基因工程实验
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加入50ulTE(含50ug/mgRNaseA)溶解DNA沉淀。
放置金属浴65℃加热10min或37℃放置数小时 使RNaseA发挥作用,并且DNA酶在此条件下会失活
-20℃保存备用
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 质粒DNA的进一步纯化
加入TE使DNA溶液为200ul,加入等体积的酚/氯仿, 充分振荡:会分三层
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
当加入中性缓冲液调和时,变性的质粒 DNA又恢复到原来的构型,而染色体DNA 不能复性,它们之间交联形成不溶性网状 结构,并与细胞碎片、蛋白质、SDS等结 合沉淀下来。
通过离心沉淀,细胞碎片、染色体DNA 及大部分蛋白质等可被除去,而质粒DNA 及小分子量的RNA则留在上清液中。混杂 的RNA可用RNaseA消除。再用酚/氯仿 处理,可除残留蛋白质
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
实验一:碱裂解法抽提 质粒DNA
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
一、实验目的
学习并掌握基因工程操作技术中最常 用的载体质粒DNA的提取方法。
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
二、实验原理
碱裂解法主要利用共价闭合环状质粒和线 性染色质在拓扑学上的差异。
NaOH和SDS溶液使细胞裂解,在碱性 溶液中,线性的大分子量细菌染色体DNA 氢键断裂,双螺旋结构遭破坏而发生变性, 但由于质粒DNA分子量相对较小,且呈环 状超螺旋结构,即使在高碱性pH条件下, 两条互补链也不会充分分离。
三、材料、试剂及仪器 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1 材料: (1)菌种E.coliDH 10B含质粒pSK (2)菌种E.coliDH 10B含质粒pMP3
2 试剂: LB培养基( 固体和液体);氨苄青霉素 (Amp,100mg/ml);20﹪SDS;溶液Ⅰ; 溶液Ⅱ (最好现配现用);溶液Ⅲ(-20℃预冷); 4N NaOH; 3MNaAc(PH5.2);无水乙醇; TE缓 冲液(PH8.0); RNaseA(10mg/ml); 70﹪乙 醇;饱和酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)
以用0.6倍的异丙醇代替),混匀:用于沉淀DNA,
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
12000rpm离心5min,倒掉酒精。离心几秒钟,用移液
枪尽可能除去酒精。用0.5ml 70%酒精洗DNA一次, 离心2min,倒掉酒精 70%酒精可以使DNA保持不溶解的状态,30%的水还 可以使离子洗去
离心几秒,用移液枪尽可能除去酒精,风干十分钟 此时DNA变成无色透明
12000rpm,4℃离心5min。
• 取上清。加2/3体积的酚/氯仿12000rpm,混匀。 12000rmp离心5min :用于抽提脂类,蛋白质等。 在混匀时,要盖紧盖子,用纸巾包住离心管,来回翻 转。离心后会发现溶液分三层,上层为含DNA, RNA的水相,中间为蛋白质,下层为有机相
• • 移取上清液,加2倍体积的无水乙醇(大量提取时可
4 氯仿有毒性,见光会产生有毒光气,所以要保 存于棕色瓶里,任何涉及氯仿的操作都要在 通风厨内使用。并且氯仿会溶解塑料,吸取 时把离心管靠近些
用移液枪尽可能除去酒精
用0.5ml70 %酒精洗DNA沉淀一次,离心2分钟,倒掉 酒精
离心几秒,用移液枪尽可能除去酒精,风干。
加30ulTE溶解DNA沉淀(TE不加RNase)
五、实验注意事项 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1 挑菌落应挑单菌落。 可用牙签挑取,也可用tip头挑取。市场上买 的牙签上有防腐剂,应用沸水煮过之后,烘干 用
12000rpm,离心5分钟,吸取上清液
加入等体积的氯仿, 12000rpm,离心5分钟,取上清
加入1/10体积的3MNaAc,加2倍体积的预冷的无水乙 醇,混匀。
置于-70℃冰箱约10min以上或者-20℃冰箱30min至 数个小时
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12000rpm离心15分钟(4℃),倒掉酒精,离心几秒,
用移液枪尽可能除去上清液,然后150uL溶液I悬浮菌体
用涡旋振荡器充分振荡 :溶液I最好要放冰上
加入250uL溶液II,缓慢上下翻转离心管10多下,温和混 匀,冰上静置5min :充分裂解菌体
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
• 加入180uL预冷的溶液III,上下翻转十多下,温和
混匀,冰上静置10min或者放入-20℃冰箱5min : 使染色体DNA等沉淀,而质粒DNA复性
2 细菌培养过程应注意保持细菌的通气性: (1)培养基的体积不能占培养管的体积太多 (2)培养管的体积不用盖太紧 (3)培养管倾斜培养:可增大细菌与氧气接触
面积
(4)转速为200rmp:快一点的转速有利于保 持其的通气性
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 细菌培养后可通过肉眼观察分辨是否有杂菌: 大肠杆菌的应为乳白色或淡黄色,有杂菌的 会发红
板使终浓度为Amp100µg/ml
(3)在Amp100µg/ml的琼脂培养基平板上用接种环划 线分别培养出含mp3和psk质粒的大肠杆菌的单菌落 (37℃.18-20个小时)
(4)取2支灭菌的12mL培养管,加入2.5mL液体LB培养 基和2.5μLAmp母液(1000x)
(5)用灭菌的镊子夹一个灭菌的牙签,在单菌落上沾 一下放入液体培养基中
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 仪器及设备 • 高压灭菌锅、超净工作台、恒温摇床、
台式离心机、漩涡振荡器 • 培养用试管、量筒、冰盒、微量离心管、
微量取液器、吸管头若干
四、实验步骤 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1.细菌的培养
(1)配制LB液体和琼脂培养基,并高压灭菌 (2)当培养基不烫手时把Amp加入琼脂培养基中倒平
(6)盖上盖子,将培养管倾斜插在摇床上,37℃过夜 培养( 200rpm,14-16小时,一般不超过18小时)。
Fra Baidu bibliotek 质粒DNA的提取
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取1.5 ml菌液入1.5ml的离心管中
5000rpm、离心2min,弃上清,收集菌体(如果想提取 多一点DNA,再吸取1.5ml菌液到同一离心管中,离心, 弃上清):离心时离心管方向要固定,柄朝外,方便看 是否离下来
放置金属浴65℃加热10min或37℃放置数小时 使RNaseA发挥作用,并且DNA酶在此条件下会失活
-20℃保存备用
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 质粒DNA的进一步纯化
加入TE使DNA溶液为200ul,加入等体积的酚/氯仿, 充分振荡:会分三层
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
当加入中性缓冲液调和时,变性的质粒 DNA又恢复到原来的构型,而染色体DNA 不能复性,它们之间交联形成不溶性网状 结构,并与细胞碎片、蛋白质、SDS等结 合沉淀下来。
通过离心沉淀,细胞碎片、染色体DNA 及大部分蛋白质等可被除去,而质粒DNA 及小分子量的RNA则留在上清液中。混杂 的RNA可用RNaseA消除。再用酚/氯仿 处理,可除残留蛋白质
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
实验一:碱裂解法抽提 质粒DNA
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
一、实验目的
学习并掌握基因工程操作技术中最常 用的载体质粒DNA的提取方法。
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
二、实验原理
碱裂解法主要利用共价闭合环状质粒和线 性染色质在拓扑学上的差异。
NaOH和SDS溶液使细胞裂解,在碱性 溶液中,线性的大分子量细菌染色体DNA 氢键断裂,双螺旋结构遭破坏而发生变性, 但由于质粒DNA分子量相对较小,且呈环 状超螺旋结构,即使在高碱性pH条件下, 两条互补链也不会充分分离。
三、材料、试剂及仪器 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1 材料: (1)菌种E.coliDH 10B含质粒pSK (2)菌种E.coliDH 10B含质粒pMP3
2 试剂: LB培养基( 固体和液体);氨苄青霉素 (Amp,100mg/ml);20﹪SDS;溶液Ⅰ; 溶液Ⅱ (最好现配现用);溶液Ⅲ(-20℃预冷); 4N NaOH; 3MNaAc(PH5.2);无水乙醇; TE缓 冲液(PH8.0); RNaseA(10mg/ml); 70﹪乙 醇;饱和酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)
以用0.6倍的异丙醇代替),混匀:用于沉淀DNA,
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
12000rpm离心5min,倒掉酒精。离心几秒钟,用移液
枪尽可能除去酒精。用0.5ml 70%酒精洗DNA一次, 离心2min,倒掉酒精 70%酒精可以使DNA保持不溶解的状态,30%的水还 可以使离子洗去
离心几秒,用移液枪尽可能除去酒精,风干十分钟 此时DNA变成无色透明
12000rpm,4℃离心5min。
• 取上清。加2/3体积的酚/氯仿12000rpm,混匀。 12000rmp离心5min :用于抽提脂类,蛋白质等。 在混匀时,要盖紧盖子,用纸巾包住离心管,来回翻 转。离心后会发现溶液分三层,上层为含DNA, RNA的水相,中间为蛋白质,下层为有机相
• • 移取上清液,加2倍体积的无水乙醇(大量提取时可
4 氯仿有毒性,见光会产生有毒光气,所以要保 存于棕色瓶里,任何涉及氯仿的操作都要在 通风厨内使用。并且氯仿会溶解塑料,吸取 时把离心管靠近些
用移液枪尽可能除去酒精
用0.5ml70 %酒精洗DNA沉淀一次,离心2分钟,倒掉 酒精
离心几秒,用移液枪尽可能除去酒精,风干。
加30ulTE溶解DNA沉淀(TE不加RNase)
五、实验注意事项 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1 挑菌落应挑单菌落。 可用牙签挑取,也可用tip头挑取。市场上买 的牙签上有防腐剂,应用沸水煮过之后,烘干 用
12000rpm,离心5分钟,吸取上清液
加入等体积的氯仿, 12000rpm,离心5分钟,取上清
加入1/10体积的3MNaAc,加2倍体积的预冷的无水乙 醇,混匀。
置于-70℃冰箱约10min以上或者-20℃冰箱30min至 数个小时
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
12000rpm离心15分钟(4℃),倒掉酒精,离心几秒,
用移液枪尽可能除去上清液,然后150uL溶液I悬浮菌体
用涡旋振荡器充分振荡 :溶液I最好要放冰上
加入250uL溶液II,缓慢上下翻转离心管10多下,温和混 匀,冰上静置5min :充分裂解菌体
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
• 加入180uL预冷的溶液III,上下翻转十多下,温和
混匀,冰上静置10min或者放入-20℃冰箱5min : 使染色体DNA等沉淀,而质粒DNA复性
2 细菌培养过程应注意保持细菌的通气性: (1)培养基的体积不能占培养管的体积太多 (2)培养管的体积不用盖太紧 (3)培养管倾斜培养:可增大细菌与氧气接触
面积
(4)转速为200rmp:快一点的转速有利于保 持其的通气性
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 细菌培养后可通过肉眼观察分辨是否有杂菌: 大肠杆菌的应为乳白色或淡黄色,有杂菌的 会发红
板使终浓度为Amp100µg/ml
(3)在Amp100µg/ml的琼脂培养基平板上用接种环划 线分别培养出含mp3和psk质粒的大肠杆菌的单菌落 (37℃.18-20个小时)
(4)取2支灭菌的12mL培养管,加入2.5mL液体LB培养 基和2.5μLAmp母液(1000x)
(5)用灭菌的镊子夹一个灭菌的牙签,在单菌落上沾 一下放入液体培养基中
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
3 仪器及设备 • 高压灭菌锅、超净工作台、恒温摇床、
台式离心机、漩涡振荡器 • 培养用试管、量筒、冰盒、微量离心管、
微量取液器、吸管头若干
四、实验步骤 资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
1.细菌的培养
(1)配制LB液体和琼脂培养基,并高压灭菌 (2)当培养基不烫手时把Amp加入琼脂培养基中倒平
(6)盖上盖子,将培养管倾斜插在摇床上,37℃过夜 培养( 200rpm,14-16小时,一般不超过18小时)。
Fra Baidu bibliotek 质粒DNA的提取
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
取1.5 ml菌液入1.5ml的离心管中
5000rpm、离心2min,弃上清,收集菌体(如果想提取 多一点DNA,再吸取1.5ml菌液到同一离心管中,离心, 弃上清):离心时离心管方向要固定,柄朝外,方便看 是否离下来