细胞计数方法细胞计数板法

细胞计数板法细胞计数方法------

实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。具体操作：

将计数板及盖片擦拭干净，并将盖片盖在计数板。1.

将细胞悬液吸出少许，滴加在盖片边缘，使悬液充满盖片和计数板之间，静2. ，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。置3min计算板四大格细胞总数，压线细胞只计左侧和上方的。然后按公式计算：3.

/ml10个细胞数/mL=四大格细胞总数/4×4：注当细胞很多时，可在四个格中选一定数目较平均的小格，由于每大格中有(mm个小格，然后计左侧和上方的细胞数，求出每小格的细胞数，取平均值，16个/ml)×16×10×16即每个格的平均值。所以，细胞密度=m4说明：个大格的细胞数。4，因为计数了4公式中除以的体积为：10因为计数板中每一个大格公式中乘以41ml=1000ul=1000mm 而0.1mm（高）=0.1mm （宽）×1.0mm（长）×1.0mm33

注意：镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团，应按单个细胞计算，若细胞（以上，说明分散不好，需重新制备细胞悬液。）10%团

================================================细胞计数板的使用

一、血球计数板-基本构造

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中间的载玻片上有四个槽构成三个平台。血球计数板是一块特制的厚型载玻片，平台较宽，其中间又被一短横槽分隔成两半，每个半边上面各刻有一小方格网，计数区的刻称为计数区。每个方格网共分九个大格，中央的一大格作为计数用，

个大方格（大方格用三线隔开），而每个大方度有两种：一种是计数区分为16（大方格之间用双另一种是一个计数区分成25个大方格格又分成25个小方格；个小方格。但是不管计数区是哪一种构造，线分开），而每个大方格又分成16400个小方格组成。它们都有一个共同特点，即计数区都由

22。1/400mm1mm计数区边长为，则计数区的面积为1mm，每个小方格的面积为3，每盖上盖玻片后，计数区的高度为0.1mm，所以每个计数区的体积为0.1mm3 1/4000mm。个小方格的体积为再换算成每毫升先要测定每个小方格中微生物的

数量，使用细胞计数板计数时，菌液（或每克样品）中微生物细胞的数量。word 编辑版．

二、细胞计数板-使用方法

1．视待测菌悬液浓度，加无菌水适当稀释（斜面一般稀释100倍），以每小格的

菌数可数为度。

2．取洁净的细胞计数板一块，在计数区上盖上一块盖玻片。

3．将菌悬液摇匀，用滴管吸取少许，从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片

的下边缘摘入一小滴（不宜过多），让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区，勿使气泡产生，并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上（不要使计数区两边平台沾上菌悬液，以免加盖盖玻片后，造成

计数区深度的升高），然后加盖盖玻片（勿使产生气泡）。

4．静置片刻，使细胞沉降到计数板上，不再随液体漂移。将细胞计数板放置于

显微镜的载物台上夹稳，先在低倍镜下找到计数区后，再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近，观察时应减弱光照的强度。

5．计数时若计数区是由16个大方格组成，按对角线方位，数左上、左下、右上、右下的4个大方格（即100小格）的菌数。如果是25个大方格组成的计数区，除数上述四个大方格外，还需数中央1个大方格的菌数（即80个小格）。为了保

证计数的准确性，避免重复计数和漏记，在计数时，对沉降在格线上的细胞的统计应有统一的规定。如菌体位于大方格的双线上，计数时则数上线不数下线，数左线不数右线，以减少误差。即位于本格上线和左线上的细胞计入本格，本格的

下线和右线上的细胞按规定计入相应的格中。见下图：即本格中计数细胞为3

个。

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．对于出芽的酵母菌，芽体达到母细胞大小一半时，即可作为两个菌体计算。6次（每次数值不应相差过大，否则应重新操作），按公式每个样品重复计数2-3g）菌悬液所含细胞数量。计算出每mL（．测数完毕，取下盖玻片，用水将细胞计数板冲洗干净，切勿用硬物洗刷或抹7擦，以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干，放入盒内保存。计数公式三、细胞计数板-小格内细胞个数16格×25格的细胞计数板计算公式：细胞数/ml=100、1/100×400×10000×稀释倍数小格内细胞个数/ml=80格的细胞计数板计算公式：细胞数1、25格×16/80×400×10000×稀释倍数

应如何尽量减少误四、血细胞计数板计数的误差主要来自哪些方面??,差力求准确其中由于操作人员采血不顺血细胞计数的误差分别来源于技术误

差和固有误差。word

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利，器材处理、使用不当，稀释不准确，细胞识别错误等因素所造成的误差属技术误差；而由于仪器（计数板、盖片、吸管等）不够准确与精密带来的误差称仪器误差，由于细胞分布不均匀等因素带来的细胞计数误差属于分布误差或计数域

误差（filed error）。仪器误差和分布误差统称为固有误差或系统误差。技术误差

和仪器误差可通过规范操作、提高熟练程度和校正仪器而避免或纠正，但细胞分布误差却难于彻底消除。因此，搞好红细胞计数的质量控制一般需采用以下措施。

1．避免技术误差，纠正仪器误差

（1）所用器材均应清洁干燥，计数板、血盖片、微量吸管及刻度吸管的规格应

符合要求或经过校正。①计数板的鉴定：要求计数室的台面光滑、透明，划线清晰，计数室划线面积准确。必要时采用严格校正的目镜测微计测量计数室的边长

与底面积，用微米千分尺测量计数室的深度。美国国家标准局（NBS）规定每个大方格边长的误差应小于1%，即1±0.01mm，深度误差应小于2%，即0.1±

0.002mm。若超过上述标准，应弃之不用。②血盖片应具有一定的重量，平整、光滑、无裂痕，厚薄均匀一致，可使用卡尺多点测量（至少在9个点），不均匀

度在0.002mm之内。必要时采用平面平行仪进行测量与评价，要求呈现密集平

行的直线干涉条纹。最简单的评价方法是将洁净的盖片紧贴于干燥的平面玻璃上，若能吸附一定的时间不脱落，落下时呈弧线形旋转，表示盖片平整、厚薄均匀。同时，合格的盖片放置在计数室表面后，与支持柱紧密接触的部位可见到彩虹。精选出的盖片与其他盖片紧密重合后，在掠射光线下观察，如见到完整平行的彩虹条纹表示另一枚盖片质量也符合要求。③目前临床实验室多采用一次性微量采血管采集毛细血管血，除注意定点购买使用信誉较好厂家的产品外，还应对每一批量的采血管进行抽样检查，可通过水银称重法或有色溶液比色法进行校word

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正，误差不应超过±1%。

（2）红细胞稀释液应等渗、新鲜、无杂质微粒。

（3）严格操作，从消毒、采血、稀释、充池到计数都应规范，尤其应注意的是

血样稀释及充池时既要作到充分混匀，又要防止剧烈震荡为破坏红细胞。必须一