贝类毒素的测定
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毒力单位转换
样品中的毒力单位的按公式(4)计算。 F·80µg /100g=400MU/100g ………(3) F=5
式中: F—毒素转换系数;
80µg /100g—样品中PSP限量,µg /100g 400MU/100g—样品中PSP限量,MU/100g
实用文档
二、腹泻性贝类毒素(DSP) Diarrhetic shellfish poisoning
生物法(即小白鼠法),系采用ICR系列的小白鼠作为检验 动物,进行贝类毒素分析
生物法(即小白鼠法)优势:当使用生物法检测法时,一旦
发现超标样品,则本批样品不得食用,这说明所检测贝类
中相关的毒素含量已经影响到人们的食用安全,不适合食
用。
实用文档
麻痹性贝类毒素的测定 生物法
(SC/T 3023-2003)
贝类毒素的测定 生物法
实用文档
一、麻痹性贝类毒素(PSP) Para1ytical shellfish poisoning
PSP中毒是最常见的食用贝类中毒 PSP由一组石房蛤毒及其衍生物组成,PSP与涡
鞭毛藻的水华有关(>106个细胞/升) PSP在世界范围内分布 PSP中毒引起神经系统紊乱,呼吸困难,感觉
DSP是由于双壳贝类滤食含毒的涡鞭毛藻而引起 影响较严重的地区主要是日本和欧洲沿海国家,
发病率高,引起许多国家地区的关注 受DSP中毒的症状表现为消化功能紊乱(腹泻、
呕吐、腹痛),食用含毒贝类后30分钟至几小 时出现症状,中毒者一般在3-4天康复,尚无死 亡病例
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腹泻性贝类毒素的测定方法
实用文档
样品的测定
提取
取 100g 样 品 于 800mL 烧 杯 中 , 加 0.1mol/L HCl溶液100mL充分搅拌, 检 查 pH ( pH 应 为 2.0-4.0 ) 。 需 要 时,可逐滴加入5mol/L HCl溶液或 0.1mol/L NaOH溶液调整pH,加碱 时速度要慢,同时需不断搅拌,防 止局部碱化破坏毒素
在国际上对腹泻性贝类毒素的检测方法较 多,主要有生物法、高效液相色谱法、酶 联免疫法、放射性免疫法等
生物法(小白鼠法,Mouse bioassay)是 最常用的一种方法
保留进行小鼠注射用的足量液体(约10mL)
实用文档
样品的测定
小鼠试验
选择ICR系小鼠 称重 :以感量 为 0.1g
的天平将小鼠称重并 记录重量
实用文档
样品的测定
小鼠试验
每个样品注射3只小鼠,每只小鼠腹腔注射1mL 提取液。注射时若有一滴以上提取液溢出,须 将该只小鼠丢弃,并重新注射一只小鼠
将混合物加热,并徐徐煮沸5min,冷却至室温, 调节pH至2.0-4.0(切勿>4.5)。将混合物移至 量筒中并稀释至200mL
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样品的测定
提取
将混合物倒回烧杯,搅拌至均质状,使其沉降至 上清液呈半透明状,不能堵塞注射针头即可
必要时将混合物或上清液以3000r/min离心5min, 或用滤纸过滤
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剂
样品的测定
检样的制备
贝类罐头 1.将罐内所有内容物(包括贝肉组织及汁液),
于均质器中均质 2.大容量的罐头,则过滤分离贝肉及汁液,分别
称重,将固形物和汤汁按比例混合,充分均质 冷冻贝类
在室温下,使冷冻的样品(带壳或脱壳的)呈 半冷冻状态,按上述规定的方法清洗、开壳、 淋洗、取肉、均质
试剂
盐酸溶液:0.1 mol/L 盐酸溶液:5 mol/L 氢氧化钠溶液:0.1 mol/L
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仪器和设备
均质器 天平(感量0.1g) 离心机 pH计 秒表 玻璃皿;烧杯、量筒、容量瓶、搅拌棒等 注射器:1mL 注射器针头:8#
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小白鼠:
体重为19-21g的健康ICR系雄性小白鼠 若体重<19g或>21g,查表中的校正系
数便可得到校正的死亡时间 体重>23g、或已用过的小白鼠则不能
使用
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样品的测定
检样的制备
贝类
洗净外壳,切断闭壳
肌,开壳,用清水淋
洗内部去除泥沙及其
他外来杂质,仔细取
贝 肉 , 收 集 沥 水 5min
(避免贝肉堆积),
捡出碎壳等杂物,将 注意:取肉时切勿
贝肉均质
ห้องสมุดไป่ตู้
割破肉体,开壳前
不能加热或用麻醉
稀释提取液时,要调节pH至2.0-4.0,逐滴加入 0.1mol/L或0.01mol/LHCl溶液
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结果的计算与判断
毒力的计算
根据小鼠的死亡时间,在附录B 中查出相应的每毫升注射
液的鼠单位数M
将存活鼠的死亡时间视为大于60min即相当于<0.875MU 若试验动物重量<19g或>21g。则根据附录C查出重量校
原理
根据小鼠注射贝类提取液后的死亡时间,查出 鼠单位,计算确定每100g贝肉中PSP的含量
特点:测定结果代表存在于贝肉内各种化学结 构的麻痹性贝类毒素的总量
鼠单位 mouse unit,MU:对体重为20g的小白 鼠腹腔注射1mL麻痹性贝类毒素后,小鼠在 15min时死亡所需的最低毒素量
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窒息,心肺衰竭而在2—24小时内死亡 一般PSP中毒在0.5-2h的时间内,症状逐渐发
展,能承受12h以上的中毒者一般能康复
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麻痹性贝类毒素的测定方法
国际上麻痹性贝类毒素的检测方法较多,主要有小白鼠法、 高效液相色谱法、酶联免疫法、放射性免疫法等。
生物法(即小白鼠法)是国际惯用的麻痹性贝类毒素的测定 方法,已被美国公职分析化学家协会《公定分析方法》 (AOAO)收入,而成为最普遍应用的检验方法。
记录注射完毕时间,仔细观察 并用秒表记录小鼠停止呼吸时 的死亡时间(到小鼠呼出最 后一口气止)
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样品的测定
小鼠试验
若注射样品原液后,1只或2只小鼠的死亡时间 大于7min,则需再注射至少3只小鼠以确定样 品的毒力
若小鼠的死亡时间小于5min,则要稀释样品提 取液后,再注射另一组小鼠(3只),得到 5min-7min的死亡时间
正系数k 样品中PSP的含量按公式(1)计算。
……………(1) 式中:
X—样品中PSP含量,每百克样品中鼠单位(MU / 100g)
Ki—每只小鼠的重量校正系数 Mi—每只小鼠的鼠单位数,鼠单位(MU)
D—样品提取液的稀释倍数
200—样品量,克(g) 实用文档
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结果的计算与判断
样品中的毒力单位的按公式(4)计算。 F·80µg /100g=400MU/100g ………(3) F=5
式中: F—毒素转换系数;
80µg /100g—样品中PSP限量,µg /100g 400MU/100g—样品中PSP限量,MU/100g
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二、腹泻性贝类毒素(DSP) Diarrhetic shellfish poisoning
生物法(即小白鼠法),系采用ICR系列的小白鼠作为检验 动物,进行贝类毒素分析
生物法(即小白鼠法)优势:当使用生物法检测法时,一旦
发现超标样品,则本批样品不得食用,这说明所检测贝类
中相关的毒素含量已经影响到人们的食用安全,不适合食
用。
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麻痹性贝类毒素的测定 生物法
(SC/T 3023-2003)
贝类毒素的测定 生物法
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一、麻痹性贝类毒素(PSP) Para1ytical shellfish poisoning
PSP中毒是最常见的食用贝类中毒 PSP由一组石房蛤毒及其衍生物组成,PSP与涡
鞭毛藻的水华有关(>106个细胞/升) PSP在世界范围内分布 PSP中毒引起神经系统紊乱,呼吸困难,感觉
DSP是由于双壳贝类滤食含毒的涡鞭毛藻而引起 影响较严重的地区主要是日本和欧洲沿海国家,
发病率高,引起许多国家地区的关注 受DSP中毒的症状表现为消化功能紊乱(腹泻、
呕吐、腹痛),食用含毒贝类后30分钟至几小 时出现症状,中毒者一般在3-4天康复,尚无死 亡病例
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腹泻性贝类毒素的测定方法
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样品的测定
提取
取 100g 样 品 于 800mL 烧 杯 中 , 加 0.1mol/L HCl溶液100mL充分搅拌, 检 查 pH ( pH 应 为 2.0-4.0 ) 。 需 要 时,可逐滴加入5mol/L HCl溶液或 0.1mol/L NaOH溶液调整pH,加碱 时速度要慢,同时需不断搅拌,防 止局部碱化破坏毒素
在国际上对腹泻性贝类毒素的检测方法较 多,主要有生物法、高效液相色谱法、酶 联免疫法、放射性免疫法等
生物法(小白鼠法,Mouse bioassay)是 最常用的一种方法
保留进行小鼠注射用的足量液体(约10mL)
实用文档
样品的测定
小鼠试验
选择ICR系小鼠 称重 :以感量 为 0.1g
的天平将小鼠称重并 记录重量
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样品的测定
小鼠试验
每个样品注射3只小鼠,每只小鼠腹腔注射1mL 提取液。注射时若有一滴以上提取液溢出,须 将该只小鼠丢弃,并重新注射一只小鼠
将混合物加热,并徐徐煮沸5min,冷却至室温, 调节pH至2.0-4.0(切勿>4.5)。将混合物移至 量筒中并稀释至200mL
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样品的测定
提取
将混合物倒回烧杯,搅拌至均质状,使其沉降至 上清液呈半透明状,不能堵塞注射针头即可
必要时将混合物或上清液以3000r/min离心5min, 或用滤纸过滤
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剂
样品的测定
检样的制备
贝类罐头 1.将罐内所有内容物(包括贝肉组织及汁液),
于均质器中均质 2.大容量的罐头,则过滤分离贝肉及汁液,分别
称重,将固形物和汤汁按比例混合,充分均质 冷冻贝类
在室温下,使冷冻的样品(带壳或脱壳的)呈 半冷冻状态,按上述规定的方法清洗、开壳、 淋洗、取肉、均质
试剂
盐酸溶液:0.1 mol/L 盐酸溶液:5 mol/L 氢氧化钠溶液:0.1 mol/L
实用文档
仪器和设备
均质器 天平(感量0.1g) 离心机 pH计 秒表 玻璃皿;烧杯、量筒、容量瓶、搅拌棒等 注射器:1mL 注射器针头:8#
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小白鼠:
体重为19-21g的健康ICR系雄性小白鼠 若体重<19g或>21g,查表中的校正系
数便可得到校正的死亡时间 体重>23g、或已用过的小白鼠则不能
使用
实用文档
样品的测定
检样的制备
贝类
洗净外壳,切断闭壳
肌,开壳,用清水淋
洗内部去除泥沙及其
他外来杂质,仔细取
贝 肉 , 收 集 沥 水 5min
(避免贝肉堆积),
捡出碎壳等杂物,将 注意:取肉时切勿
贝肉均质
ห้องสมุดไป่ตู้
割破肉体,开壳前
不能加热或用麻醉
稀释提取液时,要调节pH至2.0-4.0,逐滴加入 0.1mol/L或0.01mol/LHCl溶液
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结果的计算与判断
毒力的计算
根据小鼠的死亡时间,在附录B 中查出相应的每毫升注射
液的鼠单位数M
将存活鼠的死亡时间视为大于60min即相当于<0.875MU 若试验动物重量<19g或>21g。则根据附录C查出重量校
原理
根据小鼠注射贝类提取液后的死亡时间,查出 鼠单位,计算确定每100g贝肉中PSP的含量
特点:测定结果代表存在于贝肉内各种化学结 构的麻痹性贝类毒素的总量
鼠单位 mouse unit,MU:对体重为20g的小白 鼠腹腔注射1mL麻痹性贝类毒素后,小鼠在 15min时死亡所需的最低毒素量
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窒息,心肺衰竭而在2—24小时内死亡 一般PSP中毒在0.5-2h的时间内,症状逐渐发
展,能承受12h以上的中毒者一般能康复
实用文档
麻痹性贝类毒素的测定方法
国际上麻痹性贝类毒素的检测方法较多,主要有小白鼠法、 高效液相色谱法、酶联免疫法、放射性免疫法等。
生物法(即小白鼠法)是国际惯用的麻痹性贝类毒素的测定 方法,已被美国公职分析化学家协会《公定分析方法》 (AOAO)收入,而成为最普遍应用的检验方法。
记录注射完毕时间,仔细观察 并用秒表记录小鼠停止呼吸时 的死亡时间(到小鼠呼出最 后一口气止)
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样品的测定
小鼠试验
若注射样品原液后,1只或2只小鼠的死亡时间 大于7min,则需再注射至少3只小鼠以确定样 品的毒力
若小鼠的死亡时间小于5min,则要稀释样品提 取液后,再注射另一组小鼠(3只),得到 5min-7min的死亡时间
正系数k 样品中PSP的含量按公式(1)计算。
……………(1) 式中:
X—样品中PSP含量,每百克样品中鼠单位(MU / 100g)
Ki—每只小鼠的重量校正系数 Mi—每只小鼠的鼠单位数,鼠单位(MU)
D—样品提取液的稀释倍数
200—样品量,克(g) 实用文档
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