浮游动物的采样方法

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7.实验七__浮游动物采集和定量

7.实验七__浮游动物采集和定量
实验七 浮游动物采集和 定量
实验目的
掌握浮游动物采集、浓缩、定量的常用 方法。
实验仪器、用品
广口瓶、浮游生物网、量杯、甲醛、刻 度吸管。
实验内容
1.采样:采样点、采样层次 同浮游植物在野外 采集时,必须遵循先采定量样品,后捞定性标本 的原则。
2.浓缩:用广口采水器采10~30 L(30L)水, 用浮游生物Ⅲ型网(25#,200目, 0.064mm孔径)过滤。用5%甲醛固定。
5.生物量的换算:
测出每升水中浮游动物的数量后,再求得各种 浮游动物的平均重量后,生物量就能换算。
① 体积法:把生物体当做一个近似几何图形,按求 体积公式求得生物体积,并假定比重为1,由此得 到体重。
② 沉淀体积法:把浮游动物样品放在有刻度的滴定 管中,经一段时间沉淀后读出沉淀体积。
③ 直接称重法:就是要把称重的生物体,直接放在 微量天平中称其体重。
3.计数:如果数量少(<1000),可以直接 全部计数。如果数量多,可在相应的计数框内 计数。
4.个体数的计算:
N=(n·V′)/(V·V″)
式中, N为每升的个体数(个/L); n为取样计数的个体数(个); V′为水样浓缩的体积(ml); V″为取样计算的体积(ml); V为采水量或滤水量(L)。
动物
中型浮游动物定 量:取1 ml浓缩 水样于浮游动物 计数框内全片计

大型浮游动物 定量:在解剖 镜下体中浮游动物的密度和生物量
图1 浮游动物采样 、定量流程
作业:1.列表表示各种类浮游 动物的数量。
表1 浮游动物数量计数记录表
标本编号
站号
层次(m)
采水量(L)
浓缩体积(ml) 计数体积(ml)
调查时间: 年 月 日

浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶,直接在采样点装满水,加10-15ml的鲁哥试剂,摇匀。

鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中,待其完全溶解后,将4g碘充分摇动,待其完全溶解后,定容至100ml,即配成鲁哥氏液。

二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。

三、浮游动物定量
表层取水样10L(中层和底层取20L水样)过25号浮游生物网,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,4%添加的福尔马林溶液。

福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1:9的比例混合配制而成。

四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。

浮游生物采样

浮游生物采样

浮游生物采样7.3 采样时间7.3.1同一类群的生物样品采集时间(季节、月份)应尽量保持一致。

浮游生物样品的采集时间以上午8:00~10:00时为宜。

7.3.2除特殊情况之外,生物体污染物残留量测定的生物样品应在秋、冬季采集。

7.3.3进行生物毒性试验的污水样品应在排污口排放的有毒污染物浓度最高时采集。

7.4 样品采集与保存7.4.1浮游生物样品采集应符合以下要求:1定性样品采集(浮游植物、原生动物和轮虫等)采用25号浮游生物网(网孔0.064mm)或PFU(聚氨酯泡沫塑料块)法;枝角类和挠足类等浮游动物采用13号浮游生物网(网孔0.112mm),在表层中拖滤1~3min。

2定量样品采集,在静水和缓慢流动水体中采用玻璃采样器或改良式北原采样器(如有机玻璃采样器)采集;在流速较大的河流中,采用横式采样器,并与铅鱼配合使用,采水量为1~2L,若浮游生物量很低时,应酌情增加采水量。

3浮游生物样品采集后,除进行活体观测外,一般按水样体积加1%的鲁哥氏溶液固定,静置沉淀后,倾去上层清水,将样品装入样品瓶中。

表7.4.7生物样品保存方法微生物细菌总数总大肠菌群数粪性大肠菌数粪链球菌数灭菌玻璃瓶1~4℃<6h最好在采样后2h内完成接种,并进行培养。

如水样含有余氯或重金属含量高,可按500mL样品瓶分别加入0.3 mL10%硫代硫酸钠溶液或1mL15%EDTA溶液表B.16浮游生物分析记录表样品来源样品类型共页第页分析项目采样地点采样日期月日属名数量(个)指示意义优势种名绝对优势种生物密度(个/L)结果分析备注分析人员:年月日校核:年月日审核:年月日表B.17生物种类统计记录表样品来源样品类型共页第页12345分析人员:年月日校核:年月日审核:年月日。

04第四章-海洋浮游动物

04第四章-海洋浮游动物

利用特殊仪器和设备(斯库巴潜水
/scuba-diving),在水中直接观察,发现了
许多新种(体制柔弱种类)。
三、终生浮游动物的分类和生物学
三、终生浮游动物的分类和生物学
1、原生动物
最原始和低等的单细胞动物,具有细胞 膜、细胞质和细胞核。
⑴腰鞭毛虫(夜光 虫): 具有鞭毛,部 分或全部异养生 活(一些种类具 有叶绿体,如眼 虫);摄食细菌、 硅藻或其他鞭毛 虫、纤毛虫。 夜光虫,常在 近海岸大量出现, 易形成赤潮。
⑵腔肠动物的浮浪幼虫、辐射幼虫 和蝶状幼体
①浮浪幼虫(planula larva): 具有世代交替的水螅水 母和旗口水母的实原肠 胚,其表面遍生纤毛, 能在海中游动,称浮浪 幼虫。经在海中浮游几 小时至数日之后,浮游 幼虫附着于物体上,继 续发育、生长。
②辐射幼虫(actinula):

筒螅(Tubularia)的浮 游幼虫称为辐射幼虫。 经短期浮游后,幼虫 基盘触手的膨大末端, 分泌粘液,借此吸附 在物体上改营固着生 活。

4、毛颚动物 (箭虫)
研究较详尽,数 量丰富;雌雄同体; 仅分布于海洋;体长 一般小于4厘米;平时 静止,捕食可快速弹 射运动;口周围有几 丁质钩,食物几乎没 有选择性;
5、环节动
物(多毛 纲/浮蚕)
身体由相似 的 体节构 成,40种,全为 捕食者,分布 广泛。
6、软体动物

身体柔软、不分节、体外被套膜,常分泌 有贝壳。仅个别种属于终生浮游动物。
五、浮游动物的垂直分布
人为将海洋浮游动物垂直分布划分为表层、上层、 中层和深层带
1、表层分布
漂浮生物:⑴始终生活于海水表面,而且部
分身体伸到空气中的种类;(僧帽水母)

浮游生物样品采集与分析详解

浮游生物样品采集与分析详解
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近岸海域常见; 体长0.8mm左右; 头胸部近纺锤形;
后侧角钝圆。
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双毛纺锤水蚤 Acartia bifilosa
太平洋纺锤水蚤 Acartia pacifica
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体长1.2mm左右; 后侧角尖锐。
头部一对很大的 复眼; 第三对胸足 非常细长;
体长最大可达
7mm。
细足法虫戎 Themisto gracilipes
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节肢动物门 Arthropoda,磷虾类 Euphausiacea




太平洋磷虾
Euphausia pacifica
现在是49页\一共有65页\编辑于星期四
嵊山秀氏水母 Sugiura chengshanense
现在是34页\一共有65页\编辑于星期四
伞半球形,胶质薄
生殖腺位于辐管上,卵 形或线性
16-30条触手
触手间有平衡囊
半球美螅水母 Clytia hemisphaerica
[ 半球杯水母 Phialidium hemisphaericium ]
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桡足类的基本形态构造
北海区最重要的优势种之一; 桡足类模式种;
体长3mm左右; 后侧角短钝;
第5胸足内缘有齿。
后侧角
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中华哲水蚤 Calanus sinicus
体长0.8mm左右; 体型矮胖;
后侧角钝圆;
第5胸足短小。
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浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法
对于水体中的浮游生物进行取样保存
浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶,直接在采样点装满水,加10-15ml的鲁哥试剂,摇匀。

鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中,待其完全溶解后,将4g 碘充分摇动,待其完全溶解后,定容至100ml,即配成鲁哥氏液。

二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。

三、浮游动物定量
表层取水样10L(中层和底层取20L水样)过25号浮游生物网,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,4%添加的福尔马林溶液。

福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1:9的比例混合配制而成。

四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。

淡水浮游生物的调查方法

淡水浮游生物的调查方法

~淡水浮游生物的调查方法淡水浮游生物调查有定性调查和定量调查两种类型。

定性调查是指采集浮游生物进行属种鉴定的过程,其目的在于了解水体中浮游生物的种类组成、出现季节及其分布状况。

定量调查是指采集浮游生物,确定个体数目或重量的过程,其目的在于探明各种浮游生物在水体中的数量及其变化情况。

定性调查是定量调查的基础,定量调查则是定性调查的发展和补充,二者相辅相成,在实践中常相互结合进行。

一、调查用品用具(1)网具①浮游生物定性网:用于表层50厘米内各种浮游生物的定性采集。

由铜环、缝在环上的圆锥形筛绢网袋及连在网袋末端的集中杯(网头)三部分组成(其外形见本书图2-3)。

由于浮游生物大小各不相同,为了采全各种浮游生物,应使用25#、20#、13#三种规格。

其中25#网适于采集个体较小的浮游植物,其网孔大小为毫米;20#网适于采集一般浮游植物及中小型浮游动物,其网孔大小为毫米;13#网适于采集大型枝角类和桡足类等浮游动物,其网孔大小为毫米。

中学生开展本项活动时,可以只用20#网进行采集。

定性网可以自己裁剪制作,裁剪时可按图8-1所示方法进行。

如网口直径为20厘米,其半径为10厘米,可依c=2rπ公式计算,从a到b的弧长为厘米,a至c为网的长度即60厘米,这样就可按照图8-1中的1与2所示方法进行裁剪。

缝合时,应该用细针,以免网上留下针孔,造成浮游生物自针孔流失。

网衣应该用10厘米宽的白布条固定在铜环上,使筛绢不与铜环直接接触。

在网的末端装配集中杯。

为了使网衣坚固耐用,最好在缝合处加缝2厘米宽的白布条。

)定性网各部分的尺寸规格,依型式不同而有差别,其尺寸规格见表8-1。

表8-1 浮游生物定性网规格单位:厘米②浮游生物定量网:用于表层50厘米内各种浮游生物的定量采集。

其组成、质地、规格尺寸和制作方法与定性网基本相同。

二者有两点区别。

一点是定量网前端有两个金属环(前小后大),两环间有一圈帆布,称为上锥部(附加套),用途在于减少由于曳网时浮游生物着逆流向外而流失;另一点是网身较定性网略长(图8-2)。

浮游植物的采集、计数与定量方法讲解

浮游植物的采集、计数与定量方法讲解



凡水深不超过2米者,可于采样点水下0.5m处采水,

水深2~10米以内,应距底0.5米处另采一个样, 水深超过10米时。应于中层增采一个水样。

⑴池塘:样点可设在距岸边1m处。水深小于2m时采一中 层水样。若水深大于2m时,最好采上、中、下层水样。 亚表层:水下20cm左右。 中 层:水体中间部分。 下 层:离底20cm左右。
每种藻类至少随机测量20个以上,求出 这种藻类个体种的平均值,一般都制成 附表供查找。此平均值乘上一升水种该 种藻类的数量,即得到一升水中这种藻 类的生物量(mg/L)。
由于同一种类的细胞大小可能有较大的 差别,同一属内的差别就更大了,因此 必须实测每次水样中主要种类(即优势 种)的细胞大小并计算平均重量,其他 种类可以参考附表计算。
每瓶标本计数数量:计数两片取其平均值 ,每片大约计算50~100个视野,但视野 数可按浮游植物的多少而酌情增减。 如平均每个视野不超过1~2个时,要数200 个视野以上,如果平均每个视野有 5 ~ 6 个时要数100个视野,如果平均每个视野 有十几个时数50个视野就可以了。

同一样品的两片计算结果和平均数之差 如不大于其均数的±15%,其均数视为 有效结果,否则还必须测第三篇。
浮游植物的 采集、计数与定量方法

浮游植物(Phytoplankon)又称浮游藻类, 是水中悬浮生活的若干种藻类的总称。浮 游植物及其生产力的作用:
水生态系统的重要成员与重要功能之一: 是鱼类天然饵料的重要组成部分; 由于浮游植物对环境的变化十分敏感,故 在环境监测中,也有重要作用。

种类和数量
采水时,每瓶样品必须贴上标签,标签上 药剂在采集的时间、地点、采水体积等 ,其他详细内容应另行做好记录,以备 查对,避免错误。

浮游生物样品采集与分析

浮游生物样品采集与分析
浮游植物主要包括藻类,如蓝藻 、绿藻、硅藻等,而浮游动物则 包括轮虫、枝角类、桡足类等。
浮游生物的种类与分布
浮游生物的种类繁多,分布广泛,几 乎存在于全球各地的水域中。
不同地区和不同水域的浮游生物种类 和数量分布各不相同,受到温度、光 照、盐度、水深等多种因素的影响。
浮游生物的生态作用
浮游植物通过光合作用产生氧气, 是水生生态系统中的主要生产者
采集浮游生物需要使用各种工具和设备,如浮游生物网、采水器、标本瓶、显微 镜、计数板等。这些工具和设备用于捕获、保存和观察浮游生物样品。
样品处理与保存
总结词
对采集到的浮游生物样品进行处理的步骤和方法。
详细描述
对采集到的浮游生物样品需要进行适当的处理和保存,以保持样品的代表性和完整性。处理方法包括洗涤、筛选、 浓缩、固定等,保存则通常采用加入适量固定剂或保存液,以及低温或冷冻等方法。样品处理和保存的步骤对于 保证分析结果的准确性和可靠性至关重要。
计数法
总结词
根据一定体积的浮游生物样品中含有的 个体数量进行计数。
VS
详细描述
计数法是浮游生物分析中最常用的方法之 一,通过在一定体积的样品中计数浮游生 物的个体数量,可以得出该体积内的浮游 生物密度。该方法需要使用计数板或计数 池等工具,操作简便,结果准确。
生物量测定法
总结词
通过测量浮游生物样品的重量、干重或湿重 来推算其生物量。
采样点的选择与布局
采样点选择
在选择浮游生物采样点时,应考虑水 体的类型、流速、水深、水质、底质 等因素,以确保采集到的样品具有代 表性。
采样点布局
采样点的布局应遵循均匀分布的原则 ,尽可能覆盖整个水体,避免出现采 样盲区。
采样时间与频率

浮游动植物的采集和标本保存

浮游动植物的采集和标本保存

浮游动植物的采集和标本保存一、采集用具25号筛绢浮游生物网,13号筛绢浮游生物网,吸管,标本瓶(50毫升小塑料瓶、玻璃吸管和200毫升塑料广口瓶),标本夹,吸水纸,台纸,镊子,采集刀,塑料桶等,固定液:鲁哥氏液(即I一IK溶液)、福尔马林(甲醛)。

浮游生物网制作方法如下:①规格。

网口直径为20厘米,网袋长60厘米,网底应安装一个带阀门的集中杯。

网袋的质地为尼龙筛绢。

筛绢的号码及网孔大小,随采集对象的大小而定。

采集大型浮游动物时,用13号(0.112mm)筛绢,采集小型浮游藻类时,用25号(0.064mm)筛绢。

②制作方法。

取3~4毫米粗的铜丝或铅丝作一个直径20厘米的网口,用以支撑网口始终张开。

用金属或玻璃制作一个带阀门的集中杯(或购买),用来收集过滤到的浮游藻类。

在网袋的上下口处接一段白布,使筛绢不与金属直接接触,以免磨损筛绢。

网袋缝合处也应加缝2厘米长的白布条,以加固缝合处。

二、采集方法淡水生物分布很广,其中大多数生活在各种不同的水体中,此外还有些生活在潮湿的土壤表面、树皮、墙壁及石壁上,极少数种类生于长年积雪的高山上;少数种类与其它动植物共生;或寄生在别的生物体中。

因此,各种藻类在其具体的生活状态、藻体的大小、生活环境及每年的发生时期都有很大差异。

因此,采集浮游生物首先需要对以上情况有基本了解,以便确定相应的采集方法。

1.浮游藻类这些藻类个体微小,单细胞或群体,没有鞭毛,完全借水力漂浮在水中或具鞭毛在水体中仅有微弱的运动能力,采集这些藻类可视具体情况进行采集。

①在水面较大、较深的水体中,应用25号浮游生物网采集。

采集时应把网没入水面下并以大八字形(∞)来回缓缓捞取。

水色较清、藻类数量少时可多捞一会,反之可少捞一会。

最后将网垂直提出水面,打开底管阀门,把标本液注入标本瓶中。

特别应注意作好记录,编号并在标本瓶上贴好标签。

在定量采集时分别取水体上、中、下层水在水桶中混合均匀,然后取200毫升装入广口塑料瓶中。

浮游动植物调查方法

浮游动植物调查方法

浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的,通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异,因此必须选择有代表性的地点进行采样。

在一般情况下,湖泊的湖湾和中心部分,沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。

当有风引起水流时,浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧,总量较高。

此外,水源入口处,不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。

采样点的数目根据水体的具体条件而定。

水体面积大的,条件复杂的,采样点要多些;要有较高人力、时间和经费等条件允许的,采样点也可以多些。

1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。

当一般定性采集时,可站在船舱内或甲板上,将采集网系在竹竿或木棍前端,放入水中作∞形循回拖动(网口上端不要露出水面),拖动速度不要超过0.3米/秒。

如若拖动太快,水在网内会发生回流,将使网内的浮游生物冲到网外。

当一般定量采集时,各种类型的采水器均可使用,但一定要能分层采水。

在水深不超过10米的水体采样时,可用自制的采水器。

采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。

但因采集水量有限,很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。

1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。

常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。

福尔马林为含有40%甲醛的药品。

一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林(含1.6%甲醛),也就是说用4%福尔马林固定。

1.4浓缩化学沉淀法:所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀,用宏吸管吸去上面清夜,将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中,再静置沉淀。

必要时可反复进行,直到浓缩到10—50毫升为止。

1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定,是一项难度和工作量都很大的工作,常常需要各方面的专家协同进行。

种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。

浮游动物的测定

浮游动物的测定

水质常规项目实验之三
浮游动物的调查
一、实验试剂及工具
甲醛溶液40%(V/V)
采水器5000mL、浮游生物网13号(孔径0.112mm纱绢制成)、水样瓶(矿泉水瓶子)、样品瓶(带有100mL或150mL刻度的玻璃试剂瓶)、离心机、洗耳球、移液枪(20~200uL)、计数框0.05mL、盖玻片
二、实验步骤
1、采样:选择5个特定的区域作为采样点,关闭13号浮游
生物网的网口,5000mL采水器采水5次(用浮游生物网
过滤),第6次采水用于冲洗过滤网使浮游动物全部收集
到水样瓶中。

2、固定:在水样中加入10mL甲醛
3、沉淀:用3000转/分钟离心机5分钟离心
4、稀释:将离心后的上层清液弃去,沉淀物移入样品瓶中,
稀释到100mL
5、观察计数:用移液枪移取50uL样品,移入计数框,盖上
盖玻片,在显微镜4倍~40倍下进行观察并计数n
6、计算:每升水中浮游动物的数量
密度=(n×100)/(0.05×30)只/L
三、实验结果
1号(铁桥老王家)
233只/L
2号(南溪沟张磊)
550只/L
3号(老雷家)
917只/L
4号(清泉主航道)
733只/L
5号(翠屏岛码头沉淀稀释150mL)
375只/L
四、结果讨论
1、浮游动物含量介于233~917只/L,其中老雷家附近水域
含量最高,铁桥下水域含量最低。

同一二班所测结果相
差不大。

2、各类浮游动物大体平均含量为:(只/L)
显然累枝虫最多。

变形虫最少。

淡水浮游动物监测基本流程

淡水浮游动物监测基本流程

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浮游动植物调查方法

浮游动植物调查方法

浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的,通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异,因此必须选择有代表性的地点进行采样。

在一般情况下,湖泊的湖湾和中心部分,沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。

当有风引起水流时,浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧,总量较高。

此外,水源入口处,不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。

采样点的数目根据水体的具体条件而定。

水体面积大的,条件复杂的,采样点要多些;要有较高人力、时间和经费等条件允许的,采样点也可以多些。

1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。

当一般定性采集时,可站在船舱内或甲板上,将采集网系在竹竿或木棍前端,放入水中作∞形循回拖动(网口上端不要露出水面),拖动速度不要超过0.3米/秒。

如若拖动太快,水在网内会发生回流,将使网内的浮游生物冲到网外。

当一般定量采集时,各种类型的采水器均可使用,但一定要能分层采水。

在水深不超过10米的水体采样时,可用自制的采水器。

采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。

但因采集水量有限,很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。

1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。

常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。

福尔马林为含有40%甲醛的药品。

一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林(含1.6%甲醛),也就是说用4%福尔马林固定。

1.4浓缩化学沉淀法:所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀,用宏吸管吸去上面清夜,将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中,再静置沉淀。

必要时可反复进行,直到浓缩到10—50毫升为止。

1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定,是一项难度和工作量都很大的工作,常常需要各方面的专家协同进行。

种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。

浮游生物调查 - 中国科学院水生生物研究所

浮游生物调查 - 中国科学院水生生物研究所

浮游生物调查1.试剂与器具主要试剂见附录1,器具见附录2、3。

2 采样2.1 采样点布设2.1.1 原则根据水体面积、形态、浮游植物的生态分布特点和调查的目的等决定采样点数量。

采样点应有代表性,能反映整个水体浮游生物的基本情况。

采样点设置数量见表1。

采样结果记入附录4。

2.1.2 湖泊、水库湖泊应兼顾在近岸和中部设点,可根据湖泊形状在湖心区、大的湖湾中心区、进水口和出水口附近、沿岸浅水区(有水草区和无水草区)分散选设;水库应在库心区(河道型水库应分别在上游、中游、下游的中心区)及大的库湾中心区、主要进水口、出水口附近、主要排污口、入库江河汇合处设点。

2.1.3 江河在干流上游、中游、下游,主要支流汇合口上游、汇合后与干流充分混合处,主要排污口附近、河口区等河段设置采样断面。

根据江河宽设置断面采样点,一般小于50m的只在中心区设点;50m~100m的可在两岸有明显水流处设点;超过100m的应在左、中、右分别设置采样点。

2.2 采样层次2.2.1 浮游植物采样水深小于3m时,只在中层采样;水深3m~6m时,在表层、底层采样,其中表层水在离水面0.5m处,底层水在离泥面0.5m处;水深6m~10m时,在表层、中层、底层采样;水深大于10m时,在表层、5m、10m水深层采样,10m以下处除特殊需要外一般不采样。

2.2.2 浮游动物采样由水体的深度决定,每隔0.5m、1m或2m取一个水样加以混合,然后取一部分作为浮游动物定量之用。

2.3 采样频次和采样时间采集次数依研究目的而定,采样次数可逐月或按季节进行,一般按季节进行。

样品瓶必须贴上标签,标明采集时间、地点。

采样时间尽量保持一致,一般在上午8:00~10:00进行。

2.4 采样方法2.4.1 浮游植物采样定量样品在定性采样之前用采水器采集,每个采样点取水样1L,贫营养型水体应酌情增加采水量。

泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。

分层采样时,取各层水样等量混匀后取水样1L。

浮游生物的测定常识

浮游生物的测定常识

(2)4%的福尔马林
福尔马林 + 甘油 + 水
4mL
10mL 86mL
适宜固定枝角类和桡足类
100mL水样 + 4~5mL福尔马林
(3)70%酒精 适宜固定枝角类和桡足类
浓缩方法: (1)沉淀法:沉淀24~48小时 (2)过滤法:用筛绢或滤器过滤 (3)离心法:用离心机离心
三、浮游生物的测定
(一)浮游生物的定性测定
后体部
于后体部 于后体部
第一触 长达身体的末 角 端,23-25节
适中,617节
短,5-9节
卵囊
1个,在身体 中间
2个,在身 1个,在身
体两侧
体中间
生活方 式
浮游生活
浮游生活 底栖生活
汤匙华哲水蚤
毛饰拟剑水蚤 单节水生猛水蚤
(二)浮游生物的定量测定
1. 计数框及其使用 (1) 塞奇威克一拉夫脱计数框(简称S-R计数框): 长:50mm,宽20mm,深1mm
1mL
(2) 网格计数框
深0.25mm
2. 显微镜的校准 目测微尺
测微尺 台测微尺
目尺长度 (mm )

两重合线之间台尺格数 两重合线之间目尺格数
3. 计数方法 (1) 长条计数法
C 1000
浮游生物数/ mL=
L W D S
式中C-- 计数的浮游生物数;
L-- 一个长条的长度,也就是计数框的长度(mm);
浮游生物的测定常识
浮游生物的测定常识
一、采样
(一)采样工具
型号
网孔大小 (mm)
网孔 数
采集目的
1.浮游生物网 25
(1) 定性网
(2) 定量网
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浮游动物生物量的测量方法
自赵文《水生生物学》现存量:单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。

现存量若以个体数表示则可称为丰度或(数量)密度,单位为个/L。

若以质量表示则可称为生物量,单位为mg/L。

采集方法:
一采水器采水后沉淀分离(适用原生动物、轮虫等小型浮游动物);
二用网过滤(适用于枝角类、挠足类等甲壳动物)。

仪器:采水器,(25#)浮游生物网,显微镜,计数框(计数原生动物用0.1ml计数框,计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框)解剖镜,毛细管,目测微尺
一采集
1 设站根据浮游动物的分布设站。

2 采水层次由水体的深度决定。

切不可之采一个表层或一个底层水样。

(据夏季调查,东湖B站(水深4m左右),在2m的水层区,甲壳动物的数量约占31%,而入2m一下的水层占69%左右。

同时还发现,在夏季,一般幼体喜欢在表层,成体在深层。


分层方法:是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合,然后取得一部分作为浮游动物定量之用。

许多水库或深水湖泊,水深20m以上,这种水体在夏季及冬季存在温跃层(或称变温层)。

由于在温跃层一下缺乏光照,浮游植物数量极少,依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。

如果从养殖角度而言,只取温水层以上的水层就足够了。

3 采水量浮游动物不但种类组成复杂,而且个体大小相差也极悬殊。

因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。

(目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜,枝角类、桡足类则以10~50L较好。


4 采集时间采样时间要尽量保持一致。

一般在上午8:00~10:00进行为好。

在长江中下游采集,如果采集四次,则春、夏、秋、冬各一次。

如果只采一次,则应在秋季(9、10月)进行为好。

(这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季,为鱼类生长的最佳时期,如果此时有较高的现存量,则可认为该水体中有较大的供铒能力。


浮游动物样品的固定,原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林,加量同浮游植物(一般可与浮游植物合用同一样品)。

枝角类和桡足类一般用5%体积的甲醛固定。

原生动物、轮虫的种类鉴定需活体观察,为方便起见,可加适当的麻醉试剂,如普鲁卡因、乌来糖(鸟烷),也可用苏打水等。

二沉淀和虑缩
1 沉淀法操作方法与浮游植物定量样品的沉淀和浓缩方法相同。

(即在筒形分液漏斗中沉淀48小时后,吸取上层清液,把沉淀浓缩样品放入试瓶中,最后定量30或50ml。

一般原生动物和轮虫的计数可与浮游植物的计数合用一个样品。


2 滤缩法甲壳动物一般个体较大,在水体中的密度也较低,通常用过滤法浓缩水样。

注意:首先必须用25#浮游生物网作为过滤网;其次,应当有过滤网和定性网之分。

在不得已情况下,定要先采定量样品,后采定性标本。

如果再次过滤样品时,一定要反复洗净后方可使用。

同时切记用25#网过滤的水样,不能当做计数原生动物或轮虫的定量样品之用。

三计数
1 浮游动物、轮虫的计数计数时,成点样品应充分摇匀,然后用定量吸管吸0.1ml注入0.1ml 计数框中,在10*20的放大倍数下计数原生动物。

在10*10放大倍数下计数轮虫。

计数两片
取平均值。

2 甲壳动物的计数按上述方法取10~50L水样,用25#浮游生物网过滤,把过滤物放入标本瓶中,并洗3次。

如果样品中有过多的藻类则可加伊红染色。

无节幼虫是桡足类的幼体,据初步统计它们的数量占整个桡足类总数的40%~90%评均75%。

无节幼体一般很小,与轮虫相差无几,甚至有的还小于轮虫和原生动物。

在样品中如果桡足类数量不锁,可和枝角类、桡足类一样全部计数;如果桡足类数量很多,全部计数花时太多,那么可把过滤样品稀释若干体积,并充分摇匀,再取其中部分计数,计数若干片取平均值。

然后再换算成单位体积中个体数。

无节幼体也可在1L沉淀样品中,用轮虫相同的技术方法进行计数。

把计数获得的结果用下列公式换算为单位体积中浮游动物个数:
N=Vn/VVa
其中N为1L水中浮游动物个体数;V为采样体积;Vs,V a为沉淀体积(ml)和计数体积(ml);n为计数所取得的个体数。

四体重的测量方法
测量浮游动物生物量主要有体积法、排水容积法、沉淀体积法和直接称重法。

1 体积法本方法就是把生物体当作一个近似几何图形,按体积公式获得生物体积,并假定相对密度为1,就得到体重。

这种方法在原生动物、轮虫中广泛应用。

在活体情况下,在解剖镜下将所需轮虫仅能做微小范围运动为止,然后把载玻片放在显微镜下(不加盖玻片),用目测微尺测量其长和宽,轮虫的厚度也可通过显微镜微调进行近似测量。

2 排水容积法本法根据不可压缩的原理,用类似Tranten氏描述的装置来测定。

3 沉淀体积法把用网具拉去的浮游动物样品放在有刻度的滴定管中,经一定时间沉淀后读出沉淀体积(排水容积法和沉淀体积法所获得的是浮游生物的总体积。

如果水体中大型浮游动物占优势,则有较大的正确性。

应用本法采水量要大,样品量越大就越正确。


4 直接称重法就是把测重的生物体用微量天平直接称其体重。

(1)原生动物、轮虫体重的测定方法。

当某种原生动物或轮虫种群出现高峰时,用网捞取并在解剖镜下用适当口径大小的吸管逐个吸出并放在滤膜上,水要尽量少且越干净越好。

载有原生动物或轮虫的滤膜放在恒温干燥箱中(70℃左右),干燥24h后,用解剖针吧滤膜上的动物逐个挑出,放在已称重的铂片上,并迅速在电子天平上称重,即可获得每个原生动物或轮虫的平均值。

(2)甲壳动物体重的测量方法。

吧新鲜的或用4%福尔马林固定的标本,通过不同孔径的铜筛做初步分级,筛选出不同的规格级。

然后再解剖镜下,仔细挑选体形正常、规格接近的个体集中在一起。

枝角类测量从头部顶端(不含头盔)质壳刺基部的长度,桡足类测量从头部顶端至尾叉末端的长度,把体长基本一致的个体放在已称至恒重的盖玻片上。

根据个体大小确定称重个体的数目,一般为30~50个,体长小于80mm的个体则称重150个以上。

把待称重的标本选好后,用滤纸西大没有水痕的程度,迅速在天平上先称其湿重,后再恒温干燥箱中(30℃左右)干燥24h,再放在干燥器中干燥2h,然后把样品放在天平称其干重,并用统计方法获得相应的体长体重回归方程式。

W=bLªW为体重(mg)L为体长(mm)
枝角类的卵一般比较大,可直接从孵卵囊中取出,称其湿重和干重;桡足类的卵一般比较小,但均为球形,用体积法就可获得较佳的结果。

用目微尺法量出卵的平均直径(D)后,代入球体公式(V=1/6πD³)便求出体积V,再按相对密度为1.05秋初卵的质量。

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