糖尿病模型建立的方法比较

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建立小鼠糖尿病模型及其治疗

建立小鼠糖尿病模型及其治疗

建立小鼠糖尿病模型及其治疗糖尿病是一种常见的慢性代谢性疾病,目前世界范围内已有亿万人患有糖尿病。

在这种情况下,建立一个小鼠糖尿病模型可以很好地模拟人类糖尿病病情,对于研究糖尿病的发生机理、药物治疗以及预防有着重要的意义。

一、糖尿病的病理机制糖尿病是由于胰岛素分泌不足或胰岛素抵抗引起的一系列代谢障碍,导致血糖水平升高。

在胰岛素不足或抵抗的情况下,血糖不能进入细胞内,而只能滞留在血液中,最终导致高血糖的发生。

糖尿病的发病与多种因素有关,其中包括生活方式、遗传因素、环境因素等。

人们日常的不良生活习惯可能成为糖尿病的重要因素,例如高脂肪饮食、长期吸烟、久坐不动等都可能增加得糖尿病的风险。

这些因素会引起组织与器官的代谢失范,同时导致细胞内发生炎症反应,促进糖尿病的发病。

二、建立小鼠糖尿病模型的方法小鼠糖尿病模型是建立实验室中研究糖尿病的重要手段,目前已经有多种方法可以将小鼠正常生理状态转化为糖尿病状态。

常用的方法包括基因工程法、化学药物法和膳食摄入法等。

1. 基因工程法基因工程法是通过改变小鼠基因的表达,使其在体内缺乏胰岛素或者胰岛素受体来模拟人类胰岛素缺乏的情况。

该方法可以在较短的时间内使小鼠进入糖尿病状态,但这种状态都是由基因缺陷引起的,与人类的病变机制不尽相同。

2. 化学药物法化学药物法是通过给小鼠注射化学药物来损害小鼠胰岛的β细胞,进而使小鼠进入胰岛素分泌不足状态。

该方法可以模拟人类由于胰岛素分泌不足导致的糖尿病,但是在操作的过程中需要考虑到药物剂量和使用的时间,否则会对小鼠造成不可逆的损伤。

3. 膳食摄入法膳食摄入法是通过调整小鼠的饮食结构和数量使其增加对葡萄糖的需求,从而导致胰岛素分泌不足和细胞胰岛素抵抗的产生。

该方法可以很好地模拟人类由于饮食不当或生活习惯不良导致的糖尿病,同时该方法不具有基因改变和化学药物注射的可能风险,适用范围广。

三、治疗小鼠糖尿病的方法小鼠糖尿病模型的建立为研究糖尿病的发生机制和糖尿病的治疗方法提供了基础。

大鼠糖尿病造模成功的标准

大鼠糖尿病造模成功的标准

大鼠糖尿病造模成功的标准大鼠糖尿病造模成功的标准糖尿病是一种常见的代谢性疾病,其特点是血糖水平异常升高。

为了更好地研究糖尿病的发病机制和寻找新的治疗方法,科学家们常常使用动物模型进行实验研究。

而大鼠作为一种常用的实验动物,其糖尿病模型的建立和评价就显得尤为重要。

大鼠糖尿病模型的建立主要有两种方法:化学诱导和基因突变。

化学诱导法是通过给予大鼠某些化学物质,如链脲佐菌素(STZ)或高脂饮食,来诱导其发生糖尿病。

而基因突变法则是通过基因工程技术改变大鼠体内某些基因的表达,使其模拟人类糖尿病的发生过程。

无论是哪种方法,大鼠糖尿病模型的建立都需要满足一定的标准才能被认为是成功的。

下面将介绍大鼠糖尿病模型成功的标准。

1. 血糖水平异常升高:大鼠糖尿病模型的核心特征就是血糖水平异常升高。

正常情况下,大鼠的空腹血糖水平应该在3.9-6.1 mmol/L之间,而糖尿病模型大鼠的空腹血糖水平应该明显高于正常范围。

2. 葡萄糖耐量异常:正常情况下,大鼠在葡萄糖负荷后,血糖水平会在一定时间内迅速上升,然后逐渐恢复到正常范围。

而糖尿病模型大鼠在葡萄糖负荷后,血糖水平上升明显较高,并且恢复较慢。

3. 胰岛功能异常:胰岛是调节血糖水平的重要脏器,而胰岛功能异常是导致糖尿病发生的主要原因之一。

在大鼠糖尿病模型中,胰岛功能异常表现为胰岛细胞数量减少、胰岛素分泌减少或胰岛素抵抗增加等。

4. 病理学变化:糖尿病是一种慢性代谢性疾病,其发展过程中会引起一系列的组织和器官损伤。

在大鼠糖尿病模型中,可以观察到胰岛组织结构异常、肝脏脂肪变性、肾小球硬化等病理学变化。

5. 症状表现:大鼠在发生糖尿病后会出现一系列的临床表现,如多饮、多尿、消瘦等。

这些临床表现也是评价大鼠糖尿病模型是否成功的重要指标之一。

综上所述,大鼠糖尿病模型成功的标准主要包括血糖水平异常升高、葡萄糖耐量异常、胰岛功能异常、病理学变化和临床表现。

只有同时满足这些标准,才能认定大鼠糖尿病模型的建立是成功的。

2型糖尿病动物模型的建立

2型糖尿病动物模型的建立

内容提要糖尿病是一类由遗传、环境、免疫等因素引起的以高血糖为特征的代谢性疾病。

近年来发病率显著上升,2003年国际糖尿病联盟(IDF)报告全球糖尿病病人已超过1.94亿,预计到2025年这个数字将增加近一倍(3.33亿)。

其中2型糖尿病的发生,在国外占整个糖尿病比例的85%~95%以上,而国内则更高,达98%以上。

因此,建立比较理想的2型糖尿病动物模型对于糖尿病防治药物的研究具有十分重要的意义。

本研究采用先高脂喂养实验动物一段时间再给予链脲佐菌素(STZ)的方法建立糖尿病动物模型。

研究结果表明:高脂喂养SD大鼠28天后一次性腹腔注射链脲佐菌素 40mg/kg,可以建立稳定的具有高血脂和胰岛素抵抗为特征的2型糖尿病大鼠模型;高脂喂养ICR小鼠21天后一次性腹腔注射链脲佐菌素100mg/kg,可以建立稳定的具有高血脂和胰岛素抵抗为特征的2型糖尿病小鼠模型;在链脲佐菌素和高脂饮食协同作用下可肝脏、肾脏和胸腺等器官指数发生改变;综合分析用大鼠比用小鼠建立糖尿病动物模型更有优势。

因此,本研究已经成功建立了2型糖尿病动物模型,并且筛选出最佳的实验动物。

关键词:糖尿病;动物模型;大鼠;小鼠;链脲佐菌素;血糖;胰岛素英文缩写DM糖尿病NIDDM非胰岛素依赖性糖尿病IDDM胰岛素依赖性糖尿病STZ链脲佐菌素TC总胆固醇TG甘油三酯LDL低密度脂蛋白HDL高密度脂蛋白ip腹腔注射iv静脉注射sc皮下注射IR胰岛素抵抗INS胰岛素敏感指数GFR肾小球滤过率Ccr肌酸清除率ESRD终末期肾病DN糖尿病肾病DR 糖尿病性视网膜并发症SCH 慢性持续性高血糖症IDF 国际糖尿病联盟目录引言 (1)第一部分2型糖尿病大鼠模型的建立 (12)实验器材与方法 (12)结果 (17)第二部分2型糖尿病小鼠模型的建立 (20)实验器材与方法 (20)结果 (23)讨论 (27)结论 (36)参考文献 (37)附图 (42)中文摘要 (1)ABSTRACT (4)致谢导师及作者简介引言糖尿病是一类由遗传、环境、免疫等因素引起的以高血糖为特征的代谢性疾病。

两种方法建立的妊娠期糖尿病小鼠模型

两种方法建立的妊娠期糖尿病小鼠模型
娠第 0、6、9、19 天测空腹血糖与体重,并观察饮水量与尿量变化,比较孕鼠成模情况。结果 50mg/kg 链脲佐菌素组成模率为 50%,30mg/ kg 组成膜率 70%,空腹血糖与对照组相比较其高血糖状态持续时间长,且体重增加明显下降,差异具有统计学意义(P<0.05)。结论 链脲佐
菌素 30mg/kg,间隔 24h 腹腔注射,共注射 3 次是建立妊娠期糖尿病小鼠模型相对较好的方法,具有较好的稳定性。
ABSTRACT: Objective To compare the rate of formation and stability of gestational diabetes mellitus in a high-dose injection and multiple low-dose injections of streptozotocin. Method A C57 30 rats were divided into control group (10) and experimental group (STZ 50mg/kg group, 30mg/kg group, 10 in each group). Dose group were administered intraperitoneally with citrate buffer, the experimental group were given intraperitoneal injection of streptozotocin freshly prepared solution of 50 mg/kg and 30mg/kg intraperitoneally 24h interval, a total of three injections. Afterwards, they were all fed with ordinary feed and freely fed water. The fasting blood glucose and body weight were measured on the 0th, 6th, 9th, and 19th days of pregnancy respectively, and the changes of drinking water and urine volume were observed, and the pregnant mice were compared. Results 50 mg/kg streptozotocin molding composition was 50%, 30mg/ kg 70% composition of the film, fasting blood glucose compared to control group and its long duration of a hyperglycemic state, and decreased body weight gain, the difference Statistical significance (P<0.05).Conclusion The intraperitoneal injection of streptozotocin (30mg/kg) at intervals of 24h is a relatively good method to establish a mouse model of gestational diabetes and has good stability. KEY WORDS: Streptozotocin; Gestational Diabetes; Mice; Model

糖尿病动物模型建立

糖尿病动物模型建立

糖尿病动物模型建立糖尿病是一种常见的慢性代谢性疾病,严重影响着人类的健康。

为了深入研究糖尿病的发病机制、预防和治疗方法,建立可靠的糖尿病动物模型至关重要。

糖尿病动物模型的建立方法多种多样,主要包括化学药物诱导、手术诱导、自发性糖尿病动物模型以及基因工程技术诱导等。

化学药物诱导是较为常用的方法之一。

其中,链脲佐菌素(STZ)是常用的诱导剂。

STZ 能够选择性地破坏胰岛β细胞,导致胰岛素分泌不足,从而引发糖尿病。

在使用 STZ 诱导糖尿病模型时,剂量和给药途径是关键因素。

一般来说,小鼠的常用剂量较低,大鼠的剂量相对较高。

给药途径可以是腹腔注射或静脉注射。

此外,还有一些其他的化学药物,如四氧嘧啶,也可用于诱导糖尿病模型,但相对而言,STZ 更为常用。

手术诱导糖尿病模型主要是通过胰腺切除或胰岛切除的方式。

例如,切除大部分胰腺组织会使胰岛素分泌显著减少,从而导致糖尿病的发生。

这种方法的优点是模型的致病机制明确,但手术操作复杂,对动物的创伤较大,术后护理要求高,且模型的稳定性和重复性可能受到一定影响。

自发性糖尿病动物模型则是指某些特定的动物品系在自然状态下自发出现糖尿病症状。

例如,db/db 小鼠和 ob/ob 小鼠就是常见的自发性糖尿病模型。

这些小鼠由于基因突变,导致胰岛素抵抗或胰岛素分泌缺陷,从而自然发展为糖尿病。

自发性糖尿病动物模型的优点是更接近人类糖尿病的自然病程,但缺点是价格昂贵,饲养条件要求高。

基因工程技术诱导的糖尿病动物模型是近年来发展起来的新技术。

通过基因编辑技术,如敲除或过表达某些与糖尿病相关的基因,可以构建出特定类型的糖尿病模型。

这种方法可以精准地模拟特定的糖尿病发病机制,但技术难度较大,成本较高。

在建立糖尿病动物模型时,需要考虑多种因素。

首先是动物的选择。

常用的实验动物包括小鼠、大鼠、豚鼠等。

小鼠和大鼠因其繁殖快、饲养成本低、遗传背景清晰等优点,被广泛应用。

但不同品系的动物对糖尿病的易感性可能不同,因此需要根据研究目的选择合适的品系。

糖尿病肾病动物模型成模标准

糖尿病肾病动物模型成模标准

糖尿病肾病动物模型成模标准《糖尿病肾病动物模型成模标准探讨》糖尿病肾病作为糖尿病并发症之一,对患者的生活质量和生命安全都带来了严重威胁。

研究糖尿病肾病的动物模型成模标准,对于深入理解疾病的发病机制和寻找治疗方法至关重要。

本文将从动物模型的选择、成模标准的制定以及现有研究现状和未来发展方向等方面展开讨论。

一、动物模型选择的考量1.1 模型动物的种类选择糖尿病肾病可通过大鼠、小鼠、豚鼠等动物建立模型来进行研究。

目前常用的研究动物是大鼠和小鼠,它们的遗传、生理和代谢特点与人类相似,且相对容易获取和饲养。

1.2 动物模型的糖尿病诱导方法在研究糖尿病肾病动物模型时,首先需要诱导动物患上糖尿病。

目前常用的方法包括给予高脂饮食、注射链脲氨酸、DNA转基因等方法。

不同的诱导方法对模型动物的临床表现和病理改变有所不同,研究者需根据其研究目的来选择适合的诱导方法。

二、成模标准的制定2.1 临床表现建立糖尿病肾病模型的动物在诱导后应呈现出类似糖尿病肾病患者的临床表现,包括蛋白尿、肾小球滤过率下降、肾小管功能异常等。

这些表现需要通过临床检测手段来验证。

2.2 病理改变除了临床表现,糖尿病肾病模型动物的肾脏组织需要出现糖尿病肾病特有的病理改变,如系膜细胞增生、基底膜增厚、肾小管萎缩等。

病理形态学检测是评估成模标准的重要手段。

三、现有研究现状和未来发展方向在糖尿病肾病模型的研究领域,已经有许多经典的动物实验模型被建立,如STZ诱导的大鼠糖尿病模型、db/db小鼠模型等。

未来的研究可以从模型的再造性、疾病阶段的模仿以及病理机制的深入探究等方面展开。

个人观点和理解研究糖尿病肾病动物模型成模标准对于深入理解疾病的发病机制、筛选治疗靶点以及研发新药物具有重要意义。

在未来的研究中,我认为需要进一步完善成模标准,提高模型的再现性和可比性,以加快研究进展,为临床治疗提供更多的可能性。

总结通过对糖尿病肾病动物模型成模标准的讨论,我们可以看到目前研究中存在的问题和挑战,也能够展望未来的发展方向。

糖尿病小鼠模型的构建

糖尿病小鼠模型的构建

糖尿病小鼠模型的构建I型糖尿病模型方法:模型的诱导采用多次小剂量链脲佐菌素(STZ)给药法(MLDSTZ),雄性BALB/c小鼠,随机分为3组:模型组、阴性对照组、阳性对照组。

模型组小鼠连续5天腹腔注射STZ溶液(60mg/kg),注射前禁食8h,不禁水。

注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液(pH4.5),避光冰上配置,溶解后尽量在30min完成注射。

阴性对照组腹腔注射柠檬酸缓冲液,正常对照组不作处理。

II型糖尿病模型目前,构建II型糖尿病动物模型的方法有很多种,其中自发性糖尿病动物模型、转基因/基因敲除糖尿病动物模型、单纯应用STZ所致糖尿病模型、STZ 与饮食协同作用所致II型糖尿病动物模型等应用较多。

1、自发性糖尿病动物模型自发性II型糖尿病动物模型主要是啮齿类,其最大优点是疾病的发生、发展与人类的很相似,因此在研究II型糖尿病的生理、病理及有关临床药物研发等方面有重要价值。

此类动物模型包括小鼠、大鼠、地鼠,其中小鼠包括KK-Ay、ob/ob、db/db等单基因突变鼠、新西兰肥胖小鼠和NSY小鼠:大鼠包括GK大鼠、Zucker大鼠和OLETF大鼠等;地鼠则以中国地鼠为主。

2、转基因构建糖尿病模型以实验方法敲入外源基因或敲除内源基因,在染色体组内稳定整合并能遗传给后代的一类动物称为转基因动物。

转基因糖尿病动物模型主要是通过基因技术,按照自己的意愿,控制实验动物的特定基因及其表达,使动物表现为一定的遗传性状。

主要利用基因定位与基因转移,由于转基因为随机整合,所以在子代观察到得效果取决于成功整合发生的位点和拷贝的数量,转基因的表达效果也因动物体系不同而有所差异。

3、单纯应用STZ所致糖尿病模型使用不同剂量(60mg/kg\45mg/kg)的STZ静脉注射,注射前禁食8h,不禁水。

注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液(pH4.5),避光冰上配置,溶解后尽量在30min完成注射。

一种新型妊娠糖尿病动物模型的建立方法

一种新型妊娠糖尿病动物模型的建立方法

一种新型妊娠糖尿病动物模型的建立方法
建立妊娠糖尿病动物模型可以根据以下步骤进行:
1. 动物选择:选择合适的动物品种作为研究对象,常用的动物模型包括小鼠、大鼠和豚鼠等。

2. 妊娠诱导:将雌性动物与雄性动物交配,确保受孕。

然后使用适当剂量的荷尔蒙(如孕激素)进行妊娠诱导。

3. 口服葡萄糖负荷试验:在妊娠的特定时间点,给予动物口服一定剂量的葡萄糖溶液,可以通过血液样本的采集来监测血糖水平的变化。

4. 血液检测:使用血液样本来测量血糖、胰岛素和其他相关指标的水平,以评估糖尿病的发生和发展。

5. 组织采集:在动物受孕的不同时间点,可以选择采集动物胰腺、肝脏和脂肪组织等,进行病理学和分子生物学的分析,以研究模型的病理机制。

需要注意的是,建立妊娠糖尿病动物模型时应严格遵守动物实验的伦理规范和程序,确保动物福利和实验可靠性。

糖尿病小鼠模型建立方法的比较

糖尿病小鼠模型建立方法的比较

(1)准备材料:CRISPR-Cas9基因编辑系统、成年小鼠(♂或♀,10-12周 龄)、微量注射器、基因敲除靶点引物等。
(2)实验步骤: a.设计针对胰岛素基因的敲除靶点,并合成相应引物; b. 将CRISPR-Cas9基因编辑系统转入小鼠胚胎成纤维细胞; c.通过显微操作将编辑 后的细胞注射到受精卵中; d.将受精卵移植到代孕母鼠体内; e.出生后的小鼠 进行血糖和胰岛素检测,筛选出基因敲除成功的糖尿病小鼠。
糖尿病小鼠模型建立方法的比较
目录
01 糖尿病与小鼠模型: 不同建立方法的比较
03 二、方法介绍
02 一、背景介绍
糖尿病与小鼠模型:不同建立方 法的比较
糖尿病是一种常见的代谢性疾病,影响着全球数亿人的健康。为了深入研究 糖尿病的发病机制和治疗方法,科学家们通常会使用动物模型来模拟人类糖尿病 的症状和特征。其中,小鼠模型是最常用的糖尿病动物模型之一。本次演示将比 较三种不同的糖尿病小鼠模型建立方法,以期为相关研究提供参考。
2、基因敲除法基因敲除法可以模拟Ⅰ型糖尿病的症状,建立的糖尿病小鼠 模型更加接近人类的糖尿病病理生理特征。该方法的优点是能够精准地模拟糖尿 病症状,适用于研究胰岛β细胞的免疫调节和糖尿病发病机制等方面的研究。但 是,基因敲除法需要较复杂的实验操作和较高的成本,同时需要较长时间的培养 和筛选。
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一、背景介绍
糖尿病是一种由于胰岛素分泌不足或功能异常引起的代谢性疾病。其主要症 状包括高血糖、多饮、多尿、多食和消瘦等。糖尿病可β细胞受损,胰岛素分泌不足; Ⅱ型糖尿病则多因胰岛素抵抗和β细胞功能减退引起。
在糖尿病研究中,动物模型的应用非常重要。小鼠作为模式生物,具有繁殖 速度快、品系纯度高、基因操作方便等优点,因此被广泛应用于糖尿病研究。建 立糖尿病小鼠模型的目的是为了模拟人类糖尿病的症状和特征,以便于研究者们 深入探讨糖尿病的发病机制、病理生理变化以及治疗方法等。

SD大鼠1型糖尿病动物模型的建立

SD大鼠1型糖尿病动物模型的建立

・218・・实验研究・SD大鼠1型糖尿病动物模型的建立唐山钢铁集团有限责任公司医院(063020)常利民上海交通大学医学院附属第九人民医院蓑蓑言妻姜主妻萎【摘要】目的探讨制作理想糖尿病动物模型的方法。

方法采用空腹腹腔一次性注射65mg/kg链脲佐菌素的方法,建立sD大鼠1型糖尿病模型。

结果造模1周后测血糖均高于16.7mn帕I/L。

持续观察8周,血糖值始终在建模初期高血糖水平上波动,未见到复转,并出现典型的“三多一少”症状,胰腺符合糖尿病成模动物胰腺病理变化。

结论采用空腹腹腔一次性注射65mg/kg链脲佐菌素的方法复制出1型糖尿病模型,具有造模方法简便、用药量小、药物毒性较低、胰岛B细胞损害特异性高等优点,可应用于糖尿病及其并发症研究的各个领域。

【关键词】糖尿病,1型;模型,动物;链脲佐菌素Establishmentoftype1diabetesratmodelinducedbystrep蝴a翻NGLi-min’,DONrG胁一sheng,X【,Hua,WANGL“一∥携g,DAICAuan-chang,ZHULian,WANGYi-min.%,培妣纰IronandS纰fCo.,Ltd.Host,/一to./,Hebe/063020,China【Al麓traet】ObjectiveToestablish嬲idealtype1diabetesmeUitusSDratsn如del.Methods∞ratsw虢in—joetedintraperitoneallywith65mg/kgstreptozotoeinoncetoinducehyperglycemia.ResultsOneweekafterinducedbystrepto∞tocin(STZ),thebloodglucoseoftheexperimentalgroupwerehigherthan16.7rranol/L.Duringthe8weeksobservation,thebloodgltlgx】seoftheexperimentalgroupwerestablyhigherthan16.7mn的I/L.Morphologicalinvestigation011parlclP.ssshowedthereductionofislets,lossofpcellsintheexperimentalgroup.C0ndllsi帅m既一perimentprovidedanidealtype1diabetesmeUitusSDratsnxxJd,【KeyWOI'凼】Diabetesmellitus,typel;Modd,animal;蛳t0跹舡)cin随着人们生活水平的提高,糖尿病的发病率呈上升趋势,糖尿病的相关研究越来越受到人们的重视,而建立相应的动物模型是研究糖尿病的重要手段之一。

糖尿病的患病风险预测模型构建

糖尿病的患病风险预测模型构建

糖尿病的患病风险预测模型构建糖尿病是一种慢性代谢性疾病,全球范围内的病患数量不断增加。

为了更早地识别糖尿病患者,并采取相应的预防和管理措施,构建一个准确的患病风险预测模型变得至关重要。

预测模型构建是根据现有的数据和特定算法,通过对已知患者数据的分析,预测患者的风险程度。

在构建糖尿病的患病风险预测模型时,我们可以采用以下步骤:1. 数据收集和准备首先,我们需要收集与糖尿病相关的数据,例如年龄、性别、血压、血糖水平、胰岛素水平、家族病史等。

这些数据可以通过医疗机构的电子健康记录、问卷调查等途径获取。

然后,对数据进行清洗和预处理,包括缺失值处理、异常值处理和数据转换等。

2. 特征选择在构建预测模型之前,我们需要对数据集进行特征选择,选择对糖尿病患病风险具有显著影响的特征。

常用的特征选择方法包括相关性分析、方差分析、信息增益和递归特征消除等。

3. 模型选择在选择预测模型时,我们可以采用多种机器学习算法,如逻辑回归、决策树、随机森林、支持向量机等。

根据不同的特征和数据集大小,选择适合的模型以获得更准确的预测结果。

4. 模型训练和评估在训练模型之前,我们将数据集拆分为训练集和测试集。

然后,使用训练集对模型进行训练,并使用测试集评估模型的性能。

评估指标可以包括准确率、召回率、F1分数等。

5. 模型优化和调参在初步评估模型性能后,我们可以进一步优化模型,以提高其预测准确性。

常见的优化方法包括特征工程、参数调整、模型集成等。

6. 模型部署和应用在模型训练和优化之后,我们可以将预测模型部署到实际应用中。

这可以是一个基于Web的应用,医疗机构的信息系统或移动应用。

通过将模型应用于实际场景,我们可以帮助医生和患者更早地发现潜在的糖尿病风险,采取相应的预防和管理措施。

需要注意的是,糖尿病的患病风险预测模型构建是一个复杂的过程,需要综合考虑多个因素。

此外,预测模型只能提供预测结果,而不能用于诊断或替代医生的判断。

因此,在使用预测模型的结果时,仍然需要专业医生的参考和判断,以确保最佳的临床决策。

糖尿病患者评估模型的构建和应用

糖尿病患者评估模型的构建和应用

糖尿病患者评估模型的构建和应用糖尿病是一种常见且严重的慢性疾病,全球范围内都存在广泛的糖尿病患者。

为了有效管理糖尿病,评估患者的疾病风险和预测病情发展变得非常重要。

因此,构建一个准确且可靠的糖尿病患者评估模型对于临床医生和糖尿病患者都具有重要意义。

一、糖尿病患者评估模型的构建1. 数据收集:构建评估模型的第一步是收集相关数据。

医疗机构和糖尿病患者健康档案中的临床指标数据非常有价值。

这些数据可能包括病人的年龄、性别、血糖水平、血压、血脂水平、家族史等。

此外,从生物传感器和可穿戴设备等技术中收集的实时生理数据也可以用于评估。

2. 特征选择:在数据收集后,需要确定最有关联的特征以建立评估模型。

常用的特征选择方法包括相关性分析、卡方检验、信息增益和回归模型等。

选择的特征应具备与糖尿病相关性高且具有代表性的特点。

3. 模型建立:根据特征选择的结果,可以使用不同的机器学习算法构建评估模型。

常见的算法包括决策树、支持向量机、逻辑回归、随机森林等。

这些算法可以根据输入的训练数据进行学习和训练,从而预测糖尿病患者的疾病风险和发展趋势。

4. 模型优化与验证:建立评估模型后,需要对模型进行优化并验证其性能。

可以使用交叉验证、ROC曲线、精确度、召回率、F1分数等指标来评估模型的准确性和鲁棒性。

如果模型表现不佳,可以通过调整参数、增加更多的特征、使用集成学习等方法来提高模型的预测能力。

二、糖尿病患者评估模型的应用1. 风险评估:通过构建评估模型可以快速、准确地评估糖尿病患者的风险等级。

医生可以根据这些评估结果制定个性化的治疗方案,提供针对性的建议,从而更好地管理患者的糖尿病。

2. 疾病预测:评估模型的应用还可以用于预测糖尿病患者的病情发展。

通过监测和分析患者的生理数据,模型可以预测出病情的发展趋势,并及时采取措施,以防止病情进一步恶化。

3. 健康管理:评估模型不仅可以在临床医学中应用,还可以被集成到智能健康管理系统中。

基于评分系统的糖尿病患病风险模型的构建方法

基于评分系统的糖尿病患病风险模型的构建方法

基于评分系统的糖尿病患病风险模型的构建方法概述:糖尿病是一种常见的代谢性疾病,对患者的健康和生活质量会造成严重影响。

为了提前发现糖尿病的风险,提高健康意识和预防意识,构建一个基于评分系统的糖尿病患病风险模型非常重要。

本文将介绍构建该模型的方法。

1.数据收集与预处理:首先,需要收集相关的糖尿病患病风险因素的数据,包括性别、年龄、体重指数(BMI)、家族病史、血压、血糖水平、血脂水平等指标。

这些数据可以通过问卷调查、体检结果和医疗记录等方式获得。

然后,需要对数据进行预处理。

这包括数据清洗、处理缺失值、异常值和离群值等,以保证数据的质量和准确性。

2.特征选择与特征工程:根据糖尿病患病的相关研究和专家经验,选择潜在的糖尿病患病风险因素进行特征选择。

特征选择方法可以包括相关系数分析、假设检验、回归模型等。

选择保留相关性高、与糖尿病患病风险密切相关的特征。

然后,进行特征工程,包括特征标准化、数值转换、特征组合等。

这些操作可以改善算法的性能。

3.构建评分系统:评分系统是糖尿病风险模型的核心部分。

可以结合机器学习算法和统计方法进行评分系统建模。

首先,可以使用分类算法如逻辑回归、随机森林、支持向量机等建立分类模型,以预测糖尿病患病的概率。

这些算法可以通过交叉验证、网格等方法找到最佳模型参数,提高模型性能。

然后,根据分类模型的结果,可以将糖尿病风险分为高、中、低三个等级,并为每个等级分配相应的评分。

评分的分配可以基于疾病患病风险的临床经验和指导意见进行。

最后,根据每个特征的权重和相应的评分,可计算患者的总评分。

总评分越高,表示患病风险越大。

4.模型验证与应用:为了验证糖尿病患病风险模型的准确性和可靠性,可以使用验证集进行模型验证。

可以计算模型的准确率、精确率、召回率、F1分数等指标来评估模型的性能。

一旦模型验证通过,该模型就可以应用于糖尿病的风险评估和预测。

患者可以通过输入个人特征数据来得到自己的糖尿病风险评分,并根据评分采取相应的预防措施和治疗方案。

关于糖尿病小鼠模型创建的研究进展

关于糖尿病小鼠模型创建的研究进展

关于糖尿病小鼠模型创建的研究进展概述糖尿病是一种全球性的慢性代谢性疾病,严重影响患者的生活质量。

为了更好地理解糖尿病的发病机制、寻找新的治疗方法,研究人员常常利用小鼠模型来模拟糖尿病的发生和发展过程。

本文将介绍糖尿病小鼠模型的创建方法以及一些研究进展。

糖尿病小鼠模型的创建方法1.化学诱导型化学诱导型糖尿病小鼠模型是通过给小鼠注射化学物质来诱导糖尿病。

最常用的诱导剂是链脲佐菌素(streptozotocin,STZ)。

STZ能够选择性破坏胰岛的β细胞,导致胰岛素分泌减少,进而引发糖尿病。

2.遗传型遗传型糖尿病小鼠模型是通过基因突变来模拟人类糖尿病的遗传特征。

目前广泛使用的遗传型小鼠模型有db/db小鼠和db/db小鼠。

这些小鼠分别是由基因突变引起的胰岛素受体和胰岛素基因缺陷而导致的糖尿病。

3.高脂饮食诱发型高脂饮食诱发型糖尿病小鼠模型是通过给小鼠喂养高脂饮食来诱发糖尿病。

高脂饮食会导致小鼠体内脂肪堆积,并引发胰岛素抵抗。

这种模型更加接近人类糖尿病的发生原因,并能够模拟肥胖型糖尿病的特征。

研究进展1.病理机制的研究借助糖尿病小鼠模型,研究人员能够深入研究糖尿病的发病机制。

通过观察小鼠胰岛素分泌、胰岛功能、胰岛素受体表达等方面的变化,揭示了糖尿病的病理过程。

同时,利用小鼠模型也能研究相关疾病如心血管病、神经病变等在糖尿病中的发展过程,为疾病的治疗提供了新的思路。

2.新药物的研发糖尿病小鼠模型也被广泛应用于新药物的研发过程。

通过观察小鼠模型中新药物对胰岛素分泌、胰岛功能的影响,研究人员能够评估药物的疗效和安全性。

这些实验为新药物的临床应用提供了重要依据,并推动了糖尿病治疗领域的进步。

3.基因治疗的研究利用糖尿病小鼠模型,研究人员还探索了基因治疗在糖尿病治疗中的应用潜力。

通过基因敲除、基因转座、基因表达调控等方法,研究人员成功地改变了小鼠胰岛素的表达,从而恢复了胰岛素的正常分泌功能。

这些研究为糖尿病基因治疗的应用提供了重要的实验依据。

STZ糖尿病模型(来自丁香园)

STZ糖尿病模型(来自丁香园)

造模方法(1)链脲佐菌素(Streptozotocin)诱导大鼠糖尿病模型方法将大鼠禁食12h,按60mg/kg体重腹腔注射STZ,每日1次,连续2次,成功制备Ⅰ型糖尿病大鼠模型,并且该模型具有高血糖、体重减轻、多饮多食多尿的特点,与临床Ⅰ型糖尿病吻合;但在此实验中,若造模组只腹腔注射STZ一次,并给予高热量饲料饲养12周,则可制备Ⅱ型糖尿病动物模型,且按该法制备出的模型具有超重、糖耐量减低、血脂升高、血清胰岛素升高及胰岛素受体结合力降低伴胰岛素抵抗的特点,类似于Ⅱ型糖尿病病人的临床特征。

Ⅰ型糖尿病与Ⅱ型糖尿病动物模型的制备可能与STZ注射的剂量有关系:大剂量(常为120mg/kg)注射时,由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏,可造成Ⅰ型糖尿病模型;而注射较少量STZ时,由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能,造成外周组织对胰岛素不敏感,同时给予高热量饲料喂养,两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类Ⅱ型糖尿病的动物模型。

/bbs/actions/archive/post/5636508_0.html(2)你还是采用腹腔的比较好!按65或是70给都可以。

最好是给STZ后7天开始测定血糖分组为好,这样血糖已经稳定了!我给我的一个朋友用ALLOXAN,尾静脉。

大鼠,50mg/kg,全都死亡了!给STZ前有的说禁食,有的说不用,但还是禁的好些,给STZ后,也不要立即给予食物,1小时后再给。

还有腹腔注射的手法要正确!!给STZ要快,最好在冰水中冷却溶液!/bbs/actions/archive/post/672237_0.html(3)链脲霉素(STZ)诱导的高血糖动物模型STZ水溶液不稳定,对小鼠的生物半衰期仅有5min左右,需要快速静脉注射。

造型剂量犬50mg/kg,静注,可引起糖尿病,动物死亡率较高;如15mg/kg,连续3天也可。

大鼠60-80mg/kg,iv或ip,小鼠100-200mg/kg,iv或ip。

实验三大鼠糖尿病模型的复制

实验三大鼠糖尿病模型的复制

3 载玻片和盖玻片的处理: (1)清洗:新载玻片上有油污,必须经过清洁液浸泡 12~24h,流水充分漂洗后用蒸馏水清洗5遍以上,浸泡 在95%酒精内2h,用绸布擦干或用红外线烤箱烤干均可, 贮放于玻片盒内备用。盖玻片很薄,以上处理程序必须 缩短,清洁液浸泡只需2h,流水冲洗注意勿损伤玻片等。 (2)载玻片上涂粘附剂:多聚赖氨酸液:多聚赖氨酸 0.1g,加蒸馏水10ml,混合后即可涂片。
冰冻切片前处理
1取材:组织标本主要取之于活组织检查标本、手术切除标 本、动物模型标本以及尸体解剖标本等。前三者均为新鲜组 织,后者是机体死亡2h以上的组织,可能有不同程度的自溶, 其抗原可能有变性消失,严重弥散现象,因此,尸检组织应 尽快固定处理, 2固定:为了更好的保持细胞和组织原有的形态结构,防止 组织自溶,有必要对细胞和组织进行固定。 固定液:4%多聚甲醛磷酸缓冲液pH7.4(多聚甲醛 40g,0.1mol/L PBS液pH7.4500ml,两者混合加热至60℃, 搅拌并滴加1n NaOH至清晰为止,冷却后加PBS液至总量 1000ml)。 方法:浸入法,将组织浸泡在固定液中
操作方法:
Ⅰ型糖尿病造模方法:
1. 链脲佐菌素(stz)建模,造模前的喂养 Ⅰ型糖尿病模型成模比较快,通常大鼠在普通饲 料适应性喂养2周后即可开始造模。禁食12小时以 上(一般过夜禁食,不禁水)。禁食的时间越长, STZ对胰岛β细胞的破坏力越明显,即药效越高。 所以相对禁食时间延长,可以降低STZ的用量。 2. 测正常大鼠血糖,给药,链脲菌素溶于枸缘酸缓 冲液或柠檬酸缓冲液(pH值为4.0-4.5)中, 70~65mg/kg给大鼠腹腔注射;35、45、55、 65mg/kg(0.35、0.45、0.55、0.65ml/100g)。

糖尿病胃轻瘫大鼠的造模方法探讨

糖尿病胃轻瘫大鼠的造模方法探讨

糖尿病胃轻瘫大鼠的造模方法探讨糖尿病被认为是由于胰岛素的分泌不足或细胞对胰岛素的抵抗而引起的慢性代谢疾病。

除了影响血糖调控之外,糖尿病还可以引起多个器官系统的并发症,其中包括消化系统的胃轻瘫。

胃轻瘫是胃肌肉功能紊乱所致的一种胃功能障碍,其主要症状包括食欲不振、恶心呕吐、消化不良等。

因此,了解糖尿病胃轻瘫的发生机制以及开展相应的研究对于改善患者生活质量具有重要意义。

研究胃轻瘫的方法之一是使用实验动物模型。

模型制备是研究疾病机制的重要步骤,而糖尿病胃轻瘫的动物模型的建立就是这方面的一个典型例子。

目前常用的糖尿病胃轻瘫大鼠模型主要有三种方法:手术法、药物法和遗传法。

一、手术法:手术法是最常用的一种建立糖尿病胃轻瘫大鼠模型的方法。

该方法通过手术切除胃的一部分或者切断神经以引起胃轻瘫。

常用的手术方法包括胃体全切除术、胃幽门粘膜全切除术和胃幽门切断术。

这些手术方法都可以在大鼠体内创造出胃轻瘫的环境。

然而,由于手术创伤较大,操作复杂,而且容易引起一些副作用,这些手术方法在实际应用中存在一定的局限性。

二、药物法:药物法通过给予大鼠特定药物来诱发糖尿病胃轻瘫。

常用的药物包括阿尔多斯特隆和多巴胺受体阻滞剂等。

这些药物可以干扰神经递质的正常传递,从而导致胃轻瘫的发生。

相比手术法,药物法的操作相对简单,但需要深入了解药物的作用机制,并合理控制给药剂量,以减少药物副作用。

三、遗传法:遗传法是通过选择或者改造特定基因的大鼠来模拟糖尿病胃轻瘫。

这些特定基因可以影响血糖调控或者神经系统的功能,进而引起胃轻瘫。

例如,采用糖尿病相关基因(如db/db基因)是一种常用的遗传法。

通过改变大鼠的基因组,可以使其表现出糖尿病和胃轻瘫的特征。

这种方法具有高度可控性,并且相对容易操作,但需要对基因的作用机制有足够的了解。

总结起来,建立糖尿病胃轻瘫大鼠模型可以通过手术法、药物法和遗传法。

每种方法都有其优缺点,需要根据具体研究需求和实验条件选择合适的方法。

小鼠糖尿病模型血糖标准

小鼠糖尿病模型血糖标准

小鼠糖尿病模型血糖标准糖尿病是一种常见的代谢性疾病,严重影响人类的健康。

为了研究糖尿病的发病机制和寻找治疗方法,科学家们通常会使用动物模型来进行实验。

小鼠作为常用的实验动物之一,被广泛用于糖尿病模型的研究。

在进行这些实验时,血糖标准是一个非常重要的指导依据。

本文将介绍小鼠糖尿病模型血糖标准的相关内容。

1. 小鼠糖尿病模型的建立在实验室,糖尿病模型的建立主要采用两种方法:化学诱导法和基因敲除法。

化学诱导法通过给小鼠注射化学物质(如阿霉素、链脲佐菌素等)来诱导糖尿病。

基因敲除法则通过敲除小鼠体内与胰岛素分泌或作用相关的基因,使小鼠发展为糖尿病模型。

2. 血糖测量的重要性血糖测量是评估糖尿病模型的关键指标之一。

在实验前,科研人员需要明确小鼠的血糖水平以区分正常小鼠和糖尿病模型小鼠。

同时,在糖尿病模型建立后,血糖测量还可以用于观察模型的稳定性和糖尿病的进展情况。

3. 小鼠糖尿病模型血糖标准的制定小鼠糖尿病模型血糖标准制定的主要目的是为科研人员提供合理的血糖范围,以便评估模型的有效性和稳定性。

血糖标准的制定要根据实验需求、模型类型和实验组设计来确定。

3.1 胰岛素敏感性糖尿病模型的血糖标准胰岛素敏感性糖尿病模型是指小鼠体内胰岛素受体功能异常导致的糖尿病。

这种模型下,小鼠的血糖水平通常偏高,血糖标准一般设置在7.8-11.1 mmol/L之间。

3.2 胰岛素抵抗型糖尿病模型的血糖标准胰岛素抵抗型糖尿病模型是指小鼠体内胰岛素抵抗性增加导致的糖尿病。

在这种模型下,小鼠的血糖水平会进一步升高。

血糖标准一般可以设置在11.1-15 mmol/L之间。

3.3 血糖标准的确定方法确定血糖标准的方法有多种,一般包括测量空腹血糖、餐后血糖和糖耐量试验等。

科研人员可以根据实验需要选择适合的方法。

4. 血糖监测技术的选择为了准确测量小鼠的血糖水平,科研人员需要选择适合的血糖监测技术。

常用的方法包括血液化学分析仪、连续血糖监测仪和葡萄糖氧化酶法试纸等。

糖尿病评估指标与风险预测模型的比较研究

糖尿病评估指标与风险预测模型的比较研究

糖尿病评估指标与风险预测模型的比较研究糖尿病是一种慢性代谢性疾病,不仅对个体健康产生严重影响,还给医疗资源和社会经济造成了巨大负担。

糖尿病的早期诊断与有效的风险评估对于预防和治疗该疾病至关重要。

目前,研究人员提出了许多不同的糖尿病评估指标和风险预测模型,本文对这些指标和模型进行比较研究。

一、糖尿病评估指标:1. 空腹血糖 (FPG):这是最常用的糖尿病评估指标之一。

通过测量患者空腹状态下的血糖水平来判断是否存在糖尿病。

2. 糖化血红蛋白( HbA1c):这是另一种常用的糖尿病评估指标。

它反映了过去2-3个月内的血糖控制情况。

3. 口服葡萄糖耐量试验(OGTT):这种测试需要患者饮用含75克葡萄糖的溶液,然后在2小时后测量血糖水平。

OGTT可以检测出糖尿病或糖耐量减低的风险。

二、糖尿病风险预测模型:1. 中国糖尿病风险评估(BRS):BRS模型根据年龄、性别、家庭糖尿病史等因素来预测个体未来5年糖尿病的患病风险。

2. Cox比例风险模型:这种模型基于风险因素的多变量分析,将患者的个人特征和临床指标进行组合,预测糖尿病发生的风险。

3. 加州糖尿病预测模型:这个模型是由卡尔加里大学研发的,使用了多个指标,包括年龄、性别、体重指数、家庭糖尿病史和一些生化指标等,来评估患者未来10年内患糖尿病的风险。

三、比较研究:1. 效度比较:根据相关研究发现,HbA1c和OGTT在糖尿病诊断的敏感性和特异性方面优于空腹血糖。

然而,不同指标的效度受到个体差异和其他因素的影响,因此,在实际应用中需要综合考虑。

2. 风险预测模型比较:针对不同种群和不同研究背景,各种糖尿病风险评估模型的效果并不一致。

尽管BRS模型在中国地区的准确性较高,但它的推广应用仍需进一步研究验证。

3. 指标与模型的综合应用:研究表明,将评估指标与风险预测模型相结合,可以提高糖尿病的早期诊断和风险评估的精准性。

例如,在筛查高危人群时,可以使用HbA1c或OGTT进行初步评估,然后利用风险预测模型进行综合判断。

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[摘要] 目的 探讨糖尿病动物模型的建立方法,并对其进行比较。方法 用四氧嘧啶
和链佐霉素分别单独和联合对小鼠腹腔注射,建立糖尿病动物模型,造模前小鼠高脂高糖喂
养。小鼠分 3 组: 一组单独用四氧嘧啶腹腔注射 1 次; 二组用链佐霉素单独腹腔注射,小剂
量多次; 三组用链佐霉素单独小剂量多次腹腔注射后,再用四氧嘧啶半量腹腔注射 1 次; 每组
统计。
糖( 5. 49 ± 2. 85) mmol / L,注射链佐霉素后 ( 10. 14 ± 5. 53 )
实验结果表明,造模成功率最高的是三组,三组是使用链
mmol / L,注射四氧嘧啶后( 13. 89 ± 4. 41) mmoL / L。注射链佐 佐霉素后加四氧嘧啶,达到 41. 7% ; 二组是用链佐霉素,成功
统计数 /只
15 67 12 32 12 32
造模后血糖 / ( mmol / L) 5. 84 ± 2. 45
11. 15 ± 4. 33① 5. 99 ± 0. 82
10. 82 ± 3. 22① 5. 52 ± 1. 05
13. 89 ± 4. 41①
成功数 /只
- 18 - 9 - 20
成功率 /%
现代中西医结合杂志 Modern Journal of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine 2012 May,21( 15)
·1617·
实验研究
糖尿病模型建立的方法比较
何 胜,陆晓峰,李文文,石丽娟,陶吉英,黄凌凌,张树球 ( 右江民族医学院,广西 百色 533000)
Abstract: Objective It is to approach and compare the methods of establishing animal model of diabetes mellitus. Meth-
ods The animal model of diabetes mellitus were established with alloxan and streptozotocin separately and in combination on
He Sheng,Lu Xiaofeng,Li Wenwen,Shi Lijuan,Tao Jiying,Huang Lingling,Zhang Shuqiu
( Youjiang Medical College for Nationalities,Baise 533000,Guangxi,China)
mouse peritoneal injection,before making model mice were confronted high-fat feeding. Mice were divided into three groups:
Group A of separate with alloxan injected intraperitoneally; Group B with single intraperitoneal injection of streptozotocin,mul-
ter making model,sugar content as follows: ( 6. 17 ± 0. 49) mmol / L and ( 11. 15 ± 4. 33) mmol / L,( 6. 08 ± 0. 70) mmol / L
and ( 10. 82 ± 3. 22) mmol / L,( 5. 49 ± 2. 85) mmol / L and ( 13. 89 ± 4. 41) mmol / L,there were significant differences in
啶造模成功率较低,单独使用链佐霉素成功率居中,而总胆固醇偏高。
[关键词] 链佐霉素; 四氧嘧啶; 糖尿病; 血糖
[中图分类号] R - 32
[文献标识码] A
[文章编号] 1008 - 8849( 2012) 15 - 1617 - 03
Comparison on established method of diabetic mice model
三组小鼠先用 5% 猪油、5% 白砂糖加水拌标准饲料,做成饭 体质量剂量( 半量) 计算,一次注射完。测定造模前和造模后
团样喂养小鼠 1 个月。一组仅用标准饲料喂养。
48 h( 2 d) 血糖。
1. 3 动物实验
1. 4 测定方法 实验结束,从小鼠眼球取血,分离血清,测定
1. 3. 1 一组 小鼠 110 只,随机分 15 只为正常对照组; 95 只 TC 和 TG。TC 用 COD - CE - PAP 法测定; TG 用 GPO - PAP
霉素后血糖明显高于造模前,但又明显低于再注射四氧嘧啶 率居 中 ( 25. 0% ) ; 一 组 单 独 使 用 四 氧 嘧 啶 成 功 率 最 小
后( P < 0. 01) 。 2. 3 血清 TC、TG 含量测定结果 各组间 TG 模型组与正常 组比较无明显差异( P 均 > 0. 05) ; 二组造模组 TC 与正常组 比较有显著性差异( P < 0. 05) ,而其余 2 组无显著性差异( P 均 > 0. 05) 。见表 2。
2. 85) mmol / L,( 13. 89 ± 4. 41) mmol / L,各组造模前后比较均有显著性差异( P 均 < 0. 01) ; 总
胆固醇( TC) 除二组显著升高( P < 0. 05) ,其他两组无显著性差异( P 均 > 0. 05) 。一至三组造
模成功率分别为 21. 2% ,25. 0% ,41. 7% 。结论 链佐霉素联合使用四氧嘧啶可提高的造模成功率,单独使用四氧嘧
·1618·
现代中西医结合杂志 Modern Journal of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine 2012 May,21( 15)
测试盒,购自四川迈克试剂公司。猪油、蔗糖( 白砂糖) ,购自 模型组,造模前先用高脂高糖喂养 1 个月。造模用链佐霉素,
表 1 各组造模前、造模后血糖含量及成功率比较
组别
n
正常组
15
一组
模型组
95

正常组
12
三组
模型组
48
造模前血糖 / ( mmol / L) 5. 83 ± 0. 72 6. 17 ± 0. 49
6. 00 ± 0. 69 6. 08 ± 0. 70
5. 48 ± 1. 03 5. 49 ± 2. 85
tiple low dose; Group C with multiple low dose streptozotocin alone after intraperitoneal injection of alloxan,and half a time of
intraperitoneal injection; each group was also provided with a normal control groups. Results Group A,B and C before and af-
为模型组。模型组用四氧嘧啶水溶液腹腔注射,按 220 mg / kg 法测定。血糖用邻甲苯胺微量法测定,从小鼠尾巴取全血 20
体质量剂量计算,一次注射完。测定造模前和造模后 5 d 时 μL,按文献[2]操作。具体操作按试剂说明书。
小鼠血糖。
1. 5 统计学处理 数据用 SSTP 2. 00 软件统计分析,计量资
[作者简介] 何胜( 1962—) ,男,药理学讲师,从事药理学教学 与中草药作用机制研究。
[通信作者] 张 树球,Tel: 13877689068,E - mail: sgzhang224 @ 163. com
的建立方法有多种[1],其中通过化学药物如四氧嘧啶和链佐 霉素特异地破坏胰岛 B 细胞应用较多,国内目前趋向于使用 链佐霉素。从以往笔者的实验得出结论是,单独使用四氧嘧 啶动物模型容易 死 亡[4],链 佐 霉 素 动 物 模 型 血 糖 偏 低[5],而 且成功率低,与文献报道不同。为此,笔者用四氧嘧啶和链佐 霉素单独和联合使用建立模型,同时造模前高脂高糖喂养 1 个月,测定血糖血脂,进行比较分析,现将实验结果报道如下。 1 实验资料 1. 1 试剂与材料 链佐霉素,Sigma 公司产品,分析纯; 硫脲、 硼酸、邻甲苯胺、冰醋酸、柠檬酸、柠檬酸钠、葡萄糖,均为国产 分析纯。总胆固醇( TC) 测试盒、三酰甘油( TG) 测试盒、尿素
Key words: streptozotocin; alloxan; diabetes; blood sugar
随着全球人类结构老龄化及肥胖患者的增多,糖尿病的 发病率呈明显升高趋势,糖尿病作为一种慢性糖代谢障碍的 疾病,常可发生一些严重并发症,如糖尿病肌病、糖尿病肾病、 糖尿病眼病、心 血 管 系 统 病 变 等,严 重 危 害 人 类 的 生 命 与 健 康。目前,病因还未明确,发病机制复杂,尚无根治药物。对 糖尿病的研究,动物模型的建立成功与否是关键。动物模型
还设一个正常组作对照。结果 一组、二组、三组造模前后血糖水平分别为: ( 6. 17 ± 0. 49)
mmol / L,( 11. 15 ± 4. 33) mmol / L; ( 6. 08 ± 0. 70) mmol / L,( 10. 82 ± 3. 22) mmol / L; ( 5. 49 ±
缓冲液( pH 4. 0) 溶解,给小鼠做腹腔注射,每天 1 次,连续 4 显示,造模后造模组血糖含量明显升高,与正常组比较均有
d。测定造模前和造模后 48 h( 2 d) 血糖。
显著性差异( P 均 < 0. 01) ,用链佐霉素成功率较高,见表 1。
1. 3. 3 三组 小鼠 60 只,其中 12 只为正常对照组,48 只为 2 . 2 三组联合造模前、中、后血糖含量测定结果 造模前血
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