RNA提取trizol试剂盒说明书
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注:各种样品的最大使用量(1ml Trizol)
操作步骤:
1. 在液氮中将组织(单头飞虱)研磨成粉末,趁液氮尚未挥发光时,将粉末转移到1.5ml离心管中。细胞经计数后直接加入离心管,然后5000rpm室温离心去上清。每100mg组织或5×106个细胞加1ml的Trizol。注意:如果组织量(1-10mg)或细胞数很少(1×102-1×104),在样品中加入800μl的Trizol,用枪头反复抽吸混匀,再加入糖原(终浓度为250μg/ml),剧烈振荡或用匀浆器匀浆。
2. 用1ml针筒,26-G号(6#)针头抽吸匀浆液两次以剪切基因组DNA,然后直接从针筒中将样品转移到无菌1.5-ml离心管中。
3. 加入200μl氯仿/异戊醇(24:1)或氯仿,剧烈振荡混匀30秒。
4. 台式离心机上,12000rpm,室温离心5分钟。
5. 将上清液小心转移到RNase-free 1.5ml 离心管中,加入等体积的异丙醇,室温下放置5分钟。(注意:不要吸取任何中间层物质,否则会出现染色体DNA污染)
6. 台式离心机上,12000rpm,室温离心5分钟。
7.小心移去上清液,防止RNA沉淀丢失。
8. 用70%酒精洗涤两次,每次700μl,12000rpm,室温离心2分钟。
9. 尽可能彻底地吸走上清,防止RNA沉淀丢失。
10. 真空离心干燥3-5分钟,或放在室温下使酒精完全挥发。
11. 沉淀用30-50μl DEPC-H2O溶解。如发现沉淀难溶,68℃处理10分钟。对于胰腺,肾等组织中RNase含量很高,沉淀用100%去离子甲酰胺溶解。12.DNA的分析和定量:
(1)测定样品在260nm和280nm的吸收值确定RNA的质量。按1 OD=40μg RNA计算RNAD的产率:OD260/280在1.8-2.0视为抽提的RNA纯度很高。若需精确量化,只有浓度在4μg/ml以上的样品适于用光度计测定。
(2)进行甲醛变性琼脂糖电泳,确定RNA的完整性和污染情况。
注意:很少量的样品中加入糖原以提高RNA的产率。糖原(<4μg/ml)的存在,不影响cDNA第一链的合成,也不影响PCR。