临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送课件
采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样
端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
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收集中段尿液5-10ml，及时送检。
室温保存下不得超过2小时，否则应置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖，因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏，
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征：
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•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养：
1.粪便涂片白细胞>5个/HP；
2.体温>38℃;
3.重症腹泻；
4.脓血便；
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人；
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
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采集：
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后马
上将第2支（或第1支）送至实验室。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送：
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
应该采多少血量？
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即
微生物标本的采集与运送
（二）血液标本
对怀疑导管相关血流感染，又需保留导管的患者:
采集2份血液标本
1份通过外周静脉采集 1份通过导管采集。
小结
细菌培养鉴定难, 标本留取是关键, 医护人员齐挑担, 合理用药百姓赞。
3.组织：经穿刺或手术活检获得标本，穿刺组 织可放入1.5ml无菌离心管中；
4.体表伤口可接收细菌培养的条件： 鳞状上皮细胞数<10个/低倍视野，并有多
形核白细胞存在
（二）送检：立即送检，建议不超过1小时送达
（一）导管头: 采用无菌性技术，获取插入患者体内最远端的
导管段约5cm，置于无菌容器送检；不能置于生理 盐水或转运培养基中运送。
采血套数与检出率
J C lin Microbiol.2007;45:3546-3548
需氧瓶
采
血
厌氧瓶
试
管
标本不够时, 先满足需氧瓶
1、 已采集的血培养标本必须立即送检， 2. 如不能立即送检，可室温放置，但不超过2小 时，不可放冰箱。
取后不能及时送, 常温放置忌冰冻。
二、尿液标本的采集
1、中段尿 2、导管尿（不能取尿袋内的尿液） 3.膀胱穿刺尿 常用：中段尿（晨尿或在膀胱内停留4h以上的尿液）
1、抗生素治疗之前
若已使用抗生素者，应在下次用药前或血药浓度
最低时采集标本。 2、患者寒战时
发热要做血培养, 双侧双瓶少漏网；
何时采血要记清, 寒战前后菌量深；
3.发热初期或高峰时
超过发热峰值后，病原菌会逐渐被机体免疫系统 清除，从而减低检出率。
特别提示:
采集前非常关键的一步:
皮肤和瓶子的消毒
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集与运送标准操作流程
临床微生物标本采集与运送标准操作流程下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。
第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。
第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。
第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。
第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。
第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程血培养是一种常见的检测方法，适用于疑似血流感染的患者。
当患者出现寒战、体温超过38℃或低体温时，应考虑进行血培养检测。
特别是对于存在以下情况的患者，更应该抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72小时；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑患者可能存在血流感染，应立即采血做血培养。
最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后采集，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程一）消毒对于培养瓶，应使用消毒液进行消毒，并等待其干燥后再使用。
对于皮肤，应使用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上。
待消毒液挥发干燥后（常需30秒以上），再进行穿刺采血。
二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头。
如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头。
先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
三）注意事项检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4.关于细菌性心内膜炎的血培养方法：需要在24小时内取血3次，每次间隔不少于30分钟；如果必要，可以在次日再做2次血培养。
5.采血量的要求：推荐采用培养基与血液1：10的比例，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
临床微生物标本规范化采集和送检
四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）、标本情况（标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达，冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时，应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前，应对创面彻底清洁，且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征：
由于烧伤的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时， 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官，标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在，采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖，采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三）采集方法
（1）男性：取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口，用灭菌纱布 或棉球擦干，用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2～4厘米取分泌物，置无菌试管中。如无 脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩，促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本，尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位，如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此，从这些部位采集标本，要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训，确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器， 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
临床微生物标本的正确采集及运送
患者出现以上一种或同时具备几种临床表现时可作为血 培养的重要指征
血液标本的采集与运送
2、血培养标本的采集时间 尽可能在患者寒战或开始发热时采血 在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经使用抗生素进行治疗，应在下一次用药
前采血
血液标本的采集与运送
3、血培养标本的采集 ⑴皮肤消毒程序：严格执行以下3步法：①75%酒 精擦拭静脉穿刺部位待30s以上，②再用1%-2%碘 酊作用30s或10%碘伏作用90s以上，从穿刺点向外 画圈消毒，至消毒区域直径3cm以上；③最后用 75%酒精脱碘。如对碘过敏的患者，可用75%酒精 消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。 注意：不允许在消毒后按压静脉，除非戴有无菌手 套
化脓和创伤标本的采集与运送
采集方法 ⑴未破裂脓肿：在采集标本前，对患者病灶局部的
皮肤或黏膜表面，用2.5%—3%碘酊消毒、75%酒精 脱碘，用无菌注射器将脓肿内容物吸出,然后切开脓 肿、引流，采集的脓液（>1ml）,并取部分脓肿壁置 于厌氧运送装置或接种于厌氧培养基中立刻送检。 注意不主张用拭子采集标本。
血液标本的采集与运送
5、血培养采集的次数 ⑴对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时 或短时间间隔（10分钟内）从不同部位（如双臂） 采集2套血培养标本，做到“双瓶双侧”。如有必 要，可同时或短时间间隔内从下肢静脉采血接种第 3套培养瓶。在采集血培养后的2-5天内，不需要重 复采集血培养。当采血量不能满足推荐的采血量时， 应首先接种需氧瓶。 ⑵婴幼儿患者，需要同时采集2次（不同部位）血培 养标本。
穿刺液标本的采集及运送
2、标本运送 采集后应正确盖好，防止泄露或容器外部留有残留
物。 标本应在15min内送检。若不能及时送检室温保存
不超过24h。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送
第14页
样本搜集基础标准
1.及时采集微生物标本作病原学检验 2.在抗菌药品使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后马上送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 6.送检标本应注明起源和检验目标
向外画圈消毒，至消毒区域直径达 5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常 需30s以上）穿刺采血。
临床微生物标本采集与运送
第26页
（三）静脉穿刺和培养瓶接种
成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头 内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头 （假如行第二次穿刺或用头皮针取血时， 应换针头）
先注于厌氧瓶培养瓶，防止注入空气，然 后注入需氧瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
临床微生物标本采集与运送
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表皮葡萄球菌临床意义
阳性套数
1 1 2 1 2 3
采集套数
1 2 2 3 3 3
临床意义 ％
0 2 60 0 75 100
污染可能 无法确认
％
％
97
3
95
3
3 37
100
0
0 25
0
0
采集1套无法判 断是病原菌还 是污染菌。
2－3套血培养，有利于污染判断。
Tokars, JI. Clin Infect Dis ; 39:333
第20页
对不能及时送检样本储存方法
储存环境
标本起源
4℃冰箱 35-37℃温箱
室温
尿液、粪便（含寄生虫检验）、 鼻腔、咽喉样本；霉菌培养标本
CSF（脑脊液），淋病检验样本，血液培养 瓶（或室温）
临床微生物标本的正确采集与运送图文
临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。
本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。
一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。
例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。
1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。
下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。
采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。
常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。
尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。
采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。
中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。
呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。
采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。
常见的方法有喉拭子和气管切开。
胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。
采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。
常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。
1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。
采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。
二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。
消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。
2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。
进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。
2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。
应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。
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临床微生物标本采集与运送LG GROUP system office room 【LGA16H-LGYY-LGUA8Q8-LGA162】临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程(一)消毒1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
(三)注意事项1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。
四、运送要求1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2 h内。
如果不能及时送检，宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。
2．送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。
3．安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
五、报告要求(一)紧急口头(电话)报告血培养出现阳性报警时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头(电话)报告。
口头报告包含以下内容，并记录在案。
(1)报告者全名(或工号)；(2)报告的时间；(3)所联系医生的全名(或工号)；(4)报告镜检结果并强调其紧急价值；(5)确认临床医生收到报告并复述结果。
(二)最终结果(书面)报告(1)无菌生长(培养5天无需氧菌和厌氧菌生长)；(2)阳性培养结果(最终鉴定结果、最终药敏结果)。
(三)其他报告和记录1．标本被拒收时，需即刻通知临床立即重新采血，并记录在案。
2．最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需立即通知临床，同时必须在书面报告上提供正确的结果，注明变更的内容。
3．其他需临床注意的事项的记录，如：采血量不足、标本转运时间过长、标本采集份数不够等二、痰标本采集与运送标准操作规程一、采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
二、一般原则1．采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2．宜采集清晨第二口痰液。
3．对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24 h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4．怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
三、采集方法(一)自然咳痰法与雾化导痰法1．用物准备：无菌容器(盒)、生理盐水(250 ml或500 m1)、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．无痰或痰量极少者可用3％～5％氯化钠溶液5 ml雾化吸入约5 min后留取痰液。
4．如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。
(二)支气管镜法鼻或口腔插人支气管镜。
常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。
(三)经人工气道吸引法1．用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器(试管)、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．将患者头部转向操作者一侧。
4．进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压(成人：40．0～53．3 kPa；小儿：<40．0 kPa)。
5．将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。
6．折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15 s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2 min)。
7．将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
四、运送和保存应在2 h之内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24 h。
三、手术部位感染标本采集及运送标准操作规程一、一般原则1．在抗菌药物使用前，且仅在有临床感染症状或伤口恶化或长期不愈合时采集标本。
2．皮肤或黏膜表面的清洁。
(1)闭合伤口和穿刺物标本：消毒方法同血培养标本的皮肤消毒(见《血培养标本采集和运送标准操作规程》)。
(2)开放伤口：无菌生理盐水充分冲洗伤口部位。
不可以用消毒剂。
3．采集新鲜的感染组织，避免采集浅表的组织碎屑。
4．若可以采集穿刺物或活检标本，应避免拭子标本。
二、容器1．较大的标本：含有少量生理盐水的带螺纹口的无菌塑料容器。
2．标本较小或拭子标本：MW&E TRANSWAB运输培养基，适用于需氧和厌氧菌。
三、采集方法(一)封闭性脓肿1．注射器穿刺抽取脓液。
2．若无法抽到脓液，应先皮下注射少量无菌生理盐水，再次穿刺抽吸脓液；若脓液过多，应先切开引流，在基底部或脓肿壁采集标本。
脓液的量以大于1 ml为宜。
3．排除注射器内部及针头的气体，用无菌橡皮塞封闭针头送检；或直接打人血培养瓶中。
疑为厌氧菌，应迅速将脓液打人厌氧血培养瓶中。
(二)组织和活检标本1．采集足够大的组织，体积以1mm为宜，避免在坏死区域采集。
2．将小块的组织放在运输培养基内；较大的放在无菌容器中，并加入少量无菌生理盐水。
(三)开放伤口1．无菌生理盐水彻底冲洗浅表部位，去除表面的渗出物和碎屑。
2．用拭子深入伤口的基底部或伤口一正常组织边缘部采集两个标本，分别用于培养和革兰氏染色。
四、标本的标识填写患者信息、标本类型(深部组织、表浅组织、脓肿和穿刺物等)、标本的来源(腹腔、腿和上臂等)，记录标本采集的日期和时间及是否在使用抗菌药物前采集，选择检查项目(需氧培养或厌氧培养)。
五、标本的送检为了更好地分离病原菌，标本应在采集后的30 min内送到实验室。
送检时应保持标本的湿润(尽量采用运输培养基，组织可以放在生理盐水中)。
在送检前或运送过程中，禁止将标本放于冰箱。
若不能及时送检，运输培养基中标本应室温保存，但最长不可超过24 h。
四、尿液标本采集和运送标准操作规程一、采集时机宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
二、采集方法(一)清洁中段尿1．女性：采样前用肥皂水或0．1％的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10～20ml于无菌容器内。
2．男性：采样前用肥皂水或0．05％～0．1％的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口，擦干后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10～20 ml于无菌容器(二)耻骨上膀胱穿刺主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。
先用0．25％的聚维酮碘溶液等消毒液消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿液10～20 ml于无菌容器内。
(三)导尿管尿1．直接导尿法：使用0．05％～0．1％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约15 ml，再留取中段尿液10～20 ml于无菌容器内。
2．留置导尿管法：医院内尿路感染中，临床最常用此法。
采集前先夹住导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用o．25％～0．5％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10～20 ml尿液于无菌容器内。
3．回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，先用0．05％～0．1％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒吻合口，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集 10～20 ml尿液于无菌容器内。
(四)小儿收集包对于无自控能力的小儿可应用收集包采集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。
如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。
三、标本运送标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过2 h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存)。
如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8 h。
四、注意事项1．不应从集尿袋中采集尿液。
2．尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
3．若尿液培养前患者曾使用抗菌药物，应反复多次送检。
4．多次采集或24 h尿不应用于尿液培养。
5．除非进行流行病学调查，不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。
6．培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等，进行综合判断。