蛙心搏的观察与描记,蛙类离体心脏灌流
生理学实验报告蛙心灌流
生理学实验报告-蛙心灌流————————————————————————————————作者: ————————————————————————————————日期:ﻩ蛙类离体心脏灌流一、【目的要求】1、学习离体蛙心灌流法。
2、观察Nａ＋,K+,Ｃa2+及肾上腺素(Adｒ),乙酰胆碱（ＡCｈ)，乳酸对离体心脏活动的影响。
二、【原理】将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对心脏活动的作用。
心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。
外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。
三、【实验仪器】青蛙、常用手术器械、蛙板（或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。
套管夹、0．６5％ＮaＣl、２％ＣａＣl2、1%KCl、１：1０000肾上腺素、1：10000乙酰肌碱、3%乳酸。
四、【方法与步骤】１、斯氏蛙心插管法(１)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心脏。
仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。
在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎(动物个体小时,结扎位置可靠上些)。
再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备用。
左手提起主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。
选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量(套管内2～3cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管，山开口处插入动脉圆锥(见右图)。
当套管尖端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内（于心室收缩时插入,但不可插得过深,以免心室壁堵住套管下口)。
蛙心生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 学习离体蛙心灌流的方法。
2. 观察理化因素对蛙心活动的影响。
3. 探究心脏节律性活动的生理机制。
二、实验原理蛙心灌流实验是一种常用的生物学实验方法，通过将蛙心取出并置于人工灌流液中，使其在一定时间内保持节律性收缩。
实验中，通过改变灌流液的成分，可以观察不同理化因素对心脏活动的影响，从而了解心脏生理活动的调节机制。
蛙心无营养性血管，离体后采用人工灌流的方法，仍可保持其新陈代谢，心脏仍能有节律的自动收缩、舒张，并维持较长时间。
心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。
外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：青蛙2. 实验器材：蛙心夹、常用手术器械、蛙板（或蜡盘）、任氏液、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1：10000肾上腺素、1：10000乙酰胆碱、3%乳酸、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿（或小烧杯）、棉线、套管夹。
3. 生理信号采集系统、计算机。
四、实验方法与步骤1. 暴露蛙心：取一只青蛙，双毁髓后背位置于蛙板上，按前面的方法暴露心脏。
仔细识别心脏周围的大血管，在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎。
2. 插管：用斯氏蛙心插管法，将蛙心夹插入心脏，并通过蛙心夹上的管道与灌流系统连接。
3. 灌流：将蛙心置于任氏液中，开始灌流，调节灌流速度和压力，使心脏保持节律性收缩。
4. 观察与记录：观察心脏的收缩、舒张情况，记录心率和心搏曲线。
5. 改变灌流液成分：分别用0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1：10000肾上腺素、1：10000乙酰胆碱、3%乳酸等灌流液替换任氏液，观察心脏活动的变化。
6. 分析与讨论：分析不同灌流液对心脏活动的影响，讨论心脏生理活动的调节机制。
五、实验结果与分析1. 在正常任氏液中，心脏保持节律性收缩，心率为60-100次/分钟。
离体蛙心实验实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察离体蛙心的生理特性，了解心脏在离体条件下的收缩和舒张规律。
2. 探讨神经递质、激素等对离体蛙心功能的影响。
3. 掌握离体蛙心灌流实验的操作方法。
二、实验原理离体蛙心灌流实验是研究心脏生理学的重要方法之一。
在实验过程中，通过灌流装置向蛙心提供氧气和营养物质，同时可以观察心脏的收缩和舒张情况。
实验中，可以通过改变灌流液成分、温度、pH值等条件，观察心脏功能的改变，从而了解心脏生理特性及影响因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、蛙心套管、蛙心夹、蛙板、蛙类手术器械、二道仪、任氏液、氯化钙、肾上腺素、乙酰胆碱等。
2. 实验仪器：手术显微镜、蛙心灌流装置、注射器、秒表、滴管等。
四、实验方法与步骤1. 准备工作：将蟾蜍置于蛙板上，用手术剪剪开胸腔，暴露心脏。
用蛙心夹固定心脏，并连接灌流装置。
2. 灌流液准备：配制任氏液、氯化钙溶液、肾上腺素溶液、乙酰胆碱溶液等。
3. 实验分组：将实验分为对照组、氯化钙组、肾上腺素组、乙酰胆碱组。
4. 实验步骤：a. 对照组：灌流任氏液，观察心脏的收缩和舒张情况。
b. 氯化钙组：灌流氯化钙溶液，观察心脏功能的改变。
c. 肾上腺素组：灌流肾上腺素溶液，观察心脏功能的改变。
d. 乙酰胆碱组：灌流乙酰胆碱溶液，观察心脏功能的改变。
5. 记录数据：观察心脏的收缩和舒张频率、收缩幅度等，并记录数据。
五、实验结果与分析1. 对照组：心脏呈现规律的收缩和舒张，收缩幅度适中，频率约为60次/分钟。
2. 氯化钙组：心脏收缩幅度明显增大，频率加快，收缩时间延长，舒张时间缩短。
3. 肾上腺素组：心脏收缩幅度增大，频率加快，收缩时间延长，舒张时间缩短。
4. 乙酰胆碱组：心脏收缩幅度减小，频率减慢，收缩时间缩短，舒张时间延长。
六、实验结论1. 离体蛙心在灌流条件下可以维持一定时间的收缩和舒张功能。
2. 氯化钙和肾上腺素可以增强离体蛙心的收缩功能，使收缩幅度增大、频率加快。
蛙心搏的观察与描记期外收缩与代偿间歇和蛙类离体心脏灌流
蛙心搏的观察与描记期外收缩与代偿间歇和蛙类离体心脏灌流实验日期：5月7号室温：28℃一、实验对象与实验材料1.蛙3只2.常规手术器械、蛙板、蛙心夹、毁髓针、棉球、滴管、纱布、棉线、任氏液、小烧杯（或培养皿）、污物缸3.秒表（手机秒表）、两个针头（针灸针）、双针形露丝刺激电极、张力换能器、支架、滑轮、双凹夹、PowerLab生理实验系统、蛙心插管（斯氏套管）、套管夹4.0.65%NaCl溶液，5%NaCl溶液，2%CaCl2溶液，1%KCl溶液，1:5000肾上腺素，1:10000乙酰胆碱溶液，300U/ml肝素溶液二、实验方法与步骤(一）蛙的心搏观察1.双毁髓，暴露蛙心脏：小心剪去心包膜。
2.观察蛙心脏结构3.观察心搏过程，记录正常心跳次数4.斯氏第一结扎，观察记录静脉窦、心房和心室5.斯氏第二结扎，观察记录静脉窦、心房和心室6.重复步骤1制备另一个蛙心暴露，用于下面的心搏曲线实验（二）蛙的心搏曲线与心电图记录1.连接实验装置：PowerLab刺激输出线接双针形刺激电极，张力换能器接通道2，通道3生物电输入线接针形电极2.用蛙心夹轻夹心尖连接张力换能器，可用滑轮，棉线适当延长点，角度放低3.开机，打开chart软件，分别设置ch2和ch3放大参数，设置刺激为单脉冲。
4.针形电极插入蛙上下肢皮肤，连接通道35.观察正常的蛙心搏曲线和心电图记录（三）期外收缩与代偿间歇实验1.在方法二的基础上，将刺激电极放到心室部位，注意尽量不影响心脏的收缩舒张2.分别在心室的收缩期，舒张早期、中期和晚期给予适当强度单脉冲（阈上刺激），观察期外收缩和代偿间歇的发生。
3.保存数据4.进入方法四，制备蛙的离体心脏灌流装置（四）蛙离体心脏灌流装置1.双毁髓，暴露蛙的心脏，分辨连接蛙心脏的血管：动脉圆锥、左主动脉和右主动脉，静脉与静脉窦2.用斯氏蛙心插管法制备离体蛙心。
（五）离体心脏灌流实验项目1.记录正常心搏曲线，准备好加药标记，以下实验过程中保持chart连续不停的记录2.滴加0.65%NaCl溶液并标记，观察到心搏明显变化后，吸去套管内溶液并同时做冲洗标记，用新鲜的任氏液清洗2~3次，待心搏曲线恢复正常。
离体牛蛙实验报告
1. 观察离体牛蛙心脏在任氏液中的活动规律；2. 掌握牛蛙心脏灌流实验的操作方法；3. 了解心脏生理学的基本知识。
二、实验材料1. 实验动物：牛蛙1只；2. 实验仪器：蛙心夹、张力换能器、铁架台、滴管、任氏液等；3. 实验药品：任氏液、低钙任氏液、5%洋地黄溶液、1%氯化钙溶液。
三、实验方法1. 取牛蛙1只，用探针破坏脑及脊髓，背位固定于蛙板上。
先剪开胸部皮肤，再剪除胸部肌肉及胸骨，打开胸腔，剪破心包膜，暴露心脏。
2. 制备离体牛蛙心脏：在主动脉分支处下穿一线，打好松结，备结扎套管之用。
于左主动脉上剪一“V”形小口，插入盛有任氏液的蛙心套管，通过主动脉球转向左后方，同时用镊子轻提动脉球，向插管移动的反方向拉，即可使套管尖端顺利进入心室。
见到套管内的液面随着心搏上下波动后，将松结扎紧并固定在套管的小钩上。
用滴管吸去套管内血液，以防止血块堵塞套管。
3. 结扎右侧主动脉，剪断主动脉，持套管提起心脏，自静脉窦以下把其余血管一起结扎，分离周围组织，在结扎处下剪断血管，使心脏离体。
并用任氏液连续换洗，至无血色，使插管内保留左右的任氏液。
4. 将蛙心套管固定于铁架台，用带有长线的蛙心夹在心舒期夹住心尖部，将长线连于张力换能器。
5. 打开电脑及BL-410生物信号采集系统，调整参数，开始实验。
6. 分别观察和记录以下指标：（1）心脏收缩强度和频率；（2）心脏节律；（3）心脏对强心苷和钙离子的反应。
1. 在任氏液中，离体牛蛙心脏出现规律性的收缩和舒张，收缩强度和频率相对稳定。
2. 加入5%洋地黄溶液后，心脏收缩强度和频率明显增强。
3. 加入1%氯化钙溶液后，心脏收缩强度和频率进一步增加。
4. 在低钙任氏液中，离体牛蛙心脏收缩强度和频率明显降低。
五、实验分析1. 在任氏液中，离体牛蛙心脏的活动主要依赖于心脏自身的内在节律性。
2. 洋地黄作为一种强心苷，可以增强心肌收缩力，使心脏收缩强度和频率增加。
3. 钙离子是心肌收缩的重要物质，增加钙离子浓度可以增强心肌收缩力。
蛙心灌流实验报告
实验二离体蛙心灌流实验专业：学号：姓名：一、实验目的1.学习离体器官（蛙心）灌流的方法。
2.观察理化因素对蛙心活动的影响。
二、实验原理蛙心的灌流:蛙心无营养性血管，离体之后采用人工灌流的方法，仍可保持其新陈代谢，心脏仍能有节律的自动收缩、舒张，并维持较长时间，心肌的营养是通过心脏内膜液体的直接渗透而得。
心肌：1.含有NaCl、CaCl2、KCl、NaH2PO4、Na2HPO4和蒸馏水，其电解质、晶体渗透压、pH值与蛙的组织液相近。
2.0.65%NaCl灌流：3.2%CaCl2灌流：4.1%KCl灌流：5.1:10000 E灌流6.1:10000 Ach灌流7.心得安β1受体阻断剂，抑制肾上腺素与β1受体结合，使E不能发挥作用。
8.阿托品M受体阻断剂，抑制Ach减慢心率，加速房室传导，增加心房收缩力。
三、 实验器材离体蛙心任氏液、l ％KCl 溶液、2％CaC12溶液、0.65%NaCl 溶液、1:10000 肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、心得安、阿托品四、 实验步骤五、 结果与分析心率：34次/min 最大收缩力：2.5g 最小收缩力：1.1g图1 正常脉搏曲线心率：35次/min 最大收缩力：1.6g 最小收缩力：1.1g图2 0.65%NaCl 灌流脉搏曲线任氏剂 0.65%NaCl任氏液清洗2%CaCl 2任氏液清洗1%KCl任氏液 2.药物试剂E 任氏液清洗 心得安+E 任氏液清洗Ach任氏液清洗 阿托品+Ach任氏液1.离子试剂分析：细胞外液中Ca2+浓度降低，2期Ca2+内流减少，胞浆中Ca2+减少，心肌收缩力降低。
心率：38次/min最大收缩力：3.5g最小收缩力：1.1g图3 2%CaCl2灌流脉搏曲线分析：心肌的舒缩活动与心肌肌浆中的钙离子浓度的高低有关。
心肌肌浆网不发达，储钙能力差，易受细胞外钙离子浓度高低影响。
细胞外液中Na+与Ca2+有竞争性抑制，细胞外液Ca2+浓度升高，细胞兴奋时内流Ca2+增加，心肌收缩力增强。
离体蛙心灌流实验报告
离体蛙心灌流实验报告离体蛙心灌流实验报告近年来，科学技术的快速发展为人类探索生命奥秘提供了更多的工具和方法。
其中，离体器官实验是一种常见的研究手段，通过将动物器官分离出来进行实验，可以更深入地了解其结构和功能。
本文将介绍一项离体蛙心灌流实验，探究心脏的工作原理和血液循环。
实验开始时，我们首先需要准备实验所需的器材和材料。
实验器材包括显微镜、注射器、导管等，材料则包括新鲜的蛙心和生理盐水。
在实验室的洁净台上，我们小心地将蛙心取出，并用生理盐水清洗，以确保实验的准确性和可靠性。
接下来，我们需要进行灌流的准备工作。
首先，将蛙心放置在显微镜下，用显微镜观察心脏的结构和血管的分布。
通过观察，我们可以清晰地看到心脏的主要组成部分，如心房、心室和动脉、静脉等。
然后，我们将准备好的生理盐水注入注射器中，并连接导管。
在注射器中注入适量的生理盐水，以保持心脏的湿润，并确保血液循环的正常进行。
接下来，将导管插入心脏的主动脉，并将生理盐水缓慢地注入心脏内。
随着生理盐水的注入，我们可以观察到心脏开始跳动，并将血液推送到体内各个组织和器官。
这个过程中，我们可以通过显微镜观察到心脏的收缩和舒张，以及血液在血管中的流动情况。
这一实验过程不仅让我们更加深入地了解了心脏的工作原理，还帮助我们理解了血液循环的过程。
通过实验观察，我们可以发现心脏的跳动是有规律的，每次跳动都是由心房和心室的收缩和舒张所控制。
心脏的收缩将血液推送到动脉中，而心室的舒张则使血液回流到心脏中。
这种有序的跳动和血液流动保证了氧气和养分的输送，维持了身体各个组织和器官的正常功能。
除了观察心脏的跳动和血液流动，我们还可以通过实验进一步研究心脏的特性和功能。
例如，我们可以改变生理盐水的浓度，观察心脏的反应。
我们还可以加入药物，以模拟不同的生理和病理情况，进一步研究心脏的适应性和反应能力。
通过离体蛙心灌流实验，我们不仅可以深入了解心脏的结构和功能，还可以探究血液循环的机制。
实验九 蛙心搏、期外收缩和蛙类离心脏灌流实验报告
实验九蛙心搏、期外收缩和蛙类离心脏灌流实验报告一、实验目的1. 掌握蛙心的解剖结构和工作原理，并观察蛙心的搏动过程。
2. 了解心肌细胞的兴奋-收缩-舒张过程，以及期外收缩的产生机制。
3. 熟悉蛙类离心脏的实验操作，并观察各种药物对心脏的影响，探讨其作用机制。
二、实验原理蛙类的心脏是由一颗位于胸腔前部的三室心组成。
其中，右心房和左心房各有一条静脉，分别将经肺静脉和腺肾静脉传来的氧合和未氧合的血液输送至心脏内。
右心房与右心室之间的收缩和舒张是由房室瓣的开合控制，左心房和左心室之间的开合也由同样的机制控制。
而心室的收缩和舒张则由心室肌的兴奋-收缩-舒张过程控制。
心肌细胞内的兴奋-收缩-舒张过程是由钙离子的参与而实现的。
在兴奋过程中，钙离子通过钙通道进入心肌细胞内，激活钙离子释放通道。
随后，大量储存于肌浆网内的钙离子被释放，与肌动蛋白和肌球蛋白结合，完成收缩过程。
而舒张过程则是通过钙离子的泵出和重新储存，中和细胞内钙离子浓度的过程实现的。
3. 期外收缩的产生机制期外收缩是指心脏在一次收缩之后，未等到下一次正常的收缩期间，发生的非正常收缩。
其产生的机制有多种，例如亢进性心脏不全、电解质紊乱等。
常常以不适当的时间、频率和强度出现，是导致心脏病态的一种常见表现。
4. 蛙类离心脏的实验操作蛙类离心脏实验是一种通过将心脏从蛙身体内取出，放置于丁字管内进行灌流的实验方法。
可以通过此方法观察心脏的生理特性和药物对心脏的影响。
三、实验步骤1. 观察蛙心将待解剖的蛙取出，用无菌针和剪刀顺着蛙体的腹部进行切割，取出腹腔内的全部器官。
将心脏取出，用手术刀切开心房腔，观察心室肌的收缩和舒张过程。
2. 观察期外收缩将蛙心摆放于活体镜下，使用生物放大镜观察其搏动过程。
在正常收缩的期间，使用心电图记录下搏动；而在期外收缩的出现时，同样使用心电图记录下其搏动过程。
将蛙取出，用针头在腹腔内进行穿刺，将心脏的左心室和肺动脉连接起来。
在心脏的左侧，放置一个温度计和液压传感器，调整其高度，使其处于代表静脉回流的位置。
离体蛙心灌流实验报告
一、实验目的1. 学习离体器官（蛙心）灌流的方法。
2. 观察理化因素对蛙心活动的影响。
3. 掌握实验操作技巧，提高实验技能。
二、实验原理离体蛙心灌流实验是生理学实验中的一个重要实验，通过人工灌流的方法，使离体蛙心在适宜的生理条件下保持正常节律性收缩和舒张。
实验原理如下：1. 蛙心无营养性血管，离体后采用人工灌流的方法，仍可保持其新陈代谢，心脏仍能有节律的自动收缩、舒张，并维持较长时间。
2. 心肌的营养是通过心脏内膜液体的直接渗透而得。
3. 通过改变灌流液中的离子浓度、pH值等理化因素，可以观察蛙心活动的变化，了解理化因素对心脏活动的影响。
三、实验对象与用品1. 实验对象：蟾蜍2. 实验用品：斯氏蛙心套管、蛙心夹、蛙板、蛙类手术器械、二道仪、任氏液、长滴管、铁支架、生理盐水、KCl溶液、CaCl2溶液、肾上腺素、乙酰胆碱等。
四、实验方法与步骤1. 实验准备：将蟾蜍仰卧固定于蛙板上，用剪刀剪开胸壁，暴露心脏。
用蛙心夹夹住蛙心尖部，固定在蛙板上。
2. 动脉插管：在主动脉分支下预埋一条棉线，结扎主动脉左支，剪一向心斜切口，插入斯氏蛙心套管，送入动脉球。
3. 连接实验装置：将蛙心套管与二道仪相连，记录蛙心活动。
4. 灌流液准备：配制正常灌流液（任氏液）和实验灌流液（分别含有不同离子浓度的生理盐水、KCl溶液、CaCl2溶液、肾上腺素、乙酰胆碱等）。
5. 实验操作：a. 将蛙心置于正常灌流液中，观察蛙心活动，记录心率、收缩幅度等指标。
b. 分别将蛙心置于不同实验灌流液中，观察蛙心活动的变化，记录心率、收缩幅度等指标。
c. 对比分析不同灌流液对蛙心活动的影响。
五、实验结果与分析1. 正常灌流液条件下，蛙心以正常节律收缩和舒张，心率适中，收缩幅度适中。
2. 在0.65%NaCl溶液替换任氏液后，蛙心收缩幅度稍微减小，收缩力稍微减弱。
分析原因：相当于细胞外环境中缺乏Ca2+，动作电位2期Ca2+内流减少，胞浆中Ca2+减少，心肌收缩力降低。
实验六 蛙心灌流
【实验步骤】
一、离体牛蛙心脏制备
1.取蟾蜍一只，破坏脑和脊髓。 2.打开胸腔，暴露心脏。
（腹面）
（背面）
3. 蛙心插管
♦ 在主A干下穿一线打 一松结；在左主A下再 穿一线结扎。
♦ 在A圆锥、左主A根部 剪口，将蛙心插管插入 心室内。
插管插入心室标志 见血液涌入插管内，并随心跳上下波动。
4.将松结线扎紧，并固定在插管的侧管上。
【实验目的】
用离体蛙心灌流的方法观察：
① Na+、K+、Ca2+ ② E、Ach
对心脏活动的影响
【实验对象】
【实验器材和药品】
BL-420S生物机能实验系统 张力换能器、蛙心夹 蛙心插管、试管夹 缝合线、双凹夹 万能支台 蛙类手术器械 滴管两只
任氏液 0.65％NaCl l％KCl 3％CaC12 l：10,000 E l：10,000 ACh 3％乳酸 2.5％NaHCO3
1. 任氏液：正常对照
5. 1:10000E（1～2滴）
与心肌β1受体结合
cAMP
Ca2+内流↑ 肌浆网释放Ca2+↑
4期 If 、I CaT通道↑ 4期自动去极速度↑
自律性↑
E-C耦联↑ 收缩力↑
心率↑
【结果分析】
1. 任氏液：正常对照 6. 1:10000Ach（1滴）
与心肌M受体结合 K+外流↑, Ca2+内流↓
♦ 须待心跳恢复正常后，才能进行下一实 验项目。
♦ 每次换液时，蛙心插管内液面应保持相 同高度。
♦ 吸管使用要分开，不可混淆。
【实验结果】
顺序 观察项目
1 任氏液 2 0.65%NaCl 3 3%CaCl2 4 1%KCl 5 1:10000 E 6 1:10000 Ach 7 5%NaCl
蛙类心博观察及
【实验结果】
顺序 1 2 3 4 5 6 7 8 观察项目 任氏液 0.65%NaCl 3%CaCl2 1%KCl 1:10000 E 1:10000 ACh 3% 乳酸 2.5% NaHCO3 药量 灌流 灌流 1~2滴 1~2 滴 1~2 滴 1 滴 1 滴 2~4 滴 心肌收缩力 正常 减弱
--蛙心灌流
三. 观察项目
（一）描记正常心搏曲线
曲线的幅度 —— 心脏收缩的强弱
曲线的疏密 —— 心率的快慢 曲线的规律性—— 心跳的节律性 曲线的基线 —— 心室舒张的程度
㈡. 观察项目
顺序 1 2 3 4 5 6 7 8 观察项目 任氏液 0.65%NaCl 3%CaCl2 1%KCl 1:10000 E 1:10000 ACh 3% 乳酸 2.5% NaHCO3 药量 灌流 灌流 1~2滴 1~2 滴 1~2 滴 1 滴 1 滴 2~4 滴 心肌收缩力
【讨论】
1. 任氏液：做对照 2. 0.65%NaCl灌流 [Na+]o↑→Na+内流↑→ Na+-Ca2+交换↑ → [Ca2+]i↓ →兴奋—收缩耦联↓ →收缩力↓。
3. 3%CaCl溶液
[Ca2+]o ↑ → Ca2+内流↑ → [Ca2+]i↑ →兴奋—收 缩耦联↑ →收缩力↑ 舒张期Ca2+与肌钙蛋白不完全解离，基线上移 产生Ca2+强直
动生实验报告——实验九 蛙心搏的观察与描记,期外收缩和代偿间歇
华南师范大学实验报告学生姓名 学 号 专 业年级班级课程名称人体及动物生理学实验实验项目实验九 蛙心搏的观察与描记，期外收缩和代偿间歇蛙心灌流 实验类型 验证 设计 综合 实验时间 年 月 日 实验指导老师 实验评分1.实验目的1. 学习暴露蛙类心脏的方法和蛙类心脏的描记方法2. 熟悉蛙心的结构和各部分的自动节律性活动3. 观察两栖类动物心脏的正常起搏点和心脏不同部位传导系统的自动节律性高低4. 给予在心脏活动的不同时期刺激，观察心脏兴奋性周期变化的规律以及心肌收缩的特点2.实验原理心肌的生理特性表现为兴奋性、自律性和传导性。
其自律性取决于心脏的特殊传导系统，但心脏各部分的自动节律性高低不同。
正常情况下，心脏起搏点窦房结（两栖类动物是静脉窦）的自律性最高，它产生的自动节律性兴奋向外扩布，并以此传到心房、房室交界区、心室，引起整个心脏兴奋和收缩，则静脉窦（窦房结）被称为正常起搏点，而心脏其他部位受窦房结（静脉窦）的控制不表现其自身的自律性，仅起着兴奋传导的作用，故称之为潜在起搏点。
在某些病理情况下，窦房结的兴奋因传导阻滞不能控制其他自律组织的活动，或者其他自律组织自律性增高，则心房或心室就会受当时自律性最高的组织发出的兴奋性节律的控制进行活动，这些异常的起搏点部位称为异位起搏点。
在一个心动周期中，兴奋性会经历有效不应期、相对不应期、超常期等一系列周期性变化。
其显著特点是有效不应期特别长，相当于整个收缩期和舒张期早期，在此期间施加任何刺激都不能引起心肌的再次兴奋和收缩。
但在心肌舒张的早期之后（中晚期之内，相当于相对不应期和超常期），给予刺激可使心肌产生一次比正常节律提前出现的动作电位和收缩，称为期前兴奋和收缩。
而期前兴奋和收缩也有自己的有效不应期，所以当下一次正常窦房结的节律性冲动到达时，常常会落在这个有效不应期内，因而不会引起心肌的兴奋和收缩，会出现一个较长的舒张期，称为代偿性间歇。
如果窦性心律过慢，当期前兴奋的有效不应期结束时，窦性兴奋才传到心室，则可引起心室的一次新的收缩，而不会出现代偿性间歇。
蛙类心搏过程的观察与描记
二、观察心脏的结构
从心脏的腹面可看到一个心室，其上方有 两个心房，房室之间有房室沟。心室右上 方有一动脉圆锥（动脉根部的膨大）。动 脉干向上分成左右两分支。用蛙心夹夹住 少许心尖部肌肉，轻轻提起蛙心夹，将心 脏倒吊，可以看到心脏背面有节律搏动的 静脉窦。在心房与静脉窦之间有一条白色 半月形界线，称为窦房沟。前、后腔静脉 与左、右肝静脉的血流流入静脉窦。
在房室交界处穿线，准确的结扎房室沟，称 为斯氏第二次结扎。待心室恢复搏动后，计 数每分钟心脏各部分的搏动次数。
实验结果
项目/频率 （次/min） 对照 静脉窦 47 心房 47 34 心室 47 34
斯氏第一结扎 47
斯氏第二结扎 45
32
0
【注意事项】
思考题
1. 实验结果说明心肌的哪些生理特 性？ 心肌具有自律性、兴奋性、传导性 和收缩性，前三者为心肌的电生理 特性，收缩性是心肌的一种机械特 性，它们共同决定着心脏的活动。
蛙类心搏过程 的观察与描记
【目的要求】
1.
2. 3.
学习暴露蛙类心脏的方法， 熟悉心脏的结构。 观察心脏各部分自动节律性 活动的时相及频率。 学习在体蛙类心脏活动的描 记方法。
心房、心室、动脉圆锥、静脉窦 房室沟、窦房沟（白色半月形界线）
【基本原理】
两栖类动物的心脏为两个心房、一心室， 心脏的起搏点是静脉窦。静脉窦的自动 节律很高，心房次之，心室最低。 正常情况下，心脏活动节律服从静脉窦 的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、 心室。这种有节律的活动可以用机械方 法或通过换能器记录下来，称为心搏曲 线。
2. 心肌的不应期较长有何生理意义？
心室肌特长的不应期有重要的生理学 意义，它可以确保心搏有节律地工作 而不受过多刺激的影响，不会象骨骼 肌那样产生强直收缩从而导致心脏泵 血功能的停止。这一特性有利于心脏 进行长期不疲劳的舒缩活动，维持射 血功能。
蛙心搏的观察与描记
蛙心搏的观察与描记蛙是一种充满活力和生命力的动物，经常可以在夜晚静谧的环境中听到它们的叫声。
作为一名科学爱好者，我对蛙的生理机能产生了浓厚的兴趣，尤其是蛙的心脏搏动。
以下是我对蛙心搏进行的观察与描记。
我选择了一只普通的蛙进行观察，它的身体呈椭圆形，皮肤光滑而湿润。
在观察开始之前，我将蛙放置在一个透明的玻璃容器中，并将其置于一个安静的环境中，以确保观察的准确性。
当我注意到蛙的心脏搏动时，我立即开始计数。
我发现蛙的心脏搏动非常规律，每分钟大约有60到70次。
蛙的心脏位于胸腔内，由两个心房和一个心室组成。
它们通过一系列的收缩和扩张来推动血液循环。
通过放大镜的观察，我可以清晰地看到心房和心室的搏动。
当心房收缩时，它会将氧合血液推入心室，而心室则通过强大的收缩将血液推入主动脉和其他血管中。
每一次心脏搏动都伴随着一系列的收缩和松弛，并伴有明显的跳动感。
在观察过程中，我还注意到蛙心脏搏动的速度会受到一些因素的影响。
例如，当蛙处于紧张或恐惧的状态时，心脏的搏动速度会明显加快。
另外，温度的变化也会对蛙心脏的搏动产生影响。
在较低的温度下，蛙的心脏搏动会减慢，而在较高的温度下，心脏搏动会加快。
在观察蛙心脏搏动时，我还注意到蛙的皮肤上有一条细小的血管网络。
这些血管通过皮肤表面，将氧合血液输送到身体各部位。
蛙的皮肤是呼吸的重要器官之一，可以通过皮肤与周围环境进行气体交换。
通过这次观察，我对蛙心搏有了更深入的了解。
蛙的心脏搏动是一种复杂而又精密的生理现象，它推动着血液循环，为蛙的身体提供充足的氧气和营养物质。
这种观察和描记的过程也让我深深地感受到了生命的奇妙和多样性，同时也增强了我对科学的兴趣和探索的欲望。
通过这次观察，我意识到还有许多关于蛙心搏的未知之处。
更深入的研究可能会揭示更多关于蛙心脏搏动的神秘之处，帮助我们更好地理解生物的生理机能。
因此，我希望能够继续探索和研究这个有趣而又复杂的领域，为生命科学增添一份微薄的贡献。
生理学实验报告-蛙心灌流
蛙类离体心脏灌流一、【目的要求】1、学习离体蛙心灌流法。
2、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh),乳酸对离体心脏活动的影响。
二、【原理】将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩，心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分，观察其对心脏活动的作用。
心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。
外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。
三、【实验仪器】青蛙、常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。
套管夹、0．65％NaCl、2％CaCl2、1％KCl、1：10000肾上腺素、1：10000乙酰肌碱、3%乳酸。
四、【方法与步骤】1、斯氏蛙心插管法（1）一只青蛙，双毁髓后背位置于蜡盘中，按前面的方法暴露心脏。
仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。
在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎(动物个体小时，结扎位置可靠上些)。
再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备用。
左手提起主动脉上的结扎线，右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。
选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量(套管内2～3 cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管，山开口处插入动脉圆锥(见右图)。
当套管尖端到达动脉圆锥基部时，应将套管稍稍后退，使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进，经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插入，但不可插得过深，以免心室壁堵住套管下口)。
此时可见套管中血液冲人套管，并使液面随心脏搏动而亡下移动，表明操作成功(否则需退回并重新插入)。
用滴管吸去套管中的血液，更换新鲜任氏液。
实验 蛙心脏灌流、蛙心起搏点的观察、收缩与代偿间歇
[思考题 思考题] 思考题
1.正常情况下，为什么静脉窦是蟾蜍心脏的起搏点？ 正常情况下，为什么静脉窦是蟾蜍心脏的起搏点？ 正常情况下 它对潜在起搏点如何控制？ 它对潜在起搏点如何控制？ 2.每次结扎后会出现什么现象，为什么？ 每次结扎后会出现什么现象， 每次结扎后会出现什么现象 为什么？ 3.如何证实心肌有较长的不应期？心肌的较长不应 如何证实心肌有较长的不应期？ 如何证实心肌有较长的不应期 期有何生理意义？ 期有何生理意义？ 4.期前收缩后一定出现代偿间歇吗？为什么？ 期前收缩后一定出现代偿间歇吗？ 期前收缩后一定出现代偿间歇吗 为什么？ 5.代偿间歇是怎样产生的？ 代偿间歇是怎样产生的？ 代偿间歇是怎样产生的 6.为何期前收缩幅度有时比正常心缩幅度高，有时 为何期前收缩幅度有时比正常心缩幅度高， 为何期前收缩幅度有时比正常心缩幅度高 比正常心缩幅度低？ 比正常心缩幅度低？ 7.为何心肌有期前收缩而骨骼肌不会出现？ 为何心肌有期前收缩而骨骼肌不会出现？ 为何心肌有期前收缩而骨骼肌不会出现
[实验原理 实验原理] 实验原理
1. 两栖类动物的心脏解剖 两栖类动物的心脏解剖 2. stannius结扎 结扎
[实验器材 实验器材] 实验Fra bibliotek材动物： 动物：蟾蜍 仪器及药品：蛙类手术器械，丝线，任式液。 仪器及药品：蛙类手术器械，丝线，任式液。
[方法步骤 方法步骤] 方法步骤
1.破坏脑脊髓 。 破坏脑脊髓 2. 仰卧位固定于蛙板上。 仰卧位固定于蛙板上。 3.打开胸腔暴露心脏 ，观察心脏的结构 。 打开胸腔暴露心脏 4. 斯氏结扎，记录结果。 斯氏结扎，记录结果。
2、仪器设备的安装连接：
（1）将蛙心插管用木夹子固定在铁三脚架上。 （2）在木夹子的下方，将张力传感器固定在铁 三脚架上。 （3）将夹在蛙心尖上的蛙心夹上的丝线系在张 力传感器的簧片小孔上。线的松紧适度。 （4）张力传感器与放大器 CH1相连；打开循 环实验—蛙心灌流，开始实验。
离体蛙心灌流实验报告
离体蛙心灌流实验报告
实验目的，通过离体蛙心灌流实验，观察心脏在不同药物作用下的生理变化，
为心脏药理学研究提供实验数据。
实验材料与方法，取新鲜的蛙心，进行离体灌流实验。
首先，将蛙心置于离体
心脏灌流装置中，通过主动脉插管进行心脏灌流。
然后，分别加入不同药物溶液，如肾上腺素、乙酰胆碱等，观察心脏的生理变化。
实验过程中，记录心脏的心率、收缩力、舒张力等指标，并进行统计分析。
实验结果，在加入肾上腺素后，观察到蛙心的心率明显增加，心脏收缩力增强，舒张力减弱；而在加入乙酰胆碱后，心率明显减慢，心脏收缩力减弱，舒张力增强。
这些结果表明，肾上腺素具有增强心脏收缩力和加快心率的作用，而乙酰胆碱则具有减慢心率和减弱心脏收缩力的作用。
实验讨论，离体蛙心灌流实验是一种常用的心脏药理学研究方法，通过模拟体
内环境，观察心脏在不同药物作用下的生理变化。
本实验结果与心脏药理学理论相符，说明离体蛙心灌流实验是一种可靠的实验方法，能够为心脏药理学研究提供重要数据。
结论，通过离体蛙心灌流实验，我们观察到了心脏在不同药物作用下的生理变化，验证了心脏药理学理论。
这为心脏药物的研发和临床应用提供了重要参考，也为心脏疾病的治疗提供了新的思路和方法。
在今后的研究中，我们将进一步探索心脏药物的作用机制，寻找更多有效的心
脏药物，并将离体蛙心灌流实验应用于心脏药理学研究的更多领域，为心脏疾病的治疗和预防做出更大的贡献。
通过本次实验，我们对离体蛙心灌流实验有了更深入的了解，并对心脏药理学
研究有了更加清晰的认识。
希望本实验能为相关领域的研究工作提供一定的参考和帮助。
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蛙心搏的观察与描记，蛙类离体心脏灌流及期外收缩与代偿间歇一、实验目的：1、学习暴露蛙类心脏的方法，熟悉心脏的结构；2、学习在体蛙类心脏活动的记录方法，了解心脏的电活动与机械收缩活动的时相关系；3、学习离体蛙心灌流法；4、了解心肌的生理特性；5、观察Na+、K+、Ca2+离子对离体心脏活动的影响。
6、观察心脏各部位节律性活动的时相及频率；二、实验原理：两栖类动物的心脏为两心房、一心室，心脏的起搏点是静脉窦。
静脉窦的节律最高，心房次之，心室最低。
正常情况下，心脏的活动节律服从静脉窦的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、心室。
这种有节律的活动可以能过张力传感器在生理信号采集系统中记录下来，称为心搏曲线。
心脏收缩的机械活动，与心脏兴奋的产生、传导和恢复过程中的生物电变化，是两个不同的生理过程。
心脏收缩的机械活动可以能过心搏曲线记录下来，而心脏的生物电变化可以能过心电图表现了来。
同时记录心脏的机械活动与电变化，可以清梦地观察到两个生理过程之间对应关系。
心肌的机能特性之一是具有较长的不应期，整个收缩期都处于有效不应期内。
在心室收缩期给以刺激，心室都不发生反应，在心室舒张中后期给以单个阈上刺激，则产生一次正常节律以外的收缩反应，即期前收缩。
当静脉窦传来的节律性兴奋恰好落在期外收缩的收缩期时，心室不再发生反应，须静脉窦传来下一个兴奋才会收缩。
因此在期外收缩之后，就会出现一个较长时间的舒张间歇期，即代偿间歇。
三、实验材料：蛙、蛙心套管、套管夹、支架、蛙心夹、双凹夹、蛙板、滑轮、常用手术器械、秒表、滴管、棉线、任氏液、肝素、5%Nacl溶液、2�cl2溶液、1%Kcl溶液、计算机采集系统、张力传感器、两个针形插入电极四、实验步骤：1、蛙心搏的观察与描记：1）暴露动物心脏：取一只蛙，双毁髓后背位臵于拉盘内，剪开胸腔，创口呈倒三角形；一手持眼科镊，提起心包膜，另一手用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。
2）观察心脏结构：先从腹面观察心室、心房、动脉圆锥、左右主动脉、房室沟；再从背面观察静脉窦、窦房沟、前后腔静脉。
3）进行结扎手术、观察心搏过程：仔细观察静脉窦、心房及心室收缩的顺序和频率，并作记录；在主动脉干下方穿一条线，将心脏翻向头端，沿窦房沟作结扎，称斯氏第一结扎，观察心脏各部分搏动节律的变化，用秒表计数每分钟的搏动次数；在房室交界处穿线，结扎房室沟，称斯氏第二结扎，待心室恢复搏动后，计数每分钟心脏各部分搏动次数。
2、蛙类离体心脏灌流：1）离体蛙心的制备：双毁髓，将蛙胸腔剪开呈倒三角形，剪开心包膜，暴露心脏。
将右主动脉结扎，在左主动脉剪一斜口，用滴有任氏液和肝素的蛙心套管沿左主动脉插入心室腔内，此时可见血液冲入套管，并使液面随心脏搏动而上下移动，表明操作成功。
用滴管吸取套管中的血液，更换新鲜的任氏液。
稳定住套管后，结扎左主动脉。
轻轻提起套管和心脏，结扎上下腔静脉，剪断有牵连的组织和血管，使心脏离体。
用任氏液反复冲洗心室内余血，使套管内灌流液不再有残留血液，保持套管内液面高度一致，即可进行实验。
2）实验观察：a)连接好实验装臵，打开软件，记录正常心搏曲线。
b)向套管内滴加5%Nacl溶液，做好加药标记，观察心搏曲线的频率及振幅变化。
当曲线出现明显变化时，立即更换任氏液，待心搏恢复正常。
c)向套管内滴加1—2滴1%Kcl溶液，记录心搏曲线变化，当心搏曲线变化时，更换任氏液，待心搏恢复正常。
d)向套管内滴加1—2滴2�cl2溶液，记录心搏曲线变化，当心搏曲线变化时，更换任氏液，待心搏恢复正常。
3、期外收缩与代偿间歇1）暴露动物心脏：取一只蛙，双毁髓后背位臵于拉盘内，剪开胸腔，创口呈倒三角形；一手持眼科镊，提起心包膜，另一手用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。
2）记录正常心搏曲线：打开生理信号采集系统，接通张力传感器输入通道。
蛙心夹的系统与张力传感器的应变梁孔连接，使心脏的收缩活动在屏上显示。
将刺激电极安放在心室外壁，使之既不影响心搏又能同心室紧密接触。
记录正常心搏曲线为对照。
3）观察心室肌的期外收缩与代偿间歇的产生：选择能引起心室发生期外收缩的刺激强度，分别于心室收缩期和舒张期的早中晚给予单个刺激，观察心搏曲线的变化。
五、实验结果：1、蛙心搏的观察与描记：1）心脏的结构：a 、蛙心是由1心室2心房构成的，从心脏的腹面可以看到一个心室，其上方有两个心房（但分界不明显），房室之间有房室沟，心室右上方有一 动脉圆锥，是动脉根部的膨大，动脉干向上分成左右两分支，即左主动脉和右主动脉。
b 、将心脏倒吊之后，从心脏的背面可以看到一心房、两心室、房室沟，此外，还可以看到静脉窦（颜色暗红），心房与静脉窦之间有一条白色半月形界线，称窦房沟，沿窦房沟做一结扎，称为斯式第一结扎；在房室交界处结扎房室沟，称为斯式第二结扎。
2）心搏的过程级变化情况:表1、斯氏结扎记录表实验项目频率/次 min-1 静脉窦 心房 心室 对照第一结扎第二结扎 50 47 42 50 26 16 50 26 10观察实验现象可知：正常生理条件下发现静脉窦、心房、心室三者节律性一致，跳动次数相等；斯氏第一结扎后，静脉窦按原来的节律收缩，而心房、心室收缩次数明显减少；斯氏第二结扎后，静脉窦仍然保持原来的节律跳动，而心房收缩慢于静脉窦，心室的收缩节律明显慢于前两者，可以说明心室收到收缩信号要晚于心房，心室此时在以自己的节律进行收缩，明显慢于心房。
根据此实验可以总结出心脏节律性的传导规律：静脉窦 心房 心室。
2、蛙类离体心脏灌流：图1：只加任氏液从图1可知：只加入任氏液，可以在计算机采集系统里看到两个波，前面那个较小的是由心房产生的波，而后面较大的波为心室产生。
其波形跟生理信号采集系统采集的蛙心心搏曲线（图5）较相似，因此，相对于下面的实验来说，加入任氏液属于空白对照组，记录的是正常情况下蛙心的心搏跳动曲线；加入其它试剂则为实验组，记录在不同的试剂中，心搏曲线图。
图2：加入5%NaCl从图2可知：在刚刚加入0.5%NaCl的时候，蛙心心脏跳动随着时间的延长而减弱，如图2上图，并且在曲线图中，其心房跳动变小，基本上看不见；随着时间的延长，0.5%NaCl对心脏的影响减小，心脏跳动逐渐恢复，如图2下图。
图3：加入1%KCl从图3可看出，用1%KCl灌注蛙心时，蛙心脏跳动减弱。
图4：加入2�Cl2从图4可知：用2�Cl2灌注蛙心时，蛙心脏收缩力增强，在曲线中，只能看到一个波形即心室跳动的波；若时间再延长，心脏跳动会由于过分抽搐而停止，使图成一条直线的现象，即“钙僵”。
如果长时间“钙僵”，即使去掉CaCl溶液，改为任氏液。
也不能再使心脏恢复跳动。
3、期外收缩与代偿间歇图5：正常情况图6：期外收缩与代偿间歇图7：收缩期刺激从图5、6、7可以看出：正常情况下（没有外界刺激），蛙心脏跳动会出现两个波，其中较大的波为心室跳动的波，可以分为上升的收缩期和下降的舒张期，其跳动的频率和波形的大小保持相对不变。
在心室收缩期给予一个刺激，由于心肌的不应期较长，整个收缩期都处于不应期内，所以其不会发生反应如图7；当在心室的舒张期给予一个阈上刺激时，则会使其产生一次正常节律以外的收缩，并且这个收缩的强度大于原来心室收缩强度，此则为期外收缩如图6；若在期外收缩的收缩期再给予一个刺激，心室同样不会发生反应，而要等静脉窦下一次兴奋时才会收缩，在期外收缩之后有个较长时间的舒张间歇期，称为代偿间歇，如图6。
六、实验分析和讨论：1、正常生理条件下发现静脉窦、心房、心室三者节律性一致；斯氏第一结扎后，静脉窦收缩的节律不变，而心房、心室收缩次数明显减少；斯氏第二结扎后，静脉窦仍然保持原来的节律，心房收缩慢于静脉窦，而心室的收缩节律明显慢于前两者。
根据此实验可以总结出心脏节律性的传导规律：静脉窦心房心室。
由于心脏节律是由静脉窦传导心房再传递到心室，因此，结扎之后，使信号传导受阻，于是在结扎后面的心房或心室节律收到明显的抑制；而当第二结扎之后，基本上在短期内无法看到心室的跳动，这是因为前面两个结扎，使传导到心室的信号已很弱。
2、心肌组织具有兴奋性、自律性、传导性和收缩性四种生理特性。
心肌的收缩性是指心肌能够在肌膜动作电位的触发下产生收缩反应的特性，它是以收缩蛋白质之间的生物化学和生物物理反应为基础的，是心肌的一种机械特性。
兴奋性、自律性和传导性，则是以肌膜的生物电活动为基础的，故又称为电生理特性。
心肌组织的这些生理特性共同决定着心脏的活动。
心肌细胞每产生一次兴奋，其膜电位将发生一系列有规律的变化，膜通道由备用状态经历激活、失活和复活等过程，兴奋性也随之发生相应的周期性改变。
兴奋性的这种周期性变化，影响着心肌细胞对重复刺激的反应能力，对心肌的收缩反应和兴奋的产生及传导过程具有重要作用。
心室肌细胞一次兴奋过程中，其兴奋性的变化可分以下几个时期：绿色为相对应的心电图，红色为相对应的心室肌动作电位的变化，蓝色为心室肌机械收缩的变化)：（1）绝对不应期(absolute refractory period)和有效不应期(effective refractive period)：从除极开始至复极达-55mV这一时间内，无论给与多大的刺激，心肌细胞均不产生反应，称为绝对不应期。
从-55mV复极到-60mV这段时间内，给与强刺激可使膜发生部分除极或局部兴奋，但是不能爆发动作电位，称为有效不应期。
（2）相对不应期(relative refractory period)：从复极-60mV到约-80mV 的时期。
此期间内，用大于正常阈值的强刺激才能产生动作电位。
（3）超常期(supernormal period)：从复极的-80mV到-90mV的时期，在此期间用低于正常阈值的刺激就能产生动作电位的爆发。
3、细胞在发生一次兴奋过程中，兴奋性发生周期性变化是所有神经和肌组织共同的特性；但心肌细胞的有效不应期特别长，一直延续到机械反应的舒张期开始之后。
因此，只有到舒张早期之后，兴奋性变化进入相对不应期，才有可能在受到强刺激作用时产生兴奋和收缩。
从收缩开始到舒张早期之间，心肌细胞不会产生第二个兴奋和收缩。
这个特点使得心肌不会像骨骼肌那样产生完全强直收缩而始终作收缩和舒张相交替的活动，从而使心脏有血液回心充盈的时期，这样才可能实现其泵血功能。
但是心室肌可以产生不完全强直收缩。
为证明这一理论，对心室肌进行串刺激，不断加大刺激的频率，分析得到的波动曲线，发现心房的搏动没有明显变化，但心室的搏动逐渐减弱，直到出现不完全强直收缩的现象。
实验结果见下图：4、正常情况下，窦房结产生的每一次兴奋传播到心房肌或心室肌的时间，都是在它们前一次兴奋的不应期终结之后，因此，整个心脏能够按照窦房结的节律而兴奋。
但如果心室在有效不应期之后受到人工的或窦房结之外的病理性异常刺激，则可产生一次期前兴奋，引起期前收缩或额外收缩。