发酵工程实验

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2014-09-24 浙江师范大学化学与生命科学学院
实验操作:1.斜面接种无菌操作技术
2014-09-24
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③ ④
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2014-09-24
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2.倒平板:按无菌要求,在火焰旁操作,取融化并
2.滴定
准确吸取斐林甲、乙液各5 ml,置入250ml锥形瓶,加水10ml。吸取0.05ml大米淀粉水解葡萄糖液, 摇匀后加热沸腾,继续用0.1%的标准葡萄糖溶液滴定至蓝色消失。记录消耗的标准葡萄糖液的总体 积V。
3.计算
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还原糖(g/100ml)=( V0 -V) ×0.1%×1/0.05×100
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思考题
• 诱变育种过程要注意哪些关键步骤?
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实验四 大米淀粉的液化
一.实验目的
•要求学生掌握用酶法从淀粉原料到水解糖的制备原理及方法。
二. 实验内容
淀粉的液化 • 配制 30 %的淀粉乳(按 200ml 升配制),调节 pH 值至 6.5 ,加入氯化钙 ( 对固形物 0.2 % ) ,加入液化酶 (122 0 U / g 淀 粉 ) , 在剧烈 搅 拌下 , 先 加热至 7 2 ℃ , 保 温 15min,再加热至90℃,并维持30min ,以达到所需的 液 化 程 度, 碘 反 应呈 棕 红 色 。 液 化结束 后 ,再升 温 至 120℃,保持5-8min,以凝聚蛋白质,改进过滤。
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实验七 发酵罐结构与空气管道灭菌
一. 实验目的
1.掌握发酵罐的基本结构和操作方法 2.掌握空气管道灭菌的方法 3.掌握发酵罐灭菌方法
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二.发酵罐结构和基本条件
2.1发酵罐的基本条件
1.结构上具有适宜的径高比。发酵罐的高度与径高比一般为1.7~4, 罐身越长,氧气的利用率越高。 2. 有一定的刚度与强度,由于发酵罐在灭菌过程和工作时,罐内有 一定的压力和温度。因此需要一定的强度。 3.搅拌通风装置使之气液充分混合,保证发酵液一定的溶解氧。 4.足够的冷却面积。 5.尽量减少死角。 6.轴封严密。 7.维修操作检测方便
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葡萄糖聚合度与碘液的呈色表
葡萄糖聚合度பைடு நூலகம்葡萄糖 糊精16 21 与碘液呈色 无色 淡红色 红色 最高吸收波长(nm) 480 510
28
34 41 淀粉61 淀粉120 淀粉330
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红紫色
紫色 兰紫色 兰色 兰色
540
560 580 600 620
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3、淀粉酶活力测定 用2 %可溶性淀粉溶液按3(2)操作,用稀释 后 的粗酶液1mL代替3(3)中的蒸馏水,测 吸光度A660,从标准曲线中查出相应的淀粉 浓度,求出被酶消耗的淀粉量(表1-3)。
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表1-3 液化型淀粉酶活力测定
兰色
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630
淀粉 遇碘 液呈 蓝色
糊精 遇碘 液呈 紫色
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思考题: 1.淀粉液化时加氯化钙的作用?
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一. 实验目的
实验五 淀粉的糖化
•要求学生掌握用酶法从淀粉原料到水解糖的制备原理及方法。
冷却至不烫手的固化培养基(约50℃),倒入无菌培养皿 中,倒量以铺满皿底为限,不超过培养皿高度的1/3。
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3.平板划线接种:
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1.斐林试剂的标定
准确吸取斐林甲、乙液各5 ml,置入250ml锥形瓶,加水10ml,从滴定管中预先加入约20ml0.1% 的标准葡萄糖溶液,摇匀,于电炉上加热至沸腾,在沸腾状态下(同时关掉电炉,以便滴定终点时颜 色判断)继续滴加标准葡萄糖溶液,至蓝色刚好消失为终点。记录前后总共消耗的标准葡萄糖溶液 的总体积。同法平行操作三份,取接近的两次体积的平均值V0。
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二.实验内容
1.取试管斜面一接种环,放入装有45 mL无菌水的三角瓶中,
震荡10min,即为10-1的稀释液; 2.取4.5mL无菌水4枝,用记号笔编上10-2、10-3、10-4、105. 3.取10-1的稀释液,震荡后静止2min,用无菌移液管吸取 0.5mL上层细胞加至一根4.5mL无菌水的试管中,即成102的稀释液;同理,振荡2min,用无菌移液管吸取10-2的稀 释液0.5mL加至另一根4.5mL无菌水的试管中,即成10-3 的稀释液;依次类推,得到10-4,10-5的稀释液。 4.在超净台上,吸取10-5 、10-4、 10-3的稀释液0.1mL,加 至琼脂培养皿平板上,用无菌涂布棒涂布均匀。 5.将涂布的培养皿倒置培养于恒温培养箱中,32℃培养2天后 观察。
发酵工程试验
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试验一 发酵培养基配制
一.试验目的
1. 熟悉发酵培养基配制的要求 2. 熟悉玻璃器皿的包扎 3. 掌握灭菌方法
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二.试验内容
1.营养琼脂培养基 蛋白胨10g ,牛肉膏3g,NaCl 5g ,琼脂20g, 加水至1000mL,pH7.2-7.4。 通过称量、溶解和调节pH等步骤,配制上述培养 基;分装成200 ml/瓶,每人一瓶,进行灭菌。 2. 配制45mL无菌水(内装6颗玻璃珠)一三角瓶/ 人,4.5mL无菌水试管4枝/人,另外包扎好培养 皿6个/人,0.5mL和5mL移液管各1枝/人,涂 布棒1枝/人。 3. 将上述配好的培养基,无菌水,培养基,移液管 和涂布棒放入灭菌锅灭菌,备用。
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2.诱变 取9cm直径无菌培养皿1只/人,加入制备好的菌 悬液5mL和磁力搅拌棒(预先灭菌),然后放于 磁力搅拌器上,打开皿盖,在距紫外线30cm处照 射90秒,而后,从中取出0.5mL诱变后菌液,加 入4.5mL(10-2)试管中,振荡摇匀2min,再稀 释至10-3,10-4,10-5,分别取0.1mL涂布平板。 3.培养观察 32℃培养箱倒置培养,2天后观察培养结果。
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淀粉液化和糖化的终点判断
淀粉 碘液 无水酒精 蓝色 白色浑浊 糊精 紫色 白色浑浊 麦芽糖 碘液原色 微溶 葡萄糖 碘液原色 澄清
思考题
• 糖化酶分解糊精的原理是什么?
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实验六 发酵液中还原糖的测定
一.目的:
•掌握可发酵性还原糖的测定方法 •作出发酵过程的糖耗代谢曲线 二.实验步骤
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实验三 发酵菌种的诱变育种
一.实验目的
1. 了解诱变育种的基本原理 2. 掌握突变菌株的分离方法
二.紫外线诱变原理
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三.实验内容
1.菌体悬浮液的制备
取单菌落一接种环,放入装有50mL的生理盐水的 三角瓶中,用玻璃珠振荡10分钟,制得菌体悬浮 液。 用显微镜直接计数法计数悬浮液中的细胞数,并通 过稀释将悬浮液调整至大约107个/mL。
管号 1 2 3 4 5 6 7(样品)
淀粉稀释 液/mL
2 (0%) 2 (0.2%) 2 (0.5%) 2(1.0%) 2 (1.5%) 2 (2.0%) 2( 2.0%)
缓冲液/mL 1
1
1
1
1
1
1
40 ℃水浴保温5min
蒸馏水/mL 1
粗酶液/mL 0
1
0
1
0
1
0
1
0
1
0
0
1
40℃保温30min,然后加入0.5mol/L乙酸10ml,混匀吸取反应液1mL 稀碘液/mL 10 10 10 10 10 10 10
轴封 搅拌器 齿轮箱
视镜
人孔
夹套
切向高度
内冷却盘管
叶轮
液体高度
空气分布器
底部排污阀 2014-09-24
图4 发酵罐结构图及术语
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实验八 液化型淀粉酶活力的测定
一、实验目的
• 掌握分光光度法测定液化型淀粉酶活力的 基本原理和方法
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A6602014-09-24
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4、酶活力计算 酶活力以每毫升粗酶液在40 ℃,pH6.0的 条件下每小时所分解的淀粉毫克数来衡量。
四、思考题
1、是否可直接用蒸馏水作对照? 2、糊精与碘反应生成的颜色(如红色)是否 会对结果产生影响?用糊精溶液作一试验。
二、实验原理
淀粉酶是指能催化分解淀粉分子中糖苷键的一 类酶,包括α-淀粉酶 ,淀粉1,4-麦芽糖苷酶(β淀粉酶),淀粉 1,4-葡萄糖苷酶(糖化酶)和淀 粉1,6-葡萄糖苷酶(异淀粉酶)。 α-淀粉酶 可从淀 粉分子内部切断淀粉的α-1,4糖苷键,形成麦芽糖、 含有6个葡萄糖单位的寡糖和带有支链的寡糖,使 淀粉的黏度下降,因此又称为液化型淀粉酶。 淀粉遇碘呈蓝色。这种淀粉-碘复合物在660nm 处有较大的吸收峰,可用分光光度计测定。随着酶 的不断作用,淀粉长链被切断,生成小分子糊精, 使其对碘的蓝色反应逐渐消失,因此可以根据一定 时间内蓝色消失的程度为指标来测定α-淀粉酶 的活 力。
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下一次实验准备
• 50mL生理盐水(0.45gNaCl)/人,包扎灭菌; • 5.0mL,0.5mL移液管,涂布棒/人包扎灭菌; • 营养琼脂培养基每组1L,每人200mL分装后, 灭菌; • 4.5mL无菌水4枝/人,包扎后灭菌;
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三.玻璃仪器的包扎
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1.移液管的包扎
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2.试管的包扎
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2.2 发酵罐的结构组成
• 好气性机械搅拌发酵罐是密闭式受压设备,主 要部件包括罐体、搅拌器、轴封、消泡器、传 动装置、空气分布器,挡板、冷却装置、人孔 和视镜等。
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通用的机械搅拌通风发酵罐主要部件有罐体﹑搅拌器﹑挡板﹑轴封﹑ 空气分布器﹑传动装置﹑冷却管(或夹套) ﹑消泡器﹑人孔﹑视镜等。

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三、实验步骤
1、酶液稀释 用pH6.0缓冲液将粗酶液作适 当稀释。 2、标准曲线的制作:
① ② ③ ④ ⑤ 将可溶性淀粉稀释成0.2%,0.5 % ,1% 1.5%和2 %的稀释 液; 吸取淀粉稀释液2.0ml加至试管中,再加入磷酸氢二钠-柠檬 酸缓冲液1.0ml,40℃水浴保温5min; 加蒸馏水1mL,40 ℃保温30min后加入0.5mol/L乙酸10ml; 吸取反应液1mL,加稀碘液10mL,混匀,在660nm下测得吸 光度A[用2.0mL蒸馏水代替步骤(2)中的淀粉稀释液作为 对照]; 以淀粉浓度作为横坐标,吸光度为纵坐标,作标准曲线。
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四.思考讨论
1. 配制发酵培养基时应该注意什么? 2. 使用压力蒸汽灭菌锅时要注意哪些问题?
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实验二 发酵菌种的自然选育
一.实验目的
1. 2. 学习从自然环境中分离工业微生物菌株的方法 掌握涂布分离方法
二. 实验内容
淀粉的糖化 液化结束后,将料液用盐酸将pH调至4.2-4.5,同时升温 至60℃。加入糖化酶1.0g,60℃保温。若干小时后,当 用无水酒精检验无糊精存在时,将料液pH调至4.8-5.0, 同时,将料液加热至80℃,保温20min.然后将料液温 度降至60-70℃,开始过滤。
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