病理生理学实验一(完整)

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病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告目录1. 实验目的1.1 学习病理生理学的基本概念1.2 掌握实验方法和步骤2. 实验原理2.1 病理生理学的定义和作用2.2 病理生理学实验的意义3. 实验步骤3.1 准备实验材料和设备3.2 进行实验操作3.3 记录实验数据4. 实验结果分析4.1 实验结果的观察和记录4.2 结果的分析和解读5. 实验结论5.1 总结实验结果5.2 病理生理学实验的意义和启示6. 实验中的困难与挑战6.1 实验过程中遇到的问题6.2 如何克服实验中的困难7. 改进建议7.1 对实验方法和步骤的改进建议7.2 对实验结果的改进建议8. 参考文献1. 实验目的1.1 学习病理生理学的基本概念在本次实验中,通过对病理生理学的基本概念的学习,理解疾病对生理功能的影响以及相应机制。

1.2 掌握实验方法和步骤通过实际操作,掌握病理生理学实验的方法和步骤,提高实验操作能力和技巧。

2. 实验原理2.1 病理生理学的定义和作用病理生理学是病理学和生理学的结合,研究疾病对生理功能的影响及其生理学机制,旨在揭示疾病发生、发展的过程和规律。

2.2 病理生理学实验的意义通过病理生理学实验可以深入了解疾病对生理功能的影响,为临床诊断和治疗提供理论依据和实验数据支持。

3. 实验步骤3.1 准备实验材料和设备1. 准备实验所需的生物样本、试剂和仪器设备。

2. 确保实验环境清洁、安全。

3.2 进行实验操作1. 按照实验步骤依次进行操作。

2. 注意操作规范,避免交叉污染。

3.3 记录实验数据1. 记录实验操作过程中的关键数据和观察结果。

2. 保持数据记录的准确性和完整性。

4. 实验结果分析4.1 实验结果的观察和记录1. 分析实验数据,观察实验结果的特点和规律。

2. 比较不同样本之间的差异。

4.2 结果的分析和解读1. 分析实验结果可能出现的原因。

2. 解读实验结果对病理生理学的意义。

5. 实验结论5.1 总结实验结果根据实验结果和分析,得出结论并总结本次实验的主要发现。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告实验题目:实验性缺氧实验目的:①复制低张性缺氧、血液性缺氧的动物模型,观察不同类型缺氧过程中实验动物一般状况、呼吸、唇尾颜色及死亡时间等机体功能变化。

②加深对缺氧分类和缺氧机制以及不同类型缺氧特点的理解。

③了解常见类型缺氧的解救办法。

实验步骤:一、低张性缺氧成年小白鼠3只,新生鼠一只分别标号1~4,做以下处理:1号鼠腹腔注射一定量0.1ml/10g乌拉坦。

2号鼠腹腔注射等量0.05ml/10g/可拉明。

3、4号不做任何处理。

2、上述处理之后将1~4号老鼠同时放入等容积的广口瓶中,并盖好瓶塞,同时用导管把四个广口瓶连通。

3、观察计时,并五分钟观察记录一次。

直至成年鼠全部死亡。

4、解剖死亡小鼠尸体,并观察记录其肝脏颜色。

二、等张性缺氧1、一氧化碳中毒性缺氧①将装有小白鼠的广口瓶与一氧化碳发生装置连接。

②用吸管吸取适量甲酸加入试管中,再吸取适量的浓硫酸加入试管中,塞紧瓶塞,并加热。

仔细观察小鼠的变化并记录。

③待小鼠死亡后,取出小鼠,并解剖小鼠尸体,观察记录其肝脏颜色。

1、亚硝酸钠中毒性缺氧①取成年健康小白鼠一只,观察其正常表现后,向腹腔注射适量0.3ml/20g亚硝酸钠。

②观察并记录小鼠的表现,待其死亡后,解剖小鼠尸体,观察并记录其肝脏颜色。

实验结果:一、低张性缺氧(2) 成年空白鼠实验过程中呼吸频率的变化:成年鼠呼吸频率变化98120141204210153159135114963600501001502002500510152025303540455055时间(min)呼吸频率(次/m i n ) ① 一号鼠注射乌拉坦之后行为状态比较活泼,放入广口瓶后较安静。

之后呼吸频率加大, 并渐渐闭上眼睛,之后出现躁动不安现象。

最后趴下安静不动,急促呼吸,死亡。

解剖尸体,肝脏颜色鲜红。

② 二号鼠注射可拉明之后非常活泼,放入广口瓶之后也比较活泼,之后出现呼吸明显加快的现象,并开始上串下跳,最后急促呼吸,慢慢呼吸变缓,死亡。

病理生理实验报告家兔(3篇)

病理生理实验报告家兔(3篇)

第1篇一、实验目的1. 了解病理生理学实验的基本操作流程。

2. 掌握家兔的基本生理和病理生理特点。

3. 通过观察家兔的病理生理变化,加深对病理生理学知识的理解。

二、实验材料1. 家兔一只(体重2-3kg)2. 实验器材:手术器械、解剖器械、生理盐水、酒精、碘酒、棉球、试管、滴管、剪刀、镊子、解剖板、解剖盘、显微镜等。

三、实验步骤1. 实验前准备(1)将家兔置于安静的环境中,适应实验环境。

(2)实验器材准备:将手术器械、解剖器械、生理盐水、酒精、碘酒、棉球、试管、滴管、剪刀、镊子、解剖板、解剖盘、显微镜等准备好。

2. 家兔麻醉(1)采用肌肉注射的方式,将家兔麻醉。

(2)观察家兔呼吸、脉搏等生命体征,确保麻醉效果。

3. 家兔解剖(1)将家兔仰卧固定在解剖板上。

(2)消毒解剖部位,沿腹部正中线切开皮肤,暴露腹壁肌肉。

(3)分离肌肉,暴露腹腔。

(4)观察家兔内脏器官,记录正常形态、颜色、大小等。

4. 实验操作(1)心脏实验:取家兔心脏,观察心脏瓣膜、心肌等结构,记录瓣膜开放、关闭情况,测量心脏搏动频率。

(2)呼吸实验:观察家兔呼吸运动,记录呼吸频率、深度等。

(3)消化实验:取家兔胃、肠等消化器官,观察消化器官的形态、颜色、蠕动情况等。

(4)循环实验:观察家兔心脏、血管等循环系统器官,记录血管充盈情况、脉搏等。

(5)神经系统实验:观察家兔脑、脊髓等神经系统器官,记录神经传导功能。

5. 实验结果记录(1)详细记录家兔解剖过程中观察到的各种生理和病理生理变化。

(2)记录实验过程中使用的药物、操作方法等。

6. 实验总结(1)分析家兔解剖过程中观察到的各种生理和病理生理变化。

(2)总结实验结果,与理论知识相结合,加深对病理生理学知识的理解。

四、实验结果与分析1. 家兔心脏瓣膜开放、关闭正常,心脏搏动频率约为每分钟80-100次。

2. 家兔呼吸运动规律,呼吸频率约为每分钟20-30次,深度适中。

3. 家兔胃、肠等消化器官形态、颜色、蠕动情况正常。

病理生理学实验性缺氧

病理生理学实验性缺氧

病理生理学实验报告实验题目:实验性缺氧实验目的:①复制低张性缺氧、血液性缺氧的动物模型,观察不同类型缺氧过程中实验动物一般状况、呼吸、唇尾颜色及死亡时间等机体功能变化。

②加深对缺氧分类和缺氧机制以及不同类型缺氧特点的理解。

③了解常见类型缺氧的解救办法。

实验步骤:一、低张性缺氧成年小白鼠3只,新生鼠一只分别标号1~4,做以下处理:1号鼠腹腔注射一定量0.1ml/10g乌拉坦。

2号鼠腹腔注射等量0.05ml/10g/可拉明。

3、4号不做任何处理。

2、上述处理之后将1~4号老鼠同时放入等容积的广口瓶中,并盖好瓶塞,同时用导管把四个广口瓶连通。

3、观察计时,并五分钟观察记录一次。

直至成年鼠全部死亡。

4、解剖死亡小鼠尸体,并观察记录其肝脏颜色。

二、等张性缺氧1、一氧化碳中毒性缺氧①将装有小白鼠的广口瓶与一氧化碳发生装置连接。

②用吸管吸取适量甲酸加入试管中,再吸取适量的浓硫酸加入试管中,塞紧瓶塞,并加热。

仔细观察小鼠的变化并记录。

③待小鼠死亡后,取出小鼠,并解剖小鼠尸体,观察记录其肝脏颜色。

1、亚硝酸钠中毒性缺氧①取成年健康小白鼠一只,观察其正常表现后,向腹腔注射适量0.3ml/20g亚硝酸钠。

②观察并记录小鼠的表现,待其死亡后,解剖小鼠尸体,观察并记录其肝脏颜色。

实验结果:一、低张性缺氧(2) 成年空白鼠实验过程中呼吸频率的变化:成年鼠呼吸频率变化98120141204210153159135114963600501001502002500510152025303540455055时间(min)呼吸频率(次/m i n ) ① 一号鼠注射乌拉坦之后行为状态比较活泼,放入广口瓶后较安静。

之后呼吸频率加大, 并渐渐闭上眼睛,之后出现躁动不安现象。

最后趴下安静不动,急促呼吸,死亡。

解剖尸体,肝脏颜色鲜红。

② 二号鼠注射可拉明之后非常活泼,放入广口瓶之后也比较活泼,之后出现呼吸明显加快的现象,并开始上串下跳,最后急促呼吸,慢慢呼吸变缓,死亡。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

一、实验目的1. 了解病理生理学实验的基本方法和步骤。

2. 掌握病理生理学实验中常用的实验技术和操作。

3. 通过实验观察病理生理学现象,加深对病理生理学理论知识的理解。

二、实验内容1. 实验一:观察正常和缺氧状态下的小鼠心肌细胞(1)实验材料:小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。

(2)实验步骤:①取正常小鼠心肌组织,制成切片。

②将切片置于载玻片上,用染色液染色。

③在显微镜下观察心肌细胞形态、颜色和结构。

(3)实验结果:正常心肌细胞呈梭形,细胞核位于细胞中央,细胞质均匀,染色深浅适中。

缺氧状态下的小鼠心肌细胞形态发生改变,细胞核偏位,细胞质出现空泡,染色浅。

2. 实验二:观察肝细胞脂肪变性(1)实验材料:小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。

(2)实验步骤:①取发生脂肪变性的小鼠肝脏组织,制成切片。

②将切片置于载玻片上,用染色液染色。

③在显微镜下观察肝细胞形态、颜色和结构。

(3)实验结果:脂肪变性肝细胞体积增大,细胞质中出现大小不等的球形脂滴,细胞核被挤压偏位。

3. 实验三:观察肉芽组织形成过程(1)实验材料:小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。

(2)实验步骤:①取小鼠皮肤伤口组织,制成切片。

②将切片置于载玻片上,用染色液染色。

③在显微镜下观察肉芽组织形成过程。

(3)实验结果:肉芽组织主要由纤维母细胞、新生毛细血管及大量炎细胞组成。

表浅部新生毛细血管的方向大致与肉芽的表面垂直;间质疏松水肿,有较多炎细胞,多为中性粒细胞,此外可见淋巴细胞、巨噬细胞及浆细胞;纤维母细胞体积大,形态不规则,常为有突起的星形或梭形,胞浆丰富略呈嗜碱性,细胞核圆形、卵圆形,染色质疏松,染色浅,核仁明显。

三、实验讨论1. 通过实验观察,我们了解了病理生理学实验的基本方法和步骤,掌握了实验中常用的实验技术和操作。

2. 实验结果表明,病理生理学现象与正常生理过程存在显著差异。

例如,缺氧状态下的小鼠心肌细胞出现形态改变,细胞核偏位,细胞质出现空泡;脂肪变性肝细胞体积增大,细胞质中出现大小不等的球形脂滴;肉芽组织形成过程中,可见大量纤维母细胞、新生毛细血管及炎细胞。

病理生理学实验一(完整)

病理生理学实验一(完整)
取一正常的小白鼠称重后处死之, 依上述方法取出肺脏,比较两肺体 积大小、颜色有何不同。
结果分析
???
思考题
1、引起水肿的原因有哪些?机制如何? 2、该试验判断水肿形成的依据是什么?
为什么?水肿液有何特征? 3、肺水肿对机体的影响。
பைடு நூலகம்
谢谢各位的聆听
兽医病理生理学实验
动物医学院病理教研室
2007-03
病理生理学实验课的特点
研究患病动物机体的功能﹑代谢的变化及 机理制
研究方法主要包括动物临床观察﹑动物实 验和流行病学调查
设立对照 观察指标 :功能\代谢\形态结构
病理生理学实验课的目的和任务
掌握动物疾病模型复制的基本方法 应用生理、生化及形态学的基本技术,观
5、分别于10min、30min、60min测烫伤
侧耳(一定在原选择部位)的厚度, 并与正常对照进行比较。
实验步骤
(二)中毒性肺水肿 取小白鼠一只,称其重量,将其置于
500ml三角烧瓶中,观察呼吸频率和深度 及口唇、耳、尾颜色。
通入氯气。 观察实验过程中小白鼠表现(呼吸)。
实验步骤
动物死后剖检:小心剪开胸腔,用 线结扎或止血钳夹住气管下端。在 结扎线以上剪断气管,将全肺取出 称重。
实验序号﹑项目名称 实验目的﹑原理 实验动物 种属﹑性别﹑体重 实验方法和主要步骤 实验结果 分析讨论
实验一 水肿
实验目的﹑原理
复制水肿的病理模型,观察水肿组织的 表现,分析某些因素在水肿形成过程中 作用。
血管通透性增高是导致炎性水肿的重要原 因。各种炎症可直接损伤微血管壁或通过 组胺、激肽类等炎症介质的作用而使微血 管壁的通透性增高。
重铬酸钾、浓盐酸气体发生装置1套 手术器械

病理生理学实验设计报告

病理生理学实验设计报告

病理生理学实验设计报告一、实验题目探究某种药物对小鼠心肌梗死模型的治疗效果二、实验目的本实验旨在研究某种药物对心肌梗死小鼠模型的治疗作用,通过检测相关生理指标和病理变化,评估该药物在心肌梗死治疗中的潜在价值。

三、实验原理心肌梗死是由于冠状动脉供血急剧减少或中断,导致相应心肌持久而严重的缺血缺氧,引起心肌坏死。

在小鼠心肌梗死模型中,通过结扎冠状动脉左前降支可模拟心肌梗死的发生。

给予实验药物后,观察其对心肌梗死面积、心肌细胞凋亡、炎症反应、心功能等方面的影响,以探讨其治疗机制。

四、实验材料与方法(一)实验动物选用 6-8 周龄的雄性 C57BL/6 小鼠,体重约 20-25g,购自_____动物实验中心。

实验动物在标准环境中饲养,自由饮食和饮水,适应环境 1 周后进行实验。

(二)主要试剂与仪器1、实验药物:_____(纯度>98%),用生理盐水配制。

2、戊巴比妥钠:用于麻醉小鼠。

3、心电图机:记录小鼠心电图。

4、超声心动图仪:检测小鼠心功能。

5、组织切片染色试剂:如苏木精伊红(HE)染色剂、TUNEL 凋亡检测试剂盒等。

(三)实验分组将小鼠随机分为 3 组,每组 10 只:1、假手术组(Sham 组):只开胸但不结扎冠状动脉左前降支,给予等量生理盐水。

2、心肌梗死模型组(MI 组):结扎冠状动脉左前降支,建立心肌梗死模型,给予等量生理盐水。

3、药物治疗组(Drug 组):结扎冠状动脉左前降支后,给予实验药物治疗。

(四)实验步骤1、小鼠麻醉:腹腔注射戊巴比妥钠(50mg/kg)麻醉小鼠。

2、手术操作:在小鼠左侧胸部做切口,暴露心脏,用丝线结扎冠状动脉左前降支,造成心肌梗死。

假手术组只穿线不结扎。

3、术后处理:缝合切口,给予抗生素预防感染。

术后 24 小时开始,药物治疗组每天腹腔注射实验药物,假手术组和心肌梗死模型组给予等量生理盐水,连续给药 2 周。

4、指标检测心电图检测:在术前、术后 24 小时和 2 周分别记录小鼠心电图,观察 ST 段变化。

病理生理学基础实验-急性高钾血症

病理生理学基础实验-急性高钾血症

病理生理学基础实验急性高钾血症[目的] 1.复制高血钾症,观察高血钾对心脏的毒性作用;2.掌握心电图的主要改变及其与血钾浓度的关系;3.掌握高钾血症的抢救方法。

[动物]豚鼠,体重300g左右,性别不拘。

[药品]20%乌拉坦、10%氯化钾溶液,5%氯化钾溶液、4%NaHCO3 溶液、10%氯化钙溶液。

[器材] 注射器(2ml、5ml)、试管、离心管、头皮针、手术器械、动脉导管、兔手术台、RM6240多道生理信号采集处理系统。

[方法]1.操作及心电图观察1)豚鼠称重,腹腔注射20%乌拉坦0.5ml/100g体重,待豚鼠麻醉后将其于仰卧位固定在兔手术台上。

2)开启RM6240多道生理信号采集处理系统,在右侧栏“通道模式”中选出“常用项目”→“心电”。

3)心电描记:将针形电极分别插入四肢踝部皮下。

导联线按右前肢(绿)、左后肢(红)、右后肢(黑)的顺序连接。

观察波形,调节右侧“扫描速度”、“灵敏度”、“时间常数”、“滤波频率”,至波形最恰当值,点击“开始记录”。

记录一段正常的心电图波形。

5)模型组:分3次腹腔注射氯化钾,建立高钾模型,每次间隔10min:腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g;腹腔注射5%氯化钾0.4ml/100g;腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g。

密切观察心电图变化及豚鼠的活动状态。

当出现高尖T波时,记录时间。

6)治疗组:腹腔注射10%氯化钾0.2ml/100g后,给予4%NaHCO3 溶液(20ml/kg)或10%氯化钙溶液(2ml/Kg),而后继续给予氯化钾同模型组,密切观察心电图变化及豚鼠的活动状态。

7)当心电图明显异常,心率减慢几近停止或出现心室纤颤时,开胸观察室颤。

8)实验数据存盘。

[思考题]1)高钾血症时,动物心电图的变化特征是什么?并用相关理论加以说明。

2)低血钠、低血钙和酸中毒加速钾中毒的机制是什么?1。

病理生理学实验

病理生理学实验

病理生理学实验1.实验性缺氧症实验目的与要求在动物身上复制低张性缺氧及血液型缺氧的模型;观察两种类型缺氧对动物呼吸的影响和皮肤颜色的变化实验原理广口瓶内空气的氧分压降低-----低张性缺氧动物体内形成大量HbCO-----血液型缺氧动物体内形成大量高铁血红蛋白-----血液型缺氧实验对象小白鼠实验器材与药品125ml带塞广口瓶3只,秒表一块,镊子一把,钠石灰(NaOH·CaO),CO发生装置,甲酸,浓硫酸,5ml,2ml吸管各一支,1ml注射器两只,2.5%亚硝酸钠溶液,1%亚甲蓝(即美蓝)溶液,生理盐水观察指标记录时间,观察小鼠皮肤颜色及活动状态实验步骤低张性缺氧取两只体重相近的健康小白鼠→一只直接放入密闭广口瓶中,另一只放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中→观察并分别记录时间血液性缺氧CO中毒:安装好CO发生装置→取一只健康小白鼠观察一般情况后放入CO发生装置的广口瓶中→先取甲酸3ml放入试管中,再加入硫酸2ml后塞紧木塞→加热CO发生装置加速CO产生(不可过热以至液体沸腾,因CO产生过多过快,动物会迅速死亡,血液颜色变化不明显)→观察并记录时间亚硝酸钠中毒:取两只体重相近的健康小白鼠→分别向腹腔内同时注入 2.5%亚硝酸钠0.3ml→立即向其中一只腹腔内注入1%美蓝0.3ml,同时向另一只腹腔内注入生理盐水0.3ml→观察并记录时间注意事项小白鼠放入缺氧瓶后瓶口一定要紧闭产生CO时注意安全腹腔注射时头低尾高,在小鼠左下腹下针以免损伤脏器动物缺氧死亡后可解剖尸体比较肝脏及血液颜色试验结束后未死亡的小白鼠均处死实验结果低张性缺氧:实验组---31’,对照组---18’血液性缺氧CO中毒---18’亚硝酸钠中毒---实验组---四肢,嘴唇,尾部发黑,未死对照组---6’2.家兔高钾血症实验目的与要求学习家兔高钾血症模型的复制方法观察和熟悉高钾血症时家兔心电图变化的特征实验原理家兔高钾血症对机体的影响表现为心脏毒性作用,出现多种心律失常早期由于心室肌细胞动作电位三期复极时间缩短,心电图上主要表现为T波高尖急性严重高钾血症时可因重度传导阻滞或心肌兴奋性降低而引起心脏骤停实验对象家兔实验器材与药品电脑,5ml注射器2只,兔手术台,小儿头皮针,5%KCI,20%乌拉坦(5ml/kg),肝素-生理盐水(125U/ml)观察指标家兔心电图变化实验步骤家兔称重,耳缘静脉注入乌拉坦→观察家兔肌张力,角膜反射,呼吸频率的变化,待动物麻醉成功后以仰卧位固定在兔手术台上→将针极按右前肢(红),左前肢(黄),右后肢(黑),左后肢(绿)的顺序插入家兔四肢皮下,连接好导线→打开测心电软件,调到相应界面准备→记录一段正常心电图波形→将充有肝素-生理盐水的小儿头皮针沿耳缘静脉注入,并将针头固定于耳廓,然后向静脉缓慢推住5%氯化钾溶液,记录异常心电图波形→注射过程中出现心室扑动或纤颤时,立即停止注射氯化钾溶液,观察心电图变化注意事项麻醉要适宜氯化钾时要缓慢注入排除心电图机各种故障的干扰,尽量避免导联线纵横交错实验结果T波高尖----三期复极时间缩短3.大白鼠实验性肺水肿实验目的与要求学习复制大白鼠实验性肺水肿模型观察大白鼠水肿的表现,了解其发生机制实验原理通过左下腹腔注射肾上腺素,引起实验动物外周血管收缩,大量的血液涌入低阻力的肺循环,肺毛细血管内压升高及肺毛细血管壁通透性增加,从而导致肺水肿实验对象大白鼠实验器材与药品抓鼠手套,2ml注射器,天平,剪刀,镊子,滤纸,棉线,0.1%盐酸肾上腺素注射液观察指标肺系数,肺组织外观实验步骤取150g左右大白鼠两只,一只作为实验鼠,一只作为对照鼠,观察一般情况→向实验鼠腹腔注射0.1%盐酸肾上腺素2ml 观察动物的变化(呼吸,口鼻有无液体流出)并记录存活时间→动物死亡后称取大白鼠尸重,解剖大白鼠取肺,擦拭表面血液后称重,计算肺系数→向对照鼠腹腔注入等量的生理盐水,处死大白鼠后,解剖取肺称重计算肺系数→观察比较两肺颜色,体积注意事项取肺时勿损伤到肺,以免影响肺系数值实验结果肺系数=肺重量(g)/体重(kg)正常值约为4.0~8.04.实验性急性右心功能不全实验目的与要求学习复制急性右心功能不全模型观察急性右心功能不全时血流动力学的主要变化实验原理给家兔静脉注射栓塞剂造成肺毛细血管栓塞引起右心后负荷增加快速大量输入生理盐水使回心血量增多,引起右心前负荷增加右心功能不全引发机体发生体循环淤血,水肿,中心静脉压(CVP)升高,动脉血压(BP)下降等病理生理变化实验对象家兔实验器材与药品哺乳动物实验手术器械一套,BL-420生物机能实验系统,压力换能器,中心静脉压测定装置,静脉输液装置,细线,注射器,20%乌拉坦,肝素生理盐水,碳素墨水,生理盐水观察指标心率(HR),呼吸(频率,深度),动脉血压(BP),中心静脉压(CVP)实验步骤麻醉与手术家兔称重后经耳缘静脉缓慢注入乌拉坦,待麻醉好后将家兔以仰卧固定于兔手术台上→颈前部剪毛,沿颈正中线做长约5-7cm的切线分离皮下组织,充分暴露气管,分离左侧颈总动脉和右侧颈外侧静脉,并各穿两根细线备用→将充盈肝素生理盐水的静脉插管用三通管连接中心静脉测压计和输液装置→经耳缘静脉注入肝素生理盐水(1mg/kg)后,将右侧颈外侧静脉远心端结扎,做V字切口,将准备好的静脉插管由切口沿向心方向插入颈静脉,深度为5-6cm,再结扎固定→将左侧颈总动脉进心端用动脉夹夹闭,远心端用细线扎牢,在结扎处近端向心方向做V形切口,向心脏方向插入与压力换能器相连的动脉插管,并用细线固定→连接好压力换能器与BL-420系统观察项目记录实验前动物的BP,CVP,HR,呼吸频率按1ml/kg剂量用2ml注射器抽取碳素墨水经家兔耳缘静脉缓慢注入→当动脉血压开始下降时,立即停止注射,检测上述各项指标通过静脉插管快速输入生理盐水200ml,输液速度呈线状,并观察上述各项指标的变化→输液量达200ml/kg而变化不明显时再补充碳素墨水直至各项指标变化非常明显或动物死亡当证实动物已经形成急性右心功能不全时尝试急救措施如暂时输入生理盐水或经耳缘静脉注射0.01%肾上腺素0.5ml动物死亡后可进行尸体解剖,观察各组织变化注意事项插管过程中尽量减少出血注入碳素墨水时速度一定要缓慢,以免造成严重急性肺梗阻而致动物很快死亡实验结果。

病理生理学实验指导

病理生理学实验指导
甲鼠:腹腔注射 0.5%咖啡因 0.1ml/10g 体重。 乙鼠:腹腔注射 2%乌拉坦 0.1ml/10g 体重。 丙鼠:腹腔注射生理盐水 0.1ml/10g 体重。 ⑶ 约过 15 分钟,动物安静后,将甲乙丙三只小鼠分别放入缺氧瓶内,密闭后开始计时。 ⑷ 仔细观察小鼠在瓶中的活动情况,下列实验项目应每隔三分钟重复观察、记录一次,如 有异常应随时记录;待小鼠死亡后,计算存活时间(T,分钟),并立即用测耗氧量装置分别测定 各鼠总耗氧量(A,毫升)。 ⑸ 计算小鼠耗氧率(R): R[ml/(g·min)] = A÷W÷T。 【实验项目】 动物的一般状态、行为;呼吸频率(次/10 秒)、深度;存活时间;皮肤、粘膜颜色改变(耳 廓、鼻尖、趾端、尾)。
⑵ 观察并记录两只小鼠的活动情况及下列实验项目。 ⑶ 待小鼠乙死亡后,自心脏取血一滴置于磁盘内,加入十滴生理盐水混匀。 ⑷ 取小鼠甲用脱臼法处死,自心脏取血一滴置于磁盘内,加入十滴生理盐水混匀,比较上 述死亡小鼠的血液颜色有何异同。 【实验项目】 动物的一般状态、行为;呼吸频率(次/10 秒)、深度;存活时间;皮肤、粘膜颜色改变(耳 廓、鼻尖、趾端、尾)。 【注意事项】 ⑴ 为了较准确的辨别颜色,可将小鼠肝脏及血液等放在一起进行比较;观察血液颜色与刚 取出的颜色差异最明显。 ⑵ 实验结束后没死亡的小鼠必需处死。 【实验结果】 (以下表格仅供参考,可以自行设计实验结果记录方式)
实验日期:
实验指导老师:
实验一 家兔实验性肺水肿
【实验目的】 ⑴ 学习复制实验性肺水肿动物模型。 ⑵ 观察家兔肺水肿后的基本变化。 ⑶ 探讨肺水肿的发生机制。
【实验原理】 肺水肿是临床常见的急危重症,发病原因很多。最常见于左心衰竭患者,尤其是在心功能不
全的基础上输液过多、过快时。此外,神经源性肺水肿与肾上腺素引起的血液重新分布有关。因 此,给动物注射中毒剂量的肾上腺素也可诱发肺水肿。

病理生理学高钾血症实验

病理生理学高钾血症实验
病理生理学兔高钾血症模型的复制方法; (2)观察高钾血症的家兔心电图变化的特 征; (3)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性 作用。
实验步骤
(1)动物的麻醉: 家兔称重后,固定动物,用 2.5%戊巴比妥钠按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘 静脉缓慢注入; (2)连接心电图仪器,耳缘静脉肝素化,并静脉 穿刺连接输液装置; (3)连续输入1%KCl溶液(40~50滴/min),每 1~2min记录一次心电图,观察P波,QRS波; (4)待出现高钾典型心电图后,继续输入1%KCl 溶液(50~60滴/min),直至家兔死亡。
实验观察指标
(1)精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏 迷、痉挛); (2)呼吸频率、深度和节律; (3)心电图变化; (4)血浆钾浓度等。
实验结果
实验注意事项
(1)动物麻醉要适度,过深抑制呼吸,过浅时动 物疼痛则易引起肌颤,干扰心电图波形; (2)保持动、静脉导管的通畅,确保各种液体能 及时、准确地输入; (3)心电干扰波的处理:接好地线;针形电极刺 入部位要对称,位于皮下;安置导线时避免纵横 交错;实验台上液体要随时清除。 。

病理生理家兔的实训报告

病理生理家兔的实训报告

一、实训目的本次实训旨在通过观察家兔的病理生理变化,深入了解病理生理学的基本理论,提高实验操作技能,培养严谨的科学态度和团队合作精神。

二、实训时间2023年10月15日至2023年10月19日三、实训地点病理生理实验室四、实训内容1. 实验一:家兔高钾血症实验(1)实验目的通过观察家兔高钾血症的病理生理变化,了解高钾血症的病因、发病机制及临床表现。

(2)实验方法① 实验动物:选取健康家兔2只,体重2.0-2.5kg。

② 实验材料:生理盐水、10%葡萄糖、10%葡萄糖酸钙、10%氯化钠、注射器、输液管、电针等。

③ 实验步骤:a. 将家兔置于安静的环境中,观察其一般状态。

b. 用电针刺激家兔四肢,观察其肌肉收缩情况。

c. 将家兔固定于手术台上,进行颈部手术,暴露气管和静脉。

d. 用注射器抽取10%葡萄糖酸钙5ml,静脉注射家兔,观察其血压、心率等生命体征变化。

e. 将家兔置于生理盐水中,观察其肌肉收缩情况。

f. 将家兔置于10%葡萄糖溶液中,观察其肌肉收缩情况。

g. 将家兔置于10%氯化钠溶液中,观察其肌肉收缩情况。

(3)实验结果家兔在注射10%葡萄糖酸钙后,血压、心率等生命体征无明显变化;在置于生理盐水中时,肌肉收缩情况正常;在置于10%葡萄糖溶液中时,肌肉收缩情况明显减弱;在置于10%氯化钠溶液中时,肌肉收缩情况明显增强。

2. 实验二:急性缺氧实验(1)实验目的通过观察家兔急性缺氧的病理生理变化,了解急性缺氧的病因、发病机制及临床表现。

(2)实验方法① 实验动物:选取健康家兔2只,体重2.0-2.5kg。

② 实验材料:生理盐水、10%葡萄糖、氧气、注射器、输液管、电针等。

③ 实验步骤:a. 将家兔置于安静的环境中,观察其一般状态。

b. 用电针刺激家兔四肢,观察其肌肉收缩情况。

c. 将家兔置于含有氧气的密闭容器中,观察其呼吸、心率等生命体征变化。

d. 将家兔取出容器,观察其肌肉收缩情况。

(3)实验结果家兔在置于含有氧气的密闭容器中时,呼吸、心率等生命体征无明显变化;取出容器后,呼吸、心率等生命体征明显减弱,肌肉收缩情况明显减弱。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告病理生理学是生物科学中的重要分支,它主要研究人体或动物体内的疾病机理和生理反应。

通过病理生理学实验,我们可以深入了解生物体的生理机能,找出疾病产生的原因及机制,从而为临床诊断和治疗提供有效的依据。

本次实验的主要目的是通过对糖尿病模型大鼠的实验观察,了解糖尿病病理生理过程及其发病机制,并探究某些药物在糖尿病治疗中的作用。

实验步骤:1. 实验材料准备:本次实验所需材料包括糖尿病模型大鼠、空白对照大鼠、药物试剂盒、生化分析仪器等。

2. 给予糖尿病模型大鼠药物:通过给予糖尿病模型大鼠口服降血糖药物,观察其血糖水平的变化,以及对肝脏、肾脏、肌肉等器官的影响。

3. 实验结果观察:通过对大鼠血液和尿液的采样,测量血糖、胰岛素、肌酐、尿素等指标水平的变化,同时进行组织学检查,观察脏器组织病理变化情况。

实验结果:1. 模型大鼠的血糖水平较高,而对照组大鼠血糖水平正常。

2. 给予糖尿病模型大鼠口服降血糖药物后,血糖水平下降,提示该药物对糖尿病具有一定的治疗作用。

3. 糖尿病模型大鼠肝脏和肾脏组织中含有较多的糖原,并出现不同程度的肝细胞空泡变性,提示糖尿病会影响这两个器官的正常功能。

4.糖尿病模型大鼠骨骼肌内肌肉纤维丢失,肌肉组织病理变化较大,提示糖尿病会影响肌肉功能。

结论:通过本次实验,我们深入了解了糖尿病病理生理过程及其发病机制。

同时,我们也对某些药物在糖尿病治疗中的作用有了一定的认识。

病理生理学实验是深入研究生物体病理生理过程的有效手段,可以为临床诊疗提供实质性的帮助。

在今后的学习和工作中,我们应当继续发挥病理生理学实验的重要作用,不断深化对生物体疾病机理和治疗的认识。

病理生理学实验家兔酸碱平衡紊乱

病理生理学实验家兔酸碱平衡紊乱

实验目的1.学习复制急性呼吸性酸中毒、急性代谢性酸中毒及代谢性碱中毒的动物模型。

2-观测以上酸碱紊乱时血气指标及呼吸、血压变化。

3.探讨以上酸碱紊乱的常见原因及机制。

实验原理通过夹闭气管插管,造成动物不完全窒息复制急性呼吸性酸中毒的动物模型;采用直接输入酸和碱的方法复制急性代谢性酸中毒和代谢性碱中毒的动物模型。

实验动物家兔(2.3kg)实验药品和器材20%氨基甲酸乙酯(乌拉坦)溶液,1%普鲁卡因溶液,0.3%肝素溶液,5%乳酸溶液,5%碳酸氢钠溶液。

婴儿秤,兔固定台,兔急性实验手术器械1套,BL-420F物机能实验系统,血气分析仪,气管插管,动脉插管,三通针头附细塑料插管2个,动脉夹,10mm口径橡皮塞5个,1mL注射器4个,5mL、10mL注射器各1个,7号针头。

实验方法与步骤:(1)取家兔一只,称重,以20%氨基甲酸乙酯5mL/kg.bw自耳缘静脉注射麻醉后,仰卧固定于兔台上,颈部及一侧腹股沟部剪毛。

(2)颈部正中作4~6cm的切口.依次切开皮肤,皮下组织.分离气管,在气管的第3或第4软骨处作倒“T”形切开,迅速插人气管插管并用线结扎固定。

分离出左侧颈总动脉及右侧颈外静脉并穿线备用。

切开一侧腹股沟部皮肤,分离股动脉,穿线备用。

(3)自耳缘静胁注入0.3%肝素溶液,进行全身肝素化抗凝血。

(4)将压力换能器、呼吸换能器与BL-420F生物机能实验系统连接并调试好。

结扎左颈总动肺远心端,用动脉夹夹住近心端,在靠近结扎线处,用眼科剪剪开动脉.插入充满肝素溶液与压力换能器相连的塑料管,用线结扎固定,松开动脉夹.描记血压曲线。

结扎右侧颈外静脉远心端,在靠近结扎线处,用眼科剪剪开静脉,插入充满肝素溶液的带有三通针头的细塑料管.用线结扎固定备用。

(5)将气管插管连接呼吸换能器。

(6)描记正常血压、呼吸曲线。

(7)用1mL注射器接7号针头吸取0.5mL肝素溶液,使注射器内壁湿润,然后排出注射器内的空气及多余肝素,将针头刺入小橡皮塞以隔绝空气。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告病理生理学实验报告引言:病理生理学是病理学和生理学的结合,旨在研究疾病对生理功能的影响以及机体对疾病的适应和代偿机制。

本实验旨在通过动物模型研究某种疾病对机体的影响,并探究其发病机制和治疗方法。

实验设计:本实验选用小鼠作为实验动物,将其分为实验组和对照组。

实验组小鼠注射某种致病因子,对照组小鼠注射生理盐水。

实验周期为4周,每周进行一次观察和检测。

实验结果:1. 体重变化:实验组小鼠在注射致病因子后,体重开始下降,与对照组小鼠相比明显减轻。

这表明该致病因子对机体的代谢和营养摄取产生了明显的影响。

2. 血液指标:实验组小鼠的血液指标发生了明显变化。

血红蛋白水平下降,白细胞计数增加,血小板计数减少。

这些变化可能与致病因子引起的炎症反应和免疫系统的异常有关。

3. 组织病理学变化:实验组小鼠在实验周期结束后,进行组织病理学检查。

结果显示,实验组小鼠的肝脏、肾脏和心脏等器官出现了不同程度的病理学变化。

肝脏呈现脂肪变性和坏死,肾脏出现肾小球硬化和间质纤维化,心脏显示心肌细胞肥大和间质纤维化。

这些结果进一步证明了该致病因子对机体的损害。

4. 生理功能变化:实验组小鼠的生理功能也发生了明显变化。

实验组小鼠的运动能力下降,呼吸频率增加,心率不规则。

这些结果表明该致病因子对机体的运动、呼吸和心血管系统产生了负面影响。

讨论:1. 该致病因子对机体的影响:通过本实验的结果可以看出,该致病因子对机体的影响主要表现在代谢、免疫系统、器官病理学和生理功能等方面。

这些影响可能是该致病因子引起的炎症反应和免疫系统的异常所致。

2. 发病机制:根据实验结果,该致病因子可能通过炎症反应和免疫系统异常引起机体的损害。

炎症反应导致了血液指标的变化,免疫系统异常引起了器官病理学变化和生理功能的异常。

3. 治疗方法:针对该疾病,可以尝试以下治疗方法:抗炎症药物可以减轻炎症反应,改善血液指标;免疫调节剂可以调节免疫系统功能,减轻器官病理学变化;运动和心血管康复训练可以改善生理功能。

病理生理学实验:急性肺水肿

病理生理学实验:急性肺水肿

实验讨论
(1)本实验复制急性肺水肿的机制 肺水肿发生机制为:①肺毛细血管静水压升高;②血
浆蛋白渗透压降低;③肺毛细血管通透性增加;④肺淋 巴回流受阻;⑤间质负压增加;⑥其他:如神经源性肺 水肿、高原性肺水肿。
本实验用大剂量肾上腺素生理盐水复制家兔肺水肿模 型,其原理为中毒剂量的肾上腺素使心动速度加快,左 心室不能把注入的血液充分排出,左心室舒张期末压力 递增,可引起左心房的压力增高,从而使肺静脉发生淤 血,肺毛细血管液体静压随而升高,一旦超过血浆胶体 渗透压,使组织液形成增多,不能为淋巴充分回流,即 可形成肺水肿。
实验原理
肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间 质或肺泡所造成的。临床上常见的肺水肿是 心源性肺水肿和肾性肺水肿。病理上可分间 质性和肺泡性两类,可同时并存或以某一类 为主。间质性肺水肿大都为慢性,肺泡性可 为急性或慢性肺水肿。本实验主要是通过静 脉大量滴注肾上腺素生理盐水导致急性心源 性肺泡性肺水肿。
正常肺系数为4-5。
5.肉眼观察——肺体积、颜色的改变,并切开 肺观察有无泡沫样液体流出。
正常肺标本 肺水肿标本
切开后的肺水肿(液体溢出)
注意事项
麻醉要深浅适度 减少手术性出血 解剖取肺时,勿损伤肺表面和挤压
肺组织,以防止水肿液流出,影响肺 系数的数值。
组别 实验前 实验后
呼吸(次/分) 呼吸音 泡沫痰
实验器材
仪器与材料
兔手术台、手术器械一套、注射器、气管插 管、听诊器。
药品
25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、 肾上腺素。
动物 家兔
实验步骤
1. 称重观、察麻各醉项、生固理定指—标—:耳缘静脉注射 皮并2作肤5%好粘氨记膜基录颜甲色酸、乙呼酯吸(音4、m呼l/k吸g)频。率

《病理学》实验报告

《病理学》实验报告

《病理学》实验报告《病理学》实验报告。

实验报告(一)。

实验名称实验性肺水肿时间成绩。

实验目的熟悉病理生理学和病理解剖学的实验方法,掌握急性肺水。

肿的影响因素。

材料:家兔、手术器材、静脉输液器材、生理盐水、5%乌拉坦和。

1mg肾上腺素等。

实验方法:给麻醉家兔做气管插管手术后,按80ml/Kg给家兔颈总静脉输液,150~180滴/分。

输液完成后,静脉注射/5ml肾上腺素。

观察1家兔呼吸频率和有无呼吸困难;2气管插管处有无异常。

出现后,夹住气管,处死动物,开胸结扎支气管,游离两肺。

吸干表面水分,称肺重量,计算系数。

(肺重/体重—正常4~5)。

观察肺脏及剖面。

实验结果:。

呼吸观察:输液完成,给肾上腺素后,呼吸频率由60/分升高至100/。

分并呼吸增强;鼻、耳部皮肤青紫,气管插管处可见粉红。

色泡沫粘液。

肺重系数: /*100=7。

标本观察:肺暗红色,弹性减弱。

剖面有粉红色泡沫液体流出。

讨论与结论:成功演绎急性肺水肿病理形成过程。

大量快速输液,使血浆胶体渗透压下降50%左右,肾上腺素起到强心作用升高血压,增加肺毛细血管压。

两个因素使肺内组织液快速大量生成,进一步漏出进入肺泡;毛细血管扩张,少量渗出红细胞,因此出现粉红色泡沫液体。

肺水肿影响肺换气,出现发绀,皮肤青紫色。

肺水肿表现器官重量增加。

— 1/2 —— 1/2 —实验报告(二)病理观察。

观察内容:大叶性肺炎大体标本,脂肪肝大体标本。

急性肝炎病理组织切片。

肉眼所见:标本1 病变肺叶肿胀,质地硬;切面灰红色,较粗糙。

肺胸膜表面有纤维素渗出物附着。

标本2 肝体积增大,被摸紧绷,表面油腻光亮,肝脏呈淡黄色。

镜下所见:高倍镜:肝细胞体积肿大多见,胞浆淡染疏松状;肝细胞点状坏死,坏死细胞大小不等,细胞核凝固染色深,还可见细胞核碎裂呈小块状,还可见细胞核疏松近消失。

汇管区和坏死区有明显的炎性细胞侵润。

— 2/2 —。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告一、实验目的本次病理生理学实验旨在通过具体的实验操作和观察,深入理解病理生理学的相关理论知识,掌握常见病理生理现象的发生机制和特点,培养我们的实验操作技能和科学思维能力。

二、实验原理病理生理学是研究疾病发生、发展规律和机制的学科,本次实验主要基于以下原理:1、疾病状态下机体的生理功能和代谢变化。

2、某些致病因素对机体的影响及机体的代偿和适应机制。

三、实验材料1、实验动物:_____(具体动物种类),体重_____,性别_____。

2、实验器材:手术器械(手术刀、镊子、剪刀等)、注射器、灌胃针、离心机、显微镜等。

3、实验药品:_____(具体药品名称及浓度)。

四、实验方法1、动物分组将实验动物随机分为_____组,每组_____只。

分别为正常对照组、模型组和治疗组。

2、模型制备(1)采用_____方法制备疾病模型,如给动物注射_____物质或进行特定的手术操作。

(2)观察动物在模型制备后的一般状态,包括精神状态、活动情况、饮食饮水等。

3、实验处理(1)正常对照组:不进行任何处理,正常饲养。

(2)模型组:仅制备模型,不给予治疗。

(3)治疗组:在模型制备后,给予相应的治疗药物或干预措施。

4、指标检测(1)在实验过程中的不同时间点,采集动物的血液、尿液等样本,进行生化指标检测,如血糖、血脂、肝肾功能等。

(2)取动物的组织器官(如肝脏、肾脏、心脏等),进行病理学检查,观察组织形态和结构的变化。

5、数据记录详细记录实验过程中的各项数据,包括动物的体重变化、症状表现、检测指标的数值等。

五、实验结果1、一般状态观察(1)正常对照组动物精神状态良好,活动自如,饮食饮水正常。

(2)模型组动物在模型制备后出现明显的症状,如精神萎靡、活动减少、食欲不振等。

(3)治疗组动物经过治疗后,症状有所改善。

2、生化指标检测结果(1)模型组动物的血糖、血脂等指标明显高于正常对照组,肝肾功能指标也出现异常。

(2)治疗组动物经过治疗后,相关生化指标有所下降,接近正常对照组水平。

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告

病理生理学实验报告出血性休克1. 实验目的:制作家兔出血性休克模型,观察出血性休克是的相关生理指标,探讨出血性休克的发病机制。

2. 实验步骤:(1)家兔称重,固定,麻醉(耳缘静脉注射20%乌拉坦,皮下注射2%普鲁卡因2ml),剪毛(2)分离股动脉,颈总动脉(耳缘静脉注射1%肝素1mol/kg,插管排气)(3)在动脉远心端结扎,近心端上动脉夹,在动脉插管 (4)记录 :正常血压:正常角膜反射:正常球结膜充盈度:正常红细胞比例:(5)大量放血15分钟后:血压:降低角膜反射:减弱球结膜充盈度:减少R呼吸加深加快,HR心率:加快红细胞比例:下降讨论:1、在短时间内失血超过机体总血量的25%~30%,超过了机体的代偿能力便会发生失血性休克,可以导致心输出量和平均动脉压快速下降,造成供血不足,微循环紊乱,组织细胞灌流量不足。

2、机体失血后,由于循环血量的减少,可以导致血压的下降和心输出量的减少;由于心输出量的减少和动脉压的下降,可以反射性的引起交感神经兴奋使心率加快;血量的下降导致外周血管的收缩,使组织细胞灌流减少,导致二氧化碳和代谢物质的潴留,使呼吸加深加快、外周皮肤血流减少皮肤苍白;由于交感神经兴奋,导致大量的儿茶酚胺类物质的释放,使毛细血管前括约肌收缩,毛细血管流体静压下降,使组织液更易回流到血液中,导致血红细胞比下降;总血量下降下降使肾脏灌流量下降,尿量减少,同时由于血压的下降醛固酮和血管升压素的释放使肾的重吸收作用加强,尿量进一步减。

3、(1)纠正酸中毒:由于血液灌流的紊乱,大部分组织的血液灌流减少、缺氧酸性代谢物堆积潴留,可以使血管对儿茶酚胺类物质的敏感性降低,因此首先应纠正酸中毒。

(2)补充血容量:失血性休克其最基本的原因是由于血量的减少导致血液灌流发生了紊乱,因此需要补充血容量。

(3)血管活性物质的使用:总血量的减少,使外周血管收缩,血流灌流减少,因此需要血管活性物质来扩张血管,改善微循环。

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兽医病理生理学实验
动物医学院病理教研室 2007-03
病理生理学实验课的特点
研究患病动物机体的功能﹑代谢的变 化及机理制 研究方法主要包括动物临床观察﹑动 物实验和流行病学调查 设立对照 观察指标 :功能\代谢\形态结构

病理生理学实验课的目的和任务
掌握动物疾病模型复制的基本方法 应用生理、生化及形态学的基本技术, 观察动物疾病过程中的病理生理变化 分析现象产生的原因

实验一
水肿
实验目的﹑原理
复制水肿的病理模型,观察水肿组织 的表现,分析某些因素在水肿形成过 程中作用。 血管通透性增高是导致炎性水肿的重 要原因。各种炎症可直接损伤微血管 壁或通过组胺、激肽类等炎症介质的 作用而使微血管壁的通透性增高。

实验原理
(一)通过给动物局部烫伤引起局部 炎症,导致微血管壁的通透性增高而 引发局部水肿。 (二)增强,影响了血管内外液体交换 的平衡而引起肺水肿。

病理生理实验课的基本要求
了解本次实验的目的;复习有关的理 论知识;预测试验结果。 及时﹑准确﹑记录实验数据和客观地 描述实验现象;爱护实验动物和实验 器材,节约试验药品和试剂。 清洗器械,整理桌面,撰写实验报告。

实验报告书写内容及要求
一般项目 姓名﹑年级﹑班组﹑实验 日期等。 实验序号﹑项目名称 实验目的﹑原理 实验动物 种属﹑性别﹑体重 实验方法和主要步骤 实验结果 分析讨论
实验步骤
动物死后剖检:小心剪开胸腔,用
线结扎或止血钳夹住气管下端。在 结扎线以上剪断气管,将全肺取出 称重。 取一正常的小白鼠称重后处死之, 依上述方法取出肺脏,比较两肺体 积大小、颜色有何不同。
结果分析

???
思考题
1、引起水肿的原因有哪些?机制如何? 2、该试验判断水肿形成的依据是什么? 为什么?水肿液有何特征? 3、肺水肿对机体的影响。

实验材料
实验动物:家兔1只,小白鼠2只 主要试剂\器材: 500ml的烧杯(70℃热水) 1%伊文氏兰溶液 重铬酸钾、浓盐酸气体发生装置1套 手术器械 游标卡尺

实验步骤
(一)观察血管通透性升高在水肿发生中 的作用 1、将家兔固定于兔台上。 2、在一侧兔耳远端,选择一固定部位用 游标卡尺测其厚度,(自身对照)。 3、将该侧耳远端1/3部分浸入58~60℃水 中3~5min。
实验步骤
4、从对侧耳缘静脉注入1%伊文氏 兰溶液5ml,观察双耳着色的范围、 时间以及程度。 5、分别于10min、30min、60min测 烫伤侧耳(一定在原选择部位)的 厚度,并与正常对照进行比较。
实验步骤
(二)中毒性肺水肿 取小白鼠一只,称其重量,将其置于 500ml三角烧瓶中,观察呼吸频率和深 度及口唇、耳、尾颜色。 通入氯气。 观察实验过程中小白鼠表现(呼吸)。
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