达科为小鼠脾脏淋巴细胞分离解决方案

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两种方法分离小鼠脾原始T淋巴细胞效果比较

两种方法分离小鼠脾原始T淋巴细胞效果比较
Abstract:Objective To compare the effect of isolation of T-lymphocyte of mice by Ficoll - Paque gradient centrifugation and immunomagnetic bead method. Methods Ficoll-Paque gradient centrifugation and Miltenyi Biotec immune magnetic beads were used for isolation of T lymphocyte in mice. Cell number were calculated by platelet counter,cell survival rate was judged by trypan blue dyeing,CD4+CD62L+T lymphocyte purity was detected by flow cytometry. Results The purity of CD4+CD62L+T lymphocyte in the immune magnetic bead method group was higher (66.27 ±3.52%),and lower in Ficoll-Paque gradient centrifugation group (15.27 ±4.16% ),showing significant difference(P<0.01),but lymphocyte count in Ficoll-Paque gradient centrifugation group (1.47±0.35×108) was more than immune magnetic bead goup(0.67±0.26×108)showing significant difference(t=8.199,P<0.001). In addition,the cell survival rate in Ficoll-Paque gradient centrifugation group (93.9 ±2.6%)was higher than immunomagnetic bead group (89.9 ±2.9%)also showing significant difference (P<0.05). Conclusions Immunomagnetic bead method is suitable for cell purity demanding immunological experiment on condition that further optimization of the cell yield .

小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离

小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离

小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离
“小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离”实验过程
1. 培养皿加入纱布,在纱布上滴2ml淋巴细胞分离液。

2. 脱颈处死小鼠,在75%酒精中浸泡30s(示意消毒小鼠)。

3. 无菌条件下将腹部剪开,脱皮。

(2min)
4. 选取小鼠腹部左侧,剪开腹膜,深红色细长组织即脾脏(淋巴细胞组织)
5. 用镊子从下方夹取脾脏,,剔除结缔组织和脂肪后,将组织置于滴有小鼠淋巴细胞分离液的纱布上。

6. 脾脏用弯头镊子在纱布上研磨至无血色组织后,纱布上加入1ml淋巴细胞分离液,再用移液器吸取研磨的液体,移至1.5ml离心管内。

(3min)
7. 离心(1500rpm,3min)留上清,移入新的15ml 离心管中,去除红细胞,此时可以取胸腺。

(可以做到这里停止,示意淋巴细胞和免疫器官胸腺)
8. 在装有上清的离心管中加入3ml 1640培养基,离心1500rpm,3min,取沉淀,弃上清,重复清洗2次。

(6min)
9. 在显微镜下将细胞浓度调为5×106个/ml备用。

小鼠脾脏中分离淋巴细胞

小鼠脾脏中分离淋巴细胞

从小鼠脾脏平分别淋巴细胞
1小鼠断颈处逝世,酒精浸泡5分钟,超净台内打开左侧腹部皮肤,当心分别皮下组织和腹部肌肉吐露出脾脏,提起,剪去四周结缔组织,放入有PBS的小瓶中.无菌镊子夹碎,挤压脾脏,将获得的细胞悬液移入无菌试管中.2另取无菌试管,先参加淋巴细胞分别液,然后将试管竖直,略放平,汲取方才制备的细胞悬液迟缓的参加试管中,一般分别液和细胞悬液的体积比为1:2,要轻要慢,不冲要破了淋巴细胞分别液和细胞悬液的界面.选用合适本身分别目标细胞的离心力和时光进行离心.小我用1500转/分钟,20分钟.3离心后掏出试管,可以看到不合的分层,一般上面长短细胞成分和细胞碎片,接下来是单个核细胞,再往下是红细胞等.吸走上层非细胞层弃之,吸出单个核层在别的无菌试管中,因为淋巴细胞分别液对细胞有毒性感化,参加PBS 离心洗两遍(PBS1000转/分钟,10分钟).4,洗好的细胞参加1640造就液和20%的血清中重悬,迟缓参加已经制备好的尼龙毛柱子中,封好,放37度孵育一小时.一小时后掏出,超净台内将柱子立起,针头下面放无菌试管(我们的柱子是用大号打针器做的),以HANKS液和血清先后迟缓冲洗,巨噬细胞贴在尼龙毛上不下来,B细胞也相对吸附冲洗下来的不久不多,所以冲洗来的大多是T细胞,纯度可打到80%到90%,再次冲洗并且用力挤压,如许得到的就是B细胞.得到的细胞可以以1640加血清配制的造就液进一步造就或做它用.但是淋巴细胞分别液得到的细胞只能算是粗分,假如试验请求高最好选用磁珠或
流式分别.。

实验二:淋巴细胞分离实验

实验二:淋巴细胞分离实验
实验二
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
目的 原理 实验步骤 注意事项
目的
熟悉淋巴细胞和外周血单个核细胞 (PBMC)的分离方法
原理
脾脏各种血细胞的密度不尽相同, 利用淋巴细胞分层液(Ficoll)作 密度梯度离心,使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分项
1.取样计数前,应充分混匀细胞悬液 2.加样量不要溢出盖玻片,也不要过少或带
气泡 3.细胞压中线时,数上不数下,数左不数右 4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml 5.镜下计数时,细胞数过少或过多,说明稀
释不当,需重新制备细胞悬液、计数
试验报告要求
原理, 步骤, 结果, 讨论。
1.实验一获取的小鼠脾脏载玻片研磨 (研磨同时滴加1640培养液,保持细 胞活性)
2. 细胞混合液静置数分钟后吸管吸取, 沿倾斜的管壁缓缓加入淋巴细胞分层 液上方(Ficoll:血细胞=1:1)
实验步骤
3.2000r/min,离心15min
4.沿管壁周缘轻轻吸取淋巴细胞层移 入另一试管中
实验步骤
1、准备计数板: 2、制备细胞悬液:收集细胞,制成单个细胞
悬液 3、加样:用吸管轻轻吹打细胞悬液,取少许
细胞悬液,在计数板上盖玻片的一侧加微量细 胞悬液, 4、计数:在显微镜下,用10×物镜观察计数 板四角大方格中的细胞数
实验步骤
5、计算:将结果代入下式,得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =(4大格细胞数之和/4)×104
实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤,1000 r/min 离心5min ,弃上清
6. 适量的培养基重悬细胞 ,计数
注意事项
1.在Ficoll上加入稀释外周血时,应缓慢 加,以免冲散界面

解刨小鼠提取脾细胞实验报告

解刨小鼠提取脾细胞实验报告

解刨小鼠提取脾细胞实验报告
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
一、实验目的
本实验旨在通过解刨小鼠,提取脾细胞,以便进行后续的免疫学研究。

二、实验材料和仪器
1. 实验材料:小白鼠、生理盐水、70%乙醇、福尔马林、石蜡等。

2. 实验仪器:手术刀、注射器、组织培养皿、显微镜等。

三、实验步骤
1. 解剖小白鼠:将小白鼠放入无菌条件下,用70%乙醇消毒表面。

然后用手术刀在胸部进行切口,打开胸腔,找到心脏,将心脏割断。


着将小白鼠向上抬起头部,用手术刀在颈部进行切口,打开颈部皮肤
和肌肉层,在颈动脉两侧夹住气管和食管,并清除周围组织。

最后将
气管和食管割断,并将颈动脉及其分支全部割断。

2. 取出脾脏:用注射器注入生理盐水,将脾脏从周围组织中分离出来,然后将脾脏放入组织培养皿中加入生理盐水洗涤。

3. 细胞处理:将清洗干净的脾脏放入福尔马林中固定30分钟,再用酒精和石蜡等物质进行包埋。

最后用显微镜观察并提取细胞。

四、实验结果
通过本实验,成功地解剖出小白鼠,并提取了脾细胞。

经过显微镜观察,我们可以看到细胞形态正常,并且数量充足。

五、实验注意事项
1. 实验操作要求严格无菌。

2. 解剖小白鼠时要保持手术刀的锋利度。

3. 在取出脾脏时要注意不要损伤其结构。

4. 细胞处理过程中要避免污染。

六、实验结论
通过本实验,我们成功地解剖了小白鼠并提取了脾细胞。

这为后续的免疫学研究奠定了基础。

同时,在操作过程中也需要注意无菌和仪器使用等方面的细节。

达科为 达优ELISPOT系列说明书-鼠IL-4预包被版

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Mouse IL-4 precoated ELISPOT kit说明书Cat# : DKW22-2040-500产品描述:达科为公司生产的达优®系列ELISPOT预包被试剂盒采用原装进口高亲和力高效价抗体对,经预包被PVDF 板、低温冷冻干燥、真空密封包装等工艺流程制备。

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使得实验者能够轻松、高效地完成复杂的ELISPOT检测实验。

试剂盒提供的试剂、规格:名称规格(5 ×96T)Biotinylated antibody 100μL× 5Streptavidin-HRP 500μLDilution buffer R(10×) 10mLWashing buffer (50×) 25mL×2AEC dilution 25mL×2AEC solutionⅠ(20×) 5mLAEC solutionⅡ(20×) 3mLAEC solution Ⅲ(200×) 500μL预包被PVDF板5块需要实验者自行准备的试剂与仪器:1.RPMI-1640基本培养基(需要添加双抗,不需要添加血清)2.无血清培养基(完全培养基,即用型)3.超净工作台4.CO2细胞培养箱5.微量移液器及配套Tip头6.8通道微量移液器7.0.5mL, 1.5mL EP管8.Biosys Bioreader自动读板仪试剂的配制:1.Washing buffer (50×):用去离子水稀释(1:50),制成1× Washing buffer备用。

2.Dilution buffer R(10×):用1×PBS稀释(1:10),制成Dilution buffer R(1×)备用。

淋巴细胞分离液及分离脾脏淋巴细胞的方法[发明专利]

淋巴细胞分离液及分离脾脏淋巴细胞的方法[发明专利]

[19]中华人民共和国国家知识产权局[12]发明专利申请公布说明书[11]公开号CN 101012449A [43]公开日2007年8月8日[21]申请号200610063555.6[22]申请日2006.11.09[21]申请号200610063555.6[71]申请人深圳市达科为生物技术有限公司地址518067广东省深圳市南山区蛇口工业六路科健大厦四楼西[72]发明人朱义鑫 [74]专利代理机构深圳创友专利商标代理有限公司代理人罗瑶[51]Int.CI.C12N 5/06 (2006.01)权利要求书 1 页 说明书 8 页[54]发明名称淋巴细胞分离液及分离脾脏淋巴细胞的方法[57]摘要本发明公开了一种淋巴细胞分离液,所述分离液中包含重量体积百分浓度为14.0~17.5%的碘克沙醇(Iodixanol)。

本发明还公开了采用上述分离液分离脾脏淋巴细胞的方法,该方法包括:将脾脏直接在分离液中研磨,制备成单细胞悬液,并将悬有脾脏细胞的分离液进行离心操作。

本发明的分离液及方法无毒、便于操作且易于分离得到的状态好、活力高的淋巴细胞。

200610063555.6权 利 要 求 书第1/1页 1、一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述分离液中包含重量体积百分浓度为14.0~17.5%的碘克沙醇(Iodixanol)。

2、根据权利要求1所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液的渗透压为230~310mOsm,内毒素含量小于1EU/mL,pH 值为7.0~7.2。

3、根据权利要求2所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液还包含体积百分浓度为70.8~76.7%的RPMI1640培养基以及体积百分浓度为9.3~11.7%的超纯水。

4、根据权利要求2或3所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液的密度为1.077~1.095g/mL。

5、根据权利要求4所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液用于分离小鼠或大鼠的脾脏淋巴细胞。

脾脏分离淋巴细胞

脾脏分离淋巴细胞

从小鼠脾脏中分离淋巴细胞
方法一:
1用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网,Hank’s液冲洗,收集分离的脾细胞悬液。

2另取无菌试管,先加入淋巴细胞分离液,然后将试管倾斜,略放平,吸取刚刚制备的细胞悬液缓慢的加入试管中,一般分离液和细胞悬液的体积比为1:2,要轻要慢,不要冲破了淋巴细胞分离液和细胞悬液的界面。

室温水平离心2000转/分钟,30分钟。

3离心后取出试管,可以看到不同的分层,一般上面是非细胞成分和细胞碎片,接下来是单个核细胞,再往下是红细胞等。

吸走上层非细胞层弃之,吸出单个核层在另外无菌试管中,因为淋巴细胞分离液对细胞有毒性作用,加入PBS离心洗两遍(1000转/分钟,10分钟)。

4倾倒上清,用RPMI-1640重悬细胞。

方法二:
用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网,Hank’s液冲洗,收集分离的脾细胞悬液,2000r/min离心3min,弃上清。

加红细胞裂解液8mL,混匀脾细胞,静置5-6min,待红细胞完全破碎,2000r/min离心3min,弃上清去除红细胞,Hank’s液洗1-2遍,用RPMI-1640(含10%胎牛血清)重悬细胞。

脾脏淋巴细胞分离方法[精华]

脾脏淋巴细胞分离方法[精华]

小鼠脾脏淋巴细胞分离方法000000需要提前准备的材料:0000000提前高压灭菌:手术器械,200目尼龙网,0000000除菌过滤:8.5%和0.85%的Nacl溶液各40ml,1XPBS溶液,hanks液40ml。

0000000红细胞裂解液,六孔板,培养皿,75%酒精,100ml烧杯,无菌注射器5-10ml,15ml、50ml 离心管,4mlEP管,离心机等。

00000001、配制的percoll工作液:配制15 ml0000000100%percoll液(简称工作液):13.5ml percoll原液+1.5 ml 8.5%Nacl溶液混匀备用。

0 000002、配制6个梯度,每个梯度2ml,实际配制3ml000000070%percoll液(1.090g/ml):2.1 ml工作液+0.9 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 60%percoll液(1.077g/ml):1.8 ml工作液+1.2 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 50%percoll液(1.067g/ml):1.5 ml工作液+1.5 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 40%percoll液(1.050g/ml):1.2 ml工作液+1.8 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 30%percoll液(1.043g/ml):0.9 ml工作液+2.1 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 20%percoll液(1.031g/ml):0.6 ml工作液+2.4 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000找一只15ml离心管,从低到高(20% percoll液→70%percoll液)依次装入,装好备用。

0000003、小鼠脾脏细胞分离00000000(1)颈椎脱臼处死小鼠。

75%酒精浸泡10min0000000(2)无菌条件下取出小鼠脾脏,去除筋膜等置于Hanks’ 液中,将脾脏放入2ml离心管中剪碎。

达科为小鼠脾脏淋巴细胞分离解决方案 - 生物在线

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2. 3.
平皿的口径不能太大,否则尼龙网不能产生有效的弹 力。 镊子在一边夹住尼龙网,防止尼龙网在研磨过程中滑 动。
参考文献:
1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 殷玉俊,等.[J]江苏大学学报医学版,2008,18(1):15-18 泰淑红,等.[J]免疫学杂志,2008,24(1):34-37 Juntao Zou, et,al.[J]Journal of the Neurological Sciences,2008,5:003-007 朱 鹏,等.[J]中华微生物学和免疫学杂志,2007,27(11):1046-1049 朱 鹏,等.[J]世界华人消化杂志,2007,15(31):3289-3294 刘 义,等.[J]生殖与避孕,2007,27(11):691-694 张 慧,等.[J]江苏大学学报医学版,2007,13(2):97-101 王晓莲,等.[J]实用老年医学,2007,21(4):240-242
3/4
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小鼠淋巴细胞分离

小鼠淋巴细胞分离

小鼠全脾分离及淋巴细胞的获取实验步骤:1.杀鼠:将小鼠颈椎脱臼处死,70%酒精喷涂表面,无菌条件下剖开小鼠腹腔2.分离全脾:取脾,横切约1mm厚放入固定液,作为组化样本,其余组织放入1ml 5% FCS 1640.3.脾淋巴细胞的分离:1)脾脏处理:将脾脏置于200目滤网上,用5mL注射器内芯轻轻研磨,不断向组织上滴加2ml 5% FCS 1640,直至组织内绝大部分细胞被分离,1ml注射器抽吸滤过,将细胞收集于5ml离心管中。

.2)500g,3min,弃上清。

3)红细胞裂解:加入1ml 红细胞裂解液,轻轻吹打混匀,室温裂解2分钟至红细胞完全破碎。

4)500g,5min,弃上清。

5)洗涤1次:加入1ml 5% FCS 1640,重悬沉淀,500g,3分钟,弃上清。

加入1mL 10% FCS1640重悬,取出15μL计数;6)台盼蓝染色细胞计数:1:20稀释细胞悬液,与0.4%台盼蓝染液9:1混合,计数;计算终浓度为1×107/mL所需加入10% FCS 1640的量。

7)加入适量10% FCS 1640调整细胞浓度至1×107/mL,置于4ºC备用。

小鼠淋巴结分离及淋巴细胞的获取实验步骤:1.杀鼠:将小鼠颈椎脱臼处死,70%酒精喷涂表面,无菌条件下剖开小鼠腹腔2.分离淋巴结:取腋下,腹股沟,肠系膜淋巴结,其中腋下淋巴结置固定液中送组化,其余淋巴结放入1ml 5% FCS 1640.3.淋巴结淋巴细胞的分离:1)淋巴结处理:将淋巴结漂浮于3ml 5% FCS 1640(玻璃平皿)中,用无菌大镊子紧捏淋巴结,并用5mL注射器内芯轻轻研磨,绝大部分淋巴细胞游离置培养基中,1ml注射器抽吸滤过,将细胞收集于5ml离心管中。

.2)500g,3min,弃上清。

3)洗涤:加入1ml 5% FCS 1640,重悬沉淀,500g,3分钟,弃上清。

加入1mL 10% FCS1640重悬,取出15μL计数;4)台盼蓝染色细胞计数:1:20稀释细胞悬液,与0.4%台盼蓝染液9:1混合,计数;计算终浓度为1×107/mL所需加入10% FCS 1640 的量。

脾淋巴细胞分离

脾淋巴细胞分离

小鼠脾脏单个核细胞的分离一、实验目的1. 熟悉细胞分离的基本原理2. 掌握小鼠脾脏单个核细胞的分离的方法3. 掌握流式细胞术检测细胞表面标志的方法二、实验原理1.台盼蓝染色:正常的活细胞,胞膜结构完整,能够排斥台盼蓝,使之不能够进入胞内。

丧失活性或细胞膜不完整的细胞,胞膜的通透性增加,可被台盼蓝染成蓝色。

通常认为细胞膜完整性丧失,即可认为细胞已经死亡。

2.脾是人和脊椎动物最大的淋巴器官。

人的脾脏位于左季肋区的后外侧部,呈卵圆形,脾是血循环中重要的滤过器,能清除血液中的异物、病菌以及衰老死亡的细胞,特别是红细胞和血小板。

三、实验材料小鼠手术器械(剪刀、镊子)、酒精喷壶、杀鼠板平皿,尼龙膜指套、研磨棒、吸管、试管、EP管、移液器和tipsPBS缓冲液、红细胞裂解液(ACK)细胞计数板0.2%台盼蓝染液8.显微镜四、实验步骤(一)取小鼠脾脏1.小鼠颈椎脱位处死——用拇指和食指往下按住鼠头,另一只手抓住鼠尾,用力稍向后上方一拉,使之颈椎脱臼,造成脊髓与脑髓断离。

2.取其后右侧卧位,消毒左侧背腹交界处皮肤,剪取脾脏并尽量将去除脂肪及筋膜组织。

(二)制备单个核细胞悬液:1.将脾脏置于盛有5mLPBS缓冲液的平皿中,然后再置于尼龙指套中。

用针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中;2.吸取平皿中细胞悬液(再次用尼龙指套过滤)置于刻度离心管中,加PBS缓冲液(可冲洗培养皿)至10mL,以1500rpm离心5min。

弃去上清,弹散细胞沉淀,加ACK2ml,轻轻吹打混匀并放置3-4min,以破坏红细胞。

然后加PBS缓冲液至10ml,以1500rpm离心5min;3.弃去上清,弹散细胞沉淀,加PBS缓冲液至2ml,吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。

(放置冰上)4.取100uL至EP管中,进行计数和活力测定(建议5倍稀释)5.以1500rpm离心5min,根据计数结果稀释到合适的浓度a)注:减少操作的时间,并放置冰上或低温离心机里以保证细胞活力(三)计算细胞浓度1.将上述细胞悬液做一定倍数的稀释;(建议5倍稀释)。

小鼠淋巴细胞的分离培养

小鼠淋巴细胞的分离培养

小鼠淋巴细胞的分离培养
一、血液中淋巴细胞的分离:
1在1.5ML离心管中加入淋巴细胞分离液0.7ML;
2眼部采集小鼠的抗凝血,抗凝剂20%.。

3轻轻将血液加入淋巴细胞分离液的表面,立即以2000—2500转/分离心10MIN。

4小心吸取上层细胞,转移至另一1.5ML离心管中,再用HANK’S 悬浮至1.5ML,再离心,去上清,再悬浮,等待分型用。

二、鼠脾脏中淋巴细胞的分离:
1无菌采集鼠的脾脏,且灭菌注射器的弯针头轻轻扎取,尽可能使单个细胞分离,再分别用4层灭菌纱布过滤2次。

2将滤液小心加入淋巴细胞分离液中。

离心。

3 吸取上层淋巴细胞,HANK‘S液洗涤2次(尽可能去除淋巴
细胞分离液)。

4加入1640培养液进行培养。


*淋巴细胞分离液不低于全部液体的50%。

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告一、引言淋巴细胞是免疫系统中重要的细胞成分,其在免疫应答和抗体产生中发挥着关键作用。

为了研究淋巴细胞的功能和特性,需要将其从组织中分离出来并进行计数。

本实验旨在通过对小鼠脾脏进行淋巴细胞分离和计数,来获取关于淋巴细胞数量和纯度的信息。

二、材料与方法1. 实验动物:使用C57BL/6小鼠。

2. 仪器与试剂:离心管、离心机、PBS缓冲液、0.83%氯化铵溶液。

3. 实验步骤:A. 准备工作:i. 将离心管预冷至4℃。

ii. 准备PBS缓冲液,并保持在4℃。

B. 小鼠准备:i. 用无菌技术将小鼠安全固定在手术台上。

ii. 使用无菌器械,剪开腹部皮肤和腹壁,暴露脾脏。

iii. 小心取出脾脏并放入含有PBS缓冲液的离心管中。

C. 细胞分离:i. 使用无菌器械,将脾脏组织切碎至细胞悬浮液状态。

ii. 将细胞悬浮液通过70μm滤网过滤,以去除大块组织残渣。

iii. 向过滤后的细胞悬浮液中加入等体积的0.83%氯化铵溶液,进行红细胞溶解。

iv. 用PBS缓冲液洗涤淋巴细胞沉淀,重复此步骤2-3次。

D. 细胞计数:i. 取适量的淋巴细胞悬浮液,加入等体积的尝试涂片溶剂进行稀释。

ii. 在尝试涂片上使用布朗管计数室计数淋巴细胞数量。

三、结果根据实验操作所得数据,我们得到了以下结果:1. 成功分离出小鼠脾脏中的淋巴细胞。

2. 经过红细胞溶解和洗涤步骤后,淋巴细胞沉淀呈现白色悬浮液状态。

3. 在计数室中观察到淋巴细胞的形态特征,如小型、圆形和较大的核。

四、讨论本实验成功地分离出了小鼠脾脏中的淋巴细胞,并通过计数室观察到了其形态特征。

然而,有一些潜在问题需要考虑和改进:1. 纯度问题:尽管我们成功分离出淋巴细胞,但在实验过程中是否存在其他细胞类型的污染仍需进一步验证。

可以通过流式细胞术等技术来评估纯度。

2. 细胞活力:在实验过程中,我们没有对淋巴细胞进行活力测试。

(完整word)脾淋巴细胞分离

(完整word)脾淋巴细胞分离

小鼠脾脏单个核细胞的分离一、实验目的1。

熟悉细胞分离的基本原理2。

掌握小鼠脾脏单个核细胞的分离的方法3。

掌握流式细胞术检测细胞表面标志的方法二、实验原理1.台盼蓝染色:正常的活细胞,胞膜结构完整,能够排斥台盼蓝,使之不能够进入胞内。

丧失活性或细胞膜不完整的细胞,胞膜的通透性增加,可被台盼蓝染成蓝色。

通常认为细胞膜完整性丧失,即可认为细胞已经死亡。

2.脾是人和脊椎动物最大的淋巴器官.人的脾脏位于左季肋区的后外侧部,呈卵圆形,脾是血循环中重要的滤过器,能清除血液中的异物、病菌以及衰老死亡的细胞,特别是红细胞和血小板。

三、实验材料小鼠手术器械(剪刀、镊子)、酒精喷壶、杀鼠板平皿,尼龙膜指套、研磨棒、吸管、试管、EP管、移液器和tipsPBS缓冲液、红细胞裂解液(ACK)细胞计数板0。

2%台盼蓝染液8。

显微镜四、实验步骤(一)取小鼠脾脏1.小鼠颈椎脱位处死-—用拇指和食指往下按住鼠头,另一只手抓住鼠尾,用力稍向后上方一拉,使之颈椎脱臼,造成脊髓与脑髓断离。

2.取其后右侧卧位,消毒左侧背腹交界处皮肤,剪取脾脏并尽量将去除脂肪及筋膜组织.(二)制备单个核细胞悬液:1.将脾脏置于盛有5mLPBS缓冲液的平皿中,然后再置于尼龙指套中。

用针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中;2.吸取平皿中细胞悬液(再次用尼龙指套过滤)置于刻度离心管中,加PBS缓冲液(可冲洗培养皿)至10mL,以1500rpm离心5min。

弃去上清,弹散细胞沉淀,加ACK2ml,轻轻吹打混匀并放置3-4min,以破坏红细胞。

然后加PBS缓冲液至10ml,以1500rpm离心5min;3.弃去上清,弹散细胞沉淀,加PBS缓冲液至2ml,吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。

(放置冰上)4.取100uL至EP管中,进行计数和活力测定(建议5倍稀释)5.以1500rpm离心5min,根据计数结果稀释到合适的浓度a)注:减少操作的时间,并放置冰上或低温离心机里以保证细胞活力(三)计算细胞浓度1.将上述细胞悬液做一定倍数的稀释;(建议5倍稀释)。

淋巴细胞分离液分离脾淋巴细胞的原理

淋巴细胞分离液分离脾淋巴细胞的原理

淋巴细胞分离液分离脾淋巴细胞的原理淋巴细胞分离液是一种常用的实验试剂,用于分离脾淋巴细胞。

通过对淋巴细胞的分离,可以获得纯净的淋巴细胞群体,为后续的实验研究提供了条件。

淋巴细胞是一类免疫细胞,主要存在于淋巴组织和淋巴液中。

淋巴细胞的分离液是一种含有特定成分的溶液,能够有效地分离脾淋巴细胞。

其原理主要包括以下几个步骤:第一步,准备脾组织。

取得小鼠的脾脏,将其置于无菌条件下进行操作。

脾脏是免疫系统的重要器官,其中富含淋巴细胞。

首先将脾脏放入含有冷PBS(磷酸盐缓冲液)的离心管中,并用离心机低速离心,以去除掉其他组织和血管。

第二步,制备单细胞悬浮液。

将脾组织移至无菌的培养皿中,用无菌匀浆棒将组织碾碎。

随后,加入适量的无菌PBS,充分混合,制备出均匀的组织悬浮液。

第三步,加入淋巴细胞分离液。

将淋巴细胞分离液缓慢地滴加到组织悬浮液中,同时轻轻摇动培养皿,使淋巴细胞分离液充分与组织悬浮液混合。

淋巴细胞分离液中的特定成分能够与其他细胞发生作用,使淋巴细胞得以分离。

第四步,离心分离。

将混合液倒入离心管中,用离心机进行高速离心。

离心的目的是通过离心力将淋巴细胞与其他细胞分离开来。

离心结束后,可观察到淋巴细胞沉积在离心管底部,上层液体中则含有其他细胞和杂质。

第五步,收集淋巴细胞。

将上层液体倒掉,只留下沉积的淋巴细胞。

用无菌的PBS洗涤淋巴细胞,去除残留的淋巴细胞分离液和其他杂质。

重复洗涤步骤,可更好地保证淋巴细胞的纯度。

通过以上步骤,我们可以获得高纯度的脾淋巴细胞。

这种分离方法简单易行,操作方便,并且能够得到较为理想的结果。

淋巴细胞的分离液在免疫学和细胞生物学等领域具有广泛的应用价值,为研究淋巴细胞的功能和机制提供了重要的实验手段。

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告

小鼠脾脏淋巴细胞分离与计数实验报告1. 引言小鼠脾脏淋巴细胞是免疫系统中重要的组成部分,它们在抵御病原体侵袭和保护机体免受自身免疫疾病侵害中发挥着关键的作用。

因此,为了研究小鼠脾脏淋巴细胞的特性和功能,我们需要将其从脾脏中分离出来并进行计数。

本实验旨在描述小鼠脾脏淋巴细胞的分离与计数方法。

2. 材料与方法2.1 实验材料•小鼠脾脏样品•细胞培养基•消化酶•离心管•细胞计数板•显微镜2.2 实验方法2.2.1 小鼠脾脏样品的获取1.选择适龄的小鼠,以确保其脾脏发育成熟。

2.用消毒工具将小鼠颈部暴露,进行脾脏的解剖。

3.将脾脏置于无菌的容器中,迅速将其转移到实验室。

2.2.2 小鼠脾脏淋巴细胞的分离1.将小鼠脾脏放置在无菌离心管中,并加入足够的细胞培养基。

2.使用搅拌器或离心机将脾脏组织均匀分散于培养基中。

3.加入消化酶,按照说明书中的浓度和时间进行消化。

4.在消化结束后,用细胞培养基冲洗脾脏组织,以去除余留的消化酶。

2.2.3 小鼠脾脏淋巴细胞的计数1.取适量的脾脏细胞悬液,加入细胞计数板中。

2.在显微镜下观察并计数细胞计数板中的淋巴细胞数量。

3. 实验结果3.1 小鼠脾脏样品的获取从适龄的小鼠身上成功解剖出脾脏,并将其转移到实验室。

3.2 小鼠脾脏淋巴细胞的分离经过消化酶的作用,小鼠脾脏细胞成功地被分离并悬浮于培养基中。

3.3 小鼠脾脏淋巴细胞的计数通过显微镜观察,我们计数了细胞计数板中的淋巴细胞数量,并记录了结果。

具体数据如下: 1. 格子1:20个淋巴细胞 2. 格子2:18个淋巴细胞 3. 格子3:22个淋巴细胞 4. 格子4:19个淋巴细胞根据计数结果求平均值,得到平均每格淋巴细胞数目为19.75个。

4. 结论根据我们的实验结果,我们成功地分离出小鼠脾脏淋巴细胞,并进行了有效的计数。

通过计数结果,可以推断小鼠脾脏淋巴细胞的数量在每格约为19.75个左右。

这些实验结果为进一步研究小鼠脾脏淋巴细胞的特性和功能提供了基础数据。

脾脏淋巴细胞分离方法

脾脏淋巴细胞分离方法

小鼠脾脏淋巴细胞分离方法需要提前准备的材料:提前高压灭菌:手术器械,200目尼龙网,除菌过滤:8.5%和0.85%的Nacl溶液各40ml,1XPBS溶液,hanks液40ml。

红细胞裂解液,六孔板,培养皿,75%酒精,100ml烧杯,无菌注射器5-10ml,15ml、50ml 离心管,4mlEP管,离心机等。

1、配制的percoll工作液:配制15 ml100%percoll液(简称工作液):13.5ml percoll原液+1.5 ml 8.5%Nacl溶液混匀备用。

2、配制6个梯度,每个梯度2ml,实际配制3ml70%percoll液(1.090g/ml):2.1 ml工作液+0.9 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用60%percoll液(1.077g/ml):1.8 ml工作液+1.2 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用50%percoll液(1.067g/ml):1.5 ml工作液+1.5 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用40%percoll液(1.050g/ml):1.2 ml工作液+1.8 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用30%percoll液(1.043g/ml):0.9 ml工作液+2.1 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用20%percoll液(1.031g/ml):0.6 ml工作液+2.4 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用找一只15ml离心管,从低到高(20% percoll液→70%percoll液)依次装入,装好备用。

3、小鼠脾脏细胞分离(1)颈椎脱臼处死小鼠。

75%酒精浸泡10min(2)无菌条件下取出小鼠脾脏,去除筋膜等置于Hanks’ 液中,将脾脏放入2ml离心管中剪碎。

(3)将200目尼龙网置于六孔板上,用注射器头研磨,过程中不停加Hanks’ 液冲洗。

(4)收集脾细胞悬液置于离心管中,1500rpm 10min,弃上清。

(5)加10ml?红细胞裂解液混悬沉淀,室温静置10min,再1500rpm 10min(6)洗三遍,1500rpm 5min,离心去上清(7)加入2ml 0.85%Nacl溶液混悬沉淀。

小鼠尾静脉取血和脾淋巴细胞分离

小鼠尾静脉取血和脾淋巴细胞分离

小鼠尾静脉取血和脾淋巴细胞分离小鼠尾静脉取血所需器材:热光源(如:普通台灯),鼠尾固定器,刀片,1.5mlEP管。

步骤:1.烘烤。

用热源烘烤小鼠使其血管膨胀。

烤至小鼠开始有剧烈反应时,关掉热源。

2.割尾。

烤完后将小鼠固定将尾部露在外面,用刀片割一下鼠尾远心端腹侧静脉血管使血液流出,立即用1.5mlEP收集滴下来的血液。

3.止血。

用干棉球按压伤口或按压尾部近心端止血,以防失血过多死亡。

要点1.烤:烤的不够:血管未膨胀,割尾后血液不易流出。

烤的太过:小鼠死亡。

2.割:割的太浅:血液不流出。

割的太深:鼠尾被割断。

后续应用:取血时可根据需要选择是否需加抗凝剂。

所取血可用于血液学指标的检测,如EPO浓度、甘油三酯浓度、红细胞数及红细胞压积等。

附表:本实验室常用的2种取血方法的比较尾静脉取血VS 眼眶后静脉丛取血小鼠脾淋巴细胞分离所需器材(以下均为取1只鼠脾需准备的量):手术器械——剪刀、镊子至少2套(高压灭菌),止血钳一个(高压灭菌),细头玻璃吸管一根(高压灭菌),,200目尼龙网一张(高压灭菌),一次性5ml注射器一支,15ml和50ml离心管各一个,60mm 中皿及血球计数板一块。

所需试剂:小鼠淋巴细胞分离液,无血清1640,进口血清,青链霉素(双抗)(100X),NEAA,丙酮酸钠,谷氨酰胺,β-巯基乙醇注:200目尼龙网和小鼠淋巴细胞分离液均从达科为公司购买。

分离原理示意图图一小鼠脾脏研磨示意图图二离心后小鼠脾细胞分层示意图分离步骤及要点:1.断颈处死小鼠,75%乙醇中浸泡几分钟消毒。

2.将小鼠转移至超净台中,先用一套剪刀和镊子剪开小鼠皮肤使腹腔内脾脏可见。

换一套干净的剪刀和镊子剪开腹腔,小心用镊子夹出脾脏,用剪刀尽量去除附着其上的脂肪组织。

脾脏位于小鼠左侧腹部,为一暗红色长条形器官,不要误取肾和肝。

取出后浸泡于RPMI1640中稍作清洗。

注意无菌操作。

3.在一无菌的中皿中加入5ml淋巴细胞分离液,用止血钳将尼龙膜固定在中皿上,放上脾脏开始研磨(如图一所示)。

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小鼠淋巴细胞分离液说明书
Cat#:DKW33-R0100
本品为深圳达科为生物技术有限公司自主研发的新一代密度梯度分离液。

主要成份为Iodixanol ,分子量为1550。

它是完全化学惰性、无生物毒性的碘化物,不会结合任何已知的生物功能蛋白、不会干扰任何细胞表面膜蛋白、不会抑制酶活性、不会干扰抗原抗体反应。

EZ-Sep™Mouse 1×小鼠淋巴细胞分离液分离的淋巴细胞的纯度高、状态好、得率高。

小鼠脾脏淋巴细胞分离方法操作简单、易学,对实验者的经验要求不高。

本实验室的研究表明,小鼠脾脏淋巴细胞暴露在该分离液中长达1小时,离心分离后,淋巴细胞的数量和质量没有明显变化,随后的ELISPOT 检测结果同其它组完全一致。

产品信息:
商品名:EZ-Sep™Mouse 1×(英文)
易得小鼠淋巴细胞分离液(中文)
规格:100mL/瓶

度:1.0810±0.0005g/mL (20ºC)
渗透压:280±15mOsm
主要成份:Iodixanol ,化学惰性,无生物毒性
内毒素:≤0.5EU/mL
适用范围:分离小鼠/大鼠脾脏淋巴细胞
分离大鼠/兔子血液中的PBMC
保存方法:4ºC 避光保存,保持无菌保质期:12个月
使用方法:
自备材料:35mm 培养皿、10mL 玻璃注射器内活塞、200目尼龙网——裁
成90mm×90mm 正方形(以上材料均为无菌要求)、其他常用器材:离心管,移液管,加样枪,离心机等
实验步骤:1.断颈处死小鼠,浸泡于75%的乙醇中。

2.在超净台中取出小鼠脾脏。

注意无菌操作。

3.在35mm 培养皿中放入4-5mL EZ-Sep™Mouse 1×淋巴细胞分离液(取用前摇匀)。

研磨(研磨操作请参考图二)。

4.把悬有脾脏细胞的分离液立即转移到15mL 离心管中,覆盖200-500uL 的1640培养基(保持液面分界明显)。

5.室温,800g 离心30min 。

设置较慢的加速度和减速度,如果有十档,设为第三档。

离心结束后细胞分层如图一所示。

6.吸出淋巴细胞层,再加入10mL 1640培养基,颠倒洗涤。

室温,250g 离心10min 收集细胞。

7.
倾倒上清液,用无血清培养基或其他培养液重悬细胞,细胞计数。

注意

若小鼠饲养时间较长,或者小鼠脾脏异常肿大,导致研磨后细胞悬液呈现暗红色时,须将细胞悬液用小鼠
分离液等体积稀释并混匀后,再进行第4步操作。

分离液易挥发,每个脾脏的研磨时间应控制在5min以内。

大鼠脾脏淋巴细胞分离操作:
因大鼠脾脏较大,只须剪取一小部分进行实验即可,研磨与分离的方法与小鼠脾脏淋巴细胞的分离操作完全相同。

●大鼠/兔子血液中淋巴细胞分离操作:
1.新鲜抽取的大鼠/兔子抗凝外周血2-4mL用1640稀释一倍(血液稀释后分离效果更佳,注意无菌操作)。

2.在15mL离心管中加入3mL淋巴细胞分离液。

小心地将经过稀释的血液平铺在淋巴细胞分离液液面上
层,避免两种液体界面混合。

3.室温,800g离心15~20min。

设置较慢的加速度和减速度(如果有十档,设为第三档)。

4.后续步骤与小鼠脾脏淋巴细胞分离操作相同。

特别说明——关于小鼠脾脏研磨的达科为方法:
✧推荐使用尼龙网,因为尼龙网更柔韧。

✧推荐使用注射器活塞来研磨脾脏。

✧关键所在,利用尼龙网向上的反弹力来控制研磨的力
度。

将细胞可能受到的机械损伤降低到最小。

注意:
1.控制研磨力度,使尼龙网保持悬空,避免在皿底上直
接研磨而造成大批细胞死亡。

2.平皿的口径不能太大,否则尼龙网不能产生有效的弹
力。

3.镊子在一边夹住尼龙网,防止尼龙网在研磨过程中滑
动。

参考文献:
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