大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录
微生物检测原始记录之欧阳道创编
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菌落总数与大肠菌群检验原始记录
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菌落总数和大肠菌群检测原始记录
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水质微生物检验原始记录
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主检：年月日校核：年月日
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乳酸菌与大肠菌群检测记录
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主检：年月日校核：年月日
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致病菌检验原始记录
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主检：年月日校核：年月
日
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霉菌和酵母菌检验原始记录
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培养温度：28±1℃培养时间：年月日时 --- 年月日时：
菌落计数：
培养温度：28±1℃培养时间：年月日时 --- 年月日时
主检：年月日校核：年月日
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商业无菌检验原始记录
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主检：日期：校核：日
期：。
微生物检测原始记录之欧阳科创编
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菌落总数与大肠菌群检验原始记录
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菌落总数和大肠菌群检测原始记录
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水质微生物检验原始记录
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乳酸菌与大肠菌群检测记录
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致病菌检验原始记录
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霉菌和酵母菌检验原始记录
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培养温度：28±1℃培养时间：年月日时年月日
时：
菌落计数：
培养温度：28±1℃培养时间：年月日时年月日
时
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商业无菌检验原始记录
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大肠菌群检验原始记录(第二法)
原始记录
共页；第页项目名称大肠菌群样品编号
使用设备名称电热恒温培养箱手提式压力蒸汽消毒器
试验方法标准GB 4789.3-2010(第二
法)
环境条件温度℃，相对湿度 %
以无菌操作将检样25g置于225mL灭菌生理盐水中，混匀后，做成检验所用稀释液：分别将待检样品稀释液接种于2个VRBA平板混匀，待琼脂凝固后，再加3mL-4mLVRBA覆盖平板表层。
翻转平板，置于36℃±1℃温箱内，培养18h-24，计数典型和可疑菌落。
选取典型菌落或可疑菌落进行证实试验，观察产气情况。
稀释度
典型菌落总数cfu/ml n 1
n 2
n 3
n 4
n 5
证实试验从VRBA平板上挑取10个典型菌落或可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管，36℃±1℃温箱内，培养24h-48h.凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
检测结果
备注n为同一批次产品应采集的样品件数；c为最大可允许超出m值的样品数；m为致病菌指标可接受水平的限量值;M为致病菌指标的最高安全限量值
检验人员校核人员检验日期校核日期。
大肠菌群检验原始记录(第二法)
原始记录
共页；第页项目名称大肠菌群样品编号
使用设备名称电热恒温培养箱手提式压力蒸汽消毒器
试验方法标准GB 4789.3-2010(第二
法)
环境条件温度℃，相对湿度 %
以无菌操作将检样25g置于225mL灭菌生理盐水中，混匀后，做成检验所用稀释液：分别将待检样品稀释液接种于2个VRBA平板混匀，待琼脂凝固后，再加3mL-4mLVRBA覆盖平板表层。
翻转平板，置于36℃±1℃温箱内，培养18h-24，计数典型和可疑菌落。
选取典型菌落或可疑菌落进行证实试验，观察产气情况。
稀释度
典型菌落总数cfu/ml n 1
n 2
n 3
n 4
n 5
证实试验从VRBA平板上挑取10个典型菌落或可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管，36℃±1℃温箱内，培养24h-48h.凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
检测结果
备注n为同一批次产品应采集的样品件数；c为最大可允许超出m值的样品数；m为致病菌指标可接受水平的限量值;M为致病菌指标的最高安全限量值
检验人员校核人员检验日期校核日期。
生产用水水质微生物检验原始记录
菌落总数、大肠菌群检验原始记录编号：002 品名：取样日期：取样量：一、菌落总数(实验仪器：SP-02型生化培养箱，LX-01型立式压力蒸汽灭菌器)1.检测设备：培养箱：℃，高压蒸汽灭菌锅温度：℃，压强：Mpa ，灭菌时间：min2.检测条件：温度：℃，湿度：%检测方法：GB4789.2-2016用刻度吸管吸取样品液1ml注入9ml无菌生理盐水的试管中混匀，制成1：10的样品均液。
按上述操作，制成10倍系列稀释样品均液。
根据对样品污染状况的估计，选择2-3个稀释度，每个稀释度分别吸取1ml样品稀释均液加入2个平皿内，同时分别吸取1ml无菌生理盐水加入2个无菌平皿做空白对照。
倾注15ml-20ml 46 ℃左右的PCA培养基，静置冷却，倒置于36±1℃的恒温培养箱中培养48h±2h。
二、大肠菌群(实验仪器：SP-02型生化培养箱，LX-01型立式压力蒸汽灭菌器)1.检测设备：培养箱：℃，高压蒸汽灭菌锅温度：℃，压强：Mpa ，灭菌时间：min2.检测条件：温度：℃，湿度：%培养开始：年月日时，培养结束：年月日时，培养时间：h检测方法：GB/T 4789.3-2003用刻度吸管吸取样品液1ml注入9ml无菌生理盐水的试管中混匀，制成1：10的样品均液。
按上述操作，制成10倍系列稀释样品均液。
根据对样品污染状况的估计，选择2-3个稀释度，每个稀释度接种三管。
将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管中，接种量在1ml以上者，用双料乳糖胆盐发酵管，1ml及1ml以下者，用单料乳糖胆盐发酵管，每个稀释度接种三管，置于36±1℃的恒温培养箱中培养24h±2h ，如果所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性，如有产气者，则将产气的发酵管分别转接种在伊红美蓝琼脂平板上，置于36±1℃的恒温培养箱中培养18h±2h，然后取出观察菌落形态，并做革兰氏染色和证实试验。
大肠菌群检验原始记录(第二法)
原始记录
共页；第页项目名称大肠菌群样品编号
使用设备名称电热恒温培养箱手提式压力蒸汽消毒器
试验方法标准GB 4789.3-2010(第二
法)
环境条件温度℃，相对湿度 %
以无菌操作将检样25g置于225mL灭菌生理盐水中，混匀后，做成检验所用稀释液：分别将待检样品稀释液接种于2个VRBA平板混匀，待琼脂凝固后，再加3mL-4mLVRBA覆盖平板表层。
翻转平板，置于36℃±1℃温箱内，培养18h-24，计数典型和可疑菌落。
选取典型菌落或可疑菌落进行证实试验，观察产气情况。
稀释度
典型菌落总数cfu/ml n 1
n 2
n 3
n 4
n 5
证实试验从VRBA平板上挑取10个典型菌落或可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管，36℃±1℃温箱内，培养24h-48h.凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
检测结果
备注n为同一批次产品应采集的样品件数；c为最大可允许超出m值的样品数；m为致病菌指标可接受水平的限量值;M为致病菌指标的最高安全限量值
检验人员校核人员检验日期校核日期。
大肠菌群检验原始记录-平板计数法
-
阴性
报告人
报告日期
复核人
复核日期
将以上 VRBA 平板倒置于 36.0±1℃，培养 18h~24h（2022/xx/xx xx 时~2022/xx/xx xx 时） 并分别计数 可疑和典型菌落。 4.证实试验(接种 BGLB)
选取菌落数在 15~150CFU 之间的平板，从 VRBA 平板上挑取 10 个不同类型的典型和可疑菌落，少于 10 个 菌落的挑取全部典型和可疑菌落，分别移种于 BGLB 肉汤管内，36℃±1℃培养 24h~48h，观察产气情况。 5.结果与报告 5.1 按“四舍五入”原则修约，保留 2 位有效数字，无菌落生长以＜1 乘以最低稀释倍数报告。 5.2 称重取样以 CFU/g 为单位报告,体积取样以 CFU/mL 为单位报告。
实验过程： 1.样品处理和稀释： 1.1 如需要，使用 0.1mol/L 氢氧化钠或 0.1mol/L 盐酸将样品调整 pH 在 6.5~7.5 之间。 1.2 制备样品稀释液
根据样品状态，无菌操作，称取/吸管吸取 25g（mL）样品，加入到 225mL 无菌磷酸盐缓冲液中均质（混 匀），制成 1:10 样品匀液。根据对样品污染情况的估计，按上述操作将样品稀释至所需浓度。 2.接种 VRBA
稀释度
10-1 稀释度
微生物检验原始记录(大肠菌群)
微生物检验原始记录(大肠菌群)检验原始记录编号：报告类别：微生物共页项目：大肠菌群coliforms 检验地点：样品名称：样品编号：样品状态：符合检验要求；其他境条件：实验依据及步骤GB4789.3-2016样品稀释固体和半固体样品：称取25g样品置盛有225ml生理盐水或磷酸盐缓冲液的无菌均质容器内均质，或放入盛有225ml稀释液的无菌均质袋中拍击式均质器拍打，制成为1:10样品匀液。
依次进行10倍递增稀释。
液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中混匀，为1:10样品匀液。
样品匀液的ph应在6.5-7.5之间，必要时分别用1mol/lNaOH或1mol/lHcL调节。
取1mL1∶10稀释匀液沿管壁缓缓注入9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用一支无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100样品匀液。
按上述操作顺序做10倍递增稀释液，每稀释一次，换用一支1mL灭菌吸量管。
从样品匀液制备到样品接种完毕，全过程不得超过15min。
初发酵试验（9管法）每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤）36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内是否有气泡产生。
产气者进行复发酵试验，未产气则继续培养至48±2h，产期进行复发酵试验。
未产气者为大肠菌群阴性。
复发酵试验（证实试验）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气情况。
数据分析与结果一、菌落计数根据证实为大肠菌群的阳性管数，查MPN检索表，报告大肠菌群的最可能数。
大肠菌群-原始记录
检测项目：菌落总数大肠菌群
样品名称
样品编号
样品状态和特性
生产单位
型号规格
使用仪器设备及试验环境
生化培养箱;压力蒸汽消毒锅
菌落总数
GB4789.2-2010
操作过程：
培养基
100
10—1
10—2
10—3
10—4
空白
cfu/ml（g）
平板计数琼脂培养基
注解：为进行此项目测试；+:阳性—:阴性（不产气）
微生物检验原始记录
检测项目：菌落总数大肠菌群
样品名称样品编号样品状态和来自性生产单位型号规格
使用仪器设备及试验环境
生化培养箱;压力蒸汽消毒锅
菌落总数
GB4789.2-2010
操作过程：
1、配制200mL平板计数琼脂培养基于250mL三角烧瓶中，配制0.85%的生理盐水300mL,分别吸取9mL生理盐水置于2个试管中，将三角瓶、试管加塞棉塞，用报纸包好。
煌绿乳糖胆盐肉汤
月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤
煌绿乳糖胆盐肉汤
月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤
煌绿乳糖胆盐肉汤
MPN/ml（g）
注解：为进行此项目测试；+:阳性—:阴性（不产气）
主检：检验日期：年月日验讫日期：年月日
6、选择样品匀液10-1、10-2、10-3，分别吸取1ml加入无菌平皿内，分别吸取1mL稀释液（无菌生理盐水）加入平皿内做空白。
7、将15-20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养就倾注平板内，并转动平皿，使其混合均匀，待琼脂凝固后将平皿翻转。
8、将平皿于36±1℃的生化培养箱内培养48h±2h,计数。
培养基
100
10—1
大肠菌群检验原始记录-平板计数法5样
10-1
24 26 10
10-2
3
2
0
10-3
0
0
0
BGLB 阳性管数
6
稀释度
第一稀释度 第二稀释度 第三稀释度
样
品 VRBA 疑似大肠菌群菌落数
5
接种 BGLB 管数
10-1
20 22 10
10-2
1
2
0
10-3
0
0
0
BGLB 阳性管数
7
VRBA 空白（仅 VRBA）
-
-
空 白
稀释液空白（稀释液+VRBA）
样品名称
xxxx
样品批次
2022xxxx
仪器设备及耗材： 天平：( xxxx) 培养箱: ( xxxx)
洁净工作台: (xxxx)
培养基及试剂： 结晶紫中性红胆盐琼脂培养基（VRBA）： xxxx 煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）： xxxx 磷酸盐缓冲液：xxxx 0.1mol/L 氢氧化钠：
配制日期 2022/xx/xx 配制日期 2022/xx/xx 配制日期 2022/xx/xx 配制日期：2022/xx/xx
实验过程： 1.样品处理和稀释： 1.1 如需要，使用 0.1mol/L 氢氧化钠或 0.1mol/L 盐酸将样品调整 pH 在 6.5~7.5 之间。 1.2 制备样品稀释液
根据样品状态，无菌操作，称取/吸管吸取 25g（mL）样品，加入到 225mL 无菌磷酸盐缓冲液中均质（混 匀），制成 1:10 样品匀液。根据对样品污染情况的估计，按上述操作将样品稀释至所需浓度。 2.接种 VRBA
-
-
BGLB 空白（仅 BGLB）
-
-
菌落总数、大肠菌群原始检验记录
大肠菌群检验原始记录
规格：
生产数量：
样品状态：
完好
异常
检验日期：
检验环境： 温度： ℃
湿度：RH
%
检验依据：《食品安全国家标准 蜜饯CB14884-2016》
检验方法：GB4789.3-2016（第二法）
操作过程： （1）吸取1ml样液于VRBA平板36℃培养24小时后，是否有沉淀环的紫红色菌落生产； （2）从合适稀释度上挑取典型和可疑菌落数（个）； （3）BGLB肉汤证实试验阳性管数。
样品序号
1 2 3 4 5 空白对照 典型和可疑菌落
稀释倍数
10-1
10-2
无 有
1
2
3
4
典型和可疑菌落
证实试验
最终结果 结论判定 检验员：
10-3
空白对照 数量
5
6
结果计算 （Cห้องสมุดไป่ตู้G/g）
备注
CFU/ml
7
8
9
10
复核员：
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霉菌和酵母菌检验原始记录
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培养温度：28±1℃培养时间：年月日时 ---年月日时：
菌落计数：
培养温度：28±1℃培养时间：年月日时 --- 年月日时
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大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录
微生物实验原始记录
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编号：
放入时培养
℃样品名称样品编号
箱温度
取出时培养
设备名称电热恒温培养箱(±1℃)设备编号DHP-9082
℃
箱温度
检验依据GB/T4789.2-2010 GB/T4789.3-2010样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml灭菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释
液。
取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1：100
的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释度吸取1ml于灭菌培养皿内，注入凉至46℃的营养琼脂15ml，混匀。
待营养琼
脂凝固后，翻转平板于36℃培养48h。
同时做空白对照。
样品匀液
10-110-210-3（10-i）
观察结果（C）
计算结果N
报告结果
CFU/g
主检：审核：检验日期：年月日
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主检：校核：检验日期：年月日
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主检：校核：检验日期：年月日
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微生物检测原始记录模版
菌落总数与大肠菌群检验原始记录
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细菌及大肠菌群检验记录
大肠菌群测定：
GB/T 4789.3-2010
2、复发酵试验：用接种环从产气的 LST 肉汤 管中分别取培养物 2～3 环，移种于煌绿乳糖 胆盐 （BGLB） 肉汤中， 36℃±1℃培养 48h±2h， 阴性对照
（取稀释剂 1ml 分别加在 3 支定 量 10ml LST 双 料或单料管内）
阴性。 （取 10ml 或 1ml 分别加在 3 支定量 10ml LST 双料或单料管内） 观察产气情况。未产气为阴性。 样 量
管 别
1:10 稀释样液
10ml（1g）双料管
1:10 稀释样液 1ml（0.1g）单料
1:100 稀释样液 1ml（0.01g）单料
1g
1 2 3 1
Байду номын сангаас0.1g
2 3 1
管 别
1:10 稀释样液
10ml（1g）双料管
1:10 稀释样液 1ml（0.1g）单料
1:100 稀释样液 1ml（0.01g）单料
1g
1 2 3 1
0.1g
2 3 1
0.01g
2 3 1
0g 2 3
1
2
3
1
2
3
1
2
3
24 小 时 48 小 时
标 示
结果（MPN/g）
报告（MPN/100g）
检验员：
0.01g
2 3 1
0g 2 3
1
2
3
1
2
3
1
2
3
24 小 时 48 小 时
标 示
结果（MPN/g）
报告（MPN/100g）
检验员：
长沙市天心区天锦食品加工厂微生物实验室 微生物检验原始记录
大肠菌落原始记录
×××产品质量计量检测所
产品检验原始记录
No
产品名称样品编号技术标准
检测地点温度湿度
大肠菌群的测定
一、设备和材料
培养箱（36℃±1℃）；恒温水浴锅（46℃±1℃）
二、操作步骤
1、称取（吸取）25g（ml），放于盛有225ml生理盐水的无菌锥形瓶中，充分混匀，制成1:10的样品匀液。
2、用1ml无菌吸管吸取1:10样品匀液1ml，沿管壁缓慢注于盛有9ml稀释液的无菌试管中，振摇试管使其混合均匀，制成1:10的样品匀液。
3、按上述操作程序，制备10倍系列稀释样品匀液，每递增稀释一次，换用一次1ml无菌吸管。
4、选择稀释度的样品匀液，每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，分别接种ml；ml；ml，在36℃±1℃培养24±2h，未产气者为大肠菌群阴性。
对产气者按下述进行复发酵实验。
5、用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48±2h，产气者，计为大肠菌群阳性管。
三、大肠菌群最可能数（MPN）的报告见下表
检验：审核：检验日期：。
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微生物实验原始记录
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编号：
放入时培养
℃样品名称样品编号
箱温度
取出时培养
设备名称电热恒温培养箱(±1℃)设备编号DHP-9082
℃
箱温度
检验依据GB/ GB/样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml灭菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释液。
取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1：100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释度吸取1ml于灭菌培养皿内，注入凉至46℃的营养琼脂15ml，混匀。
待营养琼脂凝固后，翻转平板于36℃培养48h。
同时做空白对照。
样品匀液
10-110-210-3（10-i）
观察结果（C）
计算结果N
报告结果
CFU/g
二、大肠菌群（MPN/100g）
以无菌操作将检样25g于225ml灭菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释液。
取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1：100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释梯度取1ml注入9mlLST接种试管，36℃培养48h。
主检：审核：检验日期：年月日
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主检：校核：检验日期：年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
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主检：校核：检验日期：年月日。