实验三 细菌染色体DNA的提取和检测
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
实验三细菌染色体DNA的提取和检测
一、实验目的
学习和掌握提取细菌核酸的方法;
理解DNA电泳的基本原理和各种影响因素;
学习制胶、水平式琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法和技术。
二、实验原理
核酸存在于多种细胞,如病毒、细菌、寄生虫、动植物细胞、血液、组织、唾液、尿液等多种标本中,其分离方法是多样的。总的来说核酸的分离与纯化是在溶解细胞的基础上,利用苯酚等有机溶剂抽提,分离,纯化;乙醇、丙酮等有机溶剂沉淀,收集。本实验细菌染色体DNA的提取主要是用溶菌酶、SDS和蛋白酶K处理细菌,将蛋白质变性使其与DNA分离。
电泳是指混悬于溶液中的电荷颗粒,在电场影响下向着与自身带相反电荷的电极移动的现象。DNA电泳是基因工程中最基本的技术,DNA制备及浓度测定、目的DNA片断的分离,重组了的酶切鉴定等均需要电泳完成。根据分离的DNA 大小及类型的不同,DNA电泳主要分两类:一是聚丙烯酰胺凝胶电泳:适合分离1kb以下的片断,最高分辨率可达1bp,也用于分离寡核苷酸,在引物的纯化中也常用此凝胶进行纯化,也称PAGE纯化。二是琼脂糖凝胶电泳:可分离的DNA 片断大小因胶浓度的不同而异。电泳结果用溴化乙锭(EB)染色后可直接在紫外下观察,并且可观察的DNA条带浓度为纳克级,而且整个过程一般1h即可完成。由于该方法操作的简便和快速,在基因工程中经常使用。
三、实验材料和仪器
1、实验材料:某细菌
2、实验仪器:1.5mL离心管;枪头;移液器;摇床;台式高速离心机;电泳槽;电泳仪;微波炉;电泳板和梳子;紫外分析仪;数码相机等
四、实验试剂
(一):
1、TE缓冲液(10:1):10mmol/L Tris-HCl, 1mmol/L EDTA,pH 8.0。本次试验略去。
2、裂解缓冲液(1mL体系:40mmol/L Tris-HCl,pH8.0,40ul;2mmol/L CH3COONa,
6.6ul;1mmol/L EDTA,2ul;10%SDS,1ul;其余用水补齐)(现用现配,老师处)
3、溶菌酶:100μg/mL(已配好,老师处)
4、Proteinase K:10mg/mL (已配好,老师处)
5、10%SDS(已配好,老师处)
6、NaCl:5mol/L
7、Tris饱和苯酚(老师处加样)
8、三氯甲烷(老师处加样)
9、无水乙醇、70%乙醇(已配好,老师处)
(二):
1、50*TAE电泳缓冲液:242.0gTris碱;100mL0.5mol.L-1/EDTA(pH8.0);57.1mL 冰醋酸。定容1L。(老师已配好)
2、EB母液(溴化乙锭,储存液用水配制为1mg.mL-1):称取一定量的EB溶于无菌水中,室温闭光保存;EB为强诱变剂,实验中要防止污染。(老师已配好)
3、DNA标准分子质量:购买商品
4、10*Loading buffer(pH 7.0):购买商品
(包含:EDTA 50mmol.L-1 ;甘油 60%;Xylene Cyanol FF(W/V) 0.25%;Bromophenol Blue(W/V) 0.25%)
5、琼脂糖
五、实验步骤
(一)DNA的提取
(1)菌体培养:将此菌接种于普通液体培养基中,37℃振荡培养18h,获得足够菌体。(由老师完成)
(2)菌体收集:取1 mL培养液于1.5mL离心管中,12000r/min离心5min,弃上清,收集菌体(注意吸干多余水分)。重复一次。
(3)向每管加入200μL裂解缓冲液,用吸管头缓慢抽吸,悬浮和裂解细胞,再加入50μL,100μg/mL溶菌酶(-20度保存),缓慢抽吸,37℃处理30min。
(4)加入10μL,10mg/mL蛋白酶K,缓慢抽吸,37℃处理30min。
(5)加入66μL,5mol/L NaCl溶液,充分混匀后,12000r/min,10min。除去蛋白质复合物及细胞壁等残渣。
(6)将上清转移到新管中,加入等体积Tris饱和苯酚,充分混匀后,
12000r/min,5min,进一步沉淀蛋白。
(7)取离心后水层,加等体积氯仿,充分混匀,12000r/min,5min,(除苯酚。)
(8)取上清,加2倍体积预冷的无水乙醇沉淀,30min以上(时间越长越好)。之后15000r/min高速离心15min,弃上清。
(9)用200μL 70%乙醇洗涤2次,12000r/min,2min,弃上清。
(10)干燥后,20-50μL超纯水溶解DNA,-20℃放置备用。
(二)电泳检测
1、用1*TAE电泳缓冲液按照被分离DNA分子的大小配制一定浓度(1.0%)的琼脂糖凝胶30-50mL,在微波炉中加热至琼脂糖溶解。(电炉,小胶是25mL)
2、用透明胶封固玻璃板两头,在距底板0.5~1.0mm的位置上放置梳子,将温热(冷却至50℃左右)的琼脂糖凝胶倒入胶模中,凝胶厚度在3~5mm之间。
3、在凝胶完全凝固后,撕去透明胶,小心将玻璃板移至装有1*TAE缓冲液的电泳槽中,轻轻的拔去梳子,且使缓冲液没过胶面约1mm。
4、DNA样品与10*Loading buffer(含有溴酚蓝和甘油等物质)混合后,用微量取样器慢慢将混合物加到样品槽中。
5、盖上电泳槽并通电,使DNA向阳极(红线)移动,电压为80~100V。
6、溴酚蓝在凝胶中移出适当距离后切断电流,取出玻璃板。
7、溴化乙锭染色,30min以上。
8、保鲜膜垫好,在紫外灯下观察凝胶。照相。