大鼠股动脉采血

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大鼠取血方法及注意事项

大鼠取血方法及注意事项以大鼠取血方法及注意事项为标题，我们将详细介绍大鼠取血的步骤和需要注意的事项。

大鼠取血是实验室常用的操作步骤之一，正确的取血方法能够确保实验结果的准确性和可靠性。

一、大鼠取血的方法1. 麻醉大鼠：在进行大鼠取血前，首先需要麻醉大鼠。

常见的麻醉方式包括：静脉注射麻醉剂、吸入麻醉剂或麻醉气体等。

选择合适的麻醉方式应根据实验的需要和大鼠的品系、年龄等因素来确定。

2. 选择合适的取血部位：大鼠取血可选择的部位有尾静脉、颈静脉、股静脉等。

一般情况下，常用的取血部位是尾静脉，因为该部位较容易操作且出血量较大。

3. 准备取血器材：取血器材包括注射器、针头、血管夹等。

注射器的容量应根据实验需要来选择，一般常用的是1ml或3ml的注射器。

针头的选择应根据大鼠的大小来确定，一般较小的大鼠可选择22G 或23G的针头。

4. 清洁取血部位：在进行大鼠取血前，需要先用70%酒精或碘酒等消毒液清洁取血部位，以避免感染。

5. 插入针头：将针头插入静脉血管中，一般插入角度为30度左右，插入后要确保针尖进入血管腔内。

6. 固定针头：当针头插入到合适的位置后，需要用血管夹固定住针头，以防止针头脱出或移位。

7. 采集血液：打开注射器的活塞，缓慢地抽取所需血液量。

在抽取血液时，要注意避免对大鼠造成过度的伤害或疼痛。

8. 停止出血：当取得足够的血液样本后，可以用消毒棉球轻压在取血部位，帮助止血。

9. 处理取血部位：取血结束后，要及时用消毒液清洗取血部位，以防止感染。

二、大鼠取血的注意事项1. 需要遵守实验伦理规范：在进行大鼠取血前，需要确保已经获得了相关的伦理批准，并遵守实验动物的使用和保护规定。

2. 需要专业技术人员操作：大鼠取血需要经过专业培训和指导后才能进行，确保操作的准确性和安全性。

3. 需要注意大鼠的健康状况：在进行大鼠取血前，需要确保大鼠的健康状况良好，没有明显的疾病或受伤。

4. 需要合理控制取血量：取血量应根据实验的需要来确定，避免过度取血造成大鼠的伤害。

大鼠取血方法

大鼠取血方法1. 割（剪）尾采血：当所需血量很少时采用本法。

每鼠一般可采血10余次以上。

小鼠每次可取血0.1ml ,大鼠0.3〜0.5ml。

1.4見尖采血才法将大杖囲進好•阳50乜左右SL水根池城部妁2 mm1⅛⅛-充IftG,ffl⅛消Sr擦干⅛⅛（Wifi⅛≠术旳的去尾尖3 ■ 10mm. 从用根那向尼尖檢忙血Fl朋尖M⅛.此法町采L5-2 BlL血液•2. 鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。

先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。

用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉, 拔出针头时即有血滴出，一次可采集10〜50mm3。

如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3. 眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml ;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml ,可适用于某些生物化学项目的检验。

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大鼠和小鼠的采血方法

大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。

常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。

-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。

-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。

2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。

3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。

-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。

常用的有离心管、毛细管等。

-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。

4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。

然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。

-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。

手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。

-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。

再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。

5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。

-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。

将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。

以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。

在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。

另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。

采血方法

查看文章实验动物的取血方法2007-11-10 11:01采血方法（1）小鼠和大鼠①尾尖取血将动物装在固定筒内，露出尾巴。

将尾共剪掉1～2mm(小鼠)或5cm(大鼠)，然后自尾根向尖端按摩，血自尾尖流出。

亦可先将鼠尾泡于500C热水中，揩干后剪去尾尖，取血后用棉球压迫止血。

此法可反复多次取血，小每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

②眶动脉和眶静脉取血将动物头部按住并压迫眼球使突出充血后，以止血钳迅速钳取眼球后。

眼眶内很快流出血液，将血滴入玻璃器皿内，达到所需采用量后用棉球压迫眼眶止血。

此法所取血量较多，小鼠每次可采血0.2～0.3ml，大鼠每次可采血0.5～lml，动物可存活。

间隔数日后可自另一侧眼眶取血。

③眼眶后静脉丛取血用一长约7～lOcm的玻璃毛细管(内径约1mm)，另端渐扩大呈喇叭形，将其尖端折断。

折断端锋利，预先将玻璃管浸入l％肝素溶液，取出干燥。

取血时左手抓住鼠两耳间头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。

右手持毛细管，将其尖端插入眼睑与眼球之间并向眼底方向移动，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。

取血完毕拔出毛细管，左手放松出血即停止。

毛细管就叫“玻璃毛细管”，是硬质中性玻璃，内径：0.9--1.1mm, 壁厚0.1--0.15mm 管长120mm。

④股静脉(或股动脉)取血麻醉动物背位固定，切开左或右腹股沟的皮肤，作股静脉或股动脉分离手术。

注射针穿刺股动脉或股静脉抽血，也可在颈静脉或颈动脉处穿刺取血。

此法小鼠可采血0.2～0.8ml，大鼠约0.4～0.6ml。

⑤断头取血用剪刀剪掉鼠头，立即将鼠头向下，提起动物，将血滴入容器内。

小鼠可采用0．8～1.2ml，大鼠5～lOml。

（2）豚鼠①心脏取血豚鼠背位固定，左手触摸心脏搏动最明显处。

一般在胸骨左缘第4～6肋间隙，用注射针刺入心脏。

血液即进入注射器内，取血宜迅速，以防血液凝固。

本法取血量多，可达15～20ml。

大鼠取血方法

大鼠取血方法1. 割（剪）尾采血：当所需血量很少时采用本法。

每鼠一般可采血10余次以上。

小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3〜0.5ml。

1.4見尖采血才法将大杖囲進好•阳50乜左右SL水根池城部妁2 血骨充血后•用球消黑、擦干BU匕用消澎手术旳的去尾尖3 ■ 10mi叭魅后从用根那向尼尖檢忙血fl朋尖流岀。

此法町采L5-2 mL2. 鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。

先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。

用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉, 拔出针头时即有血滴出，一次可采集10〜50mm3。

如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3. 眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml ;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。

将天M冊建庄实验台边Sfir左手抓囂大區拥那皮肤囿定头部，井轻轻向下压迫用導先稚备好的io 号舍JM甘头顶蝎（怦尖斛閒朝内人垂氏插人内就并向眼底方向转动以便切开押体丛「血敕便会连缨不斷地溝人采血用此法大约可取？-3 取血宪毕•立刻用脱册郴压迫也环境材料0.9mm x 100mm,背牛人习櫃便用丫经常骨—断.30mm晴、弁去屮阀段=EP 曲虻人0.1% IH-比钠< >150U/mgJ 0J mL-均匀涧湿・50P减下I輻适帀1mL伞血的抗甌效果肛人取血则感须熒I R J衿住骨的质昂.杯号井汕. 邀当劣备.1 Mi ■. ■■ iV ■■■. >■ -K> ■宽敬台曲*輕了F组多步驟同时操作］| ■ cm ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■■ ■琴L9tt»EP&J动物处理功物作亟耍求权不% J 250g给西前禁的2・24h・给药前探前0.5-1-Oh fe0.5-1.0% iV/W）给水实验粥问•补充休液.H前苛煜为:取血质常胃给予等统计4•理社加衙帝樹涪液.实验之后,外用泊炎药涂布眼部2 <1AF保定2压迢颈曽3加的剌入4固定采血5去背止jft 6样加擂匀4.叵定身怎.圧住石肢，放桧手祈，緞轿毛ML沆畅出血.6血样曾轻轻罷匀,防止窠血・濤血.Step 1A建议；L于内枚鼻•涌陆止摟見：B 一定更帶手豪；C开址必倾卑牢83定隹头邙头那乱动.扎位JT黑易棉僞离.且易枕咬伤:D可衣此叶将丸只取如的的乍須剪掉.彷止按总栽£・1 •料大R歿壬牲歐1±.捋钟*3 •右手持“曾从纹内*部，与6L土脱45的.从轻剌入5•取血丸成，之EF瞼去歿部压力.再采去界拔出，按圧吐上.1左手保定Stcpl.W大鼠按压在亂笼上.il&Wfff：藝部t2•紧携頤都，R追頌两侧.使卑突出・匝后铮脉丛充血r»ge 7•押•Stcp2A 可円管试来鼻段碰Cl 球是否巳疑突出.1'此甘丈乱反此身扎JU ♦窑・保送爪緊钓司时.不ttKii.便其宣息死亡.Step3A 针头钎面走尙at 班・的入后再转一定角度便斜面廿着瓯聊&界；B 制入凍度.小区为2・4・大区釣卜X ・考禺型有也力时即护止牠进. 同时.管逼出约0. 1-0. 5twr ・边迅边就转；C 不要使用管的尖位伶利期描入. 场穷璇購碎片右叹内，迪成持纹伤芳. 使埒下次反抗增“；D 拿昔的子要保持工净，常血潢的子損不妥搽狀管的的坊，另龟安疑血・可刃鮮水搏洗・Sgp2•禁祖fiS 部.压迪 it两侧・使銀交出.屯一I 后静脉丛It 血Step! WL 內如, 45匸夬代・戎转倒入，夂转谴出.A -般血减速戊快.证明•«膩了殴匝劝脉. 如舉白兀迄皮慢.证明要调怒皂侦胥的位JL 占液祁克釘爼保中了，没版毛师打漉出来；B岀血过租*知週到出£不杨不用着宦械毛如管可以调兰一下毛细管的扎入付Jf或深戎浅的找止一下&会玄新沉出；C加肴“浹已经冬毛fw$中｛固必须込迫拔除毛细管，再搽工净眼哺.f*JMf4L4t；D筝到出血点将力it 删到大II的身体上大鼠出现英动的惜况檢大的一邯分力是他旳吉吹仗出来约保迄抱的后咬尢法乱蹬就瓮很好的供定大鼠.集后传中指和*第处… •U可以保iL血淹的雁畅5去育止ItStep SA自曙自繪宣的血量6.即冷去3千到1部的圧力.同时.并覆土茎抜出.以防土术6 £併扎出直.B尿乞把1RM罔18的血潢摄干冷，遊丸储块附徇下次2・6"品摇匀S"M・血桿片U经汎勺.---- 障止心・Step 44同龙采血・ ±fr 力.将集血2｛锻出.扶/!止血\ -* II4.断头取血：采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。

大鼠腹主动脉采血技巧

动脉采血有一定的难度，采血失败常导致或影响动脉血气分析化验结果的准确性。

临床对患者常选择：股动脉、桡动脉、足背动脉进行动脉采血。

大鼠一般采用腹主动脉采血法，腹主动脉采血法适用于取血量大，不易溶血，不损伤器官，不会出现因操作不当造成的气栓与淤血。

一、其具体操作步骤是：
1. 将大鼠腹腔注射10%水合氯醛以0.03 mL /kg 麻醉；
2. 仰卧固定在大鼠手术台上,背部放置一粗试管以充分暴露腹主动脉,常规消毒后用手术剪刀沿腹正中线剪开腹腔；
3. 准备采血时，先用棉花把肠管推开，将腹主动脉暴露完全（参见下图）；
4. 在腹主动脉分叉处向心端1～3 mm处最佳穿刺点。

术者右手持穿刺针，针尖斜面朝下，入针角度约25°～30°，朝向心端方向刺入，深度以5 mm左右为宜；
5. 针进血管后尽量不要抖动，缓慢抽血。

一般体重200～300 g大鼠可采血液5 mL以上，当然要技术熟练以后~一般测血气，可能需要0.2-0.5ml的血液，具体问问你们单位的检验部门。

大鼠腹动脉取血操作流程

大鼠腹动脉取血操作流程
大鼠腹动脉取血操作流程：
①麻醉准备：腹腔注射适量水合氯醛或戊巴比妥钠麻醉大鼠；
②体位固定：待大鼠全身软瘫后，仰卧固定于手术台上，背部垫试管；
③消毒切口：沿腹中线消毒，用手术剪开腹腔；
④显露血管：轻轻分离脂肪，用棉球擦拭腹主动脉，使其清晰可见；
⑤定位穿刺：找准腹主动脉分叉上方1-3mm处，左手固定血管，右手持针以约30°角向心端刺入，深度约5mm；
⑥止血夹辅助：进针后立即用止血夹夹住针头，防止挣扎导致血管损伤；
⑦采血收集：缓慢抽取所需血量，避免血压骤降；
⑧止血缝合：取血后拔针，压迫止血，必要时缝合腹腔；
⑨复苏观察：术后观察大鼠复苏情况，确保其生命体征稳定。

以上操作遵循无菌原则，确保实验动物福利。

大小鼠各种采血方法与最大采血量

大小鼠各种采血方法与最大采血量1 剪尾采血小鼠每次采血量0.1ml，大鼠每次采血量0.3-0.5ml左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，鼠保定后将其尾巴置于50℃热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。

擦干尾部，再用剪刀或刀片剪去尾尖1-2mm，用试管接流出的血液，同时自尾根部向尾尖按摩。

取血后用棉球压迫止血并用6%液体火棉胶涂在伤口处止血。

2 摘除眼球采血小鼠采血量0.6-1ml左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位，左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。

用眼科弯镊迅速夹去眼球，将鼠倒立，用器皿接住流出的血液。

采血完毕立即用纱布压迫止血。

大鼠少用。

3 心脏采血小鼠采血量0.5-0.6ml，大鼠采血量1-1.5ml鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3-4肋间触摸到心搏处，右手持带有4-5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。

4 断头采血小鼠采血0.8-1.2ml，大鼠采血量5-10ml左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠颈部约1/2-4/5，让血液流入试管。

5 眼眶静脉丛采血小鼠采血量为0.2-0.3ml，大鼠采血量为0.4-0.6ml取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成1～1.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用。

取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。

采血后纱布轻压眼部止血。

小鼠、大鼠、豚鼠及家兔均可采取此法取血。

刺入深度小鼠为2-3mm，可采血0.2-0.3ml；大鼠为4-5mm，可采血0.4-0.6ml。

大鼠取血方法

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血：当所需血量很少时采用本法。

每鼠一般可采血10余次以上。

小鼠每次可取血，大鼠～。

2.鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。

先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。

用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。

如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3.眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血；体重200-300g大鼠每次可采血，可适用于某些生物化学项目的检验。

4.断头取血：采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。

右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。

小鼠可采用约～1.2ml;大鼠约5-10ml。

5.心脏采血：鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。

假设做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。

小鼠约；大鼠约。

1.浅麻醉大鼠2.四肢展开固定在平板上3.按常规碘酒、酒精消毒后4.用食指感觉心博最动处5.大约在胸骨下缘1/3处、稍偏左左右的地方垂直进针〔1/4号〕6.针头抵心脏有明显的搏动感，再稍进针，有空虚感，血液跳跃而上针腔7.从血液的颜色很容易判断在心室还是心房，一般都在心室8.多次同一大鼠的心脏采血，切记初次进针的位置及深度，不要随意更换固定姿势！9.我每次取1ml血液，大约可操作4-5次〔200g大鼠〕6.颈动静脉采血：先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，别离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。

在气管两侧别离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。

离心取上清后，余下的红细胞加适量生理盐水从尾静脉中回输给大鼠，这样可能对大鼠的血量、体内药物的浓度等影响均小些。

颈动静脉插管:1.麻醉后手术,大鼠固定后头朝自己,颈部中线附近开1-2厘米口,用弯止血钳钝性别离,动脉在中间,静脉比较靠边,而且分支较多,找到较粗的部分,小心,耐心别离,用线结扎远心端,在近心端预置一结扎用线,用止血钳牵拉远心端线,使血管充盈,显微剪剪开小口,插管,结扎.插管封口.(打结即可)2.动脉方法相似.3.将动静脉插管引至背后,分清动静脉,一般手术后17小时或更长时间开始给药,取血,通常动脉取血,静脉给药,期间要用肝素冲管道.颈静脉采血：采血者可以站在动物头端，不需要麻醉动物，用个硬纸筒稍固定头部防止动物咬，左手固定将头部稍向左扭一下，会看见出现一个三角区，右手持注射器平行于三角区正中进针就可以了。

常用实验动物的采血方法简介

常用实验动物的采血方法一小鼠和大鼠的采血方法1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。

先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。

采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。

此法每只鼠一般可采血 10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。

2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。

若技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。

如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。

3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。

4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性分离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。

5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。

6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。

7、股动脉采血:大量取血时常用此法。

需手术分离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达 0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。

二豚鼠、家兔的采血方法1、家兔耳缘静脉采血穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。

具体方法同耳缘静脉注射给药。

此法一次可采血5～lOml，可多次重复使用。

大鼠腹主动脉取血方法

大鼠腹主动脉取血方法
大鼠腹主动脉取血方法:
1. 将大鼠麻醉后仰卧于平板，四肢稍加固定，腹部以5%碘酊涂擦后，打开腹
腔。

2. 用镊子将腹腔脏器向左或者向右翻转一侧，轻轻拨开脊柱前的脂肪，即可见
腹主动脉和下腔静脉,其中下腔静脉为暗红色,腹主动脉颜色浅。

3. 用小镊子剥离开腹主动脉旁边的筋膜组织，用2个血管夹分开夹住一段长约端用小镊子轻轻提起动脉壁，然后用采血管做腹1.5cm的腹主动脉，在远心主动脉穿刺见回血后,另一端插入真空管之中, 打开近心端血管夹，就会有血喷出,直到压力变小后再换一根真空管。

4. 实验结束，结扎血管，缝合腹腔，并涂擦5%碘酊，动物送入单笼饲养，密
切观察食欲及体重增长情况。

动物的采血方法

动物的采血方法动物的采血方法一、小鼠、大鼠的采血1.眼眶后静脉丛采血左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。

右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。

采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。

本方法在短期内可重复采血。

小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。

为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。

2.摘眼球采血此方法用于鼠类大量采血。

采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。

二、兔的采血1.耳中央动脉、耳沿静脉采血左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。

采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。

2.颈静脉采血将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。

三、狗的采血1.前、后肢皮下静脉血此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。

如需采少量血。

则可用5.5号针头直接刺入静脉。

如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。

2.股动脉采血将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。

左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。

3.心脏采血将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。

大鼠腹主动脉取血方法

大鼠腹主动脉取血方法本页仅作为文档封面，使用时可以删除This document is for reference only-rar21year.March将大鼠腹腔注射1 0 ％水合氯醛以0。

03 m L／kg麻醉，也可用3%戊巴比妥纳，100g 体重，注射麻醉剂后，直到身体全身变软，方可把大鼠仰卧固定在手术台上，背部可以放置一粗试管以充分暴露腹主动脉，常规消毒后用手术剪刀沿腹正中线剪开腹腔，用小镊子轻轻扒开血管周围脂肪，再用棉球把覆盖在血管的多余脂肪擦静，直达清昕看清血管为止（用棉球可以尽量减少小血管破裂出血，影响接下来进针时的视线）。

找腹主动脉在脊柱上面，腹腔静脉血管（比腹主动脉粗，黑）旁，找到后，术者先固定血管，尽可避免血管移位，左手拇指和食指固定住血管两旁的脂肪及其它脏器，无名指按住血管进针点的上端，降低血压，可以避免喷血，右手持穿刺针，针尖斜面朝下，人针角度约 30度左右，朝向心端方向刺人，深度以5 mm左右为宜，进针后可以用止血夹夹住针头，可以避免麻醉不够挣扎导致血管被针头戳破。

可以反复采集多管的血样进行不同项目的测试，一般体重 2 0 0～ 3 0 0 g 的大鼠用真空管采血可采血液8～1 0 m L ，同周龄的老鼠，雄鼠可采的血量多余雌鼠。

此方法特点是采血量多，但。

是只能采一次血，需要点技巧，需多次练习方可熟练准备材料：需要一次性采血针和真空采血管(是不是抗凝的由你自己决定)取血方法:你应该见过护士给病人取血吧,原理是一样的,打开腹腔后,用镊子将腹腔脏器翻转到右侧(大鼠的左侧),即可见腹主动脉和后腔静脉,其中后腔静脉为暗红色,腹主动脉颜色发白.用小镊子剥离开腹主动脉旁边的筋膜组织(如果你技术熟练可以省略此步)然后用采血管做腹主动脉穿刺见回血后,另一端插入真空管之中,就会有血喷出,直到压力变小后再换一根真空管.2。

大鼠实验中几种常用的采血方法探讨_车兆义

局解手术学杂志　2008年第17卷第2期J R e g i o n a l A n a t ＆O p e r a t i v e S u r g ,2008,V o l .17,N o .2大鼠实验中几种常用的采血方法探讨车兆义1,邹　悦2,宋清斌1 (中国医科大学:1.附属第一临床医院普通外科;2.实验动物部,辽宁沈阳110001) [摘　要]　目的　探讨大鼠采血方法,提高大鼠实验的成功率。

方法　采用S D 大鼠300只进行采血。

腹主动脉采血法:在腹主动脉分叉处向心端1～3m m 处为最佳穿刺点。

眼眶后静脉丛的采血法:垂直插入内眦并向眼底方向转动以便切开静脉丛。

心脏穿刺采血方法:剑突下,以角度25°～30°斜行向上进针刺入皮下,针尖穿过横膈膜继续斜行刺入2.5～3.0c m 。

尾尖采血方法:手术剪剪去尾尖5～10m m 。

颈静脉法:第4肋骨水平方向刺入皮肤,向颈静脉进针,胸部表面成角度30°～40°向颈静脉刺入,刺入的深度约5m m 。

结果　腹主动脉采血法:腹主动脉采血78次,成功73次,成功率93.6%。

眼眶后静脉丛的采血法:眼眶后静脉丛的采血法成功率89.9%。

心脏穿刺采血法成功率82.4%。

尾尖采血法成功率94.4%。

颈静脉法成功率80.9%。

结论　腹主动脉采血法适用于取血量大、不易溶血,不损伤器官,不会出现因操作不当造成的气栓与瘀血,有利于病理组织学检查。

几种方法各有优缺点,各有注意事项。

应根据自己的实验设计和要求来选择不同的采血方式。

[关键词]动物模型;大鼠;采血方法 [中图分类号]R -332　[文献标识码]A　[文章编号]1672-5042(2008)02-0084-02　[作者简介]车兆义(1973-),男,辽宁省鞍山市人,主治医师,硕士,主要从事血管外科临床方面的研究。

电话:(024)83283280　[通讯作者]宋清斌,电话:(024)83283280　[收稿日期]2007-10-20　[修回日期]2007-11-29S e v e r a l e x p e r i m e n t s i nr a t b l o o d c o l l e c t i o nm e t h o d s c o m m o n l y u s e dC H EZ h a o -y i ,Z O UY u e ,S O N GQ i n g -b i n (D e p a r t m e n t o f G e n e r a l S u r g e r y ,F i r s t A f f i l i a t e d H o s p i t a l o f C h i n a M e d i c a l U n i v e r s i t y ,S h e -n y a n g L i a o n i n g 110001,C h i n a )A b s t r a c t :O b j e c t i v e T o s u m m a r y s o m e b l o o d c o l l e c t i o nm e t h o d s a n d e x p e r i e n c e o f t h e r a t s ,a n d i m p r o v e t h e s u c c e e d r a t e o f e x p e r i -m e n t a l r a t s .Me t h o d s T o t a l 300S Dr a t s w e r e u s e d .A b d o m i n a l a o r t i c a p p r o a c h :t h e b e s t p u n c t u r e p o i n t w a s t h e a b d o m i n a l a o r t i c b i f u r c a -t i o n 1～3m mt o w a r d s t h e h e a r t .P o s t e r i o r o r b i t a l v e n o u s p l e x u s a p p r o a c h :v e r t i c a l i n s e r t i o nf u n d u s o f t h e i n n e r c a n t h u s t o t h e r o t a t i o n a l d i -r e c t i o n t o o p e nv e n o u s p l e x u s .C a r d i a c p u n c t u r e a p p r o a c h :i nt h e b o t t o m e n s i s t e r n u m w i t h 25°～30°a n g l e o b l i q u e u p w a r dt h e n e e d l e i n t o t h e s k i n ,t h e n e e d l e t h r o u g ht h e d i a p h r a g mc o n t i n u e o b l i q u e p r i c ki n t o 2.5～3.0c m .T a i l e n d a p p r o a c h :s u r g i c a l s c i s s o r s r e m o v e d 5～10m m .J u g u l a r a p p r o a c h :t h e l e v e l o f t h e f o u r t h r i b d i r e c t i o n p r i c k i n t o s k i n ,n e e d l i n g t o t h e j u g u l a r v e i n ,c h e s t s u r f a c e i n t o 30°～40°a n g l e t o t h e j u g u l a r v e i n t h o r n i n c o m e p r i c ki n t o t h e d e p t h o f a b o u t 5m m .R e s u l t s T h e a c h i e v e m e n t r a t i o o f a b o v e a p p r o a c h w e r e 93.6%(73/78),89.9%,82.4%,94.4%a n d 80.9%r e s p e c t i v e l y .C o n c l u s i o n Al a r g e b l o o d v o l u m e c o u l db e g o t b y a b d o m i n a l a o r t i c a p p r o a c h ,w h i c h w i t hl e s s h a e m o l y s i s a n d n o t h u r t o r g a n s .B u t e a c h a p p r o a c h o w n s a d v a n t a g e a n d f l a w s ,t h e s e l e c t i v e p r i n c i p l e s h o u l d b e b a s e d o n e x p e r i m e n -t a l r e q u i r e . K e y w o r d s :a n i m a l m o d e l ;r a t ;b l o o dc o l l e c t i o nm e t h o d s 在医学研究中常用大鼠制作疾病模型,是研究疾病发生机制和确定治疗方案、验证新型化合物与药标作用的有效性的较好工具[1-2]。

老鼠采血实验报告

一、实验目的1. 掌握动物采血的基本操作方法。

2. 了解血液生理指标与动物生理状态之间的关系。

3. 培养实验操作技能和科学严谨的态度。

二、实验原理采血是研究动物生理学、病理学、遗传学等领域的重要实验手段。

通过采血可以获取动物的血液样本，分析血液中的各种生理指标，从而了解动物的生理状态和健康状况。

本实验采用股动脉采血法，通过手术操作获取动物的血液样本。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性SD大鼠（体重约200g）。

2. 实验器材：手术器械、注射器、剪刀、镊子、酒精棉球、碘伏、生理盐水、解剖显微镜、实验台等。

四、实验步骤1. 实验动物准备：将实验动物置于实验台上，固定好四肢，充分暴露股动脉部位。

2. 手术操作：a. 用碘伏消毒实验动物股动脉部位，并铺上无菌手术巾。

b. 用手术刀在股动脉部位切开皮肤，暴露股动脉。

c. 用镊子轻轻提起股动脉，用剪刀剪断股动脉，使血液流出。

d. 用注射器吸取血液，记录采血量。

3. 实验动物恢复：将采血后的实验动物放回实验笼中，观察其恢复情况。

4. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本分为两部分，一部分用于生理指标检测，另一部分用于血型鉴定。

b. 将生理指标检测部分的血液样本置于离心机中，离心5分钟，取上清液备用。

c. 将血型鉴定部分的血液样本按照实验室要求进行血型鉴定。

五、实验结果与分析1. 生理指标检测结果：a. 通过检测血液样本中的红细胞计数、白细胞计数、血红蛋白浓度等指标，了解实验动物的红细胞生成、白细胞生成和携氧能力。

b. 分析实验结果，判断实验动物的生理状态是否正常。

2. 血型鉴定结果：a. 根据血型鉴定结果，了解实验动物的血型类型。

b. 分析实验结果，判断实验动物是否具有某种血型特异性。

六、实验讨论1. 本实验采用股动脉采血法，操作过程中需注意无菌操作，避免感染。

2. 实验动物在采血过程中可能出现应激反应，需观察实验动物恢复情况，确保实验动物的健康。

3. 实验结果受多种因素影响，如实验动物的年龄、性别、体重等，需在实验报告中详细记录实验条件。

实验动物学判断模拟题及答案

实验动物学判断模拟题及答案一、判断题（共100题，每题1分，共100分）1、流行性出血热是人畜共患病，人类感染后，以发热、出血和肾脏损害为主要临床。

( )A、正确B、错误正确答案：A2、污染物会影响实验动物设施内消毒灭菌，粪便、脏垢、油污常使消毒药液不能直接作用于微生物，从而降低消毒的效果，彻底消毒前必须先洗净脏垢、油污，特别要注意清洗死角。

( )A、正确B、错误正确答案：A3、实验动物设施的门：除负压室之外原则上应向外开，应向压力大的方向开启。

门宽和所需设备及饲育用具的大小相称。

门要求气密性好，室内装锁，能自行关闭。

把手、门锁不外露。

门上设观察孔。

最好用耐水、耐药性的金属密封门。

( )A、正确B、错误正确答案：B4、实验动物科学是衡量一个国家或一个科研单位科学研究水平的重要标志。

( )A、正确B、错误正确答案：A5、实验动物设施的地面要用耐水、耐磨、耐腐蚀性材料制成。

一般常用环氧树脂，硬面混凝土、水磨石、氯丁二烯橡胶、硬橡胶等常用保护性涂层。

地面要光滑防水。

地面接墙处圆弧面 ( )A、正确B、错误正确答案：B6、豚鼠胆小，易受惊，所以抓取时必须稳、准、迅速。

( )A、正确B、错误7、小鼠、大鼠大量取血时常用股动脉采血。

( )A、正确B、错误正确答案：A8、兔有呕吐反射，而犬则没有。

( )A、正确B、错误正确答案：B9、美国的《动物福利法》是一部专门规范实验动物管理的法规。

( )A、正确B、错误正确答案：B10、肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。

( )A、正确B、错误正确答案：A11、豚鼠是最早获得无菌动物的实验动物。

( )A、正确B、错误正确答案：A12、成品实验动物饲料贮存要分类存放，标志清楚，注明生产日期，不得与原料混贮。

( )A、正确B、错误正确答案：A13、环境中氨浓度过高可促进支原体的生长，继而促进肺炎和中耳炎的发生。

( )A、正确B、错误正确答案：A14、鱼的繁殖行为单一，鱼是卵生动物。

大鼠股动脉插管——一种有创血压监测及短时连续采血方法

大鼠股动脉插管——一种有创血压监测及短时连续采血方法文科;林哲绚;林文昊;韩溟
【期刊名称】《汕头大学医学院学报》
【年(卷),期】2016(29)3
【摘要】目的:建立一种简便有效的大鼠BP监测及连续采血法。

方法:无菌条件下分离SD大鼠股动脉,结扎远心端、夹闭近心端,剪口、插管、连接三通阀,监测BP 及采集动脉血。

结果:该法监测大鼠股动脉BP为(130.9±10.8)mm Hg;同时可进行6 h内间隔0.5 h连续采血(500~600μL/次)。

结论:该法能为大鼠实验研究奠定基础。

【总页数】3页(P168-170)
【关键词】股动脉,插管,大鼠;采血
【作者】文科;林哲绚;林文昊;韩溟
【作者单位】汕头大学医学院第二附属医院急诊外科;汕头大学医学院生物分析实验室
【正文语种】中文
【中图分类】R-332
【相关文献】
1.一种连续无创血压监测头带的研究 [J], 王普领;庞宇;吴宝明;刘沛
2.一种基于脉搏波的无创连续血压测量方法 [J], 吕海姣;严壮志;陆维嘉
3.大鼠连续定时采血新方法--股动脉插管法 [J], 李卫国;罗艳蕊;翟心慧;张文学
4.基于GA优化的MIV-BP神经网络连续血压无创监测方法研究 [J], 谭霞;季忠;张亚丹
5.一种适宜凝血功能研究的大鼠颈动脉插管采血和血压监测装置及方法 [J], 黄孙桦;唐耀;林文昊;文科;林哲绚;韩溟
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