第五章 植物离体快速培养 植物快繁
高中生物第五章植物的组织培养技术5.1植物快速繁殖技术(1)素材中图版选修1(new)
植物快速繁殖技术植物快速繁殖就是应用组织培养技术,快速繁殖名优特新品种,使其在较短时间内繁衍较多的植株;快速繁衍珍稀濒危植物,使物种得以保存.快速繁殖是当前植物细胞工程中应用最广泛,又最有效的方法之一。
除了一部分豆类作物外,种子是不会传递病毒的.植物病毒是通过无性繁殖传递的,而快速繁殖是建立在无性繁殖的基础上,病毒在母体内逐代积累,危害越来越严重.目前在生产上尚无特效药物可彻底除去病毒,而快速繁殖却可以,因此,快速繁殖脱毒显得非常重要。
一、植物快速繁殖的途径和方法以植物的根、茎、叶柄和花等片段以及孢子作为外植体,或者切取茎尖、腋芽进行离体培养,可以直接诱导器官分化,产生芽、根,也可以诱导改变原有的分化状态,脱分化形成愈伤组织,再经过不同的细胞分化途径重建形成不同的器官,直到完整植株。
(P86L.1~L.16)植物快速繁殖的类型与方式可归纳如下表:快速繁殖中茎尖培养脱毒无病毒苗的获得:(一)材料的培养和灭菌为了获得无菌的茎尖,应把供试植株种在无菌的盆土中,放在温室栽培。
浇水要浇在土中,不要浇在叶片上。
如材料取自田间,可切取插条,在实验室内进行溶液培养。
由这些插条的腋芽长成的枝条,其污染程度比直接从田间植株取来的枝条少得多。
自外,定期喷施内吸杀菌剂(如0.1%多菌灵和0.1%链霉素)也十分有效.(二)茎类剥离取幼苗茎尖2~3cm小段,剥去可见的大叶,放在烧杯内用自来水冲洗1h左右,移入无菌室进行严格消毒.先用95%酒精快速浸泡一下,再放入5%的漂白粉溶液内消毒7~10min(也可用市场上出售的次氯酸钠溶液稀释为5%),然后用无菌水冲洗3~4次,在双筒解剖镜下一手用细镊子将茎芽按住,另一手用解剖针仔细地将幼叶剥去,最后露出圆滑的生长点,用注的针头侧刃或自制的解剖针,仔细地切取带有1~2个叶原基的生长点,随即接种到试管培养基上进行培养。
这样外植体(生长锥带1~2个原叶基)的培养,严格来说,应称为分生组织培养。
植物离体快速繁殖
试管苗玻璃化
1、玻璃化的特点
玻璃化(vitrification)是试管苗的一种生理 失调症状,表现为试管苗叶片、嫩梢呈水浸透明 或半透明状。
玻璃化苗由于体内含水量高,干物质、叶绿 素、蛋白质、纤维素和木质素含量低,角质层、 栅栏组织发育不全,因而光合能力和酶活性降 低,组织畸形,器官功能不全,分化能力降低, 生根困难,移栽后不易成活。
本时期是商品化组培的主要时期。划分为三个 阶段:培养物保存阶段、大量增殖阶段及生长和 增壮阶段。
技术关键
• 缩短继代培养周期 • 扩大芽和嫩梢繁殖系数 • 细胞分裂素与生长素的比例是影响繁殖系数和不
定芽质量的主要因素。 • 继代培养的芽增殖途径对繁殖效果影响最大。商
品化培养的树木,多采用腋芽增殖。
体胚发生
间接——不定芽 直接 间接
原球茎——兰属特有
器官发生过程
经过愈伤组织的器官发生 不经过愈伤组织的器官发生
经过愈伤组织的器官发生过程
愈伤组织形成 生长中心形成
器官原基及器官形成
愈伤组织
芽 外 生
芽 内 生
不经过愈伤组织的器官发生
外植体直接 发生芽
茎尖培养中 芽形成
非洲紫罗兰叶片直接发生不定芽的组织学变化
• 胚状体与合子胚的来源完全不同,但最后也能发 育为完整的植株。
胚 状 体 途 径
原球茎途径
• 主要应用于兰科植物的增殖培养。兰花组 培中,可从茎尖或侧芽的培养中直接产生 原球茎,既可以继代增殖,也可以分化成 小植株。
• 原球茎是一种类胚组织,可以看作成珠粒 状缩短的、有胚性细胞组成的类似嫩茎的 器官。
发生过程
a. 细胞第一 次平周分裂
b.生长中 心形成
c.原初分 生组织
植物离体繁殖
1.移栽
2.驯化管理
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一、移栽技术
首先应洗去小植株根部附着的培养基,避
免微生物的繁殖污染,造成小苗死亡。
然后将小植株栽人人工配制的混合基质中,
基质用保湿又透气的材料,如蛭石、珍珠 岩、粗沙、泥炭等按比例混合,以利小植
株生长。几天后小植株可形成新的功能根
系。
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二、驯化管理
移栽的试管小植株和活体生根的小植株,
菊花花瓣体细胞胚胎发生及体胚发育过程的扫描电镜观察
针叶松体细胞胚及体胚萌发生长
(五)原球茎途径
是兰科植物特有的一种快繁方式。 指茎尖或腋芽外植体经培养产生原球茎的
繁殖类型。原球茎可以增殖形成原球茎丛。
大花蕙兰原球养基:MS培养基应用最为广泛。对于某些植 物及生根阶段,以1/4或1/2MS较好。蔗糖和葡萄糖浓
7
增殖培养基
细胞分裂素的浓度水平较高: 一般MS+BA 1~3 mg/l+NAA0.1~1 mg/l
如月季增殖培养基:MS+6-BA 1.5mg/l+NAA0.1 mg/l 继代培养周期:20-30天
(三)、芽苗生根 将单个芽苗转移到生根培养基或适宜环境
中诱导生根。
1.试管内生根
降低无机盐浓度(1/2MS或者1/4MS),
应用广泛,便于种质交换和保存;
材料用量少,不受季节限制,实现工厂化;
获得无毒苗木无性系;
5.2 植物离体快繁的基本程序
植物快繁的程序包括四个阶段: –稳定无菌(或初代)培养体系的建立 –稳定培养体系的增殖、生长、增壮 –芽苗生根 –生根小苗移栽驯化
4
(一)、稳定无菌培养体系的建立
这个阶段包括母株和外植体的选取、
植物的离体快繁
4、褐变现象
概念 褐变:指在组织培养过程中,由培养材料 向培养基中释放褐色物质,致使培养基逐 渐变成褐色,培养材料也随之慢慢变褐而 死亡的现象。
褐变原因
由于植物组织中的多酚氧化酶被激活,将酚 类化合物氧化成醌类物质,会抑制其它酶 的活性,从而影响所接种外植体的培养。
减轻褐变现象发生的方法:
三个选择:
在培养基中表现的症状
外植体接触培养基部位长菌 外植体损伤部位长菌 外植体生长不良或表现出缺绿
防治措施
接种前的工作: 1、 接种室的灭菌 2、超净工作台的灭菌 3、 接种器皿、用具的灭菌 4、工作人员接种前应做的准备工作 5、 材料的灭菌
1、接种室的灭菌
• 接种室的地面,墙壁要擦洗干净灯灭菌
3、玻璃化现象
定义:当植物材料不断地进行离体繁殖时,有些 培养物的嫩茎、叶片往往会呈半透明水渍状,这 种现象通常称为玻璃化。 特点:外观形态有明显异常;体内含水量、矿质 元素、糖类、纤维、蛋白质等基本成分含量有变 化,一些酶活和内源激素含量有变化。
影响玻璃化苗发生的因素
1.培养材料:材料种类和外植体不同都有影响。
兰花的萌发
兰花的启动
兰花的增殖
兰花的分化
培养的兰花
五种器官发生方式优点、缺点比较:
(1)不定芽型:容易成苗,对培养基要求不 高,后代遗传性较为稳定,但取材受到一 定限制,仅限于具有明显顶端分生组织和 次生分生组织的物种。
(2)器官型和类胚体发生型:对培养基要求 高,器官发生条件苛刻。繁殖数量不如不 定芽型和器官发生型多,但遗传性稳定。
错
误
2、遗传稳定性
影响遗传稳定性的因素有: 1、基因型 2、继代次数 3、发生方式 4、激素浓度
第五章 植物离体快速繁殖和脱毒培养
4、试管苗驯化移栽——Transplanting
• 炼苗(驯化):移栽 前将培养物不开口, 移到自然光照下锻炼 2-3d,让试管苗接受 强光的照射,使其长 得壮实起来,然后再 开口炼苗1-2d,经受 较低湿度的处理,以 适应将来自然湿度的 条件 。
驯化:试管苗在移栽之前所进行的逐步锻炼和适应自然生长环境的过程
第五章 植物离体快速繁殖和脱毒培养
第一节 离体快速繁殖技术
• 离体繁殖:利用离体培养技术,将植物的
外植体在人工培养基和合适的条件下进行
培养,以在短期内获得大量遗传性一致个
体的方法。
一、植物快速繁殖的主要步骤
• • • • 1、建立无菌培养体系 2、无菌培养体系的快速增殖 3、诱导生根 4、试管苗的驯化与移植。
通常幼龄部位产生褐化较轻,随着组织的老 龄化含醌类物质增多而褐化加重。 一般在春夏季,尤其是春季采取生长旺盛的 外植体产生褐化较轻,已木栓化或木质化的枝 条和处于休眠状态的芽作为外植体时褐化严重。
外植体褐变原因
3)与培养基成分有关
高的无机盐浓度
不适宜的植物生长调节物质(如BA过高)
会受到影响。植物种类不同,对矿物质的
量、离子形态、离子间的比例要求不同。
如果培养基中离子种类及其比例不适宜该
种植物,玻璃化苗的比例就会增加。
玻璃化及预防
4.环境条件-温度
适宜的温度可以使试管苗生长良好,
当温度低时,容易形成玻璃化苗,温度越
低玻璃化苗的比例越高。温度高时玻璃化
苗减少,且发生的时间较晚。
2、培养物的增殖
• 1)腋芽增殖: • 离体条件下腋芽 在细胞分裂素作 用下形成丛生芽 • 激素调节:细胞 分裂素(BA)、 低浓度的生长素 • 优点:保持物种 的遗传稳定性。
组培复习资料
植物组织培养复习资料(开卷考试)第一章导论【本章知识点】1.组织培养的含义2.组织培养的理论基础(细胞全能性)3.植物组织培养的类型及特点4.植物组培在农业生产上的应用一.组织培养的含义:用无菌的方法使植物离体器官、组织和细胞在人为提供的条件下生长和发育的所有的培养技术的总称,也称为离体培养或试管培养。
二、植物组培的理论基础1、植物细胞全能性:植物体的每一个具有完整细胞核的细胞都具有该物种全部的遗传物质,在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力。
2、细胞分化:导致细胞形成不同结构、引起功能改变或者潜在发育方式改变的过程。
3、脱分化:将以分化的不分裂的静止细胞放在培养基上培养,细胞重新进入分裂状态。
一个成熟的细胞转化为分生状态的过程成为脱分化。
(形成愈伤组织)4、再分化:经脱分化形成的愈伤组织在一定培养条件下可转化为不同的细胞类型,形成完整植株的过程。
5、外植体:由活体植物上切去下来的,用于植物组织培养的各种接种材料。
包括各种器官、组织、细胞和原生质体等。
6、愈伤组织:外植体离体培养下经脱分化产生的无特定结构和功能的薄壁细胞。
三、组织培养的类型及特点【类型】1.按培养材料分:愈伤组织培养、器官培养、细胞培养、原生质体培养等2.按培养器官分:叶培养、跟培养、花药培养等3.按培养成分分:固体培养、液体培养(也叫液体震荡培养)4.按是否有需要光分:光培养、暗培养5.按培养方法分:平板培养、微室培养、悬浮培养等6.按培养过程分:初代培养(外植体的最初培养)、继代培养(培养物在培养基上生长一段时间以后由于营养物枯竭,水分散失及代谢产物的积累,必须转移到新鲜的培养基上培养,这种反复多次移植的组织培养称为继代培养)【特点】1.培养条件人为可控2.培养生长周期短,繁殖效率高3.管理方便,便于工厂化生产和自动化控制四、植物组培在农业生产上的应用1.用于种苗的快速无性繁殖2.用于种苗的脱毒(EG马铃薯)3. 用于某些植物的远缘杂交4.用于突变育种5.用于单配体育种6.种质保存7.基因工程8.植物性药物和生物制品的生产第二章植物组培实验室的构建和基本操作技术【本章知识点】 1.植物组培实验室结构设计及主要实验设备2.常用培养基MS 、B5、White 、N6、KM-8P 等3.母液的配制方法4.培养基成分及其配制、分装和高压灭菌过程5.有关灭菌、接种、培养、驯化和移栽的相关技术6.接种的无菌操作程序要点7.试管苗的特点及其不能成活的原因8.试管苗的驯化和移栽应注意的问题一、植物组培实验室构建和主要实验设备【实验室构建】【仪器设备与用具】1、 仪器设备与器皿用具:超净工作台、空调、除湿机或加湿机、恒温培养箱、高压灭菌锅、冰箱、天平、显微镜、水浴锅、摇床与转床、蒸馏水发生器、酸度计、离心机等2、 各类玻璃器皿:培养器皿(试管、三角瓶、培养皿、圆形培养瓶或果酱瓶等)分注器、离心管、刻度移液管、细菌过滤器、实验器皿(量筒、烧杯、容量瓶、试剂瓶、塑料瓶、酒精灯等)3、 器械用具:镊子、尖头镊子、枪形镊子、剪刀、解剖刀、接种针、钻孔器等。
第五章植物脱毒快繁技术
2、培养基
一般以White、MS为基本培养基,提高钾盐 和铵盐含量有利于茎尖生长。MS培养某些植物茎 尖时,有些离子浓度过高应稀释。
在双子叶植物中,激素可能在第2对叶原基中 合成,所以茎尖的圆锥组织生长激素不能自给,必 须加入生长素与细胞分裂素,浓度要合适。在生长 素中应避免用易促进愈伤组织化的2,4-D,宜用 NAA或IBA;细胞分裂素用KT或BA;GA3对某些 植物茎尖培养有用。
五、快速繁殖
茎尖培养得到的脱毒苗不多,用于生产需扩大繁殖。
扩繁方法: 1)组培快繁 2)无毒苗栽到土壤中进行扩繁。如甘薯、草 莓等利用蔓,马铃薯、姜、蒜等利用地下部分繁 殖。为了预防病毒再感染,扩繁应在培育温室或 防虫罩内,因为昆虫传播病毒。
3)两种方法相结合,试管内扩繁,移栽后再 扩繁。
注意: 1、培养变异的产生,应及时去除 2、脱毒苗并非永远是无毒苗,由于昆虫等的传播,
• ④愈伤组织增殖 可以说,所有的植物通 过组织培养的方法均可以诱导形成愈伤组 织,愈伤组织再进一步分化即可获得小植株。
• 愈伤组织增殖的特点是成功率高,繁殖系 数大,但遗传稳定性较差。
• 3.生根培养
• 4.生产用苗的培植
(二)离体繁殖的使用范围
离体繁殖常用于以下几个方面:
• 某些难以繁殖或繁殖系数很低的植物 • 某些需要加速繁殖的特殊基因型如名贵花卉、
3、茎尖的培养方法
材料选择、消毒 微茎尖的剥取 接种
3、茎尖的培养方法
需要一台解剖镜(8-40倍)。 剥离茎尖要迅速并尽快接种,或在一个衬有 无菌湿滤纸的培养皿内进行操作,以防茎尖变干。 茎尖分生组织由于有彼此重叠的叶原基的严 密保护,只要仔细解剖,(无须表面消毒)就可得 到无菌的外植体。有时消毒处理会增加培养物的 污染率。
高中生物第5章植物的组织培养技术第1节植物快速繁殖技术教案中图版
第一节植物快速繁殖技术一、植物组织培养简介1.理论基础:植物细胞的全能性。
(1)愈伤组织的特点:细胞是一种高度液泡化的薄壁细胞,呈无定形状态,排列疏松而无规则,具有很强的分生能力。
(2)脱分化:由高度分化的细胞重新恢复到未分化的状态。
(3)再分化:愈伤组织在适当的人工培养基上继续培养又可以重新分化成芽、根等器官,进而发育成一棵完整的植株。
3.培养基(1)成分:除含外植体所需的各种营养物质外,还需添加生长素和细胞分裂素两种植物激素。
(2)类型:据外植体在不同发育阶段的要求,需配制“脱分化培养基”、“生芽培养基”、“生根培养基”。
4.无菌条件:培养基的灭菌要彻底、外植体的消毒要充分、接种时的无菌操作要严格。
二、月季的快速繁殖程序1.配制培养基先将各种营养成分按比例配制成MS 培养基母液,再利用母液配制所需的三种培养基。
(1)脱分化培养基:母液中加入质量浓度为0.1 mg/L 的6-BA 和IAA 。
(2)生芽培养基:去掉脱分化培养基中的IAA 即可。
(3)生根培养基:无机盐浓度为MS 的12,另外添加质量浓度均为0.1 mg/L 的NAA 和IAA 。
2.外植体消毒清水洗净→体积分数为70%的酒精浸5 s→质量分数为2%的次氯酸钠溶液中浸泡6 min ~10 min→用无菌水清洗至少3次,漂净消毒液→用无菌滤纸吸干。
3.接种:将已消毒的月季嫩茎接种到脱分化培养基上,使嫩茎的形态学下端接触培养基。
4.培养:接种后的锥形瓶放在恒温培养箱中培养,将愈伤组织接种到生芽培养基上,每天用日光灯光照12 h ,培养10 d 左右长出小芽,小芽继续长成枝条。
待枝条长到3 cm左右时,将它切下后插在生根培养基上诱导生根。
5.驯化试管苗6.移栽预习完成后,请把你认为难以解决的问题记录在下面的表格中一、植物组织培养1.原理——细胞的全能性(1)原因:生物体的每个细胞都含有本物种生长、发育、遗传和变异的全部遗传信息。
(2)实现全能性的条件:离体状态和适宜的环境条件(如营养物质、激素、温度等)。
植物组织培养在现代农业中的具体应用
三、植物新品种培育
3、细胞融合 通过原生质的融合可部分客服有性杂交不亲和,从而获得体细
胞杂种,创造新物种或优良品种。
三、植物新品种培育
4、选择细胞突变体 离体培养过程中会发生变异,从中可以筛选出对人们有用的突
变体,进而育成新品种。
四、生产植物次生代谢物
利用植物组培技术生产一些价格高、产量低、需求量大的次 生代谢产物,其具有一些特定的功能,对人类有重要的影响和作用。
五、植物种质资源离体保存
1、常规的植物种植资源保存方法耗资巨大,种 质资源流失的情况时有发生。
2、通过抑制生长或超低温贮存的方法离体保存 植物种质资源,可节约大量的人力、物力和财 力,还可挽救那些濒危物种。
3、离体保存还可避免病虫害侵染和外界不利气 候及栽培因素的影响,可长期保存,有利于种 质资源材料的远距离交换。
江西野生金线莲
六、人工种子
1、人工种子是利用人工种皮包被植物组织培养中得到的体细胞胚。 2、人工种子可为某些珍稀物种的繁殖、转基因植物、自交不亲和植物、远缘 杂种的繁殖提供有效的手段。
任务二 植物组织培养在农业 生产中应用
目录
01
植物离体快速繁殖
02
植物种苗脱毒
03
植物新品种培育
04
植物次生代谢物生产
05
Hale Waihona Puke 植物种植资源保存06人工种子
一、植物离体快速繁殖
1、植物快繁是植物组织培养在生 产中应用最广泛,产生较大经济效 益的一项技术。
2、植物快繁具有不受季节和气候 等条件限制、可周年生产、生长周 期短、繁殖速度快、种苗整齐一致 等优点。
4、植物组培种苗脱毒广泛应用于花卉、果树、 蔬菜、苗木等植物。
植物组织培养(7)
植物快繁是指利用植物组织培养技术对 外植体进行离体培养,使其短期内获得 遗传性一致的大量再生植株的技术。 也 叫植物离体繁殖或微繁。
植物快繁的特点
1. 繁殖效率高。周年繁殖,生长速度快。 2. 培养条件可控性强。 3. 占用空间小。30m2 可培育数十万株苗木。 4. 管理方便,利于自动化控制。 5. 便于种质保存和交换。
8.2.4 阶段Ⅳ:小植株的移栽驯化
移栽前应进行高光强炼苗,使植株生长粗壮,并打开 瓶口,降低湿度。 移栽:洗去培养基,栽入人工培养基质(如蛭石、珍 珠岩、粗沙、泥炭等按比例混合,保湿透气),几天 后可形成新的功能根系。 驯化管理:覆膜、喷雾,逐渐降低湿度、提高光强, 防止菌类滋生。
Example: acclimatization of roses
axillary branching in a chimeral Dracaena
腋芽
不定芽发生型
概念:外植体脱分化形成愈伤组织,再分化产 生不定芽,或不经愈伤组织直接形成不定芽, 再将芽诱导生根成苗。 特点:增殖率高于丛生芽发生型,但较易变异, 并会导致嵌合性状发生分离。 许多植物快繁的主要方式。
8.2.1 阶段Ⅰ:无菌培养的建立
1. 母株和外植体的选取 2. 无菌培养物的获得 3. 外植体的启动生长
母株和外植体的选取
母株标准:性状稳定、生长健壮、无病 虫害。 外植体:
① 木本、较大草本:带芽茎段、顶芽、腋芽等。 ② 易繁殖、矮小或具短茎的草本:叶片、叶柄、
花茎、花瓣等。
mother plants, drip-irrigated
滴灌母株
young shoots are cut off剪下幼嫩枝条
当植株的其他部位难以消毒时,可以选 用种子,消毒后的种子在无菌条件下播 种到含有水-琼脂培养基上或1/10 MS培 养基上使其发芽。将经消毒的幼苗切成 小片,作为外植体。
植物组织培养教程李浚明(2)
培养基的物理特性:以固体培养较为普遍,也有采用液 体培养,如兰花原球茎的增殖.
三、培养条件:
光照:1000-3000lx,阶段Ⅲ可增强.14-16h/天. 温度:与植物的原产地相应.一般为25±2℃.有时可
成苗数量大、速度快、结构完整.但由于对其发 生及发育过程了解不够,应用上还没有前两种广 泛.
Direct somatic embryogenesis in Brassica napus
菊花花瓣体细胞胚胎发生及体胚发育过程的扫描电镜观察
针叶松体细胞胚及体胚萌发生长
五、原球茎发生型
是兰科植物特有的一种快繁方式.指茎 尖或腋芽外植体经培养产生原球茎的繁 殖类型.原球茎可以增殖形成原球茎丛.
二、丛生芽发生型
是大多数植物快繁的主要方式.指外植体携带的 顶芽或腋芽在适宜培养环境〔含有外源细胞分裂 素〕中不断发生腋芽而呈丛生状芽,将单个芽转 入生根培养基中,诱导生根成苗的繁殖方法.
不经过愈伤阶段,后代变异小,应用普遍,也可用于 无病毒苗的生产.
三、不定芽发生型
指外植体在适宜培养基和培养条件下,形成不定芽, 后经生根培养,获得完整植株的繁殖方法.分为通过愈 伤组织产生不定芽,和直接产生不定芽两种方式.
叶表皮组织不发达的试管苗也不易移栽存活. 移栽要求打开瓶口驯化2-3天;或在瓶内添 加一些生长延缓剂如PP333、CCC等培育壮 苗.
第四节 植物快繁的商业化应用
植物快繁的重要用途是进行植物的商业 化生产.世界上快繁商业化开始于上个世纪 美国的兰花工业.我国的香蕉快繁苗占全国 组培苗的2/3.其次有甘蔗、兰花、马铃薯、 甘薯等.
7.3植物组培快繁和脱毒技术
鉴定方法
1、直观测定法 2、指示植物法
利用病毒在其他植物上 出现症状的特征,作为 鉴别病毒种类的标准, 这种专门用以生产症状 的寄主植物即为指示植 物,又称鉴别寄主。
3、抗血清鉴定法
4、酶联免疫吸附法(ELISA) 5、电子显微镜检查法
6、免疫吸附电镜法
• 另一种是起源于苗基部切口处愈伤组织的上部,直接起源于中柱 鞘细胞,由于发生与茎的中柱相连,故利于移栽成活。
胚状体形成
• 概念: 离体培养下起源 于非合子细胞,经历 了胚胎发生和胚胎发 育过程所形成的类胚 结构。
原球茎形成
3、试管苗的增殖与继代培养
• 1)、试管繁殖速率及计算
• 理论计算:
接种一个芽或一块增殖的培养物,经一段时间的培养后看能 得到多少个芽或苗,从而推算理论上一年能繁殖出多少苗。
第一节 植物的离体快繁
植物离体快繁(Micropropagation) 又叫微型繁殖或试管繁殖,它是把植物 材料放在试管内,给予人工培养基和合 适培养条件,达到高速增殖,属离体无 性繁殖。
其特点是快速,每年能以千百万倍
一 .离体快繁的应用
良种快繁 脱毒良种苗快繁和无病毒苗大量快繁; 特殊育种材料快繁; 制种材料快速繁殖; 自然和人工诱变有用突变体的快繁; 基因工程植株的快繁;
四、离体快繁中的有关问题
• 培养物的增殖方式 • 外源生长调节物质对品种典 型性的影响 • 继代次数与变异
第二节 术
• 怎样脱毒?
植物的组培脱毒技
• 为什么要脱毒?
• 怎样鉴定无病毒植株?
病毒不仅使人患病,同样也侵害植物,使植物出现皱叶、黄 叶、落叶,以致品质变劣、花色变淡、花数减少、产量降低。 多数农作物,特别是无性繁殖作物,都易受到一种或多种病原 菌的周身浸染。病原菌的浸染不一定都会造成植物的死亡,很多病 毒甚至可能不表现任何可见症状。但在植物中病毒的存在会减少作 物的产量和降低作物的品质。
植物组织快繁技术
❖ 兰花离体快繁:
Morel提出了兰花离体无性繁殖方法。把兰花 离体茎尖进行培养时可形成一个扁球状体 (后称:原球茎),基部生假根。把每个原 球茎切成4~6块,重新接种在培养基上,每一 块又形成若干新的原球茎。如果停止切块, 每个原球茎可形成一个完整植株
2、茎芽增殖
❖ 1)不定芽途径 ❖ 2)原球茎途径 ❖ 3)腋芽路径 ❖ 4)体细胞胚状体的发生途径
2、茎芽增殖
1)不芽途径 不定芽的发生大多数有一个从外植体上产生 愈上组织的阶段,这一阶段的长短和愈伤组织 生长的程度,在不同植物种类和培养条件而有 极大的差异。
愈伤组织的发生,可能导致长期的培养过程 中不正常分裂而产生变异植株。
❖ 任何无菌体系的建立都必须选用适宜的外植体 ❖ 一般外植体的选择因培养体系的目的和接种的植物种类不同而有所不同。 ❖ 为了增加腋芽生枝的数目就应当使用带有营养芽的外植体;为了生产脱
毒植株,就必须使用不足1mm长的茎尖;母株不需要脱毒,选择带节的 插条
2 )消毒 ❖ 目的:保证培养物的无菌性
❖ 方法:将新鲜的外植体在流水中冲洗1~2小 时,然后在超净工作台上用0.5%的升汞或 其他消毒剂消毒
❖ 现在国内外都在开展快繁研究,并进行了产业化 生产
❖ 我国目前从事植物组织培养的人员和实验室面积 居世界第一,试管繁殖有一定的成绩,但是经济 效益不高。
❖ 我国的观赏植物试管快速繁殖的研究起步较 晚,但取得了另人瞩目的成绩。主要花卉的 离体扩增技术以在我国较为成熟。并建立无 性系应用于生产。
二、植物离体快繁技术原理
1、用于稀缺或急需良种植物的繁殖 2、用于茎尖脱毒及无毒苗木试管快繁 3、用于自然界无法用种子繁殖或难以保持
植物离体快繁
化有促进作用。在试管苗的生长过程中加强光照强
度可使苗木生长健壮,提高移栽成活率。
园艺植物生物技术课件
植物离体快繁技术
一般, 植物离体培养的温度低于15 ℃或高于35℃, 对分化和生长都不利。大多数植物最适的培养温度 在23-32 ℃之间,一般控制在(25±2) ℃条件下培养, 热带园艺植物培养温度稍高。
园艺植物生物技术课件
植物离体快繁技术
• 加一定数量的生长延缓剂 • 高糖 • 高生长素 • 高光强 • 打开瓶口,在半光、全光条件下炼苗3-5d
园艺植物生物技术课件
植物离体快繁技部的培养基清洗干净,以
免由于污染而导致小苗死亡;同时注意避免根颈部损伤引起 小苗感染。
植物离体快繁技术
无菌 带菌 低光强 高光强 适宜的温度 变温 100%的相对湿度 低湿 营养充足的培养基 栽培介质
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植物离体快繁技术
• 试管苗生长在恒温、高湿、弱光、无菌和完全营养 供应的条件下,虽有叶绿素,但是“异养生活” , 因此在形态结构和生理特性上都很脆弱,如水分疏 导系统存在障碍,叶面无角质层或蜡质层,气孔开 张过大且不具备关闭功能等。
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植物离体快繁技术
离体培养中环境的湿度主要指培养容器内的湿度, 相对湿度常达100%,但液体培养与固体培养时湿 度可能有变化,固体培养时琼脂的用量与质量对培 养环境的湿度有影响。
园艺植物生物技术课件
植物离体快繁技术
1、原球茎途径
2、胚状体途径
3、不定芽途径
4、顶芽和腋芽萌发途径
体的消毒技术。
在进行常规的外植体消毒之前,也可采取其他 措施来保证培养材料的无菌性。
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2. 培养物的增殖
增殖方式: 增殖方式:
不定芽增殖 腋芽增殖
愈伤组织 增殖
体细胞胚增殖
)、不定芽增殖 (1)、不定芽增殖 )、
不定芽:从现存的芽以外的任何器官、 不定芽:从现存的芽以外的任何器官、组织上通过器 官发生重新形成的芽称之为不定芽。 官发生重新形成的芽称之为不定芽。 特点: 特点:繁殖系数高 遗传稳定性较好 继代次数有限 注意事项:激素浓度不能过高;避免使用 , 注意事项:激素浓度不能过高;避免使用2,4-D等活 等活 性强的生长素,以减少变异发生。 性强的生长素,以减少变异发生。
(4). 体细胞胚增殖 )
特点:增长率高;双极性免去生根环节。 特点:增长率高;双极性免去生根环节。 问题:胚状体休眠的诱导和解除还难以把握; 问题:胚状体休眠的诱导和解除还难以把握; 部分物种胚状体诱导困难且成苗率仍不高。 部分物种胚状体诱导困难且成苗率仍不高。 这一途径仅适用于少量植物。 这一途径仅适用于少量植物。
引起玻璃化;还原态氨浓度高容易引起玻璃化; 引起玻璃化;还原态氨浓度高容易引起玻璃化;细胞分裂素 容易引起玻璃化 浓度过高;通气不良等。 浓度过高;通气不良等。
)、培养苗的玻璃化问题 (2)、培养苗的玻璃化问题 )、
解决措施: 解决措施: 固体培养,提高光照强度,降低湿度。 固体培养,提高光照强度,降低湿度。 提高培养基中蔗糖和琼脂浓度,降低 4+浓度。 提高培养基中蔗糖和琼脂浓度,降低NH 浓度。 加入添加剂:如活性碳、多效锉。 加入添加剂:如活性碳、多效锉。 降低培养基中细胞分裂素含量, 降低培养基中细胞分裂素含量,可以考虑加入适量 脱落酸。 脱落酸。
快速繁殖( 快速繁殖 (rapid clone propagation): 也叫 离体繁 ) 也叫离体繁 殖 ( in vitro propagation ) 、 微 体 繁 殖 ( Micropropagation) , 是指在无菌条件下 , 将植物 ) 是指在无菌条件下, 体的器官、组织或细胞培养于人工培养基中,并辅以人 体的器官、组织或细胞培养于人工培养基中, 工控制环境,使其生长出完整植株的繁殖技术。 工控制环境,使其生长出完整植株的繁殖技术。
形态发生能力的保持或丧失 培养中发生的变异: 培养中发生的变异:正比
三、影响微繁效果的因素 影响微繁效果的因素
植株再生方式与变异率: 植株再生方式与变异率: 茎芽增殖〈腋芽〈 茎芽增殖〈腋芽〈 直接发生途径形成的芽 〈 愈伤组织形成的不定芽。 愈伤组织形成的不定芽。
使用低浓度的生长物质可减少变异。 使用低浓度的生长物质可减少变异
目前已有近400种植物的离体繁殖已获得成功,其中许多具有 种植物的离体繁殖已获得成功 目前已有近 种植物的离体繁殖已获得成功, 重要经济价值的花卉(如兰花、菊花、石竹 、果树(草莓 草莓、 重要经济价值的花卉 如兰花、菊花、石竹)、果树 草莓、无籽 如兰花 西瓜、葡萄 、经济作物(马铃薯 甘蔗)、林木(桉树 杨树)均 马铃薯、 桉树、 西瓜、葡萄)、经济作物 马铃薯、甘蔗 、林木 桉树、杨树 均 已在种苗生产上广泛应用,取得了巨大的经济和社会效益。 已在种苗生产上广泛应用,取得了巨大的经济和社会效益。
)、愈伤组织增殖 (3)、愈伤组织增殖 )、
愈伤组织增殖培养: 愈伤组织增殖培养:即愈伤组织继代培养以扩大愈伤组 织量进而分化形成更多苗。 织量进而分化形成更多苗。 特点:成功率高,繁殖系数大,但遗传稳定性较差。 特点:成功率高,繁殖系数大,但遗传稳定性较差。
注意事项: 注意事项:降低激素浓度 对要求遗传稳定性高的品种一般不采用这一途 径快繁。 径快繁。
四、快繁的应用及局限性
1. 应用 用于加速某些难繁殖或繁殖速度很低的植物, 用于加速某些难繁殖或繁殖速度很低的植物,或某些 需要加速繁殖的特殊基因型,如名贵花卉、优良资源、 需要加速繁殖的特殊基因型,如名贵花卉、优良资源、 工程植株等等。 工程植株等等。 用于自然繁殖极易感染病毒的植物,如马铃薯、甘薯、 用于自然繁殖极易感染病毒的植物,如马铃薯、甘薯、 甘蔗、香蕉、石竹、百合等等。 甘蔗、香蕉、石竹、百合等等。 用于有性繁殖变异范围大而自然条件下又不易无性繁 殖的植物,如非洲菊、花竹、紫罗兰等。 殖的植物,如非洲菊、花竹、紫罗兰等。
微繁:跟常规的繁殖方法相比它是一种微型操作过程。 微繁:跟常规的繁殖方法相比它是一种微型操作过程。
一、快繁的定义
离体微繁殖技术的应用,首先应归功于 离体微繁殖技术的应用,首先应归功于Morel,他在 ,他在1960年首 年首 先建立了兰花离体繁殖的方法(原球茎繁殖)。 先建立了兰花离体繁殖的方法(原球茎繁殖)。
三、影响微繁效果的因素 影响微繁效果的因素
基因型 外植体 培养基和培养条件 继代培养 植株再生方式
三、影响微繁效果的因素 影响微繁效果的因素
继代培养: 继代培养: 继代间隔与外植体大小有关:外植体大, 继代间隔与外植体大小有关:外植体大,继代培养
时间短( 周);外植体小 则继代培养时间长( 外植体小, 时间短(3-4周);外植体小,则继代培养时间长(5-6 )。一般继代时间延长变异增多 一般继代时间延长变异增多。 周)。一般继代时间延长变异增多。
)、培养苗的玻璃化问题 (2)、培养苗的玻璃化问题 )、培养苗的玻璃化问题(vitrification )
玻璃苗:离体繁殖中出现的材料( 玻璃苗:离体繁殖中出现的材料(主要是嫩茎和叶 片)质地半透明、叶片肿胀的畸形苗。 质地半透明、叶片肿胀的畸形苗。 特征: 特征:茎、叶表面无蜡质,体内的极性化合物水平 叶表面无蜡质, 较高,细胞持水力差,植株蒸腾作用强。 较高,细胞持水力差,植株蒸腾作用强。 负作用:生长缓慢、不易生根、繁殖系数下降。 负作用:生长缓慢、不易生根、繁殖系数下降。
(3)褐化问题 )
减轻褐变现象发生的方法: 减轻褐变现象发生的方法:
选择合适的外植体 选择合适的外植体 : 合适的培养条件:无机盐成分、植物生长物质水平、适宜温度、 合适的培养条件:无机盐成分、植物生长物质水平、适宜温度、及 时继代培养均可以减轻材料的褐变现象。 时继代培养均可以减轻材料的褐变现象。 使用抗氧化剂:在培养基中使用半胱氨酸、抗坏血酸、 使用抗氧化剂:在培养基中使用半胱氨酸、抗坏血酸、PVP等抗氧 半胱氨酸 等抗氧 化剂能够较为有效地避免或减轻很多外植体的褐变现象。另外, 化剂能够较为有效地避免或减轻很多外植体的褐变现象。另外,使 的活性炭对防止褐变也有较为明显的效果 用0.1%-0.5%的活性炭对防止褐变也有较为明显的效果。 的活性炭对防止褐变也有较为明显的效果。 连续转移:对容易褐变的材料可间隔 的培养后, 连续转移:对容易褐变的材料可间隔12~24h的培养后,再转移到新 的培养后 的培养基上,连续处理 的培养基上,连续处理7-l0d后,褐变现象便会得到控制或大为减轻。 后 褐变现象便会得到控制或大为减轻。
(3)褐化问题 )
外植体褐变:指在接种后其表面开始变成褐色, 外植体褐变:指在接种后其表面开始变成褐色,有时 表面开始变成褐色 甚至会使整个培养基褐变的现象。 甚至会使整个培养基褐变的现象。 整个培养基褐变的现象
机制:由于植物组织中的多酚氧化酶被激活, 机制:由于植物组织中的多酚氧化酶被激活,而使细 多酚氧化酶 胞的代谢发生变化所致。在褐变过程中, 胞的代谢发生变化所致。在褐变过程中,会产生醌类 物质,它们多呈棕褐色,当扩散到培养基后, 物质,它们多呈棕褐色,当扩散到培养基后,就会抑 制其他酶的活性,从而影响所接种外植体的培养。 制其他酶的活性,从而影响所接种外植体的培养。
第5章 植物离体快速繁殖和脱毒技术 章
主要内容
定义、实验程序、影响因素、应用) 快速繁殖技术(定义、实验程序、影响因素、应用) 原理、实验程序、鉴定、保存) 植物脱毒技术(原理、实验程序、鉴定、保存)
第一节 植物快速繁殖技术
快繁的定义 快繁的技术程序 影响快繁效果的因素 快繁的应用
一、快繁的定义
2. 快繁应用的局限性
)、培养苗的玻璃化问题 (2)、培养苗的玻璃化问题 )、培养苗的玻璃化问题(vitrification )
成因:目前没有一致的结论, 成因:目前没有一致的结论,一般认为是试管苗的 生理失调主要是水分状态不适应的症状,实验发现 生理失调主要是水分状态不适应的症状, 水分状态不适应的症状 以下因素对玻璃化有影响。 以下因素对玻璃化有影响。 材料: 材料: 培养条件:液体培养易玻璃化; 培养条件:液体培养易玻璃化;蔗糖浓度和琼脂浓度低可
3、芽苗生根培养 、
基本培养基
1/2或1/4MS培养基 或 培养基
生长调节剂
IBA和NAA0.1-0.5mg/L 和
温度: 温度:比增殖培养略低
4.小苗移植驯化
生产用苗的培育: 炼苗-假植-定植- 生产用苗的培育: 炼苗-假植-定植-生产用苗 炼苗: 炼苗:适应自然环境 移植:洗掉附着的培养基,移植土壤采用人工调配 移植:洗掉附着的培养基,移植土壤采用人工调配 采用 的混合培养土(泥炭土、蛭石、珍株岩等);土壤 的混合培养土(泥炭土、蛭石、珍株岩等);土壤 湿度不宜过大(影响通气、烂根);空气湿度初期 湿度不宜过大(影响通气、烂根);空气湿度初期 ); 较大(微雾喷雾)。 较大(微雾喷雾)。 定植: 定植:
四、快繁的应用及局限性
2. 局限性
有些植物离体繁殖技术未过关 培养中的变异 培养苗的“玻璃化” 培养苗的“玻璃化”和褐化
2. 快繁应用的局限性
)、培养中的变异问题 (1)、培养中的变异问题 )、 解决方案? 解决方案?
激素、继代时间、植株再生方式、 激素、继代时间、植株再生方式、实验中的选择
2. 快繁应用的局限性
(3)褐化问题 )
褐变的主要原因: 褐变的主要原因:
植物品种:玫瑰、 植物品种:玫瑰、豆科原生质体培养 外植体的生理状态:一般来说, 外植体的生理状态:一般来说,处于幼龄期的植物材料褐 变程度较浅,生长迅速的组织褐变少。 变程度较浅,生长迅速的组织褐变少。 培养基成分:浓度过高的无机盐会使某些植物的褐变程度 培养基成分:浓度过高的无机盐会使某些植物的褐变程度 增加; 增加;细胞分裂素的水平过高也会刺激某些外植体的多酚 氧化酶的活性,从而使褐变现象加深。 氧化酶的活性,从而使褐变现象加深。 培养条件:光照过强、温度过高、培养时间过长易褐化。 培养条件:光照过强、温度过高、培养时间过长易褐化。 易褐化