实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸的检测及临床意义

实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸的检测及
临床意义
摘要】目的:探讨乙型肝炎患者体内乙型肝炎病毒(HBV)的实时荧光PCR定量方法
及临床意义。

方法：对60例临床血清标本用荧光PCR定量检测的操作方法及临
床意义。

结果：乙型肝炎大三阳患者血清HBV DNA检出率为100% ,HBV DNA的对数值为7.2±1.8;小三阳患者血清HBV DNA检出率为64.5% , HBV DNA的对数值为
4.9±1.3。

结论：HBV DNA是HBV感染后病毒血症最直接的标志，是判断病毒复制最灵敏的指标，同时也是判断慢性乙型肝炎是否具有活动性的重要指标。

【关键词】实时荧光PCR定量检测；乙型肝炎；病毒脱氧核糖核酸；临床意
义
【中图分类号】R51 【文献标识码】A 【文章编号】1007-8231（2017）28-0171-02
实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV DNA)通常分为二步：首先从标本中提取HBV DNA，然后采用实时荧光PCR扩增 HBV DNA。

目前荧光定
量聚合酶链反应(FQ-PCR)检测技术逐渐应用于临床实验诊断[1]。

本实验采用实时
荧光定量PCR方法(PCR FQ-PCR)测试了60份临床血清标本结果进行分析。

1.材料与方法
1.1 标本来源
收集本院住院及门诊收治的乙肝患者血清60份，健康体检者血清60分，其
中男40例，女20例，年龄7～80岁。

1.2 标本采集、保存与运送
无菌采集静脉血3ml，收集于无菌离心管中(不抗凝或采用EDTA、枸橼酸钠
抗凝)，室温放置不超过2h，1 600g离心20min，分离血清或血浆，转入无菌离心管中备用。

分离的血浆或血清在4℃保存不应超过24h；-20℃保存不超过3个月；-70℃以下长期保存。

应避免反复冻融。

采用冰壶加冰或泡沫箱加冰密封进行运输。

1.3 方法
主反应混合物的配制，从试剂盒中取出HBV PCR反应液、 Taq/UNG酶、HBV
荧光探针和MgCl2，室温融化并振荡混匀后，2000r/min离心10s。

设所需要的EP 管管数为M(M=标本数+1管阴性对照+1管临界阳性对照+1管阳性对照+4管阳性
工作标准品)，则按下表配制主反应混合物，充分混合均匀，2000r/min离心10s，向设定的EP管各分装26μl，转移至标本处理区[2]。

HBV DNA的提取(加热裂解法)，血清标本、试剂盒内阳性对照、临界阳性对照和阴性对照各取100μl(冻存血清或
对照品使用前在室温融解，振荡混匀10s)，分别加入100μl核酸提取液A，振荡
混匀10s，13000r/min离心lOmin，弃上清，然后分别加入25μl核酸提取液B至
沉淀中，振荡混匀10s，100℃金属浴10min，13000r/min离心2min，备用。

PCR
反应体系的配制，向装有主反应混合物的EP管中分别加入提取的DNA溶液(冻存
的DNA溶液在使用前应室温充分融化，振荡混匀数s，13000r/min离心2min)、
阳性工作标准品各4μl，混匀，分别取20μl混合液置于不同的毛细管中，盖紧管盖，转移至PCR扩增与检测区。

PCR扩增与检测将毛细管连同Roche专用金属反
应管套放入离心机中，于2000r/min离心10s。

然后将毛细管排好放入“Lightcycler”荧光PCR仪内，记录标本的顺序。

2.结果
健康体检者阳性数60例100%，LogDNA平均值（7.45±2.45），定量测值范
围（1.4×105～7.0×109）ml-1。

乙肝患者中HBsAg(+)、HBeAb(+)、HBcAb(+)者26例，阳性数11例，LogDNA平均值（6.34±1.85），定量测值范围（0～8.0×107）
ml-1。

HBsAg(+)、HBcAb(+),者7例，阳性数4例，LogDNA平均值（5.95±0.95），
定量测值范围（0～7.0×107）ml-1。

HBeAb(+)、HBcAb(+)者2例，阳性数1例，LogDNA平均值（5.34±4.55），定量测值范围（0～4.0×103）ml-1。

HBsAb(+)者11例，阳性数1例，LogDNA平均值4.7，定量测值范围（0～5.0×104）ml-1。

五项
全阴14例，HBV-DNA结果与ELISA检测结果均为0。

3.讨论
实时荧光PCR是一种将先进的光学技术、温控技术、荧光素标记技术以及计
算机软件有机结合的新型PCR，能够对PCR的每一个循环的荧光强度进行监测，
故称为实时荧光PCR。

实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV DNA)通常分为二步：首先从标本中提取HBV DNA，然后采用实时荧光PCR扩增HBV DNA。

本试验涉及的实时荧光PCR是以Taqman技术为基础的荧光PCR，与
经典的PCR技术比较，Taqman技术在反应体系中增加一种荧光素标记的寡核苷
酸探针，探针的5′端标记荧光素的报告基团，3′端标记淬灭基团，当探针完整时，发生荧光共振能量转移，发光基团发出的荧光被淬灭基团所吸收，因此无荧光产
生[3]。

当进行 PCR扩增时，Taq酶具有5′-3′核酸外切酶的活性，能够将探针水解
成游离的核苷酸，此时荧光共振能量转移消失，报告基团发出的荧光不能被吸收
而产生荧光。

每循环一次Lightcycler等实时荧光PCR仪记录一次荧光强度，然后
根据荧光强度曲线判断标本或标准达到阈值时所经历的循环数(CT)，每个标本的
CT值与起始HBV DNA拷贝数的对数存在线性关系，即CT=A-Blg[C]，起始拷贝数
越高，CT值越小，因此Lightcycler等荧光PCR仪根据标准曲线与标本的CT值即
可判断是否存在目的核酸以及目的核酸的量。

HBV DNA是HBV感染后病毒血症最直接的标志(金标准)，是判断病毒复制最
灵敏的指标，同时也是判断慢性乙型肝炎是否具有活动性的重要指标。

HBV DNA
是判断乙肝患者传染性高低的重要指标之一，HBV DNA通常与传染性呈正相关。

而且当乙肝3系的检测结果不是经典类型，或HBV的核心或前核心启动子发生突
变时，HBV DNA在判断传染性高低中的作用更为突出[4]。

当HBV DNA的浓度小
于5000copies/ml时，或HBV突变不能产生正常的病毒蛋白抗原时，HBV DNA的
检测价值优于HBV相应抗原的检测。

观察抗病毒药物治疗的疗效：治疗有效的患者，HBV DNA的水平显著下降，通常HBV DNA的水平下降到105copies/ml以下，表示治疗有效，有效治疗的患者，HBV DNA的水平甚至可下降到场200 copies/ml
以下。

此方法是监测HBV耐药的间接方法。

乙肝患者在治疗过程，HBV DNA不下降或下降不明显，应考虑HBV发生变异，产生耐药，应进一步采用基因分型的方
法进行检测。

HBV DNA的检测能缩短HBV感染的窗口期，与HBsAB比较，能缩
短窗口期6～15天，如用于献血员的检测，能提高输血的安全性。

【参考文献】
[1]李成德,岑丽莲,陈金强,等.磁珠分离纯化技术在实时荧光定量PCR检测HBVDNA中的应用[J].现代检验医学杂志,2011,26(3):68-71.
[2]杨志钊,梁锦胜,蔡常辉.荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒的临床意义[J].华夏
医学,2001,14(4):423-424.
[3]肖艳群,陈慧英,张锦锋,等.实时荧光定量PCR与PCR-ELISA在乙型肝炎病毒DNA定量检测中的应用比较[J].检验医学,2005,20(4):319-321.
[4]宏芳,付晓野,董玉琳,等.荧光探针定量PCR检测HBV-DNA[J].上海医学检验学杂志,2000,15(1):18-19.。