多药耐药细胞株耐药机制的研究

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《 癌症 》GU7:0?0 X<V\:61 <^ G6:A0\d $##$d $! B !$ C : !"!# 3 !"!"
!"#$% & ’() 多药耐药细胞株耐药机制的研究
朱兴虎 !, 李建勇 $$, 夏学鸣 !, 朱明清 ", 耿美菊 ", 陈 黎 ", 张劲崎 !
B !@ 苏州大学附属第一医院血液科 江苏省血液研究所, 江苏 苏州 $!-##,; 江苏 南京 $!##$+; $@ 南京医科大学第一附属医院血液科 江苏省人民医院, 江苏 苏州 $!-##( C "@ 苏州大学重点实验室,
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&’()* 和 &’()* + ,-. 细 胞 /(01、 2./、 85-2 在 GH5IJ K L<: 细 胞 中 的 :OP 明 显 高 于
’./、 3-./ 和 456(! 的表达 是 GH5IJ 细胞的 !SF ID 倍。 GH5IJ 细胞, 9:8、 ;<:8 和 =>?5! 也有不同程度的增高, 分别是 GH5IJ 细胞 的 !F !U、 !F TJ 和 !F "D 倍。H:8 在两者之间无差异, 见表 !。
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细胞单抗标记 含Fra Baidu bibliotek!Z 叠氮钠) 收集细胞, 洗涤 " 次, 取适量 8;>(
细胞,加 P’6$./2.$2 .$/-$’6 #!JJ "%( 固定 !T B&’ 后 8;> 洗涤,加 P’6$./2.$2 .$/-$’6 $ !JJ "%,!J B&’ 后 8;> 调整细胞浓度,将细胞以每管 T e !JT 个分至试 管中, 然后分别加入 9:8、 H:8、 =>?5!、 C#%5D、 C#%51、 避光室温下孵育 DJ B&’, 加 C/1、 C/, 抗体, 8;> 洗涤, 加入 JF T 入相应的 OP?< 标记的二抗, !T B&’ 后洗涤, 待上机检测。 ;<:8 单抗的细胞标记过程除固 B% 8;>, 定打孔剂改为含 IJZ 丙酮的柠檬酸缓冲液 ( 2GTF Q) 外, 基本同上, 所有待测试管均设有相应的对照管。 85-2 单抗细胞标记: D 管各取 D e !JT 个细胞, 分别加入 8] 标记的 85-2 和 8] 标记的 P-=D/ 孵育 加 JF T B% 8;> 液, 待上机检测。 DJ B&’, 8;> 洗涤, !" % 流式细胞术 应用 ]8P<>5dH 型流式细胞仪 7 ;$#EB/’5<3+%6$., 采用 Ha>a>$ 软件分析和处理 T JJJ 个细胞, ^>M @ , 表示, 分析结果用相对荧光强度 ( :OP) :OP f 测试管 平均荧光强度 K 对照管平均荧光强度。所有实验均 取其均值。 重复 D 次,
【 9:+$’,.$】 ;,.<(’="-& > ?:@*.$%A*B [\V= \0?7?]6:A0 7? 6 569<\ ^6A]<\ 7: AU05<]U0\6J0V]7A ^671V\0 <^ 10V_0576@ KV1]7P\V= \0?7?]6:] A011 17:0? 6\0 ]U0 =<<P 5<P01? ^<\ 7:‘0?]7=6]7:= ]U0 50AU6:7?5? 6:P \0‘0\?61 <^ 6AYV7\0P P\V= \0?7?]6:A0@ /U7? ?]VP; a6? P0?7=:0P ]< 0OJ1<\0 ]U0 5V1]7P\V= \0?7?]6:A0 B K[H C 50AU6:7?5? 7: A011 17:0 D8%,# E FGH@ !*$/=&+:b1<a A;]<50]\; 6:P 6 J6:01 <^ 6:]7N<P70? a0\0 V?0P ]< 6:61;c0 ]U0 0OJ\0??7<: <^ K[H J\<]07:? B I%=Jd KHId 8HId )GHId LM/%! C 6:P 6J<J]<?7?%5<PV16]7:= J\<]07:? B NA1%$d NA1%Od N6Od N6P C 7: K[H A011 17:0 D8%,# E FGH 6:P P\V= ?0:?7]7‘0 A011 17:0 D8%,#@ )"+"#$+: /U0 0OJ\0??7<: 10‘01? <^ K[H J\<]07:? B I%=Jd KHId )GHId LM/%! C a0\0 B !2@ ,$d !@ !+d !@ -#d !@ "$ %^1<P C U7=U0\ 7: D8%,# E FGH ]U6: 7: D8%,#d aU710 ]U0 0OJ\0??7<: <^ 8HI 10‘01 收稿日期: $##$%#&%$"’ 修回日期: $##$%#(%#$ ; 基金项目: 江苏省自然科学基金 ( )*+(!,- ) 江苏省卫生厅青年科技基金 ( .+(#- ) $ 通讯作者: /01: 2, 3 $- 3 "(!22", 3 ,$,# 87976:;<:=> ?7:6@ A<5 4%5671: a6? ?75716\@ /U0 10‘01? <^ 6J<J]<?7?%5<PV16]7:= J\<]07:? B NA1%$ , NA1%O, N6P C a0\0 B $@ &2 , !@ $- , !@ #2%^<1P C U7=U0\ 7: D8%,# E FGH ]U6: 7: D8%,#d aU710 ]U0 J\<%6J<J]<?7? J\<]07: N6O A<:]\6\71; P0A\06?0P 7: D8%,# E FGH@ 1=-.#"+%=-: F6\7<V? K[H 50AU6:7?5? a0\0 7:‘<1‘0P 7: 5V1]7%P\V= \0?7?]6:A0 D8%,# E FGH
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材料和方法
细胞株 人类白血病细胞株 GH5IJ 由本所提供。多药耐
药 细 胞 株 GH5IJ K L<: 由 本 所 自 美 国 纽 约 >%3/’5E$66$.&’- 癌症研究所引进冻存。 GH5IJ 细胞用 含 !JZ 小牛血清,链 :89P5!IQJ ( =&C#3)培养基 ( 霉素及青霉素各 !JJ + K B%)于 "R[ 、 TZ <\D 培养 箱中培养。 GH5IJ K L<: 培养条件与 GH5IJ 相同, 仅 培 养 基 中 另 加 !"- K B% L<:, GH5IJ 及 GH5IJ K L<: 细胞每 " 天换药一次。 GH5IJ K L<: 于实验前 脱药培养 Q 代。所有实验均取指数生长期细胞进 行。 !" # 主要试剂 藻红蛋白 ( 8]) 标 记 85-2 单 克 隆 抗 体 ^P<D ( , 阴 P-=D/, PBB+’36$#*) 8] 标记 P-=D/ ( PBB+’36$#*) ( 性对照。鼠抗人 9:8 多克隆抗体 <%3’$ _<:H5!, , 鼠 抗 人 H:8 K 9L8 ‘a9]NF HM;\:M?\:P]>Pb>) ( 单 克 隆 抗 体 <%3’$ MC5D !J"D , b]\ 9M:c]:> , 鼠 抗 人 ;<:8 单 克 隆 抗 体 ( ]d85"Q, Pb<) , 兔抗人 =>?5! 多克隆抗体( 北京中山生物 >Mb;P\) 技术有限公司 ) 。鼠抗人 C#%5D 单克隆抗体 ( <%3’$ , 鼠抗人 C/1 单克隆抗体 ( S"5S;, PBB+’36$#*) <%3’$ ) ( ,鼠抗人 , 单克隆抗体 QO!! PBB+’36$#* C/, 8bP9 , 羊 抗 人 C#%51 多 克 隆 抗 体 "TDI, PBB+’36$#*) ( 。此外, 固定打孔试剂盒、 TTI"I,;N 公司) OP?< 标 记羊抗鼠 P-=、 OP?< 标记羊抗兔 P-= 的阴性对照均 购于 PBB+’36$#* 公司。
白血病细胞对化疗药物的耐药是目前白血病治 疗的主要障碍, 白血病细胞的耐药可以是内源性的, 也可由药物诱导而致。目前认为白血病细胞耐药机 、多药耐药相关蛋白 制 涉 及 85 糖 蛋 白 ( 85-2) ( 、肺耐药蛋白 ( 、乳腺癌耐药蛋白 9:8) H:8) ( 、 谷胱甘肽 5>5 转移酶 ( 以及凋亡受抑 ;<:8) =>?) 制等
朱兴虎, 等 F GH5IJ K L<: 多药耐药细胞株耐药机制的研究
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。为探讨药物诱导产生多药耐药的机制, 我
们选用 GH5IJ 细胞的多药耐药细胞株 GH5IJ K L<:, 应用流式细胞术对 GH5IJ 和 GH5IJ K L<: 细胞的耐 药蛋白 85-2、 9:8、 H:8、 ;<:8、 =>?5! 以及凋亡调 节蛋白 C#%5D、 现 C#%51、 C/1、 C/, 的表达进行了分析, 报道如下。
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SDT R7:=%UV! ,8W X76:%;<:=$ $ ,RWQ RV0%57:=! ,SDT K7:=%Y7:=" , L4ZL K07%9V" ,GD4Z 87" ,SDQZL X7:%Y7! !" #$%&’()$*( +, -$)&(+.+/01 23$ 45’6( 7,,5.5&($8 -+6%5(&. +, 9++:3+; <*5=$’65(01 >5&*/6? @*6(5(?($ +, -$)&(+.+/01 9?A3+? B!CDDE1 F" G" H35*& B" #$%&’()$*( +, -$)&(+.+/01 23$ 45’6( 7,,5.5&($8 -+6%5(&. +, I&*J5*/ K$85:&. <*5=$’65(01 I&*J5*/ B!DDBL1 F" G" H35*& M" N$0 O&P+’&(+’0 +, 9++:3+; <*5=$’65(01 9?A3+? B!CDDQ1 F" G" H35*&
【 摘 要 】 背景与目的: 白血病细胞对化疗药物的耐药是白血病治疗失败的主要原因, 多药耐药细胞株为白血
病多药耐药机制和逆转多药耐药性的研究提供了良好的模型。为探讨药物诱导产生多药耐药机制, 我们对 D8%,# E 应用流式细胞术和一组抗体, 对药物敏感细胞株 D8%,# 和多药耐药细胞株 FGH 细胞的耐药机制进行了研究。方法: 以及凋亡调节蛋白 NA1%$ 、 D8%,# E FGH 细胞的耐药相关蛋白 I%=J、 KHI、 8HI、 )GHI、 LM/%!, N6O、 NA1%O、 N6P 的表达进 行分析。结果:在 D8%,# E FGH 细胞株中,耐药相关蛋白 I%=J、KHI、)GHI、LM/%! 分别是其在 D8%,# 细胞株中的 !2@ ,$ 、 !@ !+ 、 !@ -# 、 !@ "$ 倍,而 8HI 无变化。凋亡抑制蛋白 NA1%$ 、NA1%O 分别是其在 D8%,# 细胞株中的 $@ &2 、 !@ $倍, 凋亡调节蛋白 N6P 是 D8%,# 细胞株中的 !@ #2 倍; 而凋亡诱导蛋白 N6O 反而降低, 是 D8%,# 细胞株中的 #@ 22 倍。 涉及耐药蛋白 I%=J、 而且凋亡调节 结论: 多种机制参与 D8%,# E FGH 的多药耐药, KHI、 )GHI 和 LM/%! 的表达增强, 蛋白 NA1%$ 、 N6O、 NA1%O、 N6P 均可能参与其耐药机制的形成。 关键词:D8%,#’ D8%,# E FGH’ 多药耐药 ’ 凋亡调节蛋白 中图分类号: H("" 文献标识码: Q 文章编号: !### 3 &,(R( $##$ ) !$ 3 !"!# 3 #&
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