97%)
待解决的问题
污染
既往应用抗生素
细支气管炎
临界结果
重复性
需要24-48小时
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紧急情况，而无其他途径获取痰标本
1.出血。因此对于凝血功能障碍的患者宜慎重考虑。 2.假道形成。 3.食管穿孔。食管位于气管的后端，若穿刺时用力
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标本的留取 标本的储存 标本的运送 检验环节
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标本的留取 标本的储存 标本的运送 检验环节
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使用抗生素以前 更换抗生素以前
呼吸机相关性肺炎预防、诊断和治疗指南2013
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约15-30%的患者在痰标本留取前已经使用过 多种抗生素
一些比较脆弱的细菌如肺炎链球菌和流感嗜 血杆菌在应用抗生素后，取任何呼吸道标本的检出 率为0，
张风云 张春成 现代护理 2004年第10卷第5期
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口腔护理 清水漱口或饮水(消除口护液的影响） 雾化吸入 叩背/体位引流 诱导排痰
诱导成功率约为76-100%，这是一种简单、安全的 获取下呼吸道痰液的方法。 有效咳嗽 留取晨间痰液
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培养分离菌落计数≧10 5 cfu/ml 临界值 = 104 or 105 cfu/ml 敏感性 = 38 - 100% 特异性 = 14 - 100%
过大过猛，或没掌握好进针深度，均可穿破食管， 形成食管—气管瘘。 4.皮下或纵膈气肿。
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标本的留取 标本的储存 标本的运送 检验环节
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采集的标本需立即送检，若不能立 即送检，应置于35℃温箱或室温，绝 不可放置冰箱存 标本的运送 检验环节
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合格痰标本在采集后随送检时间的延长,革 兰阳性球菌量减少,革兰阴性杆菌和真菌生长量增 加;为保证痰培养的检测质量,标本采集后应立即 送检接种
呼吸机相关性肺炎预防、诊断和治疗指南2013
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有创操作，并会使病人不舒服
副作用包括: ◦ 潜在的交叉污染、感染 ◦ 损伤、破坏粘膜纤毛 ◦ 气管出血 ◦ 增加痰液分泌 ◦ 常规的抽吸操作有90%的概率只进入右侧支气管
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合格的标本 = 鳞状上皮细胞少于1% 培养分离菌落计数≧10 4 cfu/ml 临界值 = 104 or 105 cfu/ml 敏感性 = 65%(54% -74%) 特异性 = 82%(71% - 91%) 采样范围大
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细胞学检查 微生物学检查
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1940年亚历山大.弗莱明发现青 霉素
不断开发的抗生素被临床医师
广泛应用，大大地提高了感染 患者的治愈率
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80%以上的下呼吸道感染应用抗生素治疗，大 多数医生对急性支气管炎、慢性支气管炎急性发作、 社区获得性肺炎、和病毒性呼吸道感染不加以鉴别 就应用抗生素
检出的细菌很大程度上是对所应用的抗生素耐 药的细菌，从而使药敏结果对临床用药的指导意义 大大降低。
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自然咳痰 经气管导管内吸引（ETA） 经气管镜支气管肺泡灌洗（BAL） 经纤维支气管镜防污染双套管毛刷（PSB） 经胸壁穿刺肺吸引（LA） 环甲膜穿刺经气管吸引（TTA）
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优点：取样快、操作简单、费用低廉、容 易实施
病理情况下如肺部炎症、肿瘤时，痰量增多，主要 由分泌物和炎性渗出物所组成，且呈不透明并有性 状改变。
唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内，但并非痰的组成 部分。
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辅助诊断某些呼吸系统疾病，如支气管哮喘、支气 管扩张症、慢性支气管炎等；
确诊某些呼吸系统疾病，如肺炎、肺结核、肺癌、 肺吸虫病等；
观察疗效和预后，如痰量和性状变化等。