原位杂交步骤自己整理的精讲

荧光原位杂交试剂及其配制方法（以下试剂均需用RNase-free水配制）：1×PBS：NaCl 8g∕ L、KCl 0.2 g∕ L、Na2HPO4
1.44 g∕L、 KH2PO4 0.24 g∕L，溶于 DEPC 处理的去离子水中，用 pH 计测其 pH，再用 NaOH 调其 pH 为 7.4； PBST：PBS加0.1%吐温 -20； LiCI：配 4M LiCI 100ml 需要 LiCI． H20 25.6g，配好后加入千分之一的 DEPC，37℃， 12h 放置，高温灭菌。

4%多聚甲醛（ 4%PFA）：
准确称取 40g 多聚甲醛，溶于 1000ml 的1×PBS中，避光于摇床（37℃，160r ∕m）上，待其全部溶解后，用棕色瓶分装成小体积包装，保存于－20℃。

（注：本方法与其他一些文献用 NaOH和 HCl先后调节 pH而促其溶解的方法略有不同，因是考虑到 pH 的稳定性；另外之所以采用上述方法使多聚甲醛缓慢溶解而没有采用文献中提及的用NaOH 调节
其 pH 至 10 促其溶解后再用 HCl 调节 pH 的原因，除了用一般的pH 试纸测量配置好的 4%多聚甲醛的 pH 不够准确外，也因为不能用 pH 计对其酸碱度进行测量，因为它会损坏 pH 计）。

取以上各成分，溶于 DEPC处理过一定量的纯水（或双蒸水）中，测定其 pH（放置一段时间待其 pH 稳定后），据此以 HCl 或 NaOH 来调节其 pH 值至 7.4，定容至所要求的体积。

注：根据实际情况，因 DEPC处理过的水其 pH 会下降，故本实验中实际上是用1mol ∕ L 的 NaOH 来调节其 pH）。

75%甲醇／ PBST：将无水甲醇按 75%（V／V）比例溶于 PBST； 50%甲醇／PBST：将无水甲醇按 50%（V／V）比例溶于 PBST； 25%甲醇／ PBST：将无水甲醇按 25%（V／V）比例溶于 PBST； HYB－溶液：50%甲酰胺（V／V）、5×SSC（终浓度）、0.1%吐温-20（终浓度）、RNase-free 水（－ 20℃） pH6.2
HYB＋溶液： HYB－溶液、 500ug／ ml 酵母 tRNA、50ug／ml（终浓
度）肝素，（－ 20℃）； pH6.2
50%甲酰胺／ 2×SSCT： 50%甲酰胺（ V／V），2×SSCT（终浓度）；
2×SSCT：2×SSCT（终浓度），0.1%吐温-20；
MAB 马来酸缓冲液（Maleic acid buffer）：100mM maleic acid，
150mM NaCl，pH 7.5（20℃），溶于双蒸水，用浓缩或固体的
NaOH调节 pH 为 7.5，并过滤除菌（ sterile ）
MABT:MA，B使用前加入 0.1%吐温 -20；
10×Blocking reagent（阻断剂）：将阻断试剂（ Blocking reagent）溶
于马来酸缓冲液中，摇晃并在加热器或微波炉上加热，使其终浓
度为 10％（ w/ v）；此储存液（原液）需高温除菌？（is
autoclaved）并分装后保存于－ 20℃。

封闭缓冲液（blocking buffer ）：10%羊血清、 2%阻断剂（终浓度），
两者溶于 MABT；三者 MABT:羊血清：10%阻断剂 =7:1:2；也有用：
1
× PBT，2% sheep serum (vol/vol)，2 mg／ml BSA)
1×Blocking reagent ：用马来酸缓冲液将10× Blocking reagent 稀释1× Blocking reagent。

此溶液需要随配随用，不可久放。

标准杂交缓冲液（standard hybridization ）：5× SSC、0.1％N-lauroylsarcosine（w/v），0.02 ％SDS（w/v ），1％Blocking reagent（取1/10 体积的10×Blocking reagent）
标准杂交缓冲液（含甲酰胺）：50%去离子甲酰胺，5× SSC、0.1 ％N-lauroylsarcosine（w/v），
0.02 ％SDS（w/v ），2％Blocking reagent（取1/5 体积的10×Blocking reagent）
蛋白酶 K 储液： 10mg／ml；将蛋白酶 K 按 10mg／ml 溶于 PBT中，分装成 100ul 的小包装，保存于－ 20℃。

使用浓度为 10ug／ml 。

（注： PBS不需要除酶，因为蛋白酶 K 可以降解 RNase）
抗地高辛荧光素偶联的抗体（ Anti-digoxigenin-fluorescein ，Fab fragments）保存及使用方法：
1、激发最大波长（Excitation max）:494nm；发射最大波长
（Emission max）：523nm
抗体冷冻干粉末，用 1ml 双蒸水进行溶解，其终浓度为 200ug／ml，即 200ng／ul。

注意事项：此保存液应该在使用前不久进行稀释，（Note: The stock solution should be diluted shortly before use）；
2、以上保存液在 2－8℃避光条件下，可以保存 2 个月。

保存液应
避免反复冻融，分装后，保存于－ 20℃
3、推荐使用含 0.5%BSA（w／ v）的 PBS（ pH7.4）对以上抗体保存
液进行稀释；
4、此抗体可以用来对地高辛标记的复合物进行检测，注意事项：在
使用抗体之前， 10000rpm 离心 5min，且在液面吸取需要的体
积。

探针的制备过程：
1、设计上下游引物，加酶切位点（ HindⅢ、 EcoRⅠ）和保护性碱
基（ 3 个保护性碱基），用来扩增目的基因片段，回收目的基因片段，然后用 HindⅢ和 EcoRⅠ进行双酶切。

2、用限制性内切酶（ HindⅢ、 EcoRⅠ）对载体 pSPT18（约 1ug 的
量）进行双酶切，琼脂糖凝胶电泳并回收酶切后的片段，溶于
适量无菌水中。

设计上下游引物，扩目的片段为 700～800bp 长度的片度，回收连接 T-载体，连接过夜，
3、将 pSPT18酶切回收后的片段与相应酶切的基因片段，按摩尔比
例 1:10 左右进行混合，加入连接酶， 16℃，连接过夜。

4、将以上的重组载体进行转化，选择具有氨苄青霉素抗性的培养
基， 37℃，培养 13-15h，保存于 4℃冰箱，再进行挑菌，接种
于含 1‰氨苄青霉素的 LB液体培养基中， 37℃， 180r/min 条件下，摇菌过夜。

5、次日，用特异性引物做菌落 PCR，确定插入目的基因片段重组成
功的克隆，保存菌种，其余进行测序验证。

测序成功
6、选择测序验证成功的相应菌液，进行扩大培养，回收重组质粒。

7、对重组质粒分别进行单酶切（ HindⅢ、 EcoRⅠ），使其线性化，
并回收线性化的质粒 DNA，以用于体外转录。

（如何回收较好？
1 、Puri?cation of linear DNA can be achieved
byphenol/chloroform extraction followed by ethanol
precipitation.2、）
8、选择插入片段 5＇端酶切位点的酶（合成反义 RNA）或 3＇端酶
切点的酶（合成正义 RNA）。

对于本实验来说，用 RNA聚合酶
T7，对 HindⅢ酶切的模板 DNA进行体外转录，以产生可以检测CXCR7基因 mRNA的反义 RNA探针；用 RNA聚合酶 SP6，对
EcoR Ⅰ酶切的模板 DNA进行体外转录，产生用于阴性对照的正
义 RNA探针。

反应体系为 20ul, 所加模板 DNA为1ug左右，10× NTP labeling mixture 2ul 、 10×Transcription buffer 2ul 、
Protector RNase inhibitor 1ul 、 RNA Polymerase SP6 or
RNAP olymerase T7 2ul ，将以上各个成分轻轻混合后，简单离
心，在 37℃下孵育 2h（延长孵育时间并不能增加标记的 RNA 的
产量；按每 1ug模板，可以产生 10ug探针 RNA）。

9、向上述反应体系中，加入 RNase-free 的 2ul DNaseⅠ ，37℃ 保
温 15min, 以消除模板 DNA。

10、向上述反应液中，加入 2ul 0.2M 的 EDTA （pH 8.0）以终止反
应，RNA转录子可以通过琼脂糖凝胶电泳 EB染色来进行分析。

11、标记好的探针，不能用苯酚氯仿进行抽提，这样会导致探针分
解。

标记好的探针可以在－ 15-－25℃，稳定保存至少一年；要
避免反复冻融标记好的探针，可以对其进行小管分装，方便使
用。

12、需要的试剂：RNA Dilution Buffer:DMPC 处理的RNase-free 的双蒸水:20 × SSC:
4)反应结束后加入30μ LRNasefr ee 水和30μLL iC，l 离心混匀，-20℃ 1hr
5)14000rpm，4℃离心 5min，加入 1mL 70% 乙醇；
6)14000rpm， 4℃离心 15min，尽量弃上清；
7)室温晾置 5-6min：
8)加入30μL DEPC H，20RNA sein 1 ，μ-L80℃保存。

12、吸取少量标记好的探针，进行琼脂糖凝胶电泳，
以检测其质量。

好的探针应该会出现一个或两个分离的条带，而不是拖尾，如是拖尾意味着探针有所降解了。

探针标记：
1、用地高辛标记的 UTP 在体外进行转录(载体 pPST18)，以获
得正义和反义 RNA 探针，将其溶入无 RNase 的去离子水
中。

探针转录体系如下：
整体原位杂交步骤：
胚胎的准备、固定与保存
1、收集西伯利亚鲟的一定数量未受精卵和受精后各个发育时期的胚胎，用蛋白酶( 浓度：)或手动医用镊子以去除其卵壳。

2、将未受精卵和各期胚胎加入 10 倍体积的 4%多聚甲醛中，4℃过夜。

3、在 PBS 缓冲液中漂洗胚胎若干次，然后分别依次以不同比例（25%:75%、50%：50%、75%：25%）的甲醇∕ PBST，对胚胎进行
梯度脱水，每次 5min; 再用 100%甲醇洗一次，时间为 5min，最后转至 100%甲醇中， - 20℃保存备用。

整体原位杂交步骤：原位杂交第一天：
1、胚胎的复水
在室温下进行以下实验操作，分别依次以75% MeOH / 25% PBST、50% MeOH / 50% PBS、T25% MeOH / 75% PBST洗胚胎，以上三操作每次清洗时间为 5min；最后用 100%PBST漂洗 4 次，每次 5min。

2、用蛋白酶 K 消化处理及再固定
室温下，以一定浓度（浓度:10μg/ml）蛋白酶 K（用 PBST稀释），处理各时期胚胎：最佳处理时间需根据胚胎发育时期而定（也有言 24h 以前的不用处理；而其他时期可以聊做参考其他鱼类的：如周励的鲫鱼小于 5 体节期可以不用处理、 10 体节期处理 5min；24体节处理 10min；对于斑马鱼：小于 5 体节期不用处理，10 体节期处理1min、 24h 处理 5min、48h 处理 15min；）。

用 PBST清洗胚胎
5min，以洗去蛋白酶 K，最后再用 PBST洗胚胎 5min，以洗去残留的蛋白酶 K。

然后在室温条件下，用 4%多聚甲醛重新固定胚胎，时间为20min（？对于鲟鱼是否也要适当的延长固定的时间）；再用 1× PBST清洗胚胎 4（或者 3 或 2 次）次，每次 5min，以除去残留的多聚甲醛，最后一次清洗将胚胎转移至新的 1.5ml 的 eppendorf 管中。

（如果以斑马鱼的
胚胎大小为准，可以放置多达 50 颗胚胎。

) 注：关于蛋白酶 K 的消化，时间太短会使探针不能进入，时间太长将会改变胚胎的形态结
构。

Proteinase K Prepare 10 mg /ml stock solution in PBT and store at -20℃ in100 ul aliquots. Final concentration for embryo permeabilization is 10 ug/ml ；斑马鱼的胚胎各期消化时间可以参与在第七页 [1]，
3、准备预杂交和杂交混合液
4、Hybridization mix (HM) ：50% deionized formamide ，5×SSC，
0.1% Tween 20，50ug/ml of heparin ， 500 ug/ml of RNase-free
tRNA adjusted to pH6.0(6.3 大飞) by adding citric acid (460 ul of
1M citricacid solution for 50 ml of HM) 。

预杂交液 HYB－： 50%甲酰胺、 5 x SSC(用 20 x SSC母液稀释)、RNase-free水， 0.1%吐温-20。

用柠檬酸( citric acid)调节 pH 至 6.0。

5、
杂交液 HYB+：
甲酰胺( Formamide ) 50% ；5 x SSC；肝素 (Heparin )，50μ g/ml ；吐温 -20(Tween-20)，0.1%；tRNA，500μg /ml ；用柠檬酸( citric acid)调节 pH 至 6.0。

6、预杂交
除去 PBST，每管取约 5-10 枚胚胎，向 1.5ml 的 eppendorf 管中加入 700ul (适量体积 )HYB－进行预杂交，在杂交炉中 60-68℃保温
5min ；然后，换用适量体积的 HYB＋溶液， 68℃预杂交 4-6h （70℃，2-5h 、其他如 roche 采取 55-65 ℃或）在 70℃条件下，水浴2-5 小时。

？？？作用？（注：这些预杂交后的胚胎可以在 HM中，-
20 ℃条件下保存数周）
7、杂交：
实验设计反义 RNA、正义 RNA、空白对照组。

用 HYB＋溶液将地高辛标记的探针稀释到 1ng／ul,72 ℃加热变性 5min，马上置于冰上冷却，以消除探针的二级结构；弃去预杂交液 HYB＋，加入新的 700ul （其他体积也可以）的 HYB＋溶液和适量的探针，使探针的浓度为
1ng ／ul ，65-68-70 ℃孵育过夜（12-16h）。

（加入包含终浓度为0.5-1.0ng ∕μl（30-50ng 这个是参考文献［1］）的地高辛标记的反义RNA 探针的HM 溶液200μl，70℃条件下杂交（有的文献72 或80℃加热5min 变性，冰上冷却，以此消除探针的二级结构）（杂交炉中？），过夜（也有65℃,5h；60℃杂
交炉中，16h）。

注：1
、不要使用过量的RNA 探针，这会增加背景labeling ；2、如此高的杂交温度和
HM 缓冲液中甲酰胺的比例，保证了探针杂交的严谨度（stringency ）和减少了交叉杂交（cross-hybridization ）的发生。

杂交温度不要超过72 ℃，否则探针被破坏。

空白对照组不加入探针。

孵育时，加入的HYB＋应首先预热到70℃ ，在之后再加入适量探针。

原位杂交第二天：
1、将含有探针的 HYB＋溶液吸出， -20℃保存，并可多次重复使用
中，一般可使用十次左右，而能够重复使用的次数取决于探针的质量，使用次数越多，得到的信号可能越弱；以下步骤在65-
68℃的杂交炉中进行，且注意溶液要预热。

洗去多余的探针：
依次用 50%甲酰胺／ 2×SSCT，30min／次，2次；2×SSCT，
15min ／次，1 次；0.2×SSCT，30min／次，2次（其实可以如下
增加 75%、25%）。

（或另一方法：将胚胎的溶液介质环境由
HM 逐渐过渡到 2× SSC，以除去残留在介质中的探针：由 HM
经过
75%HM、 50%HM、 25%HM、 100%2×SSC，以上每一个步骤都要
在 70℃水浴中进行并轻轻摇动，每次 10min，而不同稀释度的
HM 用 2× SSC稀释，且以上用来洗脱残留探针的 HM 不包含
tRNA和肝素钠（ heparin）。

；在 70℃条件下，用 0.2×SSC漂洗
胚胎两次，每次 30min，如此高严谨性的漂洗以防止探针非特异
性杂交；）
2、以下步骤在室温下进行，通过用一系列 1×PBT稀释的 0.2×SSC
漂洗胚胎，逐渐用 PBT取代 0.2×SSC，方法如下：在室温条件
下，用一定体积？的 75% 0.2×SSC、 50% 0.2×SSC、 25%0.2 ×SSC
和 1× PBT，逐次漂洗胚胎各 1 次，15min／次，并置于水平摇床
上（ horizontal shaker）以 40 r.p.m 轻摇。

封闭：
1、做此步骤的前提是不用做前面杂交的步骤 2，即是用马来酸缓冲液 MABT清洗胚胎 3 次， 5min ／次，
3、室温下，用适量封闭缓冲液（ blocking buffer ：10%羊血清、 2%
阻断液，两者溶于 MABT；三者 MABT:羊血清：阻断剂 =7:1:2；
也有用： 1× PBT，2% sheep serum （vol/vol）， 2 mg／ml
BSA）温育（ incubate）胚胎 1-3h，并置于摇床上轻微摇晃，此
步骤在于使抗体的非特异性结合位点饱和（ saturates）。

4、（也即是：更换新鲜的封闭缓冲液，加入比例 1:5000 的抗地高
辛荧光素标记的抗体，）将胚胎置于含 1/10000（多数文献是
1:5000）抗地高辛荧光素标记的抗体的封闭缓冲液中，4℃过
夜，且置于以 40 r.p.m.的水平摇床（振荡器？）上（horizontal shaker）轻轻摇晃。

原位杂交第三天：
1、弃去抗体溶液，并用 PBT 简要地（ briefly）漂洗胚胎；然后室
温下，再用 PBT漂洗胚胎 6 次，每次 15min，每次漂洗的同时
将其置于 horizontal orbital shaker 以 40 r.p.m.轻轻摇晃。

（其他
漂洗方法：？），干燥？（其他漂洗方法重点参考：室温下洗
去多余的抗体： hybridization solution contains 50% formamide
（Ultra Pure from USB, USA） in2 × SS，C罗氏 202 页资料：分
别用不同混合比例的杂交缓冲液（ hybridization solution）／
1×PBS （ 3:1、1:1、 1:3）清洗胚胎，每次 20min，各 1 次，最后用 1 ×PBS清洗胚胎 4 次，15min／次）
2、室温下，用 alkaline Tris buffe（r 配方见文献 1，这个对于AP 及
其底物显色才合适）在 horizontal orbital shaker 上以 40 r.p.m.轻
轻摇晃，进行漂洗 3 次，每次 5min 。

3、这个步骤对于AP 除去 alkaline Tris buffer ，用新鲜配制的 0.7ml
染色液将其替代，并置于黑暗环境中（这个步骤是按照
AP-BCIP\NBT来进行的）
检测观察拍照并记录：
1、是否还需要4%多聚甲醛固定？，原位杂交胚胎经梯度甘油／
PBST透明后（ 30%甘油／ PBST、50%甘油／ PBST、70%甘油／
PBST、100%甘油／ PBST），连同少量 100%移到载玻片，观察拍照。

拍照后可移回4%PFA？或甲醇中？保存
杂交漂洗缓冲液 HyB-:
甲酰胺（Formamide ） 50% ；
5 x SSC；
吐温-20（Tween-20）， 0.1%；
用柠檬酸（ citric acid）调节 pH 至 6.0。

1、可选择做法：在加入胚胎之前，预热 HyB–；
2、将包含 RNA探针的HyB+ 吸出，保存于- 20 ℃；在没有如何信号损失的情况下，该探针可以重复多次使用。

3、 100% HyB–，70℃短暂地漂洗；
4、75% HyB–∕25% 2 x SSC T，70℃，15min；
5、50% HyB–∕50% 2 x SSCT ，70℃，15min ；
6、25% HyB–∕75% 2 x SSCT ，70℃，15min ；
7、2 x SSCT ，70℃，15min ；
8、0.2 x SSCT ，70℃ ,30min ，漂洗2 次（如果第一天杂交使用的是50%甲酰胺，以下相同）；或0.05 x SSCT ，70 ℃,30min ，漂洗2次（如果第一天杂交使用的是65%甲酰胺）（注：对于）
9、75% 0.2 （or 0.05） x SSC/25% PBT ，室温，10 min ；
10、50% 0.2 (or 0.05) x SSC/50% PBT
11、25% 0.2 (or 0.05) x SSC/75% PBT
12 、PBT ，室温，10 min；，室温，10 min ；，室温，10 min ；
13、加入杂交封闭液：PBT/2%羊血清/2mg/mlBSA （有的文献周励加入roche 的阻断剂于MABT 中，前面步骤也有此方面的操作，待确定？？？），室温下，孵育若干小时（3 小时）？
14 、换上新鲜的杂交封闭液，加入荧光素（fluorescein ）标记的抗地高辛的抗体反应液（1:200 ），4℃摇洗过夜。

.
原位杂交第三天：
漂洗：
室温下，洗去多余的抗体，彻底地漂洗干净 1、室温下， PBT快洗一次2、室温下， PBT漂洗 6 次，每次 15min
镜检：
甘油： PBS=3:1 PBSpH=7.4 也可以延长荧光时间，防淬灭（来自
周励）
1、将若干盖玻片重叠累加用胶水粘在一起，分别两处固定于载玻片上，其中间留有一定的空隙，将甘油滴到空隙处的载玻片上，放置胚胎，再在其上放置大的盖玻片，可以通过轻轻移动它滚动胚胎的位置，
以此在不同的方向上对其进行观察
所用试剂的配制方法：
3、PBST
以 1 ‰体积的吐温 -20 溶于 PBS中，混匀即可
4% paraformaldehyde in PBS
10/23/00
1. For 100mL. Best to use glasswares, tir bar(搅拌子) set aside for making paraformaldehyde only.
2. Put 50mL ddH2O in a glass beaker(烧杯) with a stir bar in the bottom. Put stirring on hot plate in the hood. Set hot plate to setting 3-4 (abou6t 0 degrees, make sure the solution does NOT boil).
3.Measure out4 g of paraformaldehyde (Sigma, stored on the bottom left in the cold box). Measure IN THE HOOD (move the scale in there) .Add the paraformaldehyde to the heater stirring water.
4.You need to raise(提高)the pH until the solution clears. I do this by adding a few drops (2-3) of 1N NaOH and watch the solution. Gabrielle does with 10uL of 10N NaOH and that is it. If the solution fails to clear, check the pH by pipetting a small amount of the solution onto a pH strip. If you are too high (>8) or too low (<7) keep pHing . You cannot pH on the pH meter as it will be ruined by the
paraformaldehyde.
5.When dissolved, cool, then filte(r 过滤) the solution by pouring through a piece of
filter paper inside a funnel. Pour into a graduated cylinder to check the volume.
6.Add 10mL of 10X PBS. Add ddH2O to 100mL.
7.Recheck the pH with paper.A djust carefully with small amounts of dilute HCl if needed.
8.Aliquot to use.
10xPBS 这个配方与孙成飞实验室的一致：
80.0 g. NaCl (137 mM)
2.0 g. KCl (27 mM)
2.0 g. KH2PO4 (43 mM)
11.5 g. Na2HPO4 (14 mM)
4% Paraformaldehyde ：
Dissolve 4 g. of paraformaldehyde in 90 ml. of H2O pH 10 to dissolve
Bring back down to pH 7
add 10 ml. 10x PBS (for a final concentration of 4 g. in 100 ml. of 1x PBS)
Filter sterilize through a .22 micron filter.
4% Paraformaldehyde (PAF) Fixative
Always prepare fresh
Prepare 100mls
4% Paraformaldehyde
1. Dissolve 4g of paraformaldehyde in 90 ml of 1xPBS
2.Heat gently to 58-60o C under a hood. Do not heat over 60o C (PAF dissociates > 60o C).
3.Add 10N NaOH to clear the solution (pH 10 dissolves the paraformaldehyde). Usually 5-10 drops.
4.Remove from heat and pH.
5.Carefully pH to pH 7.2-7.4.
6.Bring to final volume (100mls) with 1xPBS (for a final concentration of 4 g in 100ml of 1xPBS)
7.Filter sterilize through a .22 micron filter if necessary
8.Keep in 4o C refrigerator (no more than 1 week)
Paraformaldehyde (4%)
1.Place 80 ml of 0.1M PBS into a hood chemical beaker. Do NOT use regular laboratory glassware for making paraformaldehyde.
2.Place beaker on heat/stir plate in the fume hood and begin stirring while heating (stir level approximately 5, heat level approximately 8).
3.Measure out 4 grams of paraformaldehyde on a top loading balance. Make sure you take the necessary safety precautions, including wearing gloves, goggles, and mask to prevent contact with the paraformaldehyde.
4.Place the 4 grams of paraformaldehyde in the stirring 0.1M PBS. Paraformaldehyde should dissolve upon heating and stirring for a while. While the solution does need to get hot, do NOT let paraformaldehyde solution boil! It may be necessary to add a couple of drops of 1M NaOH to the solution to allow it to become clear.
5.Once paraformeldehyde is in solution, allow it to cool to room temperature.
6.pH the solution to approximately
7.4 using pH strips, not the pH meter .
7.Bring the volume up to 100 ml with more 0.1M PBS.
8.Store paraformaldehyde solution in the fume hood.
Paraformaldehyde solution (4%) for RNA FISH
Paraformaldehyde (extra pure; Merck) 4 g
PBS (1X, pH 7.4) to 100 ml
NaOH (5 M) 200 μl
HCl to pH 7.4
Dissolve 4 g paraformaldehyde in 80 ml 1X PBS and 200 l 5 M NμaOH at 60 C wi°th stirring.Adjust to pH 7.4 with HCl. Bring to a final volume of 100 ml with 1X PBS.
Thisse C, Thisse B. High-resolution in situ hybridization to whole-mount zebrafish Nature
embryos.
protocols 2007, 3:59-69.
1.。