兔骨髓间充质干细胞的分离

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兔骨髓间充质干细胞的分离、体外培养、鉴定和体外标记

兔骨髓间充质干细胞的分离、体外培养、鉴定和体外标记
fNa c a g Un v r i , n h n 3 0 6 De a t n fP t o h soo y i a f i e s i o n h n i e s y Na e a g 3 0 0 ; l a t p rme to ah p y ilg ,Me ia o lg fNa c a g dc lC l e o n h n e
Unv ri ; r n tue teFrt fl tdHoptl fNa c a gUnv ri ) ie t Bun Is tt, h i i i e s i n h n iest s y i s Af a ao y 【 sr c】 Obe t e T x lr to fi lt n u f aina d c l r fb n lo d r e sn h ma tm Ab ta t jci : oe poeameh d o oai ,p r c t n ut eo o emaT w— e v d mee c y lse v s o i i o u i
M C 表 面 抗 原 进 行 鉴 定 , 明所 培 养 的 细胞 为 MS s 采用 5 溴 脱 氧 尿 嘧 啶核 苷 f一 rm 一 一 exui n, rU体 外 标 Ss 证 C。 一 5 B o o 2 doy r ie Bd ) d 记 兔 M C , 测 其 标 记 阳性 率 。 果 : 骨髓 培养 法培 养 的原 代 MS s S 8检 结 全 C 接种 4天 后 可 以 被 观察 到 , 形态 均 匀 成 梭 形 , 长 生
增 殖迅 速 , 合 MS s 长 的 特 性 , ~ C 融合 接 近 8 %, 符 C 生 7 8 dMS s 0 传代 培 养 生 长 良好 。 C 生 长 曲线 呈 S型 , MS s 由生 长 曲线 分 析 可 知 , C 在 培 养 第 4 8 d为 高速 生长 期 , C 在 第 3 5代 生 长 最 为 旺盛 。 流 式 细胞 术 鉴 定 , D 4 一 、 D 5 一 、 MS s ~ MS s ~ 经 C 3 ( )C 4 ( ) C 4 ( ) C 0 ( ) 证 明 所 培 养 的 细胞 为较 纯 的 MS s B d D 4 + 、 D1 5 + , C 。 r U体 外 标 记 兔 MS s 阳性 率达 到 8 %~ 0 结论 : 用 本 C 的 5 9 %。 应

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及成骨诱导

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及成骨诱导
T u o Zh e n . h e ’
1 D e p a r t me n t o f Or t h o p e d i c s , Se c o n d H o s p i t a l o f L a n z h o u Un i v e r s i t y , L a n z h o u 7 3 0 0 3 0 , Ga n s u
关 键词 :
庾 佳佳 ★ , 男, 1 9 8 5年生 ,
山西 省新 绛 县人 ,汉族 , 兰 州大 学在读 硕 士 , 主要 从 事骨 组织 工程研 究
干 细胞 ;骨 髓干 细胞 ;骨 髓 间充质干 细胞 ;密 度梯 度离 心法 ;分 离培养 :成 骨诱 导 ;骨 组织 工程 ;兔 ; 国家 自然科 学基 金 ;干细 胞 图片文 章
中 国组织工程研究
第, 7眷 第 6期
2 0 1 3— 0 2—0 5出版
W W W . C R T E R . o r g
C h i n e s e J o u r n a l o f T i s s u eE n g i n e e n n gR e s e a r c h F e b r u a r y 5 , 2 0 1 3 V o 1 . 1 7 , N o . 6
兔骨髓间充质干细胞的分离培养及成骨诱导冰 ★
庾 佳佳 ’ ,汪 新柱 ,赵 琳’ ,孙 瑞’ ,闰雪 萍。 ,张苍 宇’ ,任广 铁’ ,拓振合 ’
2甘 肃省 中医院放射 科 ,甘 肃省 兰 州市
1兰州 大学第 二 医院骨科 ,甘 肃省 兰州市 7 3 0 0 3 0 7 3 0 0 5 0 3兰州大学 口腔医学院,甘肃省兰州市 7 3 0 0 0 0

养。

兔骨髓间充质干细胞的分离、体外培养、成骨诱导与鉴定

兔骨髓间充质干细胞的分离、体外培养、成骨诱导与鉴定
( 广 西 医科 大 学 第一 附属 医院创 伤 骨科 手 外 科 , 广 西 南宁 5 3 0 0 2 1 )
摘要 : 目的 建 立 一 种 兔 骨 髓 间 充 质干 细 ( Me s e n c h y ma l s t e m c e l 1 . MS C ) 体 外 分 离培 养 、 扩增 及 鉴 定 的 方 法 。方 法 采 用全 骨 髓 贴 壁 培 养 法分 离
原代和传代培 养的 r B MS C s 具 有 活跃 的增 殖 能 力 , 成骨成脂诱导后, 碱 性磷 酸 酶 染 色 、 茜素 红 染 色 、 v o n Ko s s a法 染 色 、I型胶 原 免 疫 细 胞 化 学
检 测 和 油 红 。 染 色均 呈 阳性 。成 骨诱 导 电镜 检 测 呈 阳 性 。结 论 全 骨 髓 贴 壁培 养 法操 作 相 对 简单 , 可大量分离、 纯化 、 扩 增 骨 髓 间 充 质 干 细胞 ,
Me t ho d s BMS Cs f r o m r a b b i t we r e i s o l a t e d ,c u l t u r e d a n d p u r i f i e d b y t h e w ho l e b o n e ma r r o w a d h e r e n c e me t h o d ,T h e c e l l g r o wt h wa s o b s e r v e d u n d e r P h se a — c o n t r a s t mi c r o s c o p e a n d t h e g r o w t h c u ve r o f c e l l p r o l i f e r a t i o n wa s d r a wn a c c o r d i n g l y.B MS C s we r e i n d u c e d t o d i f f e r e n t i a t e i n t o o s t e o b l st a s a n d a d i p o c y t e s a n d d e t e c t e d Al k a l i n e p h o s p h a t se a a c t i v i t i e s o f d i f e r e n t t i me p o i n t s .Re s u l t s BMS Cs f r o m r a b b i t s we r e s p i n d l e c e l l — b a s e d , s h o wi n g r a d i a l c o l Байду номын сангаас n y a r r a n g e me n t .T h e ro g th w c u r v e w e r e c o n s i s t e n t  ̄ ; i t h t h e ro g wt h c h a r a c t e is r t i c s a n d g o o d a c t i v i t y o f n o r ma l c e l l s .F o l l o wi n g i n d u c t i o n ,o i l r e d O

兔骨髓间充质干细胞的体外培养及相关检测的实验研究

兔骨髓间充质干细胞的体外培养及相关检测的实验研究
中医正 骨 2 1 0 1年 1 第 2 1月 3卷 第 1 1期

( 83 3・ 总 0 )・
基础研 究 ・
兔 骨髓 间充 质干 细胞 的体 外培养及 相关检 测 的实验研 究
王萧枫 童培建 金红婷 吴银生 , , ,
(. 1浙江省温州市中西医结合 医院, 浙江 温州 350 ; . 1 200 2 浙江中医药大学, 浙江 杭 州 305 ) 1 3 0
W nhu Ct , ezo 2 0 0 Z ea g,hn ezo i W nh u3 5 0 , hf n C i y i a
A S R T Obet eT xlr t p rahst i lt,u ueadietytebn a o snhm l tm cl ( C )0 B T AC jci :oepoe h a poce oa cl r n ni h oem  ̄ w meecy a s el MS s f v e os e t d f e s
r b i n vto M eh d : a b tMS e e e t ce h o g h e st r de t e t f g t n a d s p rt n o ec mb n t n a h r a bt i i . s r to s R b i Csw r xr td t r u h te d n i g a in n r u ai n e a ai ft o i ai d e - a y c i o o h o
e t c l g o t aea d mo p oo ia h n e so s r e sn e i v r d mi r s o e s lc h 3 c l n u e sn p ca d a n , el rw h r t n r h lgc l a g swa b e v d u i g t n e e c o c p , ee t e P el id c d u ig s e i me i c h t t s l s p lme t d, b e v h e sbl y o i ee tain i t o e c l ,a e l , atlg e l. x r si n o 2 C 4 C 4, D 5 w s u p e n e o s r e t e fa i i t fd f r n it n o b n el ftc l c r a e c l E p e so f i f o s s i s CD 9, D 4, D3 C 4 a d t ce sn o yo t . s l : h u u e el h wi g l n u i r a d f r b a t i e go t p a t t c me ta d r pd ee td u i g f w c t mer Re u t T e c h r d c l s o n o g f sf m n b o ls-l r w h, l si at h n n a i l y s s o i k c a

兔DCM造模及骨髓间充质干细胞培养方法学的研究

兔DCM造模及骨髓间充质干细胞培养方法学的研究

w e r ek , n eo e j t gar m c m / gb d t w c ekf ek . o pr t fc n yo to e kf w e s a dt t r s ne i di y i 1 g k o yw i a e r w e s Wec m a ee i c f w o 8 h h i i cn a n t e w o8 eh i e
在 为 研 究 D M 治 疗 方 法 的选 择 以及 临 床 疗 效 的观 察 奠 定 基 础 , 细 胞 移 植 的准 备 提 供 方 法 学 依 据 。方 法 C 为
1 每 次 2m / g及 每 周 2次 每 次 1 g k , 连 续 8 的 给 药 方 式 进 行 兔 D M模 型 的制 备 , 药 结 束 后 3周 处 死 动 次 gk , /g均 m 周 C 给
亡率 和体重减轻率无统计学差 异 。应用密度梯度离 心法和全骨髓 培养法均可获得 M C , S s但所获细胞纯度 及其生 物学 特性 略有差异 。结论
的选有效 , 两种给药方式模 型制备效果一致 , 推荐使用 1 1 的 周 次
给 药 方 式 ; 种 培 养 方 法 均 可 获 得 M C 细 胞 , 根 据 不 同实 验 中具 体 需 要 的 细胞 数 量 和 细 胞 纯 度 进 行 不 同 培 养 方 法 两 Ss 可 关键词 : 张型心肌病 ; 物模型 ; 髓问充质干细胞 ; 外培 养 ; 扩 动 骨 体 兔
fo bn ro f abt S N n J N h agqa , IN J - e,t 1( eatetfUtsud Te od f l rm o emarw o b i U Mi,I GS un-un T i w ie a. Dp r n o lo n , h &cn : i r A A a m ro Af — i

兔骨髓间充质干细胞的分离、扩增及诱导分化

兔骨髓间充质干细胞的分离、扩增及诱导分化
胞 诱 导 , 4d 成 骨 细 胞 诱 导 组 检 测 碱 性 磷 酸 酶 , 脂 肪 细 胞 诱 导 组进 行 油 红 0染 色 。 结 果 全 骨 髓 贴 壁 培 养 1 后 成
法可 获得 B MS s原代和传代 培养的 B MS s M. C , M. C 具有活跃 的增殖能力 。成骨细 胞诱导组碱性磷酸酶检测 表
【 摘要 】目的 探 讨兔骨髓 间充质干细胞 (o emarw meec y ltm el, M— Cs体外培养 、 向 b n ro sn hma s cl B MS ) e s 定 诱 导分化为成骨细胞和 成脂 肪细胞的途径 , 为进一步 的实验研究打下基础 。 方法 抽取兔股骨骨髓 , 以全骨髓 贴 壁培养法进行体外培养 , 贴壁细胞传代 , 倒置 显微 镜下观察细胞形态 。取第 3 代细胞 向成骨 细胞和成脂肪细
Ch n s e ia n v r i , n ig i e eM du n x 3 0 1 y a g i5 0 1 ,Ch n ia
[ b tat Obet eT n et a h ut ain i i o o abtb n r w snh ma s m el A s c] r jc v o iv sg t te c lvt n vt frb i o e mar mee cy l t c l i i e i o r o e s ( M. S ) te nu t n n df rnit n f M. S s n oto l t nd io ls fr ute B M Cs h id ci a d iee t i o B M C it s ba s o f ao o e s a l bat o fr r p s h
【 关键词 】骨髓问充质干细胞 ; 细胞 , 培养的 ; 因扩增 ; 基 细胞分化; 兔 中图分类号:12 .4 文献标识码 : 文章编号: 6 46 6 2 1 )10 4 .3 1 92 3 A 17 -6X(000 -0 90

幼兔髂骨穿刺抽取骨髓间充质干细胞分离培养鉴定:注意的细节与技术

幼兔髂骨穿刺抽取骨髓间充质干细胞分离培养鉴定:注意的细节与技术

幼兔髂骨穿刺抽取骨髓间充质干细胞分离培养鉴定:注意的细节与技术张聪;刘洪美;李庆伟;陈国武;梁啸;孟纯阳【摘要】背景:骨髓间充质干细胞被认为是构建组织工程骨修复骨与软骨缺损中较为常用的种子细胞,在其基本操作过程中注意常见问题并及时避免,对后期细胞学及组织工程学实验很有意义。

目的:通过作者实验操作过程中所遇问题的总结和分析,为初学者和科研人员提供可靠的骨髓间充质干细胞分离培养鉴定方法,减少操作过程中的人为失误和易犯问题。

方法:取16只幼年新西兰大白兔作为实验对象,进行髂骨穿刺抽取骨髓液。

采用密度梯度离心法联合贴壁培养法体外筛选纯化细胞,并且通过倒置相差显微镜观察其形态学特点、生长曲线和流式细胞术鉴定骨髓间充质干细胞表型。

结果与结论:实验过程中前5只兔骨髓抽吸、骨髓间充质干细胞分离过程中遇到不同的问题和困难,经认真总结和分析,后11只兔骨髓抽吸、骨髓间充质干细胞分离均获成功,在细胞培养过程中未发现细菌污染和细胞老化,第3代骨髓间充质干细胞高表达CD29、CD44抗原,而CD14、CD34抗原低表达,MTT测细胞生长曲线显示P3和P5增殖活性较高。

尽管骨髓间充质干细胞分离培养鉴定技术已较为成熟,但是如果操作过程中不注意细节问题,也将会导致实验困难重重或失败。

严格执行常规操作步骤可以得到纯度较高的骨髓间充质干细胞,提高成功率,为后续相关细胞实验和动物实验做好准备。

%BACKGROUND:Bone marrow mesenchymal stem cells are considered as commonly used seed cells to construct tissue-engineered for repair of bone and cartilage defects. It is of great significance for cytology and tissue engineering experiments to study the common problems existing in the basic operation and how to avoid these problems in a timely manner.OBJECTIVE:To summarize the common problems existing in the process of operation in order to provide reliable methods about separation, culture and identification of bone marrow mesenchymal stem cells for beginners and researchers. These can reduce or avoid some errors and problems during operation. METHODS:Sixteen New Zealand white rabbits were selected as experiment objects, and bone marrow mesenchymal stem cells were separated from rabbits by iliac puncture, purified and augmented by using density gradient centrifugation combined with adherent culture method. Then cellmorphology was observed by inverted phase contrast microscope, growth curve detected by MTT method and cellphenotype identified by flow cytometry. RESULTS AND CONCLUSION:We encountered some problems in the process of separation and culture, when we operated the first five rabbits. After careful y summarizing and analysis of the reasons, the operation was successful y completed on the rest 11 rabbits. Bacteria pol ution and cellaging were not found in the process of cellculture. What is more, the cells at passage 3 appeared with high-expression of CD29, and CD44, but low expression of CD14 and CD34. The cellgrowth curve showed that the proliferation activity of cells at passages 3 and 5 was higher than that at passage 10. Although the technology of separation, culture and identification of bone marrow mesenchymal stem cells is mature, the failure wil be happen if we do not pay attention to the details of operation. By strictly carrying out normal operations, we can get high purity of bone marrow mesenchymal stemcells, which lays a good foundation for celland animal experiments in the future.【期刊名称】《中国组织工程研究》【年(卷),期】2014(000)023【总页数】6页(P3639-3644)【关键词】干细胞;骨髓干细胞;骨髓间充质干细胞;种子细胞;细胞培养;表型鉴定;兔;山东省自然科学基金【作者】张聪;刘洪美;李庆伟;陈国武;梁啸;孟纯阳【作者单位】济宁医学院附属医院脊柱外科,山东省济宁市 272000;济宁医学院病理教研室,山东省济宁市 272000;济宁医学院附属医院脊柱外科,山东省济宁市 272000;济宁医学院附属医院脊柱外科,山东省济宁市 272000;济宁医学院附属医院脊柱外科,山东省济宁市 272000;济宁医学院附属医院脊柱外科,山东省济宁市 272000【正文语种】中文【中图分类】R394.20 引言 Introduction骨髓组织中除含有造血干细胞外,还含有少量的骨髓间充质干细胞[1]。

兔骨髓间充质干细胞的分离、培养、鉴定及DiI荧光标记

兔骨髓间充质干细胞的分离、培养、鉴定及DiI荧光标记
o D2 n fC 9 a d CD1 6 o e l we e a ay e y u ig i 0 f i r n l z d b sn mmu o y o h mit . h h r e e ai n o C sl b l d b i. c s n e tc e s y T et i g n r t f r d o MS swa a e e y D I T el b l gef i n y w sd tc e . e ut : h r r u t r d MS sa h r d t lsi u fc t i 8 h a d r a h d h a e i f c e c a ee t d R s l T ep i y c l e C d e e op a t s r e wi n 4 n e c e n i s ma u c a h 9 % c n u n ewi i — . C x r s e 0 o f e c t n 7 8 d MS se p e s d CD2 n D1 6 A1 o eMS ss o e d f o e c n eb mmu o u r — l h 9 a d C 0 . 1 f h C h w d r u r s e c yi t e l n f o o l
ci ( S s i vr.Meh d : S s ee sl e n ut a d y es y rde t n d eet e osT e x rsi s el M C )n io s t to s M C r i a dadclvt ni a i da hrn t d. h pes n w o t i e b d tg na m h e o
汇合 ;免疫细胞 化学方法检测 细胞表面标 志抗 原 C 2 , D 0 D 9 C 16为 阳性 ; i进行 细胞标记后 ,荧光显 微镜下 见所有 DI M C 均被标记为红色荧 光 , Ss 敏感性好 , 标记效率 高。结论 : 此培养方法可 以作为培养兔 MS s C 的常规方法 , 为构建组织 工程尿道提供充足 的种子细胞 。 关键词 骨髓细胞 间质干细胞 细胞 , 培养 的 细胞分离 免疫组织化学 荧光抗体技术 流式细胞术 兔

不同年龄兔骨髓间充质干细胞的体外生长特性分析

不同年龄兔骨髓间充质干细胞的体外生长特性分析

【 摘
要 】 目的 观察不 同年 龄兔 骨髓 间充质干细胞 (M C 在体外分离 、 、 B S) 培养 扩增的过程 , 并对其 生长
特性进行初步 比较分析 。 B C的临床应用提供技术方法和依据。方法 选取 出生 1 、8月 、6月 的健康 中 为 MS 月 1 3 国 白兔 。 成新 生 、 分 成年 、 年 3组 , 用密 度梯 度离心 技术 及贴 壁筛选 法相 结合 , 老 采 分离 培养 B C, MS 用噻 唑蓝 ( r法观察其增殖及生长特征 , MY ) 用流式细胞仪检测细胞表面标志。结果 各组 B C均贴壁生长 , MS 呈成纤维细 胞样 B C典 型形态 , MS 贴壁 率的观察 和生长 曲线显示 , 在相 同的培养条件下 , 新生兔细胞增殖最快 , 细胞可扩增能 力最 强 , 而老年兔细胞增殖最慢 , 细胞可扩增能力最弱 , 成年兔细胞介于两者之 间。 结论 利 用密度梯度离心法结
s p r td a d p rf d w t e s y g a i n e t f g t n c mb n d wi d ee c t o n v t . T e p oi r t n e a ae n u i i d n i r d e t n r u ai o ie t a h r n e me h d i i o i e h t c i o h r h rleai f o a d p t r fg o h w r t de y MTr e s y i r r n a s g u t r . T e s r c l c l x r s in f n a tn o rwt e e su id b e s a n p ma y a d p s a e c l e i u h u f e mo e u e e p e so so a c l e e e a n d b o y o t . Re u t B Cs w r o n o a h r n o wal n r s n i y ia el w r x mi e y f w c t mer s l y s ls MS e e f u d t d e e t l a d p e e tw t a tp c l t s h

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及鉴定

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及鉴定

・ 椎 间盘 退 行 性 变 的 生物 治 疗 研 究 专 题 ・
兔 骨 髓 间 充 质 干 细 胞 的 分 离 培 养 及 鉴 定
刘 康 , 白亦光 , 陈 竹 , 韩 小伟 , 杨 泽龙 , 赵
教研 室 , 四川 I南 充 6 3 7 0 0 7 )
明。 , 宋桂 芹 , 冯 刚
( 1 . T i s s u e E n g i n e e r i n g a n d S t e r n C e l l I n s t i t u t e , N o r t h S i c h u a n Me d i c a l C o l l e g e , N a n c h o n g C e n t r a l H o  ̄i t a l ; 2 .D e p a r t me n t o f B i o l o g y ,
6 3 7 0 0 0 ; 2 .川 北 医 学 院 医学 生物 学
( 1 .川 I 北 医 学 院第 二 临床 医学 院 ・ 南 充 市 中心 医 院 组 织 工 程 与 干 细 胞 研 究 所 , 四川 南 充
【 摘
要 】 目的 :探讨一种简便可行 的兔骨髓间充质干细胞 ( b o n e ma r r o w d e r i v e d m e s e n c h y m a l s t e m c e l l s , B M S C s ) 体外 分离培
c ha r a c t e r i s t i c s, f o r d r a wi n g g r o wt h c ur v e s .I n v e r t e d ph a s e c o n t r a s t mi c r o s c o pe wa s u s e d t o o b s e r v e t h e c e l l mo r ph o l o g y . BM SCs we r e i n- du c e d t o d i f f e r e nt i a t e i nt o c ho nd r o c y t e s, wh i c h we r e i de n t i f i e d b y S a f r a n i n 一 0 a nd f a s t g r e e n s t a i ni ng a nd t o l u i d i n e b l u e s t a i n i n g r e s pe c —

兔骨髓间充质干细胞体外BrdU标记的实验研究

兔骨髓间充质干细胞体外BrdU标记的实验研究

3 %戊 巴比妥钠按 1
m / g经耳缘静脉 行全身麻 醉 , Lk 于双侧胫 骨上端 内侧
部及双侧髂后 上嵴 取骨髓 血约 4 m 。立 即用等量 的 L
P S洗涤后离心 , B 弃去上清液 , 重复 2次后 即可 采用全
MS s C 的体外标记 , 旨在探 讨其标记 方法 , 索其标 记 探
嘧 啶 核苷 ( 5一bo o r 一2一doyr ie Bd 因 无 放 m exu d , rU) in
司, 北京 ) 鼠抗 兔 Bd , rU单克隆抗 体 ( 北京 中杉 金桥公
司) 过氧化物酶标 记的链酶卵 自素染色试剂 盒 ( , 北京 中杉金桥公司 )浓缩 型 D B试 剂盒( , A 北京 中杉金桥公 司) 等。
【 关键 词】 骨髓间充质干细胞 ; 5一溴脱氧尿 嘧啶核苷 ;兔;全骨髓培养法
骨髓间充质干细胞 ( ar m r w—dr e eecy a o e vdm snhm l i s r cl , S s在组 织工程学 中的应用 首先遇到 的 tn e s M C ) e l 困难之一是 如何 标记 待移植 的 MS s 进而 跟踪 其 存 C, 活 、归巢 ” 生长 、 化等 一系列 过程 。5一溴 脱氧 尿 “ 、 分
进行 观察 , 发现贴壁细胞胞体 回缩 , 细胞间隙增大或者 少量贴壁细胞漂浮时 , 即加 入等量含 F S的培养基 立 B 终止消化 , 并用无 菌吸管轻柔吹打瓶壁 细胞 , 促进细胞 脱壁 。多数 细胞脱离瓶壁形成 细胞悬 液后 , 按照12 :重 新接种至 7 L培养瓶 中 , 5m 至第 3 代备用 。
增 高, 0I o L及 7 4 m l x / 2h标记 阳性率达 8 % 9 %。结论 5 5

兔骨髓间充质干细胞体外分离培养研究近况

兔骨髓间充质干细胞体外分离培养研究近况
2 o 。24 :1 2 0 5 1 ( )2 —2 .
炎大 鼠血 清 I- ̄ 雕 LI 和 [7 方勇 飞 , 1] 王 勇, 周
志 ,o 5 3 ( )7 8 1 . 2 o ,0 9 :0 —7 1
新, . 等 青藤碱对佐剂性关节炎大
[] 6薛
鸾, 胡惠平 , 胡建东 , . 气清 络方对 大 鼠胶原性 等 益
维普资讯
20 年 第 1 卷 第 3 07 0 期 [] 3 张厚利 , 齐 艳, 杨
广 西中医学 院学报
・9 ・ 3
彤 , . 症停合 剂对 大 鼠佐 剂性 等 痹
诱导性关节炎大 鼠滑 膜细胞 白介素 .m A表达 的影 6 RN
关节炎 的防治作用及 其机制 研究 [] 中成药 ,04 2 J. 20 ,6
()31 8 . 5 :8 —3 4
[] 春燕 , 9李 梁清华 , 王安宁 , . 等 痹肿 消汤对胶 原诱 导性关 节炎大 鼠滑膜 白细胞介素 1m N 0 R A的影 响 [] 实用 预 J.
防医学 ,o 6 1 ( ) 10 —1 0 . 2 o ,3 5 :1 3 15 [0 何东仪 , 婷 , 伟 , . 1] 姜 冯 等 问荆 合剂对 Ⅱ型胶原诱导
鼠滑膜细胞核 因子 出 信号 转导 的影 响及其 机制 [] J. 中国临床康复 ,0597 : 4 25 2o ,()2 — 0 . 0 [8 郭 1] 垣, 于孟学 , 姜玉娟 , . 等 雷公藤单体 T 对 I 刺 4 L1
激引起 的类风湿患者关节滑 膜成纤维 细胞增殖 和产生
关 节炎 作 用 的拆 方研 究 [] 浙 江 中医 杂 志 ,05 4 J. 20 ,0
维, 张
磊, 周艳丽 , . 等 痹祺胶囊对类风 湿关节炎

兔骨髓间充质干细胞的制备及诱导成骨的实验研究

兔骨髓间充质干细胞的制备及诱导成骨的实验研究

adD M wt ieai dl ud ru set eyT ntrh cvto kl epop a s(L 1 n ME i mnrle qi opr pcvl. o i e t i a an hsht e P h z i g e i mo o t a i y f l i a A
o a s g MS y me n fe z me k n t sa d t b e v fp sa e 3 B Csb a s o n y i ei n o o s r e BMS — e ie a cf ai n n d l y c C— r d c li c t o u e b d v i o s i i g w t l a i o d a x t n n i a i rn b r e u .Re u t :AL e e i oh g o p i c e s d g a u l .I d p n e t a h z s ls P l v l n b t r u s n r a e r d a l n e e d n y s mp e t s s o d t eAL c ii e DME w t n r l e q i r u n t e2 d 6 h 1 t a a l s t h we P a t t i t te h vyn h M i mi e ai dl u dg o p o h n , t , 0 h d y h z i
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第 1 3卷 4期
20 0 7年 1 2月
天 津 医 科 大 学 学 报
J OURNALOFTI ANJN MEDI I CAL UNI VERS T I Y
Vo .1 . 1 3 No
D c 2 0 e. 0 7
57 0

兔骨髓间充质干细胞体外成内皮细胞能力的研究

兔骨髓间充质干细胞体外成内皮细胞能力的研究

兔骨髓间充质干细胞体外成内皮细胞能力的研究何朝荣;张群林;黄从新【期刊名称】《中华老年多器官疾病杂志》【年(卷),期】2003(2)4【摘要】目的探讨骨髓间充质干细胞体外扩增及其向内皮细胞定向分化能力.方法无菌条件下采集兔骨髓,肝素抗凝,经淋巴细胞分层液密度梯度离心分离骨髓单个核细胞,通过贴壁培养法获得MSC,然后在内皮细胞生长环境中进行诱导分化,最后对扩增的细胞特征进行鉴定,同时初步研究其体外成血管特性.结果 MSC每扩增一代,细胞数量增加5~8倍,7.65×103个原代MSCs体外扩增3代即获得1.26×108个细胞.在70%~80%融合时呈现"铺路石"样形态,细胞免疫组化证实扩增细胞表达CD31和yon Willebrand factor(vWF),具有吞噬ac-LDL的功能,且扩增细胞在体外参与网状血管样结构形成.结论 MSC扩增能力强,在体外能诱导其向内皮细胞方向分化.【总页数】5页(P287-291)【作者】何朝荣;张群林;黄从新【作者单位】442000,十堰市,郧阳医学院附属太和医院心血管内科;442000,十堰市,郧阳医学院附属太和医院心血管内科;武汉大学附属第一医院湖北省人民医院【正文语种】中文【中图分类】R3【相关文献】1.PPARγ基因干扰体外对兔骨髓间充质干细胞成脂基因的影响 [J], 白祥;禹宝庆;黄建明;许大峰2.兔骨髓间充质干细胞的分离、体外培养、鉴定及成脂诱导 [J], 戚宗泽;罗云飞;侯勇;郭永章;朱洪3.三种细胞因子体外联合诱导兔骨髓间充质干细胞向血管内皮细胞的分化 [J], 陈毅;刘丹平4.兔骨髓间充质干细胞体外诱导血管内皮细胞 [J], 常青;程燕;高静媛;梁芳倩;于晓龙5.血管内皮细胞对骨髓间充质干细胞成骨能力影响的体外研究 [J], 曲哲;孙宏晨;郭英;张泽兵;杨儒壮;欧阳喈因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

BMSCs的分离培养、纯化与鉴定

BMSCs的分离培养、纯化与鉴定

BMSCs的分离培养、纯化与鉴定作者:马民吕志刚杜以宽张桂娟马义【摘要】目的建立一种持续、稳定的可多向分化的骨髓间充质干细胞(BMSCs)体外分离培养体系。

方法运用密度梯度离心法从1月龄新西兰兔骨髓中分离培养BMSCs,利用相差显微镜观察其形态及生长情况,扫描电镜观察其细胞结构,运用流式细胞术分析分离细胞群所处细胞周期和细胞活力,用MTT比色法绘制细胞生长曲线,并用特定诱导液将分离的BMSCs向成骨细胞和成脂肪细胞定向诱导分化,利用ALP和油红O进行染色鉴定。

结果所分离的BMSCs细胞在形态学观察与生长动力学上均符合BMSCs特征,分离培养的BMSCs细胞在第3天进入对数生长期,第10天进入平台期;在成骨、成脂肪的诱导培养条件下,分别出现成骨、成脂肪表型特征,可进一步定向分化,结论所收获的细胞具有BMSCs的特异性。

【关键词】骨髓间充质干细胞;分离;成骨分化;成脂分化【Abstract】 Objective To establish a sustained and stable bone marrow derived mesenchymal stem cells (BMSCs) isolation and culture system which could be pluripotential in vitro. Methods BMSCs were isolated and cultured from the 1month old New Zealand white rabbits through density gradientcentrifugation. Growth and ultromicrostructure of the BMSCs were observed by light microscope and scan electron microscope. The cell activities and cell cycle were observed by flow cytometry. The grow curve of the BMSCs was described through MTT assay. BMSCs were induced and differentiate into osteoblasts and adipocytes by specific induction culture medium. Then the cells were stained with alkaline phosphatase (ALP) and Oil red O , and analyzed the result of all staining. Results The isolated BMSCs cells were in line with the characteristics of BMSCs in morphology and growth kinetics, and the isolated BMSCs cells would be into the logarithmic growth phase in the third day and into the platform phase in the tenth day. Conclusions In the osteogenic and adipogenic induced culture conditions, BMSCs have appeared the phenotypic characteristics of osteogenic and adipogenic respectively, and could be further directed differentiation. These indicated the harvested cells possessed BMSCs specificity.【Key words】 Bone marrow derived mesenchymal stem cells(BMSCs); Isolation; Osteogenic differentiation; Adipogenic differentiation软骨组织工程技术〔自体软骨细胞的移植、生长因子对软骨细胞的作用、骨髓间充质干细胞(又称骨髓基质干细胞,BMSCs)在软骨组织工程中的作用、转基因技术〕是当今的研究热点〔1,2〕。

兔骨髓间充质干细胞体外分离培养及生长特性的初步研究

兔骨髓间充质干细胞体外分离培养及生长特性的初步研究
e i e e e c y ls e c l ( S .M e h d :5 o e ma r w s t k r m l mso w r o d rv d m s n h ma t m e l M C) s t o s ml n r o wa a e f o i u fNe b i
s c e s u l n vt o a d c n b s d i is e e g n e i g u c s f l i ir n a e u e n t u n i e rn . y s
KEY ORDS @ B n ro d rv d me e c y l tm el Cel u tr Ra bt W o emar w— e ie s n h ma e c l s s l c lu e bi
p o i r t n b l y f M S d c i e t t f t e u t r . Co cu i n: M S c n e u tv t d r l e a i a i t o f o i C e l d wi n h i me o h c lu e n l so C a b c lia e
骨髓 穿刺 法抽 取雄 性 新 西 兰 白兔髂 骨 骨髓 5 , 合 应 用 密度梯 度 离心及 贴 壁培 养 法 分 离 ml联
纯化 MS 并进 行 体 外扩 增 , 置 显微 镜 下观 察 原代 及 传 代 细胞 的形 态、 C 倒 生长 情 况 , 数 细 计
胞 数 目, 制细胞 生长 曲线 。 绘 HE 染 色光镜 观察 细胞 形 态 。结果 : 成功 建 立 了兔 MS C体 外分
Ze a w hie ab t; t en fe t e en iy r dint e rf a in, m on alnd t r bi h a t r h d st g a e c ntiug to onuce r e l w e e ot n l a c ls r g a d

两种不同方法分离兔骨髓间充质干细胞的生物学特性研究

两种不同方法分离兔骨髓间充质干细胞的生物学特性研究

L P n c LWe Xio h nDe at n o O h p dc, h eo eHoptlS axi dcl n vri , a u n0 0 0 i eg u i a c u . p r me t f r o a is T eS c n t s i h n Me ia U iest T i a 3 0 1 a y Y
weee a dg o s , i o o ial n lcr n mir s o l .h r l e ain o tec l s x mie y H — R i— r x me r s l h s lg c l a dee t co c pyT ep o i rt f h el wa a n db Td y t y o f o s e n
干 细胞进 行表 型鉴 定 。 结 果
行 伞骨 髓培 养法 和梯 度密 度离 心培 养法 分 离骨髓 问充 质干 细胞 ,用 倒置 显微 镜 、
今 骨髓 培养 法 的骨髓 间充 质干 细胞 , 代培养 周 期为 l 原 4天 , 代及传 代细 胞一 致 原
透 射 电镜 观察 细胞 生长 状况 , H标 记 的胸腺 嘧啶 脱氧 核苷 ( —d 掺入 实验 检测 细胞 的增 殖情 况 , T R) H 对骨髓 间充质 表 达 C 4 , 胞 —d D 4细 H T R掺入 实验 每分 钟脉 冲数 为 120p 梯 度密 度离 心法 的骨髓 间充质 干细胞 , 5 5cm: 原代 培养 周 期为 2 8天 , 代及 传代 细胞 表达 C 4 , 胞 —d 原 D4绌 H T R掺入 实验 每 分钟 脉冲 数为 150p 结 论 用全 骨髓 培 37 cm。
[ s a O O jc v s T m a e rlea o d ufc t e mee c y lt l o t o i Ab ̄ c be t e o o p r t oi rt n n r e ni n f sn h ma s m c li l e b t f i c eh p f i a s a a g o e e ss a d y w d -

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及肝内示踪

兔骨髓间充质干细胞的分离培养及肝内示踪

学 院动物 伦理 委 员 会 的标 志 和 规 定 , 察 1周 后 正 观 常 的新 西 兰大 白兔 用于试 验研 究 。
1 2 方 法 .
作用 提供 依 据 。但这 些 方法 也存 在 一定 的 缺 陷 , 如
Y染 色体 只能 应 用 于 不 同性 别 间细 胞 移 植 的探 查 , 而绿 色 荧 光 蛋 白 ( re lrse e r ti ,GF g en f e cn epoen u P)
养基 , 光 共 聚 焦 显 微 镜 ( e s S 5 0 — 激 Z i ,L M 1 5 ME s
TA) 下进 行观 察 。
12 5 兔 急 性 / 急 性 肝 功 能 衰 竭 模 型 的 建 立 及 . . 亚
MS s的移植 C
1 2只新西 兰成年 大 白兔 ( 5只 , 雌 雄
自体取 材 , 体外 扩增 , 具有 良好 的可塑 性 也不 涉 及伦 理 争议 , 组 织 工 程 和 细 胞 治 疗 的 理 想 种 源 细 胞 。 是
MS s C 在体 外 可分 化 为脂 肪 、 骨 、 骨 等 中胚 层 的 成 软
踪其 在肝 损 伤兔 受 体 肝 组 织 内 的分 布 和 整 合 , 一 进
7只 ) 兔耳 缘静 脉注 射 D . 基半 乳 糖 2 5mmo/ , 氨 . l k , 造急 性/ g建 亚急性 肝功 能衰竭 模 型 。2 耳缘 4h后 静脉 内注射 0 1mL MS S细胞 液 , 度 为 1 0 / . C 浓 ×1
mi ̄5mi , n n 待消 化基本 完全 , 轻轻 利 用移 液管 收集
生产 , 由中 国科 学 院昆 明动物研 究 所 惠赠 , 病毒 滴度
. ×l U/ 以不 同 MOI ( 毒 数/ 值 病 细胞 Alr h公 司 ) 塑 料 培 养 瓶 , — M + 1 / 为 4 8 0 T mL) di c 的 aME 0 mL L 数) 添加 到培 养基 中 , MS s 培 养 8 , 新 鲜 培 与 C 共 h换 F S B +青 链 双抗 ( imaAlr h公 司) 在 3 ℃ 、 Sg — d i c , 7 体 积 分数 为 5 C :培 养 箱 ( emoF r O Th r oma公 司) 中 培 养 。倒 置 显 微 镜 ( k n E I S Nio CL P E公 司 ) 每 天 下 观察 细胞 生 长情 况并 记 录 。 1d后 半换 液 去 除 未 贴 壁 细胞 的 同 时并 去 除 未 贴 壁 细 胞 。待 细 胞 汇合 至

兔骨髓间充质干细胞的分离培养

兔骨髓间充质干细胞的分离培养

Pr p r to n li a in o b i n a r w— e i e e a a i n a d Cu tv to fRa b tBo e M r o d rv d M e e h ma e Ce l s nc y lSt m ls
YAN Yig yn Z ANG ig fn , a — W ANG n z u n n — ig ’ H , Jn —a g HE Xio e , Xi—h a g'
பைடு நூலகம்
摘 要 :为探 讨体 外分 离及 培 养 扩 增 兔 骨髓 间充 质 干 细胞 ( C ) MS s 的方 法 , 菌采 取 兔 股 骨 , 无 用含 2 F S的 DME 培 养液 冲骨髓腔 , 0 B M 采用 全骨髓 细胞贴壁 培养 法对 MS s 行纯化 扩增 , 置显 C 进 倒 微镜 下观 察原代及 传代 细胞 的形 态 、 生长 情 况、 制 细胞 生 长 曲线。 结果 显示 , C 绘 MS s为贴 壁 生 长
( . i l e ia o lg , r h s 1 An ma M d c lC l e No t we tA& F Un v r iy Ya g i g 7 1 0 C i a e ie s t , n l 2 , h n n 1 0
2 C l g fAn ma s a d y a d Ve eia y Me iie He a r ut rlUnv r i , h n z o 5 0 2 C ia . o l eo i l e Hu b n r n tr r dc , n n Ag i l a n n c u i est Z e g h u 4 0 0 , h n ) y
Ab t a t n t i t y,a fe tv t o o p e a e a u t e r b t bo a r w e i e s r c :I h s s ud n e f c i e me h d t r p r nd c lur a bi ne m r o d rv d me e hy ls e c ls( S ) wa s a ls d Afe h e s nc ma t m e l M Cs s e t b ihe . t r t e f mur r s e t d f o r bb t s we e dis c e r m a i , t r o wa l s d O t he ma r w s fu he Utwih DM EM d u u e s ptc c nd to me i m nd r a e i o ii n.The M S r n Cs we e e — rc d a d e pa e i g b e m a r w d r ntc lur ihe n x nd d by usn on r o a he e u t e, a nv r e ir c e wa m — nd i e t d m c os op s e p o d t s r e t r ie a i n a her mo p u fprma y a s a e c ls The r s l l ye O ob e v he p ol r to nd t i r ho s o i r nd pa s g el . f e ut s wst a SCs a ea he e el t i l rfbr bls o d s nd e s a d m o ph l y du i g ho h tM r d r ntc ls wih a smia i o a t i pi l~ h pe r o og rn dif r n p s a e . Bon m a r w a he e c lu e a b us d o r duc c r a n fe e t a s g s e ro d r nt u t r c n e e t p o e a e t i pu iy f rt o
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3000rpm×30 min离心,小 心吸取中间白 膜层,DMEM 洗涤2次,接 种于含 15%FBS的低 糖完全培养基 中
二、全骨髓培养法
• 制备细胞悬液同前,将所收集的细胞悬液用200 目滤网过滤, 制备成单细胞悬液,1000rpm×5min 洗涤2 次, 弃上清液, 取沉淀重新悬浮后, 接种于含 15% FBS 的培养液中
兔骨髓间充质干细胞的分离
密度梯度离心法 全骨髓培养法
一、密度梯度离心法
超酒精棉球、保 鲜膜、打火机、手术包、percoll分离液、 培养基、培养瓶等
• 取生后21天新西兰大白兔1只(兰州大学动 物房提供),重约0.3kg
水淹法处死后, 放入75% 的酒精内浸泡15 min。无菌条件下取出双侧股骨、胫骨、肱 骨,去除附带组织,浸入生理盐水中清洗2次
无菌间内,超净台上, 将长骨从中间剪断。 此方法优点: 1.可最大量提取出干骺 端干细胞(丁香园提 示干细胞大量存在于 干骺端) 2.操作简便,只需剪开 一次
• 以10ml 注射器吸取无血清低糖DMEM 培养 液反复冲洗, 以骨头发白为准,4号针头反复 抽吸制备成单细胞悬液,装入两离心管中以 1000rpm×5min离心,去除上清, DMEM 重悬,轻铺于等量的密度1.073g/ml Percol 分离液上(5ml:5ml)
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