发酵工程实验
《发酵工程实验》教案：发酵培养基的制备和实罐灭菌
一、教案基本信息教案名称：《发酵工程实验》教案：发酵培养基的制备和实罐灭菌课时安排：2课时（90分钟）教学目标：1. 了解发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 掌握实罐灭菌的原理和操作技巧。
3. 能够独立完成发酵培养基的制备和实罐灭菌实验。
教学重点：1. 发酵培养基的制备方法。
2. 实罐灭菌的原理和操作技巧。
教学难点：1. 发酵培养基的配比和制备过程。
2. 实罐灭菌的注意事项。
二、教学内容和步骤第一课时：发酵培养基的制备1. 课堂导入（5分钟）介绍发酵培养基的概念和作用，引导学生了解发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 讲解发酵培养基的制备方法（15分钟）讲解培养基的配比、称量、溶解和调节pH等步骤。
3. 学生实验操作（45分钟）学生分组，按照发酵培养基的配比和制备方法进行实验操作，教师巡回指导。
4. 实验结果讨论（20分钟）学生展示实验结果，讨论发酵培养基制备过程中的问题和解决方法。
第二课时：实罐灭菌1. 课堂导入（5分钟）介绍实罐灭菌的概念和作用，引导学生了解实罐灭菌的原理和操作技巧。
2. 讲解实罐灭菌原理和操作技巧（15分钟）讲解高压蒸汽灭菌的原理、实罐灭菌的操作步骤和注意事项。
3. 学生实验操作（45分钟）学生分组，按照实罐灭菌的操作步骤进行实验操作，教师巡回指导。
4. 实验结果讨论（20分钟）学生展示实验结果，讨论实罐灭菌过程中的问题和解决方法。
三、教学评价1. 学生实验操作的准确性和熟练度。
2. 学生对发酵培养基制备和实罐灭菌原理的理解程度。
3. 学生在实验过程中解决问题的能力。
四、教学资源1. 实验材料：发酵培养基原料、实验用具、实罐等。
2. 实验仪器：天平、量筒、PH计、高压蒸汽灭菌器等。
五、教学建议1. 提前为学生讲解实验原理和操作步骤，确保学生明白实验目的和意义。
2. 在实验过程中，教师要密切关注学生的操作，及时纠正错误，确保实验安全。
3. 实验结束后，引导学生积极讨论实验结果，提高学生的实验分析和解决问题的能力。
《发酵工程实验》
《发酵⼯程实验》实验⼀淀粉酶⽣产菌的筛选⼀、实验⽬的学习淀粉酶产⽣菌的筛选⽅法。
⼆、实验原理淀粉酶在酿造、纺织、⾷品加⼯、医药等领域有⼴泛⽤途。
淀粉酶是⼀类淀粉⽔解酶的统称，它能将淀粉⽔解成糊精等⼩分⼦物质并进⼀步⽔解成麦芽糖或葡萄糖，淀粉被⽔解后，遇碘不再变蓝⾊，因此可根据淀粉培养基上透明圈的⼤⼩来判断所选菌株的淀粉酶活⼒。
三、实验⽤品1．样品淀粉含量丰富的⼟样。
2．培养基⾁汤培养基：⽜⾁膏3g，蛋⽩胨10g，NaCl 5g，加⽔⾄1000ml，pH7.0。
121℃灭菌20min。
初筛平板培养基：⽜⾁膏3g，蛋⽩胨10g，NaCl 5g，可溶性淀粉2g，琼脂18g，加⽔⾄1000ml，pH7.4。
121℃灭菌20min。
Lugol碘液：碘1g，碘化钾2g，蒸馏⽔300ml。
先将碘化钾溶解在少量⽔中，再将碘溶解于碘化钾溶液中，待碘全溶后，加⾜⽔即可。
3．器材⾼压蒸汽灭菌锅，超净⼯作台，电⼦天平，电炉，恒温振荡器，恒温培养箱；烧杯，量筒，三⾓瓶，培养⽫，移液管，洗⽿球，试管，试管架，接种针，涂布棒。
四、实验⽅法1．培养基制备：配制⾁汤培养基45ml，分装于250ml三⾓瓶中，纱布封⼝，灭菌。
配制初筛平板培养基350ml，分装于500ml三⾓瓶中，封⼝膜封⼝，灭菌。
2．倒平板：将融化的初筛平板培养基冷却⾄50～60℃，以⽆菌操作法倒⾄已灭菌的培养⽫中，⾄盖满底部。
冷却凝固待⽤。
3．样品预处理：取5g⼟样接⼊45ml⾁汤培养基中，30℃摇床振荡15min制成⼟壤悬液，此时的稀释度为10-1。
另取4⽀试管，分别记作10-2、10-3、10-4、10-5共5个梯度，每⽀试管内加⼊9mL⽆菌⽔。
⽤⽆菌移液管从三⾓瓶中吸取1mL⼟壤悬液，加⼊到10-2试管中混匀，再从此试管中吸取1mL加⼊到10-3试管中，依此类推直⾄10-5试管。
4．平板涂布分离：分别从不同稀释度的试管中吸取0.1ml悬液，均匀涂布于初筛培养基平板上，于30℃培养24～48h。
发酵工程实验
发酵⼯程实验发酵⼯程实验 Prepared on 24 November 2020实验⼀酸奶的制作与乳酸菌的活菌计数（5学时）实验⽬的：1、学习并掌握酸奶制作的基本原理与⽅法。
2、了解市售酸奶的⽣产⼯艺。
3、掌握乳酸菌活菌计数⽅法与操作。
实验原理：乳酸菌在乳中⽣长繁殖，发酵分解乳糖产⽣乳酸等有机酸，导致乳的pH值下降，使乳酪蛋⽩在其等电点附近发⽣凝集。
乳酸菌属于兼性厌氧微⽣物，在⽆氧条件下⽣长繁殖较好，实验室条件下利⽤混菌培养的⽅法，尽可能让乳酸菌在⽆氧条件下⽣长，每个单菌落代表⼀个微⽣物细胞。
实验内容：（⼀）酸奶制作1、10%脱脂奶粉溶解于热⽔（80℃左右）中，充分搅拌均匀，配成调制乳；2、添加蔗糖：为了缓和酸奶的酸味，改善酸奶⼝味，在调制乳中加⼈4-8％的蔗糖。
3、灭菌：⽅法有两种：将乳加热⾄90℃，保温5min；4、接种：往冷却到43-45℃灭过菌的乳中加⼊乳酸菌，接种量为2%-5%。
5、分装：酸奶受到振动，乳凝状态易被破坏，因此，不能在发酵罐容器中先发酵然后再进⾏分装，须是将含有乳酸菌的⽜乳培养基先分装到⼩容器中，加盖后送⼊恒温室培养，在⼩容器中发酵制成酸奶。
6、发酵：发酵的温度保持在40-43 ℃，⼀般发酵时间为3-6h。
发酵终点的确定有两种⽅法：1）检测发酵奶的酸度，达到65-70 T°。
2）倾斜观察，瓶内酸奶流动性差，⽽且瓶中部有细微颗粒出现。
7、冷却：发酵结束，将酸奶从发酵室取出，⽤冷风迅速将其冷印到10℃以下，⼀般2 h，使酸奶中的乳酸菌停⽌⽣长，防⽌酸奶酸度过⾼⽽影响⼝感。
8、冷藏和后熟：经冷却处理的酸奶，贮藏在2-5℃的冷藏室中保存。
9、感官指标1）⾊泽：⾊泽均匀⼀致，呈乳⽩⾊，或稍带微黄⾊。
2）组织状态：凝块稠密结实均匀细腻，⽆⽓泡，允许少量乳清析出。
3）⽓味：具有清⾹纯净的乳酸味，⽆酒精发酵味，⽆霉味和其他外来不良⽓味。
（⼆）乳酸菌活菌检测①、检测培养基：蛋⽩胨15g，⽜⾁膏5g，葡萄糖20g，氯化钠5g，碳酸钙10g，琼脂粉20g，⽔1000ml，115～121℃灭菌20min，灭菌后放置⽔浴52℃保温备⽤。
发酵工程综合实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵工程的基本原理和操作方法；2. 掌握微生物的培养、分离、鉴定及发酵条件优化等实验技术；3. 提高实验操作能力和数据分析能力。
二、实验原理发酵工程是一门研究微生物发酵过程及其应用的科学。
通过发酵工程，可以利用微生物的代谢活动生产出各种有用的产品，如食品、医药、化工产品等。
本实验主要涉及微生物的培养、分离、鉴定及发酵条件优化等实验技术。
三、实验材料与仪器1. 材料：土壤样品、牛肉膏蛋白胨培养基、葡萄糖、酵母提取物、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁、琼脂等；2. 仪器：高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、显微镜、电子天平、pH计、发酵罐、酒精灯、试管、培养皿等。
四、实验方法1. 微生物分离与纯化（1）土壤样品的采集与处理：在校园内采集土壤样品，将土壤样品过筛，去除杂质，备用；（2）牛肉膏蛋白胨培养基的制备：按照实验要求，称取牛肉膏、蛋白胨、葡萄糖、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁等试剂，加入适量的水，搅拌均匀，煮沸10分钟，待冷却后加入琼脂，搅拌均匀，倒入培养皿中，待凝固；（3）土壤样品的接种：将处理好的土壤样品稀释，取适量涂布在牛肉膏蛋白胨培养基上，置于恒温培养箱中培养；（4）分离纯化：观察菌落特征，挑选单菌落进行纯化，重复以上步骤，直至获得纯化菌株。
2. 微生物鉴定（1）观察菌落特征：观察纯化菌株在牛肉膏蛋白胨培养基上的菌落特征，如菌落大小、形状、颜色、边缘等；（2）显微镜观察：将纯化菌株进行涂片、染色，在显微镜下观察菌体形态、染色特性等；（3）生化试验：进行糖发酵试验、氧化酶试验、淀粉酶试验等，鉴定菌株的生理生化特性。
3. 发酵条件优化（1）发酵培养基的制备：根据实验要求，称取葡萄糖、酵母提取物、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁等试剂，加入适量的水，搅拌均匀，煮沸10分钟，待冷却后加入琼脂，搅拌均匀，倒入发酵罐中；（2）发酵条件优化：通过改变发酵温度、pH值、接种量、发酵时间等条件，观察发酵产物的产量和品质，确定最佳发酵条件。
发酵工程实验报告总结
发酵工程实验报告总结发酵工程实验是一项非常重要且广泛应用的实验，通过实验，我们可以了解到发酵过程中的微生物生长和代谢规律，提高发酵过程的效率和产物质量。
本次实验主要涉及到发酵过程中的控制变量，发酵过程中微生物的生长和代谢规律的研究以及发酵过程中产物的分析等内容。
通过本次实验，我了解到了发酵过程中的一些基本原理和技术，对发酵工程有了更加深入的认识。
在实验中，我们首先进行了菌种的培养和优选。
通过实验，我们了解到菌种的选择和培养过程对发酵过程中的微生物生长和产物质量具有重要的影响。
通过对不同菌种的筛选和培养条件的优化，我们可以选择到合适的菌种，并使其生长状况良好，提高发酵过程的效率。
在实验中，我们还进行了发酵过程的控制变量的研究。
通过对发酵过程中温度、pH值、氧气供应等因素的控制，我们可以调节微生物的生长速度和产物的合成效率。
实验结果表明，控制变量对发酵过程中的微生物生长和产物质量具有明显的影响。
因此，合理地控制发酵过程中的各项参数是提高发酵效率和产物质量的关键。
在实验中，我们还对发酵过程中微生物的生长和代谢规律进行了研究。
通过对微生物数量、生物量、细胞代谢产物等指标的测定和分析，我们可以了解到微生物在不同生长阶段的代谢特点和变化规律。
实验结果表明，微生物生长和代谢过程中有明显的生长阶段和代谢阶段的变化，我们可以根据这些变化规律来调节发酵过程中的控制变量，提高发酵效率。
最后，在实验中，我们还对发酵过程中产物的分析进行了研究。
通过对发酵产物的组成、含量、纯度等指标的分析和测定，我们可以评估发酵过程的效果和产物质量。
实验结果表明，发酵产物的组成和含量与微生物的生长和代谢过程密切相关，通过调节好发酵过程中的控制变量和选择合适的菌种，我们可以获得高质量的发酵产物。
综上所述，发酵工程实验是一项非常重要和有意义的实验，通过实验，我们可以了解到发酵过程中的微生物生长和代谢规律，探索调节发酵过程的控制变量以提高发酵效率和产物质量的方法。
高中生物发酵工程实验教案
高中生物发酵工程实验教案实验目的：1. 了解发酵工程的基本原理和应用。
2. 掌握发酵工程实验中的操作技能。
3. 熟悉实验室安全操作规范。
实验器材与试剂：1. 发酵罐2. 酵母菌培养基3. 酵母菌4. 厌氧罐5. 恒温槽6. 蒸馏水7. 酵母菌培养皿8. 培养皿针管9. 安全手套、护目镜实验步骤：1. 准备工作：洗手、穿戴实验室用具，准备好实验所需的器材和试剂。
2. 实验前操作：将酵母菌培养基均匀涂抹在培养皿上。
3. 发酵罐操作：将酵母菌埋在发酵罐里，放入恒温槽中，控制温度。
4. 培养皿操作：取一定量的酵母菌培养基，注入培养皿中，用培养皿针管均匀涂抹在培养皿上。
5. 结果观察：观察培养皿和发酵罐中酵母菌的生长情况，记录相关数据。
实验注意事项：1. 操作时注意个人安全，保持实验室清洁整洁。
2. 操作实验器材时要轻拿轻放，避免损坏。
3. 实验结束后，将实验器材清洁干净，妥善归还。
4. 发酵罐操作时要注意控制温度，避免温度过高或过低影响实验结果。
实验总结与讨论：1. 通过观察实验结果，分析酵母菌在不同条件下的生长情况。
2. 总结发酵工程实验中的关键操作技巧和注意事项。
3. 探讨发酵工程在生物工程领域中的应用及意义。
扩展实验：1. 可以尝试不同的酵母菌培养基，比较其对酵母菌生长的影响。
2. 可以调节发酵罐中的温度和湿度，观察其对酵母菌生长的影响。
3. 可以尝试使用其他微生物进行发酵实验，比较它们的生长情况。
以上为发酵工程实验的教案范本，教师可根据实际情况进行适当调整和完善。
发酵工程制药实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵工程制药的基本原理和过程；2. 掌握微生物发酵生产药物的方法；3. 熟悉发酵过程中主要参数的检测和控制；4. 提高实验操作技能和数据分析能力。
二、实验原理发酵工程制药是指利用微生物的代谢能力，通过发酵过程生产具有药用价值的生物活性物质。
发酵过程包括菌种选育、培养基配制、种子扩大培养、发酵过程、分离纯化等环节。
三、实验材料与仪器1. 材料与试剂：葡萄糖、酵母提取物、蛋白胨、琼脂、硫酸铵、磷酸二氢钾、氢氧化钠、盐酸、氯化钠等；2. 仪器与设备：发酵罐、摇床、超净工作台、高压灭菌锅、电子天平、pH计、分光光度计、离心机、无菌操作工具等。
四、实验步骤1. 菌种选育：从土壤样品中分离筛选得到一株能够产生抗生素的微生物，经过纯化、鉴定和保存；2. 培养基配制：根据微生物生长需求，配制适宜的培养基；3. 种子扩大培养：将纯化后的菌种接种到试管斜面培养基上，置于恒温培养箱中培养；4. 发酵过程：将活化后的种子液接种到发酵罐中，控制发酵温度、pH值、溶氧量等参数，进行发酵；5. 发酵过程监测：定期检测发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数，确保发酵过程顺利进行；6. 分离纯化：发酵结束后，对发酵液进行分离纯化，得到目标产物；7. 数据分析：对实验数据进行统计分析，得出实验结果。
五、实验结果与分析1. 菌种选育：成功分离筛选得到一株能够产生抗生素的微生物，经过鉴定为链霉菌属；2. 培养基配制：根据微生物生长需求，配制了适宜的培养基；3. 种子扩大培养：菌种在试管斜面培养基上生长良好，菌落形态典型；4. 发酵过程：发酵过程中，发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数均在适宜范围内，发酵过程顺利进行；5. 分离纯化：发酵液经过分离纯化，得到目标产物；6. 数据分析：通过实验数据统计分析，得出以下结论：（1）该菌株在发酵过程中，发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数均在适宜范围内；（2）发酵液中的目标产物含量达到预期水平；（3）分离纯化过程中，目标产物纯度较高。
发酵工程实验的实验报告
一、实验目的1. 了解发酵工程的基本原理和操作方法。
2. 掌握发酵过程中菌种培养、培养基配制、发酵条件控制等基本技能。
3. 熟悉发酵过程中产物生成的监测方法。
二、实验原理发酵工程是指利用微生物的代谢活动，将生物质资源转化为人类所需产品的一门综合性工程技术。
本实验以谷氨酸棒杆菌为研究对象，通过摇瓶发酵的方式，探究其在适宜条件下对葡萄糖的转化率及谷氨酸的生成情况。
三、实验仪器与试剂1. 仪器：摇床、锥形瓶（250ml）、移液管、pH计、生物传感仪、分析天平、发酵培养基、葡萄糖、酵母膏、胰蛋白胨、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、苯甲酸钠、EDTA钠、氯化钠等。
2. 试剂：葡萄糖、酵母膏、胰蛋白胨、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、苯甲酸钠、EDTA钠、氯化钠等。
四、实验步骤1. 培养基配制：按照实验要求，称取葡萄糖、酵母膏、胰蛋白胨、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、苯甲酸钠、EDTA钠、氯化钠等试剂，加入适量的去离子水，充分溶解后，调节pH至7.0，定容至1000ml。
2. 菌种活化：从菌种保藏管中取出谷氨酸棒杆菌，接种于装有适量培养基的锥形瓶中，置于摇床上，37℃恒温培养24小时。
3. 接种：将活化后的菌种以1%的接种量接种于新鲜培养基中，置于摇床上，37℃恒温培养。
4. 发酵过程监测：每隔2小时取样，测定还原糖含量、谷氨酸含量、pH值等指标。
5. 数据处理与分析：将实验数据绘制成曲线，分析发酵过程中还原糖消耗、谷氨酸生成、pH值变化等规律。
五、实验结果与分析1. 还原糖消耗曲线：在发酵过程中，还原糖含量逐渐降低，表明谷氨酸棒杆菌在消耗葡萄糖的同时，产生谷氨酸。
2. 谷氨酸生成曲线：在发酵过程中，谷氨酸含量逐渐升高，表明谷氨酸棒杆菌在适宜条件下能够高效地将葡萄糖转化为谷氨酸。
3. pH值变化曲线：在发酵过程中，pH值逐渐下降，表明谷氨酸棒杆菌在代谢过程中产生酸性物质。
六、实验结论1. 本实验成功实现了谷氨酸棒杆菌的摇瓶发酵，为谷氨酸生产提供了实验依据。
发酵工程实验报告
发酵工程试验报告年级专业姓名学号试验题目微生物工程试验〔一组〕一、试验目的1.娴熟把握无菌操作技术，了解生物发酵过程中种子的扩培过程；2.把握小型发酵罐管路消毒、空消、实消、菌种培育等技术；3.学习把握小型发酵罐接种、取样操作系统；4.学习使用糖度仪，把握血球计数板法；5.把握两种生长曲线的测定方法：干重法和血球计数板法，绘制生物基质的相关曲线。
二、试验原理发酵罐，是进展液体发酵的专用设备。
发酵罐配备掌握系统，它主要是对发酵过程中的各种参数如温度、pH、溶解氧、搅拌速度、空气流量、补料、泡沫水公平进展设定、显示、记录以及对这些参数进展反响调整掌握。
为了解发酵过程中菌体的生长及对培育基的利用状况，需在发酵过程中定时地取样测定，包括对菌体进展计数、测定不同时期的干重以及糖度的变化。
干重，是指细胞除去全部自由水后的重量，为80℃下烘干肯定时间后的恒重，即失水后的质量。
可用离心或过滤法测定。
一般干重为湿重的 10-20%。
在离心法中，将肯定体积待测培育液倒入离心管中，设定肯定的离心时间和转速，进展离心，并用清水离心洗涤 1-5 次，进展枯燥。
枯燥可用烘箱在105℃或100℃下烘干，或承受红外线烘干，也可在80℃或40℃下真空枯燥，枯燥后称重。
血球计数板法，血球计数板是一种有特别构造刻度和厚度的厚玻璃片，玻片上有四条沟和两条嵴，中心有一短横沟和两个平台，两嵴的表比两平台的外表高 0.1mm，每个平台上刻有不同规格的格网，中心 0.1mm 面积上刻有400 个小方格。
通过显微镜观看，统计肯定大格内微生物的数量，即可算出1 毫升菌液中所含的菌体数。
微生物生长曲线，是以微生物数量(活细菌个数或细菌重量)为纵坐标，培育时间为横坐标画得的曲线。
一般说，微生物(细菌)重量的变化比个数的变化更能在本质上反响诞生长的过程。
曲线可分为三个阶段即生长率上升阶段(对数生长阶段)、生长率下降阶段及内源呼吸阶段。
三、试验材料及器材1.菌种酵母菌〔saccharomyces〕2.药品蛋白胨、葡萄糖NH4Cl、酵母浸粉、蒸馏水、种子液、无菌蒸馏水、泡敌3.培育基种子培育基发酵培育基4.仪器设备摇床 1 台；超净工作台 6 台；电炉 2 个；在位机械搅拌式发酵罐 4 台；三角烧瓶；小试管；酒精棉球假设干；工业用酒精一瓶；离心机1台；振荡器 6 台；烘箱 1 台；显微镜 3 台玻璃棒 12 个；50ml 量筒 6 个；500ml 量筒 6 个；100ml 烧杯 6 个；500ml 烧杯6 个；250ml 三角烧瓶 2 个；500ml 三角烧瓶 6 个；接种环 6个；酒精灯 6 个；棉线、纱布、报纸假设干；天平 6 个；蒸馏水瓶 6 个；擦镜纸假设干；滤纸假设干；离心管假设干；血球计数板 6 个；试管架12；棉线手套 4 双等四、试验步骤(一) 菌种的扩培1.菌种的活化〔已预备〕〔1〕将酵母菌接种于种子培育液中，摇瓶培育， 180rpm，28℃，48h 。
《发酵工程实验》教学大纲精选全文
精选全文完整版（可编辑修改）《发酵工程实验》教学大纲一、课程基本情况课程编号：132L13B 学分：1 周学时：4 总学时：34 开课学期：3.1开课学院：海洋学院课程英文名称：Experiment of Fermentation Engineering适用专业：海洋资源与环境，食品科学与工程课程类别：专业方向模块选修课课程修读条件：必须先修微生物学等课程实践方式：网络课程地址:课程负责人：所属基层学术组织：生物与海洋科学二、课程简介本课程主要学习现代发酵工业中有关菌种的分离筛选与鉴定，菌种的保藏原理与方法，工业发酵菌种的扩大培养与发酵方法；工业发酵基本产物的检测以及实验室发酵罐的操作原理与操作方法；同时训练学生利用课程实验进行实验报告的写作。
使学生能够将课堂上学到的发酵工程基础理论知识和实际运用相结合，锻炼学生解决发酵工程实际问题的能力。
三、教学目标、任务教学目标：通过本实验课的教学，使学生加深对生物工程专业基础理论课程的理解，掌握发酵工程实验的基本操作和技能，培养学生观察、分析问题、解决问题的能力，以及在生物工程领域从事科研与生产的综合能力，同时培养学生实事求是、严肃认真的科学态度。
教学任务：完成本实验课设计的所有单元实验，指导学生进行实验的设计、实验准备与实验操作，并完成实验数据的处理与实验报告的写作，培养学生独立进行发酵相关的微生物分离、接种、培养与发酵产物分析等基本技能，提高学生分析问题与解决问题的能力，提高科研素质与科研能力。
四、教学方法与基本要求教学方法：开展实验课进行实验方案设计，实验理论指导，实验操作与实验结果的分析与讨论等基本要求：本实验课设置不同单元实验，每4人一组。
通过本课程的教学，使学生掌握生物工程专业实验技术的基本操作和技能训练，根据生物工程实验的特点，学会工业生产用菌种的分离与初步鉴定，发酵培养基的制备和灭菌，掌握接种操作、微生物培养观察的方法及发酵过程中间控制及分析测定等方法。
发酵工程实验报告总结与反思
发酵工程实验报告总结与反思引言发酵工程是一门同时涉及生物学、化学、工程学等多学科交叉的学科，其应用广泛，涵盖食品、制药、能源等领域。
本次实验是在发酵工程方面的基础实验，旨在通过观察和控制微生物在拟合法罐中的发酵过程，了解并掌握发酵工程的基本原理和操作要点。
实验目的1. 通过观察发酵曲线，了解发酵过程中的生物学特征；2. 掌握发酵工程中常用的微生物菌种培养技术；3. 学会调控发酵条件，提高发酵效率。
实验过程本次实验选取酵母菌作为发酵微生物，使用琼脂平板培养菌株，获得单菌种。
然后将菌株接种到小规模发酵罐中，控制发酵温度、pH值和通气速率，观察发酵过程中的生物学特征。
最后，利用收获的数据绘制发酵曲线，并进行数据分析。
实验结果通过本次实验，我们获得了以下结果：1. 发酵过程中，酵母菌的生长呈现指数增长的趋势；2. 正确的温度、pH值和通气速率的控制，对于发酵效果至关重要；3. 根据发酵曲线的变化，可以预测发酵过程中的产物生成和生物质积累。
实验总结本次实验是我们在发酵工程方面的第一次实践，通过实际操作和数据分析，我们对发酵过程中的一些基本概念和操作方法有了初步了解。
同时，也发现了一些问题和改进的空间。
首先，我们在控制条件方面存在一定的不足。
尽管我们设定了标准的温度、pH值和通气速率，但在实际操作中，由于设备的限制和人为操作的不准确性，我们的控制精度并不高，这可能对发酵过程的结果产生了一定的影响。
因此，今后的实验中，我们应该更加认真地对待实验操作过程，提高操作的准确性。
其次，我们在数据分析方面还有待提高。
虽然我们成功绘制了发酵曲线，并通过曲线分析发现了一些规律，但我们对于数据的解读还不够深入。
今后在实验数据的处理和分析上，我们应该加强对实验结果的理解和解读能力，更好地调整和控制发酵过程，以达到更好的效果。
最后，本次实验中我们只以酵母菌为例进行了发酵实验，但发酵工程涉及到多种微生物和产物，因此今后我们应该在实验中考虑更多的微生物菌种和产物类型，以更好地了解发酵工程的广泛应用。
《发酵工程实验》教案：发酵培养基的制备和实罐灭菌
一、教案基本信息教案名称：《发酵工程实验》教案：发酵培养基的制备和实罐灭菌课时安排：2课时教学目标：1. 了解发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 学会进行实罐灭菌的技巧和注意事项。
3. 掌握发酵培养基制备和实罐灭菌的操作技能。
教学重点：1. 发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 实罐灭菌的技巧和注意事项。
教学难点：1. 发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 实罐灭菌的技巧和注意事项。
二、教学准备1. 实验室设备：发酵罐、灭菌器、天平、量筒、玻璃棒等。
2. 实验材料：玉米粉、酵母、硫酸、氢氧化钠等。
3. 实验试剂：无菌水、酒精、甘油等。
三、教学过程Step 1：引入新课通过介绍发酵工程的概念和应用，引导学生了解发酵培养基的制备和实罐灭菌的重要性。
Step 2：讲解发酵培养基的制备方法和步骤1. 讲解玉米粉的配制方法和注意事项。
2. 讲解酵母的活化方法和步骤。
3. 讲解硫酸和氢氧化钠的添加方法和注意事项。
4. 讲解发酵培养基的灭菌方法和步骤。
Step 3：讲解实罐灭菌的技巧和注意事项1. 讲解实罐的清洗和消毒方法。
2. 讲解灭菌器的使用方法和注意事项。
3. 讲解实罐灭菌过程中的安全操作注意事项。
Step 4：学生实验操作1. 学生分组，每组准备一份发酵培养基。
2. 学生在老师的指导下，按照讲解的方法和步骤进行发酵培养基的制备。
3. 学生在老师的指导下，进行实罐灭菌操作。
Step 5：实验结果分析1. 学生观察实验结果，分析发酵培养基的制备和实罐灭菌的效果。
2. 学生汇报实验结果，进行交流和讨论。
四、课后作业1. 复习发酵培养基的制备方法和步骤。
2. 复习实罐灭菌的技巧和注意事项。
3. 思考发酵培养基制备和实罐灭菌在发酵工程中的应用。
五、教学反思通过本节课的教学，学生应掌握发酵培养基的制备方法和步骤，以及实罐灭菌的技巧和注意事项。
在实验操作过程中，教师应注重学生的安全操作，及时引导学生纠正错误操作。
在实验结果分析环节，教师应引导学生积极思考和交流，提高学生的实验操作技能和理论知识水平。
发酵工程实验方案
发酵工程实验方案1. 实验目的：通过对发酵工程的影响因素进行研究，探究各个因素对发酵过程的影响，为发酵工程的优化提供理论依据。
2. 实验原理：发酵工程是一种利用微生物、酶或细胞来合成有机物的过程。
在发酵过程中，影响因素包括温度、pH值、氧气浓度、营养物质和微生物种属等。
这些因素对发酵过程有着重要的影响，可以影响发酵产物的产率和品质。
3. 实验步骤：3.1 实验材料准备：- 试验用微生物：选择一种常见的发酵微生物，如酵母菌或乳酸菌。
- 培养基：根据微生物的需要选择合适的培养基，如葡萄糖、蛋白胨等。
- pH计、温度计、氧气传感器等实验仪器。
3.2 实验设计：- 实验方案一：对温度的影响将培养基和微生物接种到培养瓶中，并设置不同的温度条件（如25℃、30℃、35℃、40℃），观察发酵产物的产率和品质。
- 实验方案二：对pH值的影响将培养基和微生物接种到培养瓶中，然后调节培养基的pH值分别为5、6、7、8，观察发酵产物的产率和品质。
- 实验方案三：对氧气浓度的影响使用氧气传感器监测不同氧气浓度下的发酵过程，观察发酵效率和产物的产率。
- 实验方案四：对营养物质的影响在培养基中添加不同浓度的营养物质，比如氮源、碳源等，观察其对发酵产物的影响。
- 实验方案五：对微生物种属的影响改变培养基中的微生物种属，观察不同微生物对发酵产物的影响。
3.3 数据记录和分析：- 对每组实验数据进行记录，并进行数据分析，比较各个因素对发酵过程产物的影响。
4. 实验结果预期：通过对以上实验设计，可以得出不同因素对发酵工程的影响程度，找出最适合的发酵条件。
5. 实验结论：通过数据分析和实验结果，得出各个因素对发酵过程的影响程度，并得出最优的发酵条件。
6. 实验风险评估：实验过程中需要注意微生物的无菌操作，避免污染，确保实验安全。
7. 实验总结：通过对发酵工程的影响因素进行研究，可以为工业生产的发酵工艺提供参考和优化方案，为生产高品质的发酵产品提供理论支持。
生物实验报告单发酵(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵的基本原理和过程。
2. 掌握不同发酵条件下产物生成的规律。
3. 熟悉发酵实验的操作步骤及注意事项。
4. 分析实验结果，探讨发酵过程中可能的影响因素。
二、实验原理发酵是指微生物在无氧或低氧条件下，利用有机物作为碳源和能源，产生代谢产物的过程。
常见的发酵类型包括酒精发酵、乳酸发酵、醋酸发酵等。
本实验以酒精发酵为例，通过观察酵母菌在葡萄糖溶液中的生长、代谢过程，了解发酵现象。
三、实验仪器与试剂1. 仪器：锥形瓶（250ml）、移液管、pH计、酒精计、温度计、无菌操作台、酒精灯、高压蒸汽灭菌器等。
2. 试剂：葡萄糖、酵母膏、胰蛋白胨、蒸馏水、苯酚红指示剂、NaOH溶液、乙醇、酒精计等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将葡萄糖、酵母膏、胰蛋白胨溶解于蒸馏水中，制成培养基。
2. 接种：将酵母菌接种于培养基中，置于恒温培养箱中培养。
3. 观察生长曲线：定期取样，测定菌液的光密度（OD值），绘制生长曲线。
4. 测定酒精含量：定期取样，测定菌液中的酒精含量，绘制酒精生成曲线。
5. 分析实验结果：观察菌体生长情况，分析发酵过程中产物生成的规律。
五、实验结果与分析1. 菌体生长曲线：实验结果显示，酵母菌在葡萄糖溶液中生长迅速，培养初期菌体数量呈指数增长，随后进入稳定期。
2. 酒精生成曲线：实验结果显示，随着菌体数量的增加，酒精含量逐渐上升，至发酵后期达到峰值。
3. pH值变化：实验过程中，培养基的pH值逐渐下降，说明酵母菌在发酵过程中产生酸性代谢产物。
六、讨论1. 影响发酵的因素：发酵过程中，温度、pH值、营养物质、氧气等条件对发酵效果有显著影响。
本实验中，温度控制在28-30℃，pH值控制在4.5-5.5，有利于酵母菌的生长和酒精生成。
2. 发酵产物的应用：发酵产生的酒精可以用于饮料、燃料、化工等领域。
此外，发酵过程中产生的其他代谢产物，如酵母抽提物、有机酸等，也具有广泛的应用前景。
发酵工程实验方案的设计
发酵工程实验方案的设计本实验的目的是通过发酵工程实验，探讨在不同条件下发酵过程对产物的影响，优化发酵参数以提高产物的质量和数量。
实验材料：1. 酵母菌2. 发酵罐3. 发酵培养基4. pH计5. 温度控制设备6. 搅拌器7. 无菌操作台8. 实验室常规设备实验步骤：1. 准备工作确保所有材料和设备都已清洁消毒，并在无菌操作台上进行操作。
2. 发酵罐的准备将发酵罐进行清洁消毒，并加入适量的发酵培养基。
根据实验设计的要求，可以调节发酵培养基的pH值和温度。
3. 加入酵母菌将事先培养好的酵母菌接种到发酵罐中，确保接种量合适。
4. 发酵过程控制在发酵过程中，通过监测pH值和温度，以及调节搅拌速度，控制发酵过程的条件。
5. 样品检测在不同时间点，取样品进行检测，包括产物的数量和质量，以及培养基中的营养成分的消耗情况等。
6. 数据统计和分析对实验数据进行统计和分析，探讨不同发酵条件对产物的影响，寻找最优的发酵参数。
实验设计：1. 不同初始pH值对酵母菌发酵产物的影响分别设置初始pH值在不同条件下的实验组，通过检测不同时间点的产物浓度，探讨不同初始pH值对酵母菌发酵产物的影响。
2. 不同温度条件下的发酵实验设置不同温度下的发酵实验组，通过检测不同温度条件下产物的产量和质量，探讨温度对发酵产物的影响。
3. 不同搅拌速度对发酵的影响在相同的pH值和温度条件下，设置不同搅拌速度的实验组，通过检测产物的质量和数量，探讨搅拌速度对发酵的影响。
实验结果和讨论：1. 不同初始pH值对酵母菌发酵产物的影响实验结果表明，初始pH值对酵母菌发酵产物有明显影响。
在中性条件下，产物的产量和质量较高，而在酸性和碱性条件下，产物的产量显著减少。
2. 不同温度条件下的发酵实验实验结果表明，较低的温度条件下，产物的产量较低，但质量较好；较高的温度条件下，产物的产量较高，但质量有所下降。
3. 不同搅拌速度对发酵的影响实验结果表明，在较低的搅拌速度下，产物的产量较低，但质量较好；在较高的搅拌速度下，产物的产量较高，但质量略有下降。
生物发酵过程实验报告
五、实验结果与分析
1. 菌体生长曲线：在实验过程中，菌体数量随时间呈对数增长，发酵液浊度也随之增加。
2. 底物消耗曲线：发酵过程中，葡萄糖浓度逐渐降低，表明葡萄糖被酵母菌消耗。
3. 产物形成曲线：发酵过程中，酒精浓度逐渐升高，表明酵母菌在发酵过程中产生了酒精。
本实验以酵母菌发酵葡萄糖为例，通过观察酵母菌的生长曲线、底物消耗曲线和产物形成曲线，了解发酵过程中葡萄糖的利用、菌体生长和产物生成的相互关系。
三、实验仪器与试剂
1. 仪器：锥形瓶（250ml）、移液管、pH计、生物传感仪、分析天平、无菌操作台、高压蒸汽灭菌器、培养箱等。
2. 试剂：酵母膏、胰蛋白胨、葡萄糖、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、苯甲酸钠、EDTA钠、氯化钠等。
[2] 王国良，张立峰. 发酵工艺学[M]. 北京：化学工业出版社，2015.
[3] 杨宝生，陈光德. 发酵工程原理与应用[M]. 北京：科学出版社，2017.
2.，如何监测和控制发酵条件？
八、实验总结
本实验通过对酵母菌发酵葡萄糖的过程进行观察和分析，了解了发酵工程的基本原理和操作方法。通过实验，掌握了发酵过程中的监测方法和质量控制手段，为今后从事发酵工程研究奠定了基础。
九、参考文献
[1] 郭建国，刘伟. 发酵工程[M]. 北京：化学工业出版社，2012.
- 底物消耗曲线：定时取样，测定发酵液的葡萄糖浓度，绘制底物消耗曲线。
- 产物形成曲线：定时取样，测定发酵液的酒精浓度，绘制产物形成曲线。
4. 发酵条件优化：通过调整发酵培养基的成分、pH值、温度、通气量等条件，优化发酵过程。
5. 发酵结束：当发酵液中的葡萄糖浓度降至一定水平，酒精浓度达到预期值时，终止发酵。
发酵工程实验方案
发酵⼯程实验⽅案⽣物发酵⼯程实验实验⼀................................ 利⽤酵母富集培养基分离酵母菌实验⼆... ......................... 分离纯化酵母菌实验三... ......................... 酵母菌的保藏实验四............................... ⼤肠杆菌⽣长曲线测定及pH对⽣长曲线的影响实验五.............................. 发酵罐的构造及操作实验六.............................. 发酵罐实灌灭菌操作实验七.............................. 利⽤7L发酵罐对地⾐芽孢杆菌进⾏补料分批发酵培养实验⼋..............................淀粉酶⽣成曲线的测定实验⼀、利⽤酵母富集培养基分离酵母菌⼀实验⽬的1、通过本实验加深理解酵母富集培养基的原理和应⽤；2、掌握涂布分离技术；3、熟悉从⾃然样品⼟壤中分离酵母菌的具体操作⽅法⼆实验原理酵母菌主要分布于含糖⾼和酸度较⾼的⾃然环境中，在果园表⼟和浆果、蔬菜、花蜜和蜜饯等的表⾯很容易找到它们。
在⼟壤中，由于各种微⽣物混杂在⼀起且酵母菌的数量相对⽐较少，故可以利⽤酵母菌富集培养基进⾏富集培养，该培养基含有较⾼的葡萄糖（5%）和较酸（pH为4.5）的环境，以及能抑制多种杂菌（许多细菌、放线菌和快速⽣长霉菌）的孟加拉红（玫瑰红），故⼗分有利于酵母菌的增值。
三实验材料⼟壤（标注采集地点）培养基：酵母富集培养基（5%葡萄糖、0.1%尿素、0.1%硫化铵、0.25%磷酸⼆氢钾、0.05%磷酸氢⼆钠、0.1%七⽔合硫酸镁、0.01%七⽔合硫酸铁、0.05%酵母膏、0.003%孟加拉红、1.9%琼脂 pH4.5）移液枪、培养⽫、天平、涂布棒、棉绳、250ml三⾓瓶、75%酒精棉花、摇床等四实验步骤1、采集⼟样：采集葡萄园或其他果园、菜地等的⼟壤若⼲（要求：先铲去2~3cm 的表⼟，再采集⼟样）适当研碎。
发酵工程实验
西南民族大学
生命科学与技术学院
实验一 发酵罐安装使用及其KLa的测定
一、发酵罐的安装及使用 1.实验目的和要求： 学习发酵罐的安装调试，掌握发酵罐的 使用方法。 2.实验步骤： 1）发酵罐的整体结构介绍 2）发酵罐的安装 3）发酵罐的调试
二、发酵罐KLa的测定
1.实验目的和要求： 了解发酵过程中Kla的测定及其影响因素。 2.原理 3.实验步骤： 1）将配置好的1.6升亚硫酸钠和硫酸铜倒 入发酵罐，开始通气搅拌，定时取样。 2）用碘量法测定剩余的亚硫酸钠的量，最 后用硫代硫酸钠进行测定，记下消耗的 硫代硫酸钠的量。
实验三
固定化细胞发酵
1.固定化技术的发展 固定化酶技术的发展 固定化微生物细胞技术的发展 2术与固定化酶技术的比较 固定化细胞技术的优势在于以下四个方面： 1）不需提纯和精制
2）发酵过程易于控制 3）能够允许高负荷载体 4）适合多系统反应 3.实验目的和要求 了解和掌握固定化细胞发酵的方法 4.实验原理 本次实验是用海藻酸钠包埋法 包埋法是将微生物细胞均匀地包埋在水
常用菌种
– 嗜热链球菌和保加利亚乳杆菌 – 嗜酸乳杆菌、两歧双歧杆菌和乳酸菌
凝固型酸奶的制作流程 鲜奶 净化 脂肪含量标准化 配料 过滤 预热 均质 杀菌 冷却 接种 分装 发酵 冷却 后熟 净化：除去白血球和其它异物
脂肪含量标准化：脂肪含量过高，会使 发酵后在酸奶表面有脂肪析出。可以在 高脂肪的牛乳中加入脱脂奶等。 均质：使乳脂肪充分分散，酸奶的硬度 和黏度都有所提高。 杀菌：90℃，5min或85 ℃,30min UHT法：135 ℃,2~3s 后熟：低温放置。
一、实验的目的和要求 了解发酵过程中各个因素对微生物生长 的影响，掌握微生物生长过程中的生长 规律及外界因素对其的影响。 二、原理 三、实验步骤： 1. 菌种：枯草芽孢杆菌
微生物发酵工程实验
3
❖ 周四上午，取样测定（细菌数量、pH、还原 糖、杂菌率等）
❖ 周四下午，取样测定（细菌数量、pH、还原 糖、杂菌率等）
❖ 周五上午，放罐，清洗发酵罐；计数摇瓶实验 结果
❖ 周五下午，喷雾干燥。
4
优化磷细菌发酵培养基的碳源（单因子实验）
❖ 菌种：无机磷细菌 ❖ 培养基
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灭菌培养基无菌度测定
❖ （1）显微镜观察法
▪ 利用刚果红染色法可以在显微镜下快速区别死活菌。 ▪ 原理：活菌具有排斥染液的能力，而死菌失去了排斥染液的
能力，因此，无色透明的是活菌，死菌为蓝色或浅蓝色。 ▪ 方法：将待测稀释液与一滴刚果红染色液很薄的均匀涂在载
玻片上，风干后滴盐酸1-2滴，涂片变蓝，风干后在高倍镜或 油镜下观察。 ▪ 刚果红溶液：称取刚果红0.1-0.2 g，溶于10 mL水中。 ▪ 盐酸酒精溶液：95%酒精1-2 mL，蒸馏水10 mL，再加入浓 盐酸0.25-0.3 mL混合即成。
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❖ 实验步骤
▪ 配制培养基，分装于150或250 mL三角瓶，包扎 后，115 ℃灭菌20 min。发酵培养基A/B/C/D各3 瓶。
▪ 接种，接种量1%。 ▪ 培养，28 ℃、150 rpm培养18-24 h. ▪ 测定细胞数量，取发酵液1 mL系列稀释，取0.1
mL菌液涂布无机磷培养基， 28 ℃恒温培养3 d 后计数。
① 问题：用于接种发酵罐，接种量5%，请问7L培 养基需要多少菌种用量？
8
❖ 种子接入发酵罐
▪ 种子质量检查（包括哪些项目？分别用什么方 法？）
▪ 接种前还需要做什么？
▪ 火圈接种法
培养基灭菌质量检查
① 接种后需要做什么？
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③、倒培养平板，从上述已稀释了1亿倍的乳酸菌悬液中取１ml,在无菌操作台上注入9.０cm培养皿中，再将已经灭了菌的保持在52℃水浴锅中的呈溶解状态的培养基,倒入15毫升左右于培养皿中,全部浸到培养皿，与菌悬液充分混合均匀(倒入培养基后，马上用手转动培养皿,转动几下，让其混合均匀），然后等其凝固再移入培养箱中培养,注意最后一步倒平皿必须在超净台无菌操作,以免杂菌污染。每次稀释均要换灭好菌的移液管。
2、添加蔗糖:为了缓和酸奶的酸味，改善酸奶口味,在调制乳中加人4-８%的蔗糖。
3、灭菌:方法有两种:将乳加热至90℃，保温５min;
4、接种:往冷却到４３-4５℃灭过菌的乳中加入乳酸菌，接种量为2%－5%。
5、分装：酸奶受到振动,乳凝状态易被破坏,因此，不能在发酵罐容器中先发酵然后再进行分装,须是将含有乳酸菌的牛乳培养基先分装到小容器中，加盖后送入恒温室培养,在小容器中发酵制成酸奶。
2、液体种子培养：
每300 mL三角瓶装量50 mL液体种子培养基,在115℃条件下灭菌3０miｎ。降温后从斜面接一环菌苔至种子培养基。置3７℃控温摇床培养。转速2００r·mｉｎ－１,至芽孢率达90%以上时停止，约需24h。
3、固体发酵培养基:麸皮60%，稻草粉10％,玉米粉5%，豆粕２５%,硫酸镁0．05%，硫酸铵0．5%,料水比为１:1．1。
实验二 枯草芽孢杆菌固态发酵及活菌数测定(5学时)
实验目的：
1、学习了解固态发酵原理；
2、以枯草芽孢杆菌为对象,了解固态发酵的控制技术;
3、掌握枯草芽孢杆菌活菌计数方法与操作。
实验原理：
作为抗生素的替代品,益生菌和酶制剂等的研究与开发近几年成为绿色饲料添加剂的热点，其中益生菌倍受关注。作为益生菌的一种,芽孢杆菌制剂在动物生产中的研究和应用一直都是畜牧业科研和生产人员关注的焦点。目前芽孢杆菌多采用液体深层发酵技术，再经喷雾干燥进行生产，对设备要求高,生产工艺复杂；而固体发酵采用的原料一般是廉价的农副产品(如草粉、麸皮等),采用的设备也较液体发酵简单，生产成本大大低于液体发酵。所以近年来各生产厂家都在积极探索芽孢杆菌的固体发酵技术，以求简化生产工艺，提高产量，降低生产成本。
思考题：
乳酸菌的保藏通常为低温条件,这给运输、保藏带来很大的成本,请问可采用什么方法使乳酸菌在常温条件下有很高的存活率?
答：在基因水平上对乳酸菌进行基因重组,从而获得耐高温乳酸菌。在基因库里筛选抗高温的基因并利用基因重组技术将其重组在乳酸菌基因上，对乳酸菌的基因进行修饰使其表达,以此来获得耐高温菌株。
答:制作后酸奶与市场所售酸奶比较,比市场所售酸奶更稠密，酸奶的香味与酸味明显，制作成功
2、记录个人酸奶中各菌数测定的平行数据,计算最终平均值。
答:最终培养基上未出现乳酸菌菌落，全部为杂菌菌落，因此无法统计酸奶中的菌含量
3、同时用图片记录实验过程中各现象与结果并对图进行注释。
答：制备乳酸菌时,瓶子上方留有一部分空间，并未使乳酸菌完全处于无氧环境中发酵，但乳酸菌是兼性厌氧菌，因此在存在少量氧气的环境中，乳酸菌也可以生长，酸奶制备成功。但在平板接种时，由于污染杂菌，乳酸菌并未长出。乳酸菌计数失败。
固态发酵定义：指没有或几乎没有自由水存在下，在有一定湿度的水不溶性固态基质中,培养一种或多种微生物的生物反应过程,是以气相为连续相的生物反应过程。
枯草芽孢杆菌属于好氧微生物，实验室条件下利用稀释涂布培养的方法,让菌在有氧条件下生长，每个单菌落代表一个微生物细胞。
实验内容:
1、液体种子培养基配制:
葡萄糖0.2%，NaCl 0．5％，酵母膏0.5%,蛋白胨1%，ｐＨ7.0。
实验原理：
乳酸菌在乳中生长繁殖,发酵分解乳糖产生乳酸等有机酸，导致乳的pＨ值下降，使乳酪蛋白在其等电点附近发生凝集。
乳酸菌属于兼性厌氧微生物,在无氧条件下生长繁殖较好,实验室条件下利用混菌培养的方法，尽可能让乳酸菌在无氧条件下生长,每个单菌落代表一个微生物细胞。
实验内容:
（一)酸奶制作
1、10%脱脂奶粉溶解于热水(８０℃左右）中,充分搅拌均匀，配成调制乳；
发酵工程实验
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实验一酸奶的制作与乳酸菌的活菌计数(5学时）
实验目的：
1、学习并掌握酸奶制作的基本原理与方法。
2、了解市售酸奶的生产工艺。
3、掌握乳酸菌活菌计数方法与操作。
6、发酵:发酵的温度保持在40-4３℃,一般发酵时间为3-6h。
发酵终点的确定有两种方法:ห้องสมุดไป่ตู้
1）检测发酵奶的酸度，达到６5-70T°。
2）倾斜观察,瓶内酸奶流动性差，而且瓶中部有细微颗粒出现。
7、冷却：发酵结束，将酸奶从发酵室取出，用冷风迅速将其冷印到1０℃以下,一般2 h，使酸奶中的乳酸菌停止生长,防止酸奶酸度过高而影响口感。
8、冷藏和后熟：经冷却处理的酸奶,贮藏在2-5℃的冷藏室中保存。
9、感官指标
1）色泽：色泽均匀一致,呈乳白色,或稍带微黄色。
2）组织状态：凝块稠密结实均匀细腻，无气泡，允许少量乳清析出。
3）气味:具有清香纯净的乳酸味，无酒精发酵味,无霉味和其他外来不良气味。
（二)乳酸菌活菌检测
①、检测培养基：蛋白胨1５g,牛肉膏5g,葡萄糖2０g,氯化钠５ｇ,碳酸钙10g,琼脂粉20g，水1000mｌ，1１5～121℃灭菌20min，灭菌后放置水浴52℃保温备用。
④、培养条件：３7℃恒温培养箱培养48~７2h。
⑤、培养完毕后，取出进行计数,因为是稀释了1亿倍,所以一个透明圈菌落代表１亿/克，如果有２０0个透明圈,则是2０0亿/克。
实验器材及试剂:
菌种：市售酸奶试剂:白糖奶粉培养基各成分
器材:培养箱、电炉、铝锅５Ｌ，培养皿，酸奶发酵瓶（自带）
实验结果:
1、详细描述自己制作的酸奶结果: