失血性休克试验

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失血性休克实验

实验性失血性休克

【目的】了解失血性休克动物模型的复制方法;观察失血性休克时的主要体征及血流动力学变化特点;探讨失血性休克的发病机理及救治措施。

【原理】根据微循环学说,休克定义为各种原因引起有效循环血量减少,微循环灌流障碍,引起重要生命器官血液灌注不足,从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。休克的病因有多种,本实验采用颈动脉放血的方法,直接减少有效循环血量,复制低血容量性休克模型。由于放血一定程度后可使循环血量不足,静脉回心血量减少,血压下降,通过压力感受器反射,引起交感神经兴奋,外周血管收缩,组织灌流量急剧减少,导致失血性休克。通过输液,补充血容量,抢救休克,同时使用不同血管活性药物,比较其疗效,分析它们在失血性休克治疗中的作用。

【器材】BL-420生物机能实验系统,压力换能器两套,张力换能器一套,动物实验手术器械一套,静脉输液装置一套,尿量测定装置一套,10ml量筒一个,注射器(2ml、5ml、10ml、30ml),兔台,婴儿秤。

【药品】20%乌拉坦溶液,0.9%生理盐水,1%肝素生理盐水,1%去甲基肾上腺素,10%葡萄糖水注射液。

【动物】家兔。

【观察指标】动脉血压(Bp,mmHg)、中心静脉压(CVP ,mmHg)、呼吸(频率、深度)、尿量。

【方法】

1.手术操作

(1)家兔称重后,腹腔注射20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉,将动物仰卧固定在实验台上,颈部和腹部剪毛备皮;

(2)从甲状软骨至胸骨切迹之间切开颈部正中皮肤,切口长度约5cm;

(3)翻开右侧皮肤,见颜色暗红且较粗大的颈外静脉。由于静脉血管壁很薄且不易与筋膜区分,应使用血管钳沿血管走行方向小心钝性分离,将血管外层筋膜分离干净。分离出约2~3cm左右的右侧颈外静脉后,穿双线备用。

(4)在气管左侧胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间钝性分离,其深层即可见颈动脉鞘,触之有明显搏动感。以血管钳仔细分离出左侧颈总动脉(注意:勿损伤迷走神经)

,穿双线备用(图 1 )。

图 1 家兔颈外静脉和颈总动脉示意图

(5)下腹部耻骨联合上作下腹正中切口,长3~5cm,找出膀胱后,用小圆针细线在少血管区域进行断续荷包缝合。在荷包内作一直切口,插管后拉紧缝线固定之。收集尿液于10ml量筒内(图2 )。

(6)由耳缘静脉注入l%肝素(1:ml/kg)抗凝。

图2 膀胱插管示意图

(7)先用血管夹夹闭右侧颈外静脉的近心端,再用缝线结扎远心端,用眼科剪在靠

近结扎处管壁上剪一小口(约为血管直径的1/4~l/3),仔细插入事先已注满生理

盐水并排除气泡的静脉插管。小心调整角度,轻轻将插管插入静脉约5cm,结

扎固定。通过三通开关连接中心静脉压压力换能器和静脉输液装置,以测定中心静

脉压(以mmHg表示)。

(8)结扎左侧颈总动脉的远心端,再用血管夹夹闭其近心端,按如上方法插入颈总

动脉插管,结扎固定,通过三通开关连接动脉血压压力传感器,以测定动脉血压(以mmHg表示)。

(9)在动物胸腹部呼吸最明显处,以弯针穿线固定于张力传感器,调整传感器的方向

及缝线的松紧程度,以描记出呼吸曲线。

2.实验步骤

(1)动物稳定10min后,记录正常状态下的血压(mmHg)、中心静脉压(mmHg)、呼吸曲线及尿量(ml/10min)。

1.取显微镜一台,卸下载物台,将镜身由纵轴位拉至水平位,将一块带孔的泡沫塑料固定于载物台上,然后,将镜身侧位安置在接近家兔上腹部切口处,用无齿卵圆镊自腹腔轻轻提出大网膜,将其游离末端平铺于预先浸满生理盐水的海绵垫上,并用大头针固定于镜台泡沫上方,调整恒温恒流滴数(30滴/分)。

2.在低倍镜下找一个较为标准的微循环单位,认准小动脉,小静脉,直捷通路,动-静脉短路及真毛细血管网,仔细观察血管形态、管径大小以及微血流的流速、流态。

3.从股动脉放血,至血压维持于 5.3kPa(40mmHg),若血压回升,可再放少量血,使血压维持在 5.3kPa半小时,观察微循环改变。

4.再次放血,使血压维持于 3.3kPa(25mmHg)3min,观察微循环改变。

5.快速补液(40滴/分左右)后观察上述指标变化。

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