琼脂糖凝胶电泳技术的原理和方法共21页文档
琼脂糖凝胶电泳技术
电泳检测技术是指利用带电颗粒在电场中能向异性电极泳动这一现象来分离、纯化或分析检测供试品的一种生物化学技术。
原理：许多生物分子都带有电荷，在电场作用下可发生移动，由于混合物中各组分所带电荷性质、数量以及相对分子质量各不相同，使在同一电场作用下，各组分的泳动方向和速率也各有差异，所以在一定时间内，它们移动距离不同，从而可达到分离鉴定的目的。
DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时，包括电荷效应和分子筛效应。
琼脂糖是由天然的琼脂加工制得，是一种直链杂聚多糖，溶于热水，形成溶胶，冷却后成为孔径范围从50nm到大于200nm的大网孔径凝胶。
由于孔径较大，对一般蛋白质不起分子筛作用，该电泳技术是目前分离、分析DNA片段的标准方法。
DNA琼脂糖凝胶电泳的原理DNA 分子是两性电解质，在高于其等电点的溶液（pH8.0~pH8.3 DNA分子本身的大小和构型、凝胶浓度决定了DNA分子的迁移速度。
）中，碱基几乎不解离，磷酸基团全部解离，DNA 分子带负电荷，在电场中向正极移动。
DNA分子大小对迁移速率的影响：相对分子质量大，迁移慢；相对分子质量小，迁移快。
DNA分子构型对迁移速率的影响：迁移速度：闭环﹥直链DNA﹥开环DNA。
琼脂糖凝胶浓度的影响：同样大小的线性DNA片段，在不同浓度的琼脂糖凝胶中的迁移速度不同，浓度越大，迁移的越慢常用的电泳上样缓冲液含溴酚蓝，有的还含有二甲苯青，这些指示剂可以指示电泳的速度。
溴化乙淀（EB）是核酸的染色剂，能插入DNA分子中形成荧光结合物，EB在紫外线照射下的发射荧光。
荧光的强度与DNA的含量成正比，从而可以确定DNA片段在凝胶中的位置及估计出待测样品的浓度。
EB是强致癌剂。
电泳操作步骤(整个过程要求带一次性手套1、胶槽准备①将凝胶托盘放入制胶盒中;②将加样梳垂直插入到制胶盒的小凹槽内，梳齿底端和凝胶托盘有1mm的间隙;③将制胶盒放在调整好的水平台上。
2、凝胶准备用1×TAE配制1％琼脂糖凝胶。
琼脂糖凝胶电泳实验原理和实验方法
琼脂糖凝胶电泳实验原理和实验方法琼脂糖凝胶电泳实验原理和实验方法[实验原理]电泳是现在用于分离和纯化DNA片段的最常用技术。
包含电解质的多孔支持介质----“胶”并把它置于静电场中。
则DNA分子将向阳极移动，这是因为DNA分子沿其双螺旋骨架两侧带有含负电荷的磷酸根残基。
当DNA长度增加时，来自电场的驱动力和来自凝胶的阻力之间的比率就会降低，不同长度的DNA片段就会表现出不同的迁移率。
因而就可依据DNA分子的大小来使其分离。
该过程通过把示踪染料（Purple Loading Dye）或分子量标准参照物(Ladder)和样品(DNA&RNA)一起进行电泳而得到检测。
分子量标准参照物也可以提供一个用于确定DNA片段大小的标准。
琼脂糖凝胶适用于分离大小在0.2-50Kb范围内的DNA片段。
[实验用品]1.琼脂糖 1.0%1.0g琼脂糖+100ml电泳缓冲液(TAE),微波炉中火30秒至沸腾,熔化的琼脂物冷却至60℃时可加入10mg/ml溴化乙锭10μl,充分混匀,将温热的凝胶倒入已置好梳子(鉴定胶用细密点的梳子；回收胶用粗稀的梳子）的胶膜中在室温下放置30-45min后现进行电泳。
1.5%:琼脂糖1.5g。
2.电泳缓冲液50×TAE Tris 乙酸 Tris 242g 终2 mol/L乙酸57.1ml 终1mol/L0.5M EDTA200ml pH8.0 终100mmol/LdH2O 补足至1000ml使用时稀释1×TAE。
5×TBE Tris 硼酸 Tris 54g 终445mmol/L硼酸27.5g 终445mmol/L0.5M EDTA20ml pH8.0 终10mmol/LdH2O 补足至1000ml使用时稀释10倍成0.5倍如50ml贮存液+450ml水→500ml工作液。
[实验内容与方法]1.移取适量的琼脂糖(如制备1%的琼脂糖胶液就移1g的琼脂糖溶于100ml TAE缓冲液中)微波炉加热使其溶于TAE缓冲液中。
实验琼脂糖凝胶电泳的原理和方法
实验琼脂糖凝胶电泳的原理和方法实验琼脂糖凝胶电泳（Agarose gel electrophoresis）是一种常用的分离DNA和RNA分子的技术。
它基于琼脂糖凝胶电泳原理，利用琼脂糖凝胶的孔隙大小和电泳电场的力对DNA和RNA分子进行分离。
琼脂糖是一种高分子多糖，当加热溶解后冷却凝固时，形成一个多孔的凝胶网络。
这个凝胶网络中的孔隙大小是可以调控的，通过改变琼脂糖的浓度可以得到不同孔隙大小的凝胶。
1.制备琼脂糖凝胶：按照实验需要，称取适量琼脂糖加入缓冲液中，搅拌使其溶解，然后加热至溶解。
等溶液冷却至约50℃时，在一个电泳板间夹两块玻璃片或塑料片，将琼脂糖凝胶溶液倒入电泳板中，并将梳子插入凝胶中，让凝胶固化。
2.样品制备：将要检测的DNA或RNA分子提取和纯化，并用缓冲液稀释合适浓度。
添加适量的DNA荧光染料或核酸染色剂，使其在紫外光下可见。
3.样品加载：将样品加入琼脂糖凝胶的凝胶孔口中，注意不要将样品推到凝胶中。
4.电泳分离：将凝胶板放入电泳槽中，加入适量缓冲液，注意保证电泳液中缓冲液位置高于凝胶。
然后将负极电极和正极电极分别连接到电泳槽的两端，开启电源，施加适当电压使DNA或RNA分子在电场力的作用下进行电泳分离。
5.染色和可视化：电泳结束后，取出凝胶板，并用染色剂对DNA或RNA分子进行染色。
染色剂与DNA或RNA结合后，用紫外光照射凝胶，通过相应设备观察凝胶上的条带形成。
实验琼脂糖凝胶电泳的原理是基于DNA和RNA分子在电场下按照大小进行分离的特性。
在电场作用下，DNA或RNA分子荷负性被引向正极（阴极）方向移动。
琼脂糖凝胶的孔隙大小可以根据需要调控，大分子难以通过，小分子易于通过。
因此，DNA或RNA分子根据其大小不同，通过孔隙大小的限制，从而形成条带，完成了对DNA或RNA的分离。
dna琼脂糖凝胶电泳
DNA琼脂糖凝胶电泳介绍DNA琼脂糖凝胶电泳是一种常用的生物技术实验方法，用于分离DNA分子并确定其大小。
它基于DNA分子的电荷和大小不同，通过应用电场使DNA分子在琼脂糖凝胶中迁移，从而实现分离。
原理DNA琼脂糖凝胶电泳的基本原理是：DNA分子带负电荷，当置于电场中后，电场将使DNA分子向正电极移动。
然而，DNA分子在琼脂糖凝胶中的迁移速度取决于它的大小。
较长的DNA分子由于受阻力较大，迁移速度较慢，而较短的DNA分子迁移速度较快。
因此，琼脂糖凝胶电泳可以将DNA分子根据大小进行分离。
实验步骤1. 样品处理将待测DNA样品与凝胶电泳缓冲溶液混合，并加入负荷样品的染料来增加样品的重量和使其可见。
一般使用表现著名的溴化乙锭（Ethidium Bromide）来染色DNA分子。
2. 准备琼脂糖凝胶制备琼脂糖凝胶液，并根据实验需要将其倒入电泳槽中，并形成一个凝胶。
此过程需要使用琼脂糖凝胶制备缓冲液，一般为Tris–醋酸–EDTA缓冲液，简称TAE缓冲液。
3. 样品加载使用微量吸管或特殊的样品加载微孔将样品加载到琼脂糖凝胶上。
每个微孔能够承载一定量的样品，因此要根据样品的数量进行安排。
通常还会在凝胶上加载一个DNA分子大小标记（Marker）作为参考，以便确定未知样品的大小。
4. 电泳将凝胶放入电泳槽中，并将正负电极接入电源。
通过给定的电流和时间来进行电泳实验。
电流的选择取决于琼脂糖凝胶的密度和样品的大小范围。
5. 可视化和分析凝胶电泳完成后，通过紫外线照射或荧光成像系统来观察结果。
DNA分子在凝胶上能够与染料结合产生发光，从而可在琼脂糖凝胶上看到DNA分子的大小分布。
通过与已知DNA分子大小标记的对比，可以确定未知样品DNA分子的大小。
应用领域1. 分子生物学在分子生物学研究中，DNA琼脂糖凝胶电泳是一种常用的手段。
它可以用于检测DNA分子的大小、评估PCR反应的效果、验证基因敲除和插入等分子操作的成功性等。
琼脂糖凝胶电泳技术的原理和方法
琼脂糖凝胶电泳技术的原理和方法一、原理：琼脂糖凝胶电泳是一种常用的分离和分析生物大分子的方法。
其原理是利用琼脂糖凝胶作为固定相，通过电场作用将待分离物质在凝胶中进行分离。
琼脂糖凝胶是一种具有多孔结构的凝胶介质，可以根据待分离物质的尺寸和电荷特性进行分离。
二、方法：1. 准备琼脂糖凝胶：首先，按照所需的凝胶浓度和体积配制琼脂糖溶液。
然后，在琼脂糖溶液中加入缓冲液，并搅拌均匀。
将混合液倒入凝胶板中，待其凝固后，准备好使用的琼脂糖凝胶。
2. 样品制备：将待分离的样品进行处理，如蛋白质样品可以经过蛋白质提取和纯化步骤，DNA样品可以进行酶切等处理。
3. 样品加载：将处理好的样品加载到琼脂糖凝胶中。
可以使用样品井或样品孔进行加载，确保每个样品均匀地加载到凝胶中。
4. 电泳条件设置：根据待分离物质的特性和需求，设置适当的电泳条件。
包括电场强度、电泳时间和缓冲液pH值等。
5. 电泳分离：将凝胶板放入电泳槽中，连接电源，进行电泳分离。
在电场的作用下，待分离物质会在凝胶中进行迁移，根据其尺寸和电荷特性进行分离。
6. 结果分析：电泳结束后，可以通过染色等方法观察凝胶板上的带状图案。
根据不同的染色方法，可以观察到不同的待分离物质，如蛋白质带、DNA带等。
三、应用：琼脂糖凝胶电泳技术在生物科学研究中具有广泛的应用。
其中，常见的应用有以下几个方面：1. 蛋白质分离与鉴定：可以通过琼脂糖凝胶电泳技术对蛋白质进行分离和鉴定。
蛋白质在电泳过程中根据其分子量的不同而分离成多个带状条带，通过染色或Western blotting等方法可以对目标蛋白质进行定性或定量分析。
2. DNA分析：琼脂糖凝胶电泳技术在DNA分析中也有重要应用。
可以通过电泳分离来检测DNA片段的长度和纯度，如测序片段、PCR产物等。
3. RNA分析：琼脂糖凝胶电泳技术也可以用于RNA的分析。
通过电泳分离可以检测RNA的大小、纯度和相对含量等。
4. 蛋白质-核酸相互作用研究：通过琼脂糖凝胶电泳技术，可以研究蛋白质与核酸之间的相互作用。
琼脂糖凝胶电泳实验原理及步骤
实验三琼脂糖凝胶电泳一、实验原理琼脂糖凝胶电泳是分离和纯化DNA 片段的常用技术。
把DNA样品加入到一块包含电解质的多孔支持介质（琼脂糖凝胶）的样品孔中，并置于静电场上。
由于DNA分子的双螺旋骨架两侧带有含负电荷的磷酸根残基，因此在电场中向正极移动。
在一定的电场强度下，DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应。
具有不同的相对分子质量的DNA片段泳动速度不一样，因而可依据DNA分子的大小来使其分离。
凝胶电泳不仅可分离不同分子质量的DNA，也可以分离相对分子质量相同，而构型不同的DNA分子。
在电泳过程中可以通过示踪染料或相对分子质量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测。
相对分子质量标准参照物相对可以提供一个用于确定DNA片段大小的标准。
在凝胶中加入少量溴化乙锭(ethidium bromide, EB)，其分子可插入DNA的碱基之间，形成一种络合物，在254～365nm波长紫外光照射下，呈桔红色荧光，因此也可对分离的DNA 进行检测。
一般琼脂糖凝胶电泳适用于大小在0.2kb～50kb范围内的DNA片段。
本实验介绍琼脂糖凝胶的制备以及琼脂糖凝胶电泳在DNA片段分离中的应用方法。
二、仪器及试剂1.仪器及耗材：水平电泳槽、电泳仪、凝胶成像分析系统、微波炉、微量移液器、透明胶带、点样板或parafilm、100 ml或250 ml锥形瓶、量筒、吸头等。
2.试剂及配制：50×TAE缓冲液的配制：2 mol/L Tris-乙酸，0.05 mol/L EDTA（pH8.0）配制1000 mlTris 242 g冰乙酸 57.1 ml0.5 mol/L EDTA 100 ml加入600 ml去离子水后搅拌溶解，将溶液定容至1 L后。
高温高压灭菌，室温保存。
walter schaffner 琼脂糖凝胶电泳
Walter Schaffner是一位瑞士的生物学家，他是琼脂糖凝胶电泳技术的发明者之一。
琼脂糖凝胶电泳是一种重要的分离和分析生物大分子的方法，广泛应用于生物化学、分子生物学等领域。
本文将介绍琼脂糖凝胶电泳的原理、方法和应用，并从Walter Schaffner的贡献出发，探讨琼脂糖凝胶电泳在科学研究和生物工程中的重要意义。
一、琼脂糖凝胶电泳的原理1.电泳原理电泳是利用物质在电场中运动的性质进行分离和分析的方法。
当一个带电粒子在电场中运动时，其受到电场力的作用，从而产生电泳迁移。
在琼脂糖凝胶电泳中，琼脂糖凝胶起到了障碍物质迁移的作用，使得分子按照大小和电荷进行分离。
2.琼脂糖凝胶电泳原理琼脂糖凝胶是由聚合物构成的三维网状结构，其孔隙大小可以根据需要调节。
在电场作用下，负电荷的分子沿电场方向向阳极迁移，同时受到凝胶孔隙的阻碍。
大分子受到的阻碍力较大，迁移速度慢，而小分子受到的阻碍力较小，迁移速度快。
在琼脂糖凝胶中，分子根据大小和电荷的不同被分离开来。
二、琼脂糖凝胶电泳的方法及步骤1.制备凝胶首先需要将琼脂糖加入缓冲液中，制备成琼脂糖凝胶。
在制备过程中，需要根据需要调节凝胶的浓度和孔隙大小。
2.样品预处理将待分离的样品进行预处理，通常需要进行蛋白质的变性、还原和煮沸处理，使之具有负电荷，并且保持在凝胶中的形态。
3.装样将样品加载在琼脂糖凝胶的孔隙中，通常使用专门的样品装载器进行操作，确保样品均匀地加载在凝胶中。
4.电泳将装有样品的琼脂糖凝胶板放入电泳槽中，施加电场，进行电泳分离。
根据不同的需求，可以选择垂直电泳或水平电泳。
5.染色及成像电泳结束后，将凝胶进行染色处理，使分离的分子可见。
然后进行成像和分析。
三、琼脂糖凝胶电泳的应用1.在蛋白质分离和分析中的应用琼脂糖凝胶电泳在蛋白质分离和分析中有着广泛的应用。
可以用于蛋白质组学的研究，如分离和鉴定蛋白质混合物中的各种蛋白质，分析蛋白质的分子量和异构体，检测蛋白质的含量等。
琼脂糖凝胶电泳的原理和关键操作
琼脂糖凝胶电泳的原理和关键操作一、原理琼脂糖凝胶电泳是一种常用的生物分子分离和分析技术。
其原理基于琼脂糖凝胶的特性和电泳的原理。
琼脂糖是一种多糖类物质，具有高分子量和黏性。
在电泳过程中，琼脂糖凝胶能够形成一种网状结构，通过这种结构可以筛选分离不同大小和电荷的生物分子。
琼脂糖凝胶电泳是在一定浓度的琼脂糖溶液中进行的。
琼脂糖溶液被加热并冷却后形成凝胶。
凝胶中的孔隙大小与琼脂糖的浓度有关，浓度越高，孔隙越小。
在电泳过程中，样品被加载到琼脂糖凝胶中的孔隙中。
然后，在电场的作用下，样品中的带电分子会向电极方向移动。
由于琼脂糖凝胶的筛选作用，分子的迁移速度将与其大小和电荷有关。
大分子迁移速度较慢，小分子迁移速度较快。
二、关键操作1. 准备琼脂糖凝胶：将适量的琼脂糖加入缓冲液中，加热溶解后冷却形成凝胶。
凝胶的浓度应根据分离物的大小来选择，一般可选用0.5-2%的琼脂糖。
2. 加载样品：将待分析的生物样品加入琼脂糖凝胶中的孔隙中。
可以使用微量吸管或微量注射器等工具，尽量避免产生气泡。
3. 设置电场：将琼脂糖凝胶放置在电泳槽中，并加入适量的缓冲液。
然后，将电泳槽连接到电源上，设置适当的电压和电流。
4. 进行电泳：打开电源，开始进行电泳。
根据需要，可以选择常规电泳或脉冲电泳等不同的电泳方式。
5. 分析结果：根据分子的大小和电荷，不同的分子将在琼脂糖凝胶中以不同的速度迁移。
经过一定时间后，可以停止电泳，取出琼脂糖凝胶进行染色或进一步分析。
通过琼脂糖凝胶电泳，可以实现DNA、RNA、蛋白质等生物分子的分离和定量分析。
在实验室中，琼脂糖凝胶电泳被广泛应用于基因测序、蛋白质分析、病毒检测等领域。
总结：琼脂糖凝胶电泳是一种基于琼脂糖凝胶和电泳原理的生物分子分离和分析技术。
关键操作包括准备琼脂糖凝胶、加载样品、设置电场、进行电泳和分析结果。
该技术在生物学研究和临床诊断中具有重要的应用价值。
琼脂糖凝胶电泳原理
琼脂糖凝胶电泳原理
琼脂糖凝胶电泳（简称DNA电泳）是一种用于分离和分析核酸样品的常用方法。
它是以琼脂糖凝胶为基质，利用电场和其他物理现象将DNA分离出来。
DNA电泳的原理是：DNA分子受到电场的作用，其中负电荷的碱基（即碱基对）产生负电势，然后在电场的作用下向正电极处移动，而正电荷的碱基（即碱基对）产生正电势，并向负电极处移动，从而形成一个电场，使DNA呈现出一种梯度电泳现象，从而将DNA 分离出来。
琼脂糖凝胶电泳的步骤大致如下：首先，将DNA样品中的蛋白质和碳水化合物溶解掉，然后将溶解后的DNA样品放入琼脂糖凝胶中，再将其加入电极槽，最后在凝胶中加入少量的电解液，使其充满电荷，并通过电源将凝胶中的DNA分离。
琼脂糖凝胶电泳有许多优点，如可以分离出不同长度和完全不同的DNA分子，可以大量分离出DNA分子，可以分离出RNA分子，且操作简便，分离效率高，分离时间短，而且它的分离结果可以通过电泳板清楚地显示出来。
由此可见，琼脂糖凝胶电泳是一种非常有效的方法，用于分离和分析核酸样品。
它在分子生物学研究中有着重要的作用，可用于检测
染色体变异、基因突变等，是一种非常重要的分子生物学技术。
琼脂糖凝胶电泳技术
1、实验目的：学习与掌握DNA电泳的技术方法，利用琼脂糖凝胶电泳检测DNA纯度、含量以及分子量，及分离不同大小DNA片段。
2、实验原理：电泳概念及种类*• 电泳：是指带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动的现象电泳基本原理迁移率（或泳动度）是指带电颗粒在单位电场强度下泳动的速度，可用下列公式计算：Ｕ=υ/E =(d/t)/(V/l) =dl/VtＵ为迁移率（cm2·V-1·min-1）；υ为颗粒泳动速度（cm·s-1）；E 为电场强度（V·cm-1）；d 为颗粒泳动的距离（cm）；l为滤纸有效长度（cm）；V为实际电压（V）；t为通电时间（s或min）。
通过测量d, l, V, t, 即可计算出被分离物质的迁移率。
1迁移率单位= 10-5 cm2·V-1·min-1在确定的条件下，某物质的迁移率为常数，是该物质的化学特征常数颗粒带净电荷多，直径小而接近于球形，则在电场中泳动速度快，反之则泳动速度慢。
迁移率还与分子的形状，介质粘度，颗粒所带电荷有关，迁移率与颗表面电荷成正比，与介质粘度及颗粒半径成反比。
影响琼脂糖电泳迁移的主要因素*电场强度溶液的pH值溶液的离子强度电渗现象温度的影响支持物的影响电泳的分类按分离原理分类：1.区带电泳2.移界电泳3.等速电泳4.聚焦电泳按有无固体支持物分类影响琼脂糖电泳迁移的主要因素DNA的大小DNA的构象*琼脂糖浓度*缓冲液*不同构像质粒分离不同大小DNA片段的合适琼脂糖凝胶浓度缓冲液TAE：乙酸盐缓冲液TBE：硼酸盐缓冲液TPE：磷酸盐缓冲液实验操作1. 用胶带将洗净、干燥的水平板的边缘封住，形成一个胶模并水平放置。
2. 按水平板的长×宽×0.5cm胶厚，量取0.5×TBE，并按0.7％的浓度称取agarose琼脂糖，在微波炉或电炉上加热至全熔* （清澈透明）。
3. 等凝胶温度降至大约50－60℃以下时，加入1 mg/L溴化乙锭（EB）至终浓度为0.5ug/mL ；摇匀并轻快地倒入水平板中，除掉气泡，插入梳子*。
琼脂糖电泳原理
琼脂糖电泳原理琼脂糖电泳原理一、概述琼脂糖电泳是一种常用的蛋白质分离技术，其原理是利用琼脂糖凝胶的孔隙度和电荷特性，将不同大小和电荷的蛋白质分离开来。
该技术广泛应用于生物学、医学、食品科学等领域。
二、琼脂糖凝胶的制备1. 原料选择：琼脂糖是由海藻提取的多糖类物质，其具有良好的凝胶性能。
常用的有低浓度琼脂糖（0.5%~1.5%）和高浓度琼脂糖（2%~4%）。
2. 制备方法：将琼脂糖加入缓冲液中，加热至溶解，然后冷却至室温，在制备过程中可以添加其他物质以改变凝胶孔隙度和电荷性质。
三、电泳条件设置1. 缓冲液：常用的缓冲液有Tris-HCl缓冲液、Borate缓冲液等。
缓冲液的选择应根据样品的性质和电泳条件来确定。
2. 电极：电泳仪通常有两个电极，一个是阴极，一个是阳极。
在琼脂糖电泳中，通常将样品放置在凝胶孔隙中，然后将凝胶浸泡在缓冲液中，再将两个电极分别连接到凝胶的两端。
3. 电压和时间：电压和时间是影响琼脂糖电泳分离效果的重要因素。
通常情况下，琼脂糖电泳的分离时间为1~3小时，电压为50~150V。
四、琼脂糖凝胶孔隙度和分子大小的关系1. 孔隙度：琼脂糖凝胶的孔隙度越大，分子通过的速度越快。
因此，在相同的条件下，大分子会停留在较靠近起点处，而小分子则会远离起点。
2. 分子大小：琼脂糖凝胶能够区分不同大小的分子。
当样品中含有不同大小的分子时，在相同的条件下，大分子会停留在较靠近起点处，而小分子则会远离起点。
五、琼脂糖凝胶孔隙度和分子电荷的关系1. 孔隙度：琼脂糖凝胶的孔隙度与缓冲液pH值有关。
当pH值偏离凝胶的等电点时，凝胶会带有电荷，从而改变孔隙度。
因此，在不同pH值下，琼脂糖凝胶的孔隙度也会发生变化。
2. 分子电荷：分子电荷对其在琼脂糖凝胶中的迁移速率也有影响。
当分子带有正电荷时，它们会向阴极方向迁移；而当分子带有负电荷时，它们则会向阳极方向迁移。
六、琼脂糖电泳的应用1. 蛋白质分离：琼脂糖电泳广泛应用于蛋白质分离和检测。