分子实验室细胞实验室常用配方
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分子实验室细胞实验室
常用配方
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(一)WB相关试剂及常用缓冲液
●RIPA(100mI)(最后要调pH为)
●10%过硫酸铵溶液AP(分装保存于-20度)
AP粉末 1g
ddH
2
0 10ml
●10%SDS(十二烷基硫酸钠):
SDS粉末 10g
ddH
2
0定容到 100ml
注意:用磁力搅拌器搅拌不会容易起泡泡
●6X蛋白质sample buffer
Tris-HCl(1M, 30mL
SDS 10g
甘油 30mL
DTT()
溴酚蓝
dd H
2
0 定容至100mL
●10XPBS缓冲液的配制:
NaCl 80g
KCl 2g
Na
2HPO
4
(十二水合36g)
KH
2PO
4
加800 mLddH2O,根据开始的pH用NaOH或HCL调pH到,调好pH再定容到1升。配好后用高压蒸气灭菌后常温保存最好是在4度
●PBST(1X)
PBS(1X) 500ml
Tween 20 500μl
●50×Tris-乙酸(TAE)缓冲液配制1L溶液各成分的用量
● Tris粉末 242g
冰醋酸
Na
2EDTA·2H
2
O 37.2g
ddH
2
0定容到 1L
●封闭液
脱脂奶粉 5g
叠氮钠 (现配现用时可不加)
PBS 定容到100mL
●染色液(室温)
●脱色液:(室温)
甲醇 165mL
乙酸 50 mL
H
2
0 785 mL
●:(调pH至,4度保存)
● Buffer: (调pH至,4度保存)
●10Х)TBS: (常温保存)
NaCl
Tris粉末
0 定容至1L
ddH
2
●TBST(1X)
TBS(1X) 500ml
Tween 20 500μl
●Stripping buffer(可反复利用)温老师组配方
10%SDS 10ml
Β-巯基乙醇 350 l
Tris-HCI()(加到50mL水)
加入ddH2O 至50mL
Stripping buffer(可反复利用)郭老师给配方
甘氨酸 15g
SDS 1g
Tween20 1ml
O 1L
dd ddH
2
作这个buffer洗20min,然后用PBST洗3次,再重新封闭孵抗体。
(二)细胞和细菌培养基、抗生素
●LB培养基(当天灭菌后放4度存放)
●LB平板:(当天灭菌后倒平板,放4度存放)
●SOB培养基
将下列组分溶解在0.9L水中:
蛋白胨 20g
酵母提取物 5g
氯化钠 0.5g
1mol/L氯化钾
用水补足体积到1L。分成100ml的小份,高压灭菌。培养基冷却到室温后,再在每100ml的小份中加1ml灭过菌的1mol/L氯化镁
●1M IPTG(异丙基硫代-β-D-半乳糖苷(分子量为))溶液
IPTG粉末
0 定容到10ml
ddH
2
用μm滤器过滤除菌,分装成1ml小份贮存于-20℃。
●Amp+(50mg/ml)
Amp+粉末 50mg
ddH
0 1ml
2
注意:分装保存于-20度,使用时按1000:1的比例用
●Kana+(50mg/ml)
Kana +粉末 50mg
ddH20 1ml
注意:分装保存于-20度,使用时按1000:1的比例用
●胰酶:抽滤,长期保存可放负20度
粉末 0.25g
EDTA -0.03g
1XPBS 100ml
●高糖DMEM培养基:抽滤保存在4度
粉末全部
碳酸氢钠 3.7g
ddH
0 定容到1L(用盐酸调pH值到:)
2
●G418母液(100mg/ml)用μM滤菌,分装存于-20度
粉末 1g
PBS 10ml
●zeocin母液(100mg/ml)用μM滤菌,分装存于-20度
粉末 1g
ddH2O 10ml
●Blasticidin(100mg/ml)用μM滤菌,分装存于-20度
粉末
PBS 10ml
●超声裂解液(lysis buffer):2011年做蛋白纯化时用
Na
3PO
4
(164)(50mM)
NaCl 17.55g(300mM)
加800 mL ddH2O溶解,用2M NaOH或者2M HCL 调pH到,再定容到1升。配好后用高压蒸气灭菌后常温保存。
●洗涤液(wash buffer):2011年做蛋白纯化时用